ЦСО Устройство ЦСО. Дезинфекция, стерилизация.. Безопасная среда для пациента и персонала. Устройство цсо. Дезинфекция, стерилизация.
 Скачать 139.89 Kb.
|
 Министерство здравоохранения Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Саратовский ГМУ им. В.И. Разумовского Минздрава России) КАФЕДРА ТЕРАПИИ, ГАСТРОЭНТЕРОЛОГИИ И ПУЛЬМОНОЛОГИИ Заведующая кафедрой, доцент, к.м.н. Богданова Т.М. РЕФЕРАТ НА ТЕМУ: «Безопасная среда для пациента и персонала. Устройство ЦСО. Дезинфекция, стерилизация.». Подготовила студентка 20 группы 2 курса лечебного факультета Мариевская Д.Д. Проверила Бикеева Е.В. Саратов, 2022 ВВЕДЕНИЕ В данной работе были поставлены следующие задачи: Структура и принципы организации центрального стерилизационного отделения; Рассмотреть детально процесс дезинфекции; Изучить основные правила и методы, используемые в стерилизации. ЦСО (центральное стерилизационное отделение) является структурным подразделением, входящим в состав крупных медицинских учреждений специальной и общей практики. ЦСО представляет собой технический комплекс, функционирующий в особом режиме, обеспечивающем своевременные и достаточные меры по обеззараживанию инструмента, перевязочного и шовного материала, белья, а также медицинского оборудования. Структура центрального стерилизационного отделения учитывает специфику конкретного медицинского учреждения и объемы поступающих на стерилизацию предметов. Работа ЦСО планируется таким образом, чтобы оптимизировать трудозатраты при выполнении технологических операций и исключить возможные ошибки, связанные с так называемым «человеческим фактором». Организация центрального стерилизационного отделения решает задачи создания санитарной зональности: достижения абсолютной стерильности в автоклавном помещении и на складе подготовленных к выдаче материалов, а также поддержания повышенной стерильности в условно чистых зонах. Грязные зоны отделены от чистых и стерильных санпропускниками и функционируют без непосредственного контакта с ними. Типовые решения для организации ЦСО Состав центрального стерилизационного отделения, организованного по типовому принципу, включает в себя функциональные помещения и сектора трех типов. В «грязную зону» входят: приемочное помещение, разделенное на два сектора (собственно приемочную и временное хранилище), помещение сортировки и предварительной очистки, а также помещение для накопления грязных тележек. Сердцем центрального стерилизационного отделения является автоклавное помещение и стерильный склад. В некоторых случаях стерильное хранилище дополняется помещениями (отгороженными секторами) для ремонта и заточки инструментов, а также укладки и упаковки материалов и белья. Чистая зона ЦСО начинается сразу после стерильной и включает в себя: помещение для комплектации материалов перед выдачей и помещение для выдачи стерильных предметов, соединенное с хранилищем для чистых колясок. Кроме того, в состав чистой зоны входят различные вспомогательные помещения и хранилища (помещение для персонала, склад химикатов, склад упаковочных материалов и прочее). Порядок функционирования ЦСО Последовательность, в которой функционирует центральное стерилизационное отделение стандартного типа, следующая. Предметы медицинского назначения движутся из грязной зоны в стерильную, а из нее – в чистую. Порядок функционирования ЦСО тесно связан с установленной последовательностью очистки предметов, но не самоочевиден. Поддержание в ЦСО специальных санитарных режимов исключает свободное движение персонала и предметов из одной зоны в другую, что вкупе со строгим соблюдением последовательности очистки предметов позволяет практически полностью исключить влияние «человеческого фактора». Порядок функционирования центрального стерилизационного отделения следующий: прием, сортировка, подготовка, предварительная мойка и дезинфекция высокого уровня, ремонт (если требуется), стерилизация, упаковка (если требуется), хранение, сортировка, выдача. Непосредственная стерилизация выполняется в отношении разных предметов неодинаковыми способами, а