инфекционная безопасность. реферат инфекционная безопасность. Инфекционная безопасность
 Скачать 45.48 Kb.
|
|
ФГБОУ ВО Алтайский Государственный Медицинский Университет Минздрава РФ Кафедра сестринского дела Инфекционная безопасность Зав. кафедрой: д.м.н., профессор Фёдоров Д.В. Преподаватель: ассистент Федорова Н.Н. Выполнил(а): студент(ка) 104 группы Островская Анна Барнаул 2021 САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЙ РЕЖИМ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО ОТДЕЛЕНИЯ Строгое выполнение всех требований по поддержанию санитарноэпидемиологического режима в терапевтическом отделении выступает обязательным условием профилактики внутрибольничной инфекции, предупреждения размножения патогенных микроорганизмов и распространения насекомых (тараканов, постельных клопов, мух) и грызунов. Внутрибольничная инфекция Внутрибольничная (нозокомиальная (от греч. nosokomeion - больница), госпитальная) инфекция - заболевание инфекционной природы, развившееся у пациента во время его пребывания в стационаре (лечебно-профилактическом учреждении) через 48 ч после поступления или вскоре после выписки (также в течение 48 ч), а также у медицинского работника, занимающегося в больнице лечением и уходом за пациентом. Контингент лиц, у которых возможно развитие нозокомиальной инфекции: 1) стационарные пациенты (инфицирование в больнице); 2) пациенты, обратившиеся в лечебно-профилактические учреждения: дневной стационар, диспансер, консультативный центр, поликлинику, а также вызывавшие скорую помощь и пр.; 3) медицинский персонал: инфицирование при оказании помощи пациентам в стационаре и других лечебно-профилактических учреждениях. В условиях стационара могут развиваться следующие инфекционные заболевания. • Гнойно-септические инфекции: пиодермиты. • Детские инфекции: корь, скарлатина, краснуха, дифтерия, эпидемический паротит и др. • Вирусные инфекции: грипп, вирусные гепатиты B, C, D, ВИЧ и др. • Кишечные инфекции: сальмонеллёз, амебиаз, шигеллёзы и др. • Особо опасные инфекции: сибирская язва, чума, брюшной тиф и др. Основными возбудителями внутрибольничной инфекции выступают следующие патогены. • Облигатная (от лат. obligatus - обязательный) патогенная микрофлора: микроорганизмы, вызывающие детские инфекции - корь, дифтерию, скарлатину, краснуху, эпидемический паротит и др., кишечные инфекции - сальмонеллёз и др., гепатиты В, С и пр. • Условно-патогенная микрофлора: золотистый стафилококк, стрептококки, синегнойная палочка, кишечная палочка и пр. • Цитомегаловирусы, простейшие. Источниками внутрибольничной инфекции являются медицинский персонал и сами пациенты, причём источником микроорганизмов могут быть руки, кишечник, мочеполовая система, носоглотка, волосы и кожные покровы, полость рта и пр. Дополнительно микроорганизмы могут поступать из окружающей среды: с инструментарием - особенно опасны в этом отношении изделия из резины, например катетеры, дренажные трубки; через оборудование, например ингаляторы, ионизаторы, а также лекарственные средства, продукты питания, пыль, воду и пр. * Артифициальный (от лат. artificium - искусство) механизм (искусственный механизм) - передача инфекции при несоблюдении правил её профилактики во время выполнения лечебных, диагностических и других процедур. нфекция передаётся при реализации воздушно-капельного (аэрозольного), контактно-бытового и артифициального* механизмов передачи. Основные группы риска развития внутрибольничной инфекции: 1) пациенты, которым показано большое количество лечебно-диагностических процедур; 2) пациенты с хроническими заболеваниями; 3) пациенты пожилого возраста; 4) пациенты с ослабленным иммунитетом. Основные правила профилактики внутрибольничной инфекции • Своевременное и правильное использование (в том числе хранение) защитной одежды. • Адекватная обработка рук медицинского персонала. • Соблюдение санитарно-эпидемиологического режима в приёмном отделении: правильная санитарно-гигиеническая обработка, осмотр на наличие педикулёза, термометрия и пр. • Санитарно-гигиеническая обработка и контроль за личной гигиеной пациентов (в том числе за сменой белья) в отделениях. • Дезинфекция предметов медицинского назначения. • Соблюдение санитарного режима питания: своевременная санитарно-гигиеническая обработка и оснащение буфетных и раздаточных помещений, в том числе соблюдение правил удаления пищевых отходов и сроков реализации предметов питания. • Активное выявление пациентов с подозрением на инфекционное заболевание и соблюдение сроков наблюдения за контактными пациентами. Защитная одежда медицинского