|
|
14-26 паразит. Исследование эпизоотологических данных, клинических признаков инвазии, гельминтоскопию, гельминтоовоскопию, гельминтоларвоскопию
14. Прижизненная и 15 посмертная диагностика гельминтозов
Прижизненная диагностика гельминтозов включает в себя исследование эпизоотологических данных, клинических признаков инвазии, гельминтоскопию, гельминтоовоскопию, гельминтоларвоскопию.
Гельминтоовоскопия
1. Метод осаждения – проба 5-10 г, размешивают в 10-20-кратном размере водой, размешивают, процеживают через сито в другую банку, отстаивают 5-10 минут. Верхний слой сливают, добавляют свежий до верхнего прозрачного слоя. Осадок исследуют.
2. Методы флотации (Фюллеборна) – пробу в 3-5 г смешивают с 20-кратным количеством насыщенным раствором хлорида натрия, размешивают, процеживают и отстаивают 45-60 минут. Затем петлей из 3-4 мм берут 2-3 капли флотационной пленки и микроскопируют.
3. Комбинированные – Дарлинга, Щербовича.
Гельминтоларвоскопия (метод Бермана-Орлова) – 10-20 г фекалий помещают на металлическую сетку с воронкой, на нее надевают воронку с резиновой трубкой и пробиркой, затем наливают воду с температурой 37—38 град. до покрытия фекалий, оставляют на 3-6 ч фекалии овец и на 6-12 часов фекалии лошадей и КРС. После сливают воду до осадка, а его микроскопируют.
Посмертная диагностика состоит из патологоанатомической диагностики.
16 Гельминтоскопические методы диагностики.
Гельминтоскопию применяют для обнаружения половозрелых и молодых паразитических червей ил и их фрагментов в фекалиях, а также в полостях и органах больных животных.
17 гельминтоовоскопические методы диагностики
Гельминтоовоскопия (от латинского ovum - яйцо, греческого skopeo- смотрю) объединяет группу методов исследования, с помощью которых выявляют яйца возбудителей гельминтозов.
Удельный вес яиц тяжелее обычной воды, вследствие этого яйца гельминтов, как более тяжелые частички вымываются из фекалий водой и оседают на дно сосуда с различной скоростью, в зависимости от удельного веса, Быстрее всего оседают яйца более крупного размера.""
В растворах же солей высокого удельного веса яйца гельминтов наоборот всплывают (явление флотации) в верхний слой и концентрируются в-н«м...
На использовании этих ..физических закономерностей основала технология всех современных методов гельмннтоовоскогаш, которые подразделяются на три группы:
а) Методы осаждения (седиментации) яиц гельминтов;
б) Методы флотации яиц гельминтов;
в) Комбинированные методы (осаждения и флотации) яиц гельминтов.
3.1. Методы осаждения (седиментации) основаны на принципе осаждения взвешенных в жидкости яиц гельминтов, промывки осадка и исследования его. Эти методы применяются в основном для диагностики тех гельминтозов, возбудители которых выделяют яйца с высоким удельным весом (фасциолез, дикроцелиоз, парамфистоматоз, описторхоз и др.). Методики осаждения менее эффективны и более трудоемки, чем флотации. Это связано со сложностью отыскания яиц гельминтов в осадке взвеси.
3.1.1 .Метод последовательных смывов
Пробу фекалий весом 3-5 г кладут в стакан, вливают небольшое количество воды и размешивают палочкой или пинцетом до получения жидкой кашицеобразной массы, затем добавляют воду порциями до объема 50 мл при постоянном размешивании; После взвесь процеживают через металлическое сито или марлю в другой стакан, в нем отстаивают в течение 5-10 мин. Затем верхний слой жидкости над осадком сливают, а к осадку добавляют новую порцию воды и вновь отстаивают в течение .5-10-мин. Описанная процедура повторяется до тех-пор, пока вода не ■ станет прозрачной. Ее в последний раз сливают, а осадок (около 5 мл) разливают на предметные стекла или стекла большего размера (12x19) и микроскопирутот.