вот порядок работы с ними остается неизменным. Устройство ЦСО Предусматривается разделение всех помещений на две изолированные зоны: стерильную и нестерильную. В нестерильной зоне должны находиться следующие помещения - приема, разборки, ПО и сушки инструментария, шприцев, игл, катетеров; - ремонта; - обработки резиновых перчаток; - контроля, комплектации и упаковки инструментария; - для хранения нестерильных материалов, инструментов и белья; кладовая упаковочных материалов и тары; - стерилизационная, оснащенная паровыми и воздушными стерилизаторами (загрузочная сторона, нестерильная половина); - кабинет заведующего; - комната старшей медсестры; - санузел для персонала; - санпропускник для персонала, работающего в стерильной зоне. На стерильной зоне располагают - стерилизационную (разгрузочная сторона, стерильная половина); - склад для стерильных материалов; - экспедицию (выдачу стерильного материала); - помещение для персонала стерильной зоны. Документация в ЦСО: 1) Журнал приема и выдачи шприцев, инструментария, материалов; 2) Журнал регистрации работы стерилизатора (парового или воздушного); З) Журнал бактериологического контроля стерильности; 4) Журнал учета качества предстерилизационной обработки. ДЕЗИНФЕКЦИЯ Задача дезинфекции - предупреждение или ликвидация процессов накопления, размножения и распространения возбудителей заболеваний путем их уничтожения или удаления на предметах и объектах, то есть дезинфекция обеспечивает прерывание путей передачи заразного начала. Различают профилактическую и очаговую дезинфекцию. Профилактическая осуществляется с целью предупреждения инфекций. Очаговая инфекция делится на очаговую текущую дезинфекцию, которая осуществляется в очаге инфекции, проводится многократно, и очаговую заключительную дезинфекцию, которая проводится однократно с целью полного освобождения инфекционного очага от возбудителей заболевания. Различают физические и химические методы дезинфекции (Мейнелл, Дж. 1967). Физические методы дезинфекции Физические методы просты, надежны, являются экологически чистыми и безопасными для персонала, поэтому, если позволяют условия, этим методам следует отдавать предпочтение. Их подразделяют на: Механические (проветривание, влажная уборка, стирка с моющим средством); Действие высокой температуры (кипячение, пастеризация); УФО (облучение бактерицидными лампами). В настоящее время наиболее популярны следующие физические методы: Кипячение в дистилированной воде используют для дезинфекции изделий из стекла и металла, термостойких полимеров и резин. Экспозицию (не менее 30 мин) выдерживают, начиная с момента закипания воды при полном погружении изделий, а при кипячении в воде с 2 % двууглекислого натрия (содой) время экспозиции - не менее 15 мин (Практическое руководство 2004). Пастеризация - это однократное кратковременное прогревание при температуре ниже 100° С с последующим быстрым охлаждением. Прогревание проводят при 65-95° С в течение 20-30 минут, что ведет к частичному обеспложиванию объектов. Как и кипячение, пастеризация не является методом стерилизации. После пастеризации сохраняются живыми споры и часть вегетативных форм, поэтому пастеризованный продукт (молоко, соки и т.д.) хранят в холодильнике. УФО (облучение бактерицидными лампами) - используют в медицине для обработки воздуха и поверхностей. Расчет необходимого количества бактерицидных облучателей и времени экспозиции ведут, исходя из кубатуры помещения и характера контаминации (Венцель, Р. 2003). Химические методы дезинфекции При дезинфекции химическим методом применяют следующие дезинфицирующие средства: Хлорсодержащие препараты (хлорная известь, хлорамин Б, гипохлорит кальция, гипохлорит натрия, получаемый электрохимическим путем); Окислители (перекись водорода с моющим средством и без него, перманганат калия); Фенолы (карболовая кислота, лизол); Йод и йодофоры (йод+поверхностно-активные вещества); Соли тяжелых металлов (сулема, диоцид, мертиолят); Пав (сульфанол); Четвертично-аммониевые соединения (мирамистин, роккал, бензалкония хлорид и др.); Спирт; Формальдегид; ) Красители (бриллиантовый зеленый, метиленовый синий); Кислоты (салициловая, борная и т.