персонала • Маска: может быть изготовлена из четырёх слоёв марлевой ткани либо из специального нетканого материала - тем не менее эффективность защиты от воздушно-капельной инфекции с помощью обычной маски составляет около 10%. В современных многослойных масках одним из слоёв является полипропиленовый фильтр, обеспечивающий фильтрацию на 99%. • Защитные очки и щитки: защита от попадания на лицо медицинского работника биологического материала пациентов - крови, слюны и пр. • Перчатки: защита от контакта с биологическим материалом - кровью, слюной, мочой, калом и пр. — В нашей стране широко используются опудренные латексные перчатки. Однако необходимо указать, что при их использовании существует опасность аллергии как на протеины, содержащиеся в натуральном латексе, так и на различные химические добавки - вулканизаторы, катализаторы, антиоксиданты. Пудра, традиционно применяемая для облегчения надевания перчаток, из-за своей абразивности может вызвать контактный (неаллергический) дерматит, а также усилить реакции на протеины латекса (она может перемещать по воздуху латексные аллергены). В настоящее время всё шире используют неопудренные перчатки, поверхность которых обрабатывается силиконом, что облегчает их надевание и создаёт дополнительную защиту от крови пациентов. - Альтернативой перчаток из латекса являются синтетические перчатки, создаваемые из полимерных материалов: неопрена, полиуретана, винила и нитрила. Эти перчатки, не уступая натуральному латексу по физическим параметрам (упругость, эластичность, прочность), не содержат протеинов и химических катализаторов, т.е. являются гипоаллергенными. Они легко надеваются благодаря внутреннему уретановому иономерному покрытию, обеспечивают комфорт и удобство, так как снижают усталость и потливость рук, имеют лучшую по сравнению с латексными перчатками устойчивость к натяжению, проколам и влиянию спирта. • Халат, фартук (в том числе и из материала CMC): профилактика передачи инфекции при уходе за пациентом. Дезинфекция Дезинфекция (от лат. de - приставка, означающая прекращение, устранение, inficio - заражать; син.: обеззараживание) - комплекс мер по уничтожению вегетирующих форм* патогенных и условно-патогенных микроорганизмов. * Уничтожение как вегетирующих форм микроорганизмов, так и их спор обеспечивается другим воздействием - стерилизацией. Существует два основных направления дезинфекции: • профилактическая дезинфекция - предупреждение внутрибольничных инфекций; • очаговая дезинфекция - обеззараживание в выявленном очаге инфекции. Дезинфекцию можно осуществлять четырьмя методами: механическим, физическим, химическим и комбинированным (табл. 3-9). Таблица 3-9. Методы дезинфекции
Таблица 3-10. Основные группы дезинфицирующих средств, применяемых в лечебных учреждениях России Методы дезинфекции медицинских инструментов К основным методам дезинфекции медицинских инструментов относят их кипячение и погружение в дезинфицирующие растворы. Метод кипячения. Кипячение рекомендуют для медицинских изделий из стекла, металла, термостойких материалов, резины. Кипятят в 2% растворе натрия гидрокарбоната в течение 15 мин. Метод погружения в дезинфицирующий раствор. Для дезинфекции методом погружения используют следующие растворы. • 3% раствор хлорамина Б* с погружением медицинских инструментов на 60 мин (для обработки инструментов в туберкулёзных стационарах - в 5% раствор хлорамина на 240 мин). • 6% раствор водорода перекиси с погружением на 60 мин или 4% раствор - на 90 мин. • 2% раствор глутарала с погружением на 15 мин. • 70% раствор спирта с погружением на 30 мин. Предстерилизационная очистка медицинских инструментов Стерилизация (от лат. sterilis - бесплодный) - полное освобождение какого-либо вещества или предмета от микроорганизмов путём воздействия на него физическими или химическими факторами. Предстерилизационной очистке должны подвергаться все медицинские изделия многократного использования перед их стерилизацией и (или) дезинфекцией с целью удаления белковых, жировых, механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. * Для приготовления 3 % раствора хлорамина Б нужно растворить 30 г сухого хлорамина Б в 970 мл воды. Разъёмные изделия подлежат предстерилизационной очистке в разобранном виде в следующем порядке. • Ополаскивание проточной водой в течение 30 с. • Замачивание в моющем комплексе («Биолот», «Лотос») при полном погружении изделия в течение 15 мин при температуре 50 °C. • Мойка каждого изделия с помощью ерша, ватно-марлевого тампона или щётки в моющем комплексе в течение 30 с. • Ополаскивание проточной водой