Эта методика широко применяется в ветеринарных лабораториях для диагностики фасциолеза, дикроцелиоза, парамфистоматоза, эуриггрематоза и других гельминтозов жвачных. Вместе с тем," она трудоемка и по диагностической эффективности значительно уступает специальным флотационным и комбинированным методам гельминтоовоскопил.
3.1.2. Метод Горшкова.
Этот метод предложен ял я диагностики драйшеоза и габромематоза лошадей. Основан на принципе осаждения и концентрации яиц 150-30° г фекалий помещают на металлическом сите или марле в большую воронку с верхним диаметром 15-20 см. Предварительно ка нижний конец воронки надевают резиновую трубку длиной 10-15 см с зажимом на конце. Воро;ку укрепляют в штативе. Фекалии разрыхляют, заливают доверху теплой водой (38-39°С) и выдерэкивают 4-24 часа. Затем зажим осторожно открывают, и жидкость выпускают в центрифужную пробирку и центрифугируют при 1500 об/мин, в течение 3-х мин. Верхний слой жидкости сливают, а осадок наносят на предметное стекло и микроскопируют.
3.1.3. Метод соскоба с перианальных складок
Эту методику применяют для диагностики оксиуроза лошадей и пассалуроза кроликов. Из деревянной палочки или щепочки делают лопаточки (можно и спички), смачивают смесью глицерина с водой (1:1) и делают соскоб с перианальных складок с внутренней стороны хвоста в области промежности. Соскоб переносят на предметное стекло с указанной смесью, накрывают покровным егеклом и исследуют под микроскопом.
18 гельминтоларвоскопические метод диагностики
Ларвоскопия (от лат. larva - личинка, греч. skopeo - смотрю) –сов-ть приемов обр-ки и иссл-я проб мат-ла с целью выявл-я личинок гельм-в и устан-я по ним возб-ля.
Гельминтоларвоскопию прим для диагностики диктиокаулеза и протостронгилидозов жвачных, стронгилятозов. и стронгилоидоза у с/х ж-х.
1. Гельминтоларвоскопия при диктиокаулезе
В тепл время года быстро развив-ся личинки стронгилят пищ тракта,что затруд иссл-е мат-ла. Поэт пробы фекалий после взятия сразу следует направлять в лабор-ю, чтобы иссл-ть до выхода из них личинок стронгилят.
Для дифф-ции диктиокаулюсов предложена методика окраски. К осадку в пробирке или на стекло доб-т 1-2 кап 0,1% вод р-ра метилен синего. Осадок встрях-т и ч/з 20-30 с. Микроскоп-т. Личинки диктиокаулюсов овец окраш-ся в ярко-сиреневый, а личинки диктиокаулюсов телят в светло-сиреневый цвет. Личинки др нематод ост-ся неокраш-ми, частицы корма окраш-ся в зелен цвет, а жид-ть - в голубой.
Личинки диктиокаулюсов овец расп в самых поверх-х слоях фекальн шариков. Поэт разрушать их стр-ру при закладке проб не следует. Личинки протостронгилюсов, мюллерий, напротив, в шариках фекалий овец распред-ся равномерно, на пов-ти их нах-ся незначит часть. Поэт при иссл-и на указанные гельминтозы предвар-но шарики фекалий следует разрушать. При этом эфф-ть иссл-й увел-ся в 10 раз.
2. Метод Вайда
Эта методика очень проста и применяется для диагностики диктиокаулезов жвачных, протостронгилеза, мюллериоза и цистокаулеза овец и коз.
На предметное или часовое стекло кладут несколько шариков свежевыделеиных фекалий овец и коз и добавляют небольшое количество воды (температура около 40°С). Если шарики помещают на предметное сткло, то достаточно несколько капель воды. Через 40 мин. шарики
удаляют, оставшуюся жидкость на стекле микроскопируют на наличие личинок нематод.
4.3. Метод Беумана-Орлова
Эта методика наиболее широко распространена и несложна по технике исполнения.. Для исследования по этому методу нужно иметь металлические или пластмассовые воронки (с верхним диаметром 10 см), маленькие гельминтологические пробирки (5-8 см высотой и 0,8-1 см диаметром), резиновые трубки (диаметром 0,7-0,8 см), штатив для воронок и зажимы.