д.); Альдегиды (глутаровый); (Герхардт, Ф. 1984). Комбинированные методы дезинфекции При комбинированном методе дезинфекция осуществляется в специальных дезинфекционных камерах. Паровоздушный- увлажненным воздухом при температуре дезинфекции t-110° С, давлении 0,5 атм., экспозиции 20 минут; пароформалиновый: в режиме 0,5 атм., t- 90° С, экспозиция 30 минут. Сущность камерной дезинфекции заключается в прогревании содержимого камер горячим воздухом (паром) до определенной температуры и при избыточном давлении, а при необходимости усиления воздействия пара-в дополнительном введении в камеру формальдегида (формалина) (Обуховец, Т.П. 2006). Контроль эффективности дезинфекции Для контроля работы дезинфекционных камер используют эталонные культуры, например стафилококк - при дезинфекции вещей из очагов инфекций, вызванных неспорообразующими микроорганизмами. Споры антракоидной палочки - при дезинфекции вещей из очагов инфекций, вызванных спорообразующими микробами. О качестве изделий судят по отсутствию после обработки золотистого стафилококка (S. aureus), синегнойной палочки (P.aeruglnosa) и бактерий группы кишечной палочки. Для этого методом смывов исследуют 1 % (не менее 3-5 единиц) одновременно обработанных изделий одного наименования. По 0,1 мл смывов, взятых марлевыми салфетками (5*5 см), наносят на поверхность желточно-солевого, кровяного агаров и среды Эндо и инкубируют засеянные чашки при 37 С. Дезинфекцию считают эффективной, если через 48 часов на чашках не вырастают колонии указанных микроорганизмов. Правила пользования дезинфекционными средствами Четко следовать методическим указаниям по применению препарата Перед дезинфекционным мероприятием, где возможно, удалить мусор Для приготовления раствора использовать чистую, сухую емкость Правильно отмерять количество дезсредства Разводить дезсредство в нужном количестве воды, добавляя дезсредство в воду Пользоваться дезсредством только по назначению Не хранить в дезсредствах инструменты и приспособления для чистки Не добавлять дезсредство в старый раствор (Скорикова, Л.А. 2002). СТЕРИЛИЗАЦИЯ Стерилизация - полное обеспложивание объектов, при котором уничтожаются все формы микроорганизмов (вегетативные формы, споры и вирусы). Для стерилизации применяются физические и химические методы. Выбор метода определяется видом стерилизуемого материала, который после стерилизации должен сохранить свои основные свойства (форму, эластичность, активность и др.). Методы стерилизации Физические методы стерилизации включают действие высокой температуры, ионизирующего излучения, фильтрование (Кулешова, Л.И. 2005). Высокотемпературная стерилизация Тепло является наиболее распространенным физическим агентом, используемым для деконтаминации патогенов. «Сухой» жар не оказывает никакого коррозийного воздействия и используется для обработки многих лабораторных предметов, которые выдерживают температуру 160 °C или выше в течение 2-4 часов. Сжигание или прокаливание (см. ниже) также является одной из форм сухого жара. «Влажный» жар наиболее эффективен при использовании в процессе автоклавирования. Кипячение не обязательно убивает все микроорганизмы и/или патогены, но его можно использовать в качестве минимальной обработки для дезинфекции, если другие методы (химическая дезинфекция или деконтаминация) неприменимы или отсутствуют. Со стерилизованными предметами следует обращаться и хранить их таким образом, чтобы они оставались чистыми до их использования (Мороз, Б.Т. 2008). Использование насыщенного пара под давлением (автоклавирование) является наиболее эффективным и надежным способом стерилизации лабораторных материалов. Для большинства целей стерилизацию правильно загруженных автоклавов обеспечат следующие циклы: . Выдержка в течение 3 минут при температуре 134 °C . Выдержка в течение 10 минут при температуре 126 °C . Выдержка в течение 15 минут при температуре 121 °C . Выдержка в течение 25 минут при температуре 115 °C. Ниже приводятся примеры различных автоклавов. Паровые автоклавы вытеснительного типа. На рисунке 1 показан общий принцип работы автоклавов вытеснительного типа. Пар поступает в камеру под давлением и вытесняет более тяжелые слои воздуха вниз через клапан в дренажную трубу, оборудованную фильтром НЕРА (Перфильева, Г.