при применении «Биолота-1» в течение 3 мин, «Лотоса-медицинского» в течение 10 мин. • Выдерживание в дистиллированной воде в течение 30 мин. • Сушка горячим воздухом при температуре 80-85 °C до полного исчезновения влаги. Контроль качества предстерилизационной обработки медицинского инструментария Предстерилизационную обработку считают эффективной, если на изделиях после обработки не обнаружены остаточные количества крови с помощью амидопириновой или азопирамовой пробы. Раствор для проведения амидопириновой пробы: непосредственно перед проведением пробы смешивают равные количества (по 2-3 мл) 5% спиртового раствора аминофеназона («Амидопирина»), 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора водорода перекиси. Раствор для азопирамовой пробы: для приготовления 1-1,5% раствора азопирама разводят солянокислый анилин в 95% растворе этилового спирта. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте в холодильнике в течение 2 мес, при комнатной температуре (18-23 °C) - не более 1 мес. Непосредственно перед пробой готовят рабочий раствор, смешивая равные количества азопирама и 3% водорода перекиси. Рабочий раствор может быть использован в течение 1-2 ч. При более длительном хранении возможно спонтанное окрашивание реактива в розовый цвет. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор на ярком свете или вблизи нагревательных приборов. ля проверки пригодности рабочего раствора азопирама 2-3 капли его наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание пятна, переходящее затем в синее, реактив годен к употреблению. Технология постановки пробы (применяют для многоразовых медицинских инструментов). На нестерильную вату наносят реактив. Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на вате ею протирают поршень шприца, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю. Затем заливают реактив в цилиндр шприца, пропускают его через шприц на другую вату (проверяется цилиндр шприца). После этого на шприце закрепляют иглу, вновь наливают в цилиндр реактив и пропускают его через шприц и иглу (проверяется игла). Интерпретация результата: при наличии кровяных загрязнений на вате появляется сине-зелёное (положительная амидопириновая проба) или фиолетово-синее (положительная азопирамовая проба) окрашивание. Если проба положительная, повторный контроль инструментов следует проводить ежедневно до получения 3-кратного отрицательного результата. Самоконтроль в лечебно-профилактическом учреждении проводят не реже 1 раза в неделю. Контролю подвергают 1% одновременно обрабатываемых изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц. Сотрудники санитарно-эпидемиологической станции контроль качества предстерилизационной очистки проводят 1 раз в квартал. Дезинфекция помещений, предметов обстановки процедурного кабинета Её осуществляют путём двукратного протирания ветошью, смоченной в 1% растворе хлорамина Б с моющим средством или в 3% растворе водорода перекиси с моющим средством. Обработка ветоши: 1) погружение в один из растворов (1% раствор хлорамина Б, 0,5% раствор кальция гипохлорита) на 60 мин перед использованием; 2) кипячение в 2% содовом растворе в течение 15 мин. Если предметы обстановки или ветошь загрязнены кровью, следует немедленно перейти на режим обработки с использованием 3% раствора хлорамина Б. Текущая уборка процедурного кабинета. Её проводят 2 раза в день с применением 1% раствора хлорамина Б. Ультрафиолетовое облучение и проветривание кабинета осуществляют 4 раза в день по 15-20 мин (после уборки помещение следует облучать стационарными или передвижными ультрафиолетовыми лампами). Генеральная уборка процедурного кабинета. Её выполняют 1 раз в неделю с применением 5% раствора хлорамина Б. Приготовление рабочих дезинфицирующих хлорсодержащих растворов Хлорсодержащие дезинфицирующие растворы применяют для обеззараживания различных помещений, туалетов, предметов ухода, посуды, выделений пациентов и пр. Приготовление дезинфицирующих растворов должно проводиться централизованно в специально оборудованных помещениях, имеющих приточно-вытяжную вентиляцию. Необходимое оснащение • Защитная одежда (длинный халат, шапочка, клеёнчатый фартук, респиратор, защитные очки, резиновые перчатки, сменная обувь). • Сухая хлорная известь, хлорамин Б (сухой порошок). • Ёмкости (эмалированные, пластмассовые или из тёмного стекла) для дезинфицирующих растворов с обязательной маркировкой. • Мерная посуда (1 л, 10 л) с маркировкой. • Деревянная лопатка для размешивания раствора. • Вода. • Средства личной гигиены (полотенце, мыло). Порядок приготовления 10% раствора хлорной извести 1. Подготовиться к приготовлению дезинфицирующего раствора: надеть спецодежду, проверить оснащение, отметить время начала процедуры. 