Уход за больными коллоквиум 3. Инструкция по сбору, хранению и транспортировке биологического материала для лабораторных исследований
 Скачать 99.96 Kb.
|
|
5. Правила взятия, хранения и транспортировки биоматериала для цитологических исследований 5.1. В течение 24-х часов перед исследованием необходимо исключить спринцевание, применение интравагинальной терапии и половые контакты. Нельзя брать материал во время менструации. Наиболее информативными являются пробы, взятые на 14-20 дни после начала менструации. 5.2. Материал берется до бимануального исследования, проведения различных диагностических проб, до взятия материала на ПЦР. Взятие материала осуществляется без предварительной обработки слизистой влагалища. 5.3. Соскоб со слизистой влагалища/цервикального канала берется нейлоновой щеточкой Cervex-Brush, шпателем или другим инструментом и равномерно распределяется по стеклу, оставляя один конец стекла чистым (для маркировки). На стекло берется одна точка, дублируется еще на одно запасное стекло (всего два стекла на одну точку). Мазки должны быть зафиксированы посредством высушивания на воздухе (30-60 мин). 5.4. Стекла должны быть промаркированы (№ и Ф. И.О. пациента), сложены мазками друг к другу, упакованы в индивидуальный пакет с соответствующей сопроводительной надписью (ЛПУ, Ф. И.О. пациента, № на стекле). 5.5. Хранить высушенные мазки можно до 6 дней при комнатной температуре. 5.6. Пакет и заполненное направление (на каждую точку свое направление с указанием вида биоматериала) передаются в Лабораторию. 2) Методы и правила забора, хранения, доставки биологического материала (моча)
Введение Моча является клиническим материалом, который наиболее часто исследуется на наличие микроорганизмов в большинстве лабораторий. Несмотря на рутинность и кажущуюся простоту исследования мочи, эта тема постоянно обсуждается как клиницистами, так и микробиологами во всем мире. Существуют значительные вариации в подходах к правилам забора, транспортировки, исследования и интерпретации результатов анализов. Инфекции мочевыводящих путей (ИМВП) могут протекать бессимптомно, остро или принимать хронический характер. При бессимптомном течении ИМВП микробиологическое исследование усложняется и иногда требуется получение двух и даже трех образцов мочи. Пациенты с неосложненными ИМВП (острый цистит и пиелонефрит), как правило, лечатся в амбулаторных условиях. Основными возбудителями острого цистита, которым чаще страдают женщины, являются кишечная палочка (70 – 95%) и сапрофитический стафилококк (5 – 20%). Исследование мочи является относительно дорогостоящим и трудоемким методом, а возбудители и их чувствительность к антибиотикам при остром цистите достаточно предсказуемы. Поэтому микробиологическое исследование мочи в этом случае рутинно проводить не обязательно и данное заболевание можно лечить эмпирически. В силу деликатности вопросов, связанных с инфекционными процессами мочеполовой сферы, зачастую медицинские работники считают не совсем удобным детально объяснить пациенту правила сбора мочи, а пациенты в свою очередь стесняются об этом спрашивать. Иногда сами врачи не имеют четкого представления об этих правилах. В то же время от их соблюдения зависят достоверность результатов микробиологического исследования и, в конечном итоге, эффективность лечения. Поэтому мы сочли уместным обобщить существующие рекомендации и надеемся, что практические врачи разных специальностей найдут этот обзор полезным. Общие положения по сбору мочи:
Наиболее распространенными методами забора мочи для бактериологического исследования являются взятие средней порции во время обычного мочеиспускания, получение мочи путем катетеризации мочевого пузыря и надлобковой пункции. При заборе мочи во время обычного мочеиспускания возможно загрязнение образца микрофлорой дистального отдела уретры у пациентов обоего пола, а у женщин еще и микрофлорой преддверия влагалища. При получении материала путем надлобковой пункции в асептических условиях такое загрязнение исключается, но этот метод является инвазивным и должен использоваться только в определенных ситуациях. К ним относятся подозрение на анаэробную этиологию ИМВП, повреждение спинного мозга с нарушением функции органов малого таза, ранний возраст пациентов (новорожденные и дети первых лет жизни), а также случаи, когда при исследовании средней порции мочи не удается получить определенного результата