Метод основан на следующем: личинки в теплой влажной среде активно выбираются из фекалий и, попав в воду, падают на дно.
Фекалии (5-10 г) кладут на металлическое сито или заворачивают в марлю и помещают в воронку. На нижний конец воронки надевают резиновую трубку длиной 10 см с зажимом, в свободный конец трубки вставляют пробирку. Собранный в таком виде аппарат Бермана ставят в штатив и заполняют теплой водой (40°С).
Аппарат с пробами от овец и коз оставляют при комнатной температуре на 3-6 часов, крупного рогатого скота и лошадей на 12 часов. За это время личинки нематод выползают из пробы в жидкость и опускаются до места перекрытия трубки зажимом. После истечения срока зажимы открывают и наполняют пробирки водой, в которой могут находиться личинки нематод. Пробирки ставят в штатив на 20 мин. для осаждения личинок. Затем воду из пробирок сливают до осадка. Осадок встряхивают на предметные стекла и микроскопируют. Личинки нематод подвижны и они легко обнаруживаются.
4.4. Метод Шильникоеа
Автор еще более упростил методику Бермана-Орлова. В этой методике используются обыкновенные медицинские градуированные стаканчики (емкостью 30 мл), имеющие форму усеченного конуса и сферическое дно. Выпуклость дна направлена кверху. Пробы фекалий завертывают в марлевые салфетки, раскладывают по стаканчикам и заливают теплой водой. Через 8-10 часов пробы осторожно вынимают, а жидкость отстаивают 10-15 мин Затем стаканчики медленно наклоняют, сливают воду до появления мути. Дают отстояться осадку жидкости 5-10 мин- После этого стаканчик медленно наклоняют и из него глазной пипеткой отсасывают верхний прозрачный слой воды до тех пор, пока в пипетку не начнет всасываться осадок на дне. При аккуратном отсасывании на дне стаканчика остается 0,5-1 мл жидкости. Этот осадок каплями наносят на предметное стекло и микроскопируют.
Эта методика заслуживает внимание практиков. Она проста и удобна для выполнения в любых условиях.
4.5, Культивирование личинок гельминтов
Его проводят с целью диагностики гельммнтозов вообще и дифференциальной диагностики в частности. Культивирование заключается в создании для яиц гельминтов, находящихся в фекалиях, благоприятных условий, чтобы личинки выросли до инвазионной стадии. По их морфологии определяют вил возбудителей.
У домашних и диких травоядных в пищеварительном факте часто паразитируют нема! оды из подотряда стронгилят Выделяющиеся с фекалиями яйца этих нематод трудно различимы. Поэтому методами овоскопии практически ставят только общий диагноз. Дифференциальный диагноз возможен по развившимся личинкам
4.5.1. Метод культивирования личинок
Порцию свежих фекалий животного в количестве 10-30 г помещают в стакан, закрывают куском стекла и оставляют в. термостате при 25-27°С на семь дней или при комнатной температуре на 10-12 дней. По мере подсыхания пробу фекалий слегка увлажняют водой. По истечении указанных сроков пробу фекалий исследуют по методу Бермана-Орлова или Шильникова.
Освобожденный от фекалий стакан заполняют водой, выдерживают 15-20 мин., затем верхний слой осторожно сливают, а осадок исследуют в часовом стекле под микроскопом.
19 специальные диагностические исследования
Специальные диагностические исследования проводят сравнительно реже. Для этого исследуют мочу (диоктофимоз), кровь (сетариоз, дирофиляриоз) и т. п.