2. Налить в ёмкость 2-3 стакана воды. 3. Осторожно всыпать туда 1 кг сухой хлорной извести и тщательно размешать, разминая комочки. 4. Долить ёмкость водой до 10 л, перемешать до однородной массы. 5. Плотно закрыть ёмкость крышкой и оставить на сутки в тёмном помещении; раствор необходимо перемешать несколько раз в течение суток. 6. Через сутки слить отстоявшийся раствор в другую ёмкость (процедуру проводить в защитной одежде), сделать на ней надпись о дате приготовления и хранить в тёмном месте. 7. По окончании процедуры снять спецодежду, вымыть руки. Порядок приготовления 1% раствора хлорной извести 1. Подготовиться к приготовлению дезинфицирующего раствора: надеть спецодежду, проверить оснащение, отметить время начала процедуры. 2. Налить в ёмкость 1 л 10% раствора хлорной извести (для получения 0,5% раствора хлорной извести - 0,5 л). 3. Долить ёмкость водой до 10 л, перемешать. 4. Плотно закрыть ёмкость крышкой и сделать на ней надпись о дате приготовления. 5. По окончании процедуры снять спецодежду, вымыть руки. Такой раствор используют для работы сразу после его приготовления. Процедура приготовления раствора хлорамина Б также должна выполняться с соблюдением всех правил техники безопасности, в защитной одежде и с обязательной маркировкой ёмкостей с жидкостью. Для получения 1% раствора хлорамина Б нужно 10 г сухого хлорамина Б сначала тщательно размешать в специальной ёмкости и затем долить водой до метки 1 л. В настоящее время широко используются хлорсодержащие продукты, представленные твердыми (таблетки, гранулы) концентрированными формами на основе дихлоризоцианурата натрия или трихлоризоциануровой кислоты, дезинфектанты на основе гипохлоритов натрия, кальция, лития; неорганических и органических хлораминов; а также жидкого газообразного хлора и диоксида хлора. Обеспечение здорового микроклимата Для поддержания здорового микроклимата (в прямом смысле, т.е. в плане физических параметров в помещении) в лечебном учреждении необходимо соблюдать определённые требования, предъявляемые к основным параметрам, обеспечивающим здоровый фон окружающей пациента среды. Особое внимание рекомендуется уделять следующим факторам (табл. 3-11): • освещению - естественному (солнечный свет), искусственному; • вентиляции - проветриванию, кондиционированию*; • отоплению (может быть водяным, паровым, воздушным). * Кондиционеры, к сожалению, могут выступать источником заражения легионеллами (вид бактерий) с развитием тяжело протекающего инфекционного заболевания - так называемой болезни легионеров. Эта болезнь может развиться, если в помещениях установлены разветвленные централизованные системы кондиционирования воздуха, где вода отстаивается некоторое время и контактирует с подаваемым в воздуховоды воздухом. Для профилактики этого заболевания необходимо проводить дезинфекцию кондиционеров. Санитарно-гигиеническая уборка помещений Флоренс Найтингейл ещё в 1860 г. в своей книге «Записки об уходе» («Notes on Nursing») впервые подняла проблему влияния санитарно-гигиенических факторов на состояние здоровья, а уход за больным определила как «...действие по использованию окружающей пациента среды в целях его выздоровления». Особо Ф. Найтингейл подчёркивала важность таких факторов окружающей пациента среды, как чистота, свежий воздух, тишина, правильное питание. Обеспечение санитарно-гигиенического режима в лечебном учреждении предусматривает тщательную регулярную уборку помещений. Тщательная влажная уборка больничных помещений и содержание в чистоте оборудования, медицинского инвентаря, предметов по уходу, мебели - обязательное условие соблюдения правил санитарно-гигиенического режима в лечебном учреждении (табл. 3-12). Таблица 3-12. Общие правила санитарно-гигиенической уборки больничных помещений
Окончание табл. 3-12