микробиологического исследования. Взятие мочи путем катетеризации мочевого пузыря тоже является инвазивной процедурой, при которой возможно занесение инфекции. Наиболее предпочтительным материалом для микробиологического исследования при ИМВП является средняя порция мочи (первая порция богата микрофлорой уретры и не подходит для исследования), собранная при обычном мочеиспускании после предварительного туалета наружных половых органов. Предварительный туалет половых органов с использованием обычного мыла у женщин уменьшает загрязнение мочи микрофлорой преддверия влагалища. Антисептики не должны применяться для обработки периуретральной области перед забором мочи, так как могут привести к искусственному снижению микробного числа этиологически значимого возбудителя. При взятии мочи у мужчин не требуется какая-либо обработка периуретральной области, вне зависимости от наличия или отсутствия крайней плоти. Существуют и другие методы забора мочи для микробиологического исследования, применяемые в основном в специализированных клиниках, у ограниченного контингента больных для того, чтобы определить локализацию инфекционного процесса. Такими методами являются раздельное взятие образцов мочи из мочевого пузыря и мочеточников во время цистоскопии и взятие проб мочи до и после промывания мочевого пузыря раствором, содержащим неомицин и иногда эластазу. Для того чтобы пациент самостоятельно правильно собрал мочу, его необходимо подробно проинструктировать, используя доступные термины, а также снабдить письменной инструкцией и стерильным контейнером с четко отмеченным уровнем, до которого его нужно заполнить (около 50 мл) [3]. Важно, чтобы пациент понимал необходимость соблюдения инструкции и был заинтересован в получении достоверных результатов анализа. Необходимо избегать использования в качестве консерванта мочи борной кислоты, так как это может привести не только к частичной гибели возбудителя, но и, в некоторых случаях, к последующему выделению микроорганизмов, не имеющих этиологического значения [5]. Однако в определенных ситуациях (невозможность произвести посев мочи в первые 30 мин после забора, отсутствие холодильника) все же допустимо использование для хранения мочи (не более 24 ч) борной кислоты в концентрации 1,8 %. При этом следует помнить, что для получения этой концентрации консерванта количество мочи должно быть строго определенным. Вместе с анализом мочи в лабораторию необходимо передавать направление, в котором должны быть указаны: фамилия, имя, отчество, пол и возраст пациента; название лечебного учреждения и отделения; время и метод взятия материала; наличие или отсутствие симптомов ИМВП, сопутствующей патологии мочевых путей или обмена веществ (например, сахарного диабета); сведения о проводимой антибактериальной терапии с указанием дозы, длительности применения препаратов и их эффективности. Инструкция по забору мочи для женщин:
Инструкции по забору мочи для мужчин:
Инструкция по забору мочи методом катетеризации мочевого пузыря:
Инструкция по забору мочи методом надлобковой пункции мочевого пузыря*:
* Мочевой пузырь должен быть полным 3) Методы и правила забора, хранения, доставки биологического материала (кал) Следует прекратить прием препаратов со слабительным действием, вазелинового и касторового масла, введение ректальных свей за 3 – 4 дня до проведения исследования. В Пункте приема анализов нужно получить стерильную специально предназначенную емкость для сбора кала с ложечкой. На ее этикетке необходимо разборчивым почерком указать следующую информацию: ФИО, год рождения, дата и время сбора материала. Для проведения исследования подходит только свежевыделенный кал. Перед его сбором следует помочиться в унитаз и смыть. Посредством естественной дефекации в подкладное судно, нужно собрать испражнения (важно избежать попадания мочи). Подкладное судно необходимо предварительно обработать дезинфицирующим раствором, промыть под проточной водой и обдать кипятком. Материал собирается в контейнер с помощью ложечки в объеме, не превышающем его третьей части. При этом важно придерживаться правил стерильности. От момента сбора материала до его доставки в лабораторию должно пройти не более 3 часов. Желательно, чтобы в течение этого периода он находился в холоде. Для этого можно использовать хладопакет или приготовленные заранее кубики льда, которыми нужно обложить контейнер. Обязательные условия: не