20. сбор,консервирование и пересылка гельминтов в лабораторию
Сбор, консервирование и пересылка гельминтов. Собранных гельминтов, перед консервированием отмывают в оде, физрастворе, где трематоды и цестоды (в том числе личинки) погибают и далее их помещают в пробирки с жидкостью Барбагалло (3 % раствор формалина на физрастворе; 30 частей формалина, 7,5 г хлористого натрия и 1литр воды). Трематод и цестод далее осторожно прессуют в 70 % спирте 30-40 минут в чашке Петри между двумя предметными стёклами. Далее гельминтов перекладывают в банку с 70 % этиловым спиртом. Нематод промывают в воде или физрастворе и переносят в сосуд с жидкостью Барбагалло. Акантоцефал (скребней) консервируют в 70 % спирте, предварительно их осторожно прессуют, чтобы выдавить хоботок для фиксации его в вытянутом положении.
21. цель и задачи ветеринарной паразитологии
Целью паразитологии является вооружение ветеринарных врачей такими знаниями
внедрение которых в практику позволит надежно предотвратить возникновение и
распространение наиболее опасных паразитарных болезней среди всех видов
сельскохозяйственных животных.
Задачами паразитологии являются: изучение возбудителей и переносчиков
паразитарных болезней (паразитозов) человека, животных и растений, исследование
патогенеза, клиники, патоморфологии, эпидемиологии, эпизоотологии и эпифитоологии
паразитозов, разработка методов диагностики, лечения, борьбы и профилактики.
22 связь паразитологии со смежными дисциплинами
Ветеринарная паразитология тесно связана с большинством биологических и клинических дисциплин. С зоологией роднят паразитологию вопросы систематики, строения, развития и экологии разных паразитов. Понимание патогенеза инвазионных болезней основано на данных патологической физиологии и патологической анатомии. Микробиологические методы окраски и микроскопии помогают проводить исследование паразитов из группы простейших. При диагностике паразитарных болезней заимствуют некоторые методы из частной патологии и терапии. Дифференциальная диагностика целого ряда инвазионных болезней соприкасается с эпизоотологией, а применение лечебно-профилактических противопаразитарных препаратов - с фармакологией. При некоторых паразитарных болезнях (ценурозе, онхоцеркозе) используют хирургические методы лечения.
Знание биохимии и физиологии паразитов позволяет раскрыть механизм действия противопаразитарных препаратов, сознательно направлять работу по изысканию и применению специфических препаратов при инвазионных болезнях. Послеубойный осмотр мяса для обнаружения цистицерков (финн) и других гельминтов (трихинеллоскопия) является разделом ветсанэкспертизы. Профилактика инвазионных болезней основывается на соблюдении гигиенических правил содержания и полноценном кормлении животных.
При выяснении конкретного экономического ущерба вследствие паразитарных болезней паразитология пользуется услугами экономических наук.
23. содержание паразитологической науки
Содержание:
Медицинская паразитология изучает паразитов человека животного происхождения, вызываемые ими болезни и методы борьбы с ними.
Протозоология- наука о простейших.
Гельминтология - наука о гельминтах ( паразитических червях).
Арахноэнтомология - наука о членистоногих.
Паразитизм – форма сожительства двух организмов, выгодная для одного и вредная для другого вида.
Временные паразиты– связаны с хозяином и питаются за его счет на определенной стадии развития.
Постоянные паразиты– тесно связаны с хозяином и не могут развиваться без него.
Хозяин– это организм, который обеспечивает паразита жильем и пищей.
Дефинитивные(основные, окончательные) – в их организме обитает половозрелая форма паразита и проходит его половое размножение.
Промежуточные– в их организме обитает личиночная стадия паразита или проходит его бесполое размножение.
Дополнительные, или вторые промежуточные хозяева.
Болезни, вызываемые паразитами животного происхождения, называются паразитарнымиили и инвазионными .
Болезни, вызываемые простейшими, называются протозойные болезни, или протозоозы; гельминтами – гельминтозы, насекомыми – энтомозы, клещами – акарозы.
Антропонозы (антропонозные инвазии) - болезни, источником возбудителей которых является человек .
Зоонозы - болезни, источником возбудителей которых являются дикие или домашние животные.
Трансмиссивные болезни - болезни, возбудители которых передаются через укусы кровососущих насекомых и клещей.
