Главная страница
Навигация по странице:

  