замораживать содержимое контейнера, не допускать хранения более 5 – 6 часов, не использовать для транспортировки другие емкости, кроме указанных, плотно закрывать контейнер. Для исследования не может быть использован кал, который получен после приема бария (в случае рентгенологического обследования) либо в результате применения клизмы. Кал в спичных или картонных коробках для исследований не допускается. Это также касается непредназначенных для этого емкостей, поскольку оставшиеся в них ингредиенты могут исказить конечный результат анализов. Биоматериал для исследования на кишечный дисбактериоз необходимо собирать до начала лечения с помощью антибактериальных и/или химиотерапевтических препаратов. Когда это не представляется возможным, проведение анализа допускается как минимум через 12 часов после из отмены. Паразитологические исследования кала специальной подготовки не требуют. Биоматериал, предназначенный для посева на микрофлору, собирается ложечкой в стерильный закрывающийся контейнер в объеме 1 – 3 г. При этом его нужно забирать с участков, где просматривается кровь и/или слизь. После забора кала важна максимально быстрая его доставка в Пункт приема анализов. В противном случае допускается хранение в холодильнике не более 4 часов при температуре +2 - +8°. 4) РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ Рентгенологическое (рентгеновское)* исследование основано на свойстве рентгеновских лучей в различной степени проникать через ткани организма. Степень поглощения рентгеновского излучения зависит от толщины, плотности и физико-химического состава органов и тканей человека, поэтому более плотные органы и ткани (кости, сердце, печень, крупные сосуды) визуализируются на экране (рентгеновском флюоресцирующем или телевизионном) как тени, а лёгочная ткань вследствие большого количества воздуха представлена областью яркого свечения. Различают следующие основные рентгенологические методы исследования. 1. Рентгеноскопия (греч. skopeo - рассматривать, наблюдать) - рентгенологическое исследование в режиме реального времени. На экране появляется динамическое изображение, позволяющее изучать двигательную функцию органов (например, пульсацию сосудов, моторику ЖКТ); также видна структура органов. 2. Рентгенография (греч. grapho - писать) - рентгенологическое исследование с регистрацией неподвижного изображения на специальной рентгеновской плёнке или фотобумаге. При цифровой рентгенографии изображение фиксируется в памяти компьютера. Применяют пять видов рентгенографии. • Полноформатная рентгенография. • Флюорография (малоформатная рентгенография) - рентгенография с уменьшенным размером изображения, получаемого на флюоресцирующем экране (лат. fluor - течение, поток); её применяют при профилактических исследованиях органов дыхания. * Вильгельм Конрад Рентген (1845-1923) - немецкий физик-экспериментатор, основоположник рентгенологии, в 1895 г. открыл Х-лучи (рентгеновские лучи). • Обзорная рентгенография - изображение целой анатомической области. • Прицельная рентгенография - изображение ограниченного участка исследуемого органа. • Серийная рентгенография - последовательное получение нескольких рентгенограмм для изучения динамики изучаемого процесса. 3. Томография (греч. tomos - отрезок, пласт, слой) - метод послойной визуализации, обеспечивающий изображение слоя тканей заданной толщины с использованием рентгеновской трубки и кассеты с плёнкой (рентгеновская томография) или же с подключением специальных счётных камер, от которых электрические сигналы подаются на компьютер (компьютерная томография). 4. Контрастная рентгеноскопия (или рентгенография) - рентгенологический метод исследования, основанный на введении в полые органы (бронхи, желудок, почечные лоханки и мочеточники и др.) или сосуды (ангиография) специальных (рентгеноконтрастных) веществ, задерживающих рентгеновское излучение, в результате чего на экране (фотоплёнке) получают чёткое изображение изучаемых органов. Перед проведением рентгенологического исследования следует освободить область планируемого исследования от одежды, мазевых повязок, наклеек из лейкопластыря, электродов для мониторирования ЭКГ и пр., попросить снять часы, металлические украшения и подвески. Рентгенологическое исследование органов грудной клетки Рентгенологическое исследование органов грудной клетки - важный метод обследования пациентов с заболеваниями органов дыхания и ССС. |