Природно-очаговые болезни - болезни, возбудители которых могут длительно поддерживаться в естественных условиях за счет передачи непосредственной или через кровососущих членистоногих-переносчиков от животного-донора животному-реципиенту - без всякого участия человека, т.е. в природных очагах инфекции (инвазии).
24. общая характеристика трематод
Трематоды относят к плоским гельминтам Plathelminthes, классу сосальщиков Trematoda. Сюда входят два подкласса: Monogenea (моногенетические) и Digenea (дигенетические). Ветеринарно-медицинское значение в основном имеют представители дигенетических трематод. У них есть только одно экскреторное отверстие на заднем конце тела. В матке концентрируется огромное количество яиц. Развитие завершается в промежуточных хозяевах — беспозвоночных животных. Как правило, все трематоды — эндопаразиты. Моногенетические трематоды — в основном эктопаразиты холоднокровных животных и характеризуются наличием двух экскреторных отверстий, открывающихся дорсально. Матка укорочена, содержит одно яйцо. Развитие происходит без участия промежуточных хозяев. (7)
По данным В.И. Петроченко (1967), у млекопитающих паразитируют трематоды около 390 видов, у птиц — 780, у человека — более 30 видов.
У большинства трематод тело сплющено в дорсовентральнам направлении. Форма паразитов разнообразна — листовидная (фасциолы), грушевидная (парамфистомы), нитевидная (ориентобильхарции) и др. На внешнем покрове (тегументе) многих особей хорошо развиты шипы (фасциолы), а у представителей Rhoраliаs из кишечника сумчатых на переднем конце имеются еще и мощные крючки. Трематоды прикрепляются к месту локализации при помощи ротовой и брюшной присосок. Длина гельминтов варьирует от десятых долей миллиметра до 10-15 см.
Внешние покровы (ранее называемые кожно-мышечным мешком) трематод и цестод представляют собой цитоплазматический тегумент, состоящий из наружной и внутренней частей. В отличие от кутикулы нематод тегумент цестод и в некоторой степени трематод — активный орган, выполняющий функции секреции, пищеварения и всасывания. У личинок трематод (спороцист и частично редий) на плазматической мембране (наружная поверхность тегумента) расположены микроворсинки, приспособленные к перевариванию пищи и ее всасыванию. Трематоды имеют нервную, выделительную, пищеварительную и половую системы. (1)
Нервная система трематод состоит из двух нервных ганглиев, лежащих по бокам глотки, и отходящих от них нервных стволов, соединяющихся поперечными комиссурами. Нервные ответвления особенно развиты в области брюшной и ротовой присосок. Нервные стволы, достигающие заднего конца тела, соединяются между собой рядом кольцевидных поперечных комиссур. Мирацидий (эмбриональная личинка) и церкарий имеют развитую нервную систему, тогда как у спороцистов ее до сих пор не обнаружили.
Органы чувств у трематод развиты слабо и есть только у личинок — мирацидиев и церкариев (рудиментарные пигментные пятна). На теле этих личинок находятся чувствительные образования — сенсиллы.
Выделительная система трематод протонефридиального типа. В целом она представлена мелкими канальцами, начинающимися с боков тела и вливающимися в общий экскреторный канал, расположенный по оси тела и заканчивающийся отверстием в задней его части (бывают и исключения).
Пищеварительная система включает ротовое отверстие, которое находится на дне ротовой присоски (у парамфистоматид ротовой присоски нет), глотку, пищевод и кишечные стволы, заканчивающиеся слепо в заднем конце тела паразита. Многие трематоды имеют кишечные стволы с боковыми ветвящимися отростками (фасциолы). Непереваренные остатки пищи из кишечника удаляются через ротовое отверстие. (9)
В обменных процессах трематод принимает участие и тегумент, об активной функции которого свидетельствует тот факт, что на поверхности цитоплазматической мембраны обнаруживают мукополисахарид, щелочную фосфатазу, пептидазу и другие ферменты. Кроме того, в паренхиматозном слое тегумента (внутренняя часть) расположено множество звездчатых клеток с филаментами, соединяющимися с кишечником, наружной частью тегумента и выделительной системой гельминта. В звездчатых клетках накапливается гликоген, который используется по мере необходимости. Таким образом, паренхима играет большую роль в обмене веществ.