М. 2010).  Рис. 1 Автоклав вытеснительного типа Предвакуумные автоклавы. Автоклавы этого вида обеспечивают удаление воздуха из камеры до поступления пара. Воздух удаляется через клапан, оборудованный НЕРА-фильтром. В конце цикла пар автоматически удаляется. Такие автоклавы могут функционировать при температуре 134 °C, в связи с чем цикл стерилизации может быть сокращен до 3 минут. Они идеально подходят для пористых материалов, но из-за вакуума их нельзя использовать для обработки жидкостей. Автоклавы, работающие под давлением. Их следует использовать только в том случае, если отсутствуют автоклавы вытеснительного типа. Такие автоклавы загружаются сверху и нагреваются с помощью газа, электричества или других видов энергии. Пар образуется в результате кипения воды в основании автоклава, а воздух поднимается вверх и выходит через выпускной клапан. После удаления воздуха клапан закрывается и нагревание уменьшается. Давление и температура повышаются до достижения клапаном заранее установленного уровня. Это является началом рабочего цикла. В конце цикла нагревание прекращается и температура понижается до 80 °C или ниже, после чего можно открыть крышку. Материалы следует размещать в камере неплотно, чтобы пар мог легко проникать, а воздух - легко выходить. Пластиковые пакеты следует открыть, чтобы дать пару доступ к их содержимому (Венцель, Р. 2003). Меры предосторожности при работе с автоклавами Соблюдение следующих правил может свести к минимуму опасности, возникающие при работе с емкостями, находящимися под давлением. . Ответственность за использование и регулярное обслуживание следует возложить на подготовленных сотрудников. . Программа профилактики должна включать регулярную инспекцию квалифицированным персоналом камеры, герметичности дверец и всех измерительных и контрольных устройств. . Пар должен быть насыщенным и не содержать химических веществ (например, ингибиторов коррозии), которые могут контаминировать стерилизуемые предметы. . Все материалы, подлежащие автоклавированию, должны быть помещены в контейнеры, обеспечивающие беспрепятственное удаление воздуха и хорошую проводимость тепла; камера должна быть загружена неплотно, чтобы дать пару равномерный доступ ко всем загруженным предметам. . Если автоклав не оборудован внутренними предохранительными запорами, препятствующими открыванию двери при повышенном давлении, то в этом случае необходимо предусмотреть возможность открытия дверки только после закрытия основного клапана подачи пара и снижения температура до 80 °C. дезинфекция автоклав . При автоклавировании жидкостей устройство выпуска пара следует установить на медленный режим, так как жидкости при их выгрузке могут выкипать из-за перегрева. . При открывании автоклава оператор должен надеть подходящие перчатки и защитные козырьки, даже если температура упала ниже 80 °C. . В ходе обычной проверки эффективности автоклава индикаторы биологической стабильности и термопары должны помещаться в центр каждой загрузки. Для определения правильных циклов функционирования настоятельно рекомендуется проводить регулярный контроль «наихудших случаев» загрузки с использованием термопар и регистрирующих устройств. . Дренажный экранирующий фильтр камеры (в случае наличия) следует ежедневно снимать и чистить. . Следует обращать особое внимание на то, чтобы выпускной клапан пара не был закрыт бумагой или другими материалами (Царев, В.