Уборку проводят щёткой, шваброй, тряпками, смоченными дезинфицирующим раствором. Уборка палат. В палате уборку следует начинать с прикроватных тумбочек: стирают пыль, убирают всё лишнее, оставляют мыло, зубную пасту, печенье, варенье, конфеты, книги. Фрукты и скоропортящиеся продукты должны находиться в холодильнике. Затем вытирают пыль с поверхности кроватей, радиаторов, труб, с подоконников, плафонов, мебели. Во время уборки должно быть тихо. Движения младшей медицинской сестры не должны беспокоить пациентов. Убирать следует чисто, не пропуская углы и труднодоступные места. Подметать палату нужно по направлению к двери, мусор подбирать совком и выносить в мусоропровод или сжигать. Уборка коридоров. В коридорах протирают влажной тряпкой двери, панели, мебель, ручки, завершают уборку мытьём пола раствором хлорной извести. Оснащение и уборка туалетных комнат. Туалетные комнаты должны быть хорошо изолированы от прочих помещений, иметь промежуточный шлюз, надёжно действующую вытяжную вентиляцию, достаточное освещение. Здесь следует разместить закрытые шкафы для суден, мочеприёмников, посуды для сбора кала и мочи. Уборочный инвентарь должен быть отдельным для палат и туалетных комнат, применяться строго по назначению. Он должен иметь соответствующую маркировку, содержаться в чистоте. Щётки, ветошь, тазы регулярно промывают горячей водой, а ветошь просушивают. Ерши для мытья суден и мочеприёмников («уток») также промывают водой и дезинфицируют. Ванны, подкладные судна, мочеприёмники моют и дезинфицируют после каждого употребления 0,5% раствором хлорной извести. Судна, «утки» тщательно промывают горячей водой и дезинфицируют 2% раствором хлорамина Б. Если у пациента обнаружено инфекционное кишечное заболевание, его кал заливают 20% раствором хлорной извести на 2 ч, а потом опорожняют судно. Чистые судна, «утки» хранят в туалетных комнатах в специальных гнёздах. В некоторых больницах имеются машины для мойки суден. Туалетные комнаты убирают по мере надобности и хорошо проветривают, чтобы не было запаха. Раковины, унитазы, писсуары, баки для хранения воды, плевательницы моют ежедневно горячей водой с мылом, 2% содовым раствором и дезинфицирующим раствором; бурые пятна протирают уксусной кислотой. Уборку туалетных комнат младшая медицинская сестра должна проводить в резиновых перчатках. После уборки она должна мыть руки с мылом и с помощью 2% раствора хлорамина Б, который должен быть в каждой туалетной комнате. Предупреждение профессиональных заболеваний медицинских сестёр при работе с кровью Все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук цельной кровью, плазмой или сывороткой крови, следует проводить в резиновых перчатках. Во время работы все повреждения на руках должны быть закрыты напальчником, лейкопластырем. При угрозе разбрызгивания крови следует работать в маске и защитных очках. Медицинскому персоналу запрещены приём пищи, а также курение в лабораториях и помещениях, где проводят процедуры пациентам. Разборку, мойку, ополаскивание медицинского инструментария, использованных пипеток и лабораторной посуды, соприкасающихся с кровью людей, нужно проводить до предварительной дезинфекции, в резиновых перчатках. После любой процедуры, в том числе парентерального вмешательства, проводят тщательное двукратное мытьё рук в тёплой проточной воде с мылом. Руки необходимо вытирать индивидуальным полотенцем, сменяемым ежедневно, или салфеткой одноразового пользования. При обработке рук следует избегать частого применения дезинфектантов, которые способны вызвать раздражение кожи и дерматиты, в том числе облегчающие проникновение возбудителей инфекции. Для профилактики инфицирования вирусной и бактериальной инфекцией, передаваемой через кровь или другие биологические жидкости пациента, в настоящее время в процедурном кабинете должна находиться так называемая «Аптечка при авариях», в состав которой обязательно входят перевязочный материал, ёмкости для разведения растворов, ундинка (стаканчик для промывания глаз), 70% раствор этилового спирта, 5% спиртовой раствор йода, 0,05% раствор перманганата калия, 1% раствор протаргола, 6% раствор водорода перекиси. В случае загрязнения рук кровью (или другой биологической жидкостью пациента) следует немедленно щипающим движением пальцев руки удалить с кожи остатки крови (биологической жидкости) с помощью тампона, обильно смоченного 70% раствором этилового спирта, вымыть их тёплой проточной водой с мылом и повторно обработать новым тампоном, смоченным 70% раствором этилового спирта. В случае попадания брызг крови: • на слизистую оболочку глаз - промыть глаза 0,05% раствором калия перманганата; • на слизистую оболочку носовой полости - обработать её 1% раствором протаргола (закапать в нос); • на слизистую оболочку полости рта - прополоскать рот 70% раствором спирта. В случае загрязнения кровью поверхности рабочего стола во время манипуляции следует немедленно обработать стол ветошью, смоченной 6% раствором водорода перекиси с 0,5% моющим средством. После окончания работы необходимо протереть поверхность стола ветошью, смоченной в 3% растворе хлорамина Б. Источник: Ослопов, В. Н. Общий уход за больными терапевтического профиля : учеб. пос. / В. Н. Ослопов, О. В. Богоявленская. |