Приведенное выше дает возможность понять механизм питания гельминтов и влияния антигельминтиков, действующих не только через пищеварительный канал, но и через внешний покров трематоды.
Полова система трематод хорошо развита. Все трематоды (сосальщики), за исключением представителей надсемейства Schistosomatidae, — гермафродиты (двуполые). Мужской половой аппарат включает в себя семенники (компактные или разветвленные), от которых отходят семяпроводы, вливающиеся в общий семявыносящий проток, заключенный в конечном участке в мышечный мешок — половую бурсу. Конец семявыносящего протока — половой орган (циррус) — открывается рядом с женским половым органом — влагалищем. Хотя есть мнение о том, что у трематод происходит и перекрестное оплодотворение, но, вероятно, процесс чаще всего заканчивается самооплодотворением. (3)
К женским половым органам относится оотип, где оплодотворяются и формируются яйца. С ним посредством яйцевода соединяются яичник, продуцирующий яйцевые клетки, и семяприемник, содержащий спермии. С оотипом сообщаются и желточники, которые у трематод расположены по бокам тела и вырабатывают желточные клетки, богатые питательным субстратом и гранулами для образования склеротиновой скорлупы яиц. К оотипу примыкает небольшой Лауреров канал, открывающийся наружу на дорсальной стороне. Роль этого канала двоякая. Он служит вагиной, но чаще выделяет во внешнюю среду излишки желточных клеток. У особей семейства Schistosomatidae он отсутствует. (5)
Все трематоды — биогельминты, развиваются с чередованием поколений и смены хозяев. Половозрелые гельминты (мариты) паразитируют у позвоночных животных — дефинитивных хозяев, личиночная фаза — у промежуточных и дополнительных хозяев (водные и сухопутные моллюски, кольчатые черви, ракообразные, членистоногие и рыбы).
25. фасциолезы крс и
26.Фасциолезы мрс
возбудители. F. hepatica — фасциола обыкновенная. Длина ее 2—3 см, ширина \ см.- На кутикуле передней части тела с дорсальной и вентральной сторон имеются шипики. Передняя часть тела вытянута в виде хоботка с двумя присосками. Кишечник с боковыми отростками. Семенники древовидно разветвлены. В передней части тела распола гается матка, за которой следует яичник. Боковые поля* паразита густо заполнены гроздьями желточников. .
Дифинитивные Хозяева: овцы, козы, КРС, реже лошади, свиньи, верблюды, кролики, иногда человек.
Лок-я половозр стадии: желчные ходы печени, иногда легкие, лимфоузлы, поджелудочная железа и другие органы.
Промежуточные Хозяева: для F. hepatica- малый прудовик; для F. gigantica - ушковидный прудовик.
Лок-я личин форм: печень моллюска.
Биология:яйца с желчью>12-перст к-ку>внеш ср.>развив мирацидий0,15мм при благопр усл>проник в печень малого прудовика>матер спороциста>ридии>церкарии ч/з 2-3мес после проникновения>в воду>прикрепл-ся и обр цисту-адолескарий>к-к>брюш пол-ть>желч протоки>ч/з 2,5-4мес половозр.живут неск лет.
Клиника: – молодняк болеет тяжелее; при острой форме - острый гепатит, повышение температуры тела, кровавый понос, запоры, тимпания, угнетение, тахикардия, одышка; при хронической – тусклая шерсть, исхудание, отеки век, подгрудка, подчелюстного пространства, область печени болезненна, водянка.
Ds – гельминтоовоскопия (метод последовательных промываний), метод Демидова. Яйца желтоватого цвета, облочка гладкая, крышечка и бугорок на полюсах.
Лечение: при остром течении: ацемидофен,
при хроническом течении: 20%-ный гранулят вермитана, сантел, клозальбен и др.
Профилактика: смена пастбищ, своевременное проведение ветеринарно-санитарных обработок. |
|
|
Скачать 36.27 Kb.