Н. 2010). Газовая стерилизация Газовая стерилизация требует специального оборудования и применяется для обработки изделий из стекла, металлов. Используют окись этилена или смесь ОБ (окись этилена с бромистым метилом), озон, а также пары раствора формальдегида в этиловом спирте, которыми наполняют стационарные газовые стерилизаторы. Для поддержания температуры (35 или 55° С) стерилизаторы помещают в термостат или водяную баню. Для упаковки используют полиэтиленовую пленку, пергамент и специальный упаковочный материал. Стерилизованные газом изделия применяют после их выдержки (в течение 1-21 суток) в вентилируемом помещении. Срок сохранения стерильности для изделий в упаковке из полиэтиленовой пленки - 5 лет, из пергамента - 20 суток. Контроль процесса ведут по показаниям приборов (Герхардт, Ф. 1984). Плазменная стерилизация Плазменная стерилизация, являясь принципиально новым методом обработки инструментов, имеет ряд преимуществ: высокую эффективность эрадикации микроорганизмов разных групп (от анаэробных бактерий до спорообразующих бацилл, грибов); возможность эффективной комбинации с химической обработкой; кратковременность экспозиции - от 10 до 15 мин в зависимости от степени загрязнения и проведения предварительной химической обработки; малые габариты аппарата; компьютерное программирование режима стерилизации. Для стерилизационной обработки инструментов, в частности, применяется стримерный разряд в аргоне при атмосферном давлении. Данный тип разряда обеспечивает наивысшую концентрацию возбужденных атомов, а следовательно, и скорость процесса стерилизации. Оборудование (плазменный стерилизатор), предложенное для реализации этой цели, не требует наличия вакуумной системы и является экологически безопасным (т.к. в качестве рабочего газа применяется аргон). Проблема создания относительно однородного стримерного разряда наиболее просто решается использованием стерилизационных камер небольшого объема (порядка 1л), поэтому развитие метода в настоящее время идет в направлении использования стерилизационных камер относительно небольших объемов, что весьма удобно для нужд лаборатории (Воробьев, А.А. 2004). Контроль эффективности стерилизации Контроль эффективности стерилизации осуществляют несколькими методами: По показаниям приборов (мановакууметров, термометров, таймеров) максимальные термометры, физико-химические и биотесты помещают в определенные точки аппарата; С использованием физико-химических тестов (вместе со стерилизуемым материалом в аппарат закладывают ампулы с кристаллами веществ или специальные бумажные термохимические индикаторы; при нужной температуре вещества расплавляются, а индикаторы меняют цвет); Постановкой биологических тестов (в аппарат помещают флакончики с салфетками или бумажными дисками, пропитанными взвесью термостойкого спорообразующего микроба - Bacillus stearotermophilus для контроля паровых или Bacillus licheniformis для контроля воздушных стерилизаторов, и после стерилизации их инкубируют в МПБ - прозрачный бульон, если споры погибли, не должен мутнеть); Молекулярно-генетическими методами контроля (геноиндикация) - могут использоваться в случае оценки стерилизации в отношении труднокультивируемых бактерий (анаэробная группа) или вирусов. С этой целью применяют ПЦР или обратную гибридизацию ДНК с праймерами соответствующих видов микробов (Новикова, И.А. 2013). Показателями эффективной работы стерилизационной аппаратуры являются отсутствие роста тест-культуры в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля либо отсутствие маркерных генов по данным ПЦР и гибридизации ДНК. Контроль стерильности изделий проводят в специально оборудованных боксах, соблюдая асептические условия, исключающие возможность вторичной контаминации изделий микробами. В боксах поверхности обрабатывают моющими и дезинфицирующими средствами. Перед входом в бокс сотрудники лаборатории тщательно моют руки, надевают стерильную спецодежду, шапочку, перчатки. В процессе работы в боксе проверяют обсемененность воздуха: на рабочем столе на 15 мин открывают 2 чашки с питательным агаром, которые затем инкубируют 48ч в термостате при 32° С (допускается рост не более 3 колоний неспорообразующих сапрофитов) (Практическое руководство 2004). Пробы для исследования (не менее 1% из числа одновременно простерилизованных изделий в той же упаковке) отбирает лаборант центра государственного санитарно-эпидемиологического надзора, дезинфекционной станции. Контроль стерильности бактериологическим методом проводят путем прямого посева изделий в питательные среды или методом смывов. Материалом обязательно засевают две среды: тиогликолевую (для роста бактерий) и среду Сабуро (для роста грибов). Посевы на тиогликолевой среде выдерживают при 32° С, на среде Сабуро - при 22° С в течение 7 суток. При отсутствии роста во всех пробирках (флаконах) делают заключение о стерильности изделий (Мейнелл, Дж. 1967). ЗАКЛЮЧЕНИЕ Таким образом, стерилизацию изделий медицинского назначения проводят с целью уничтожения всех микроорганизмов, как патогенных, так и непатогенных, в том числе и споровых форм. Подготовка ИМИ многократного применения к использованию включает три этапа: дезинфекцию, предстерилизационную очистку (ПО) и стерилизацию. ПО изделий проводят с целью удаления с них всех белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов. Стерилизацию осуществляют физическими и химическими методами, используя для этого паровые, воздушные, газовые стерилизаторы и др. Для проведения качественной стерилизации в ЛПУ должно функционировать ЦСО. Ответственность за его организацию, укомплектование кадрами по штату возлагается на главного врача лечебно-профилактического учреждения. Контроль стерилизации включает проверку параметров режимов стерилизации и оценку ее эффективности. Параметры режимов контролируют с помощью контрольно-измерительных приборов (физический метод) и с использованием химических индикаторов (химический метод). Эффективность стерилизации оценивают на основании результатов бактериологических исследований (биологические тесты), а также при контроле стерильности изделий, подвергнутых стерилизации. Дезинфекция и стерилизация имеют большое значение в системе профилактических и противоэпидемических мероприятий. Дезинфекция - уничтожение патогенных микробов в окружающей человека среде. Методы и способы дезинфекции различны, но они преследуют цели уничтожения не всех микроорганизмов, а только патогенных. Уничтожение возбудителей инфекционных заболеваний в переносчиках называют дезинсекцией, а в организме грызунов - источников инфекции - дератизацией. С учетом роли дезинфекции ее делят на профилактическую и очаговую. В отличие от дезинфекции в результате стерилизации объект становится свободным как от патогенных, так и от сапрофитных микробов. Существуют различные методы и способы стерилизации, в основе которых лежит действие физических или химических факторов. Критерием гибели микроорганизмов является необратимая утрата способности к размножению, что можно оценить путем количественного подсчета числа колоний после высева смывов на чашки с питательными средами. При выполнении различных видов дезинфекции и стерилизации применяют механические, физические и химические способы и средства. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ Венцель, Р. Руководство по инфекционному контролю в стационаре: учебник/ Р. Венцель, Т. Бревер, Ж-П. Бутцлер;- Смоленск: МАКМАХ, 2003.- 131с. Воробьев, А.А. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология: учебник/ А.А. Воробьев;- М.: Медицинское информационное агенство, 2004.-690с. Герхардт, Ф. Методы общей бактериологии: учебник/ Ф. Герхардт;- М.: «Мир», 1984.-264с. Кулешова, Л.И.Инфекционная безопасность в лечебно-профилактических учреждениях: учебник/Л.И. Кулешова, Е.В. Пустоветова; - 4-е изд., доп. и перераб.-Ростов н/Д: «Феникс», 2005.-317с. Мейнелл, Дж. Экспериментальная микробиология (теория и практика): учебник/Дж. Мейнелл, Э. Мейнелл;- М.: «Мир», 1967.-347с. Мороз, Б.Т. Особенности дезинфекции и стерилизации в амбулаторной стоматологии: практическое руководство/ Б.Т. Мороз, О.В. Мироненко; СПб.: Человек, 2008. - 128 с. Новикова, И.А. Введение в клиническую лабораторную диагностику: учебное пособие/ И.А. Новикова, А.С. Прокопович;- М., Медицина, 2013.-189с. Обуховец, Т.П. Основы сестринского дела: Практикум/Т.П. Обуховец; - 4-е изд., доп. и перераб.-Ростов н/Д: «Феникс»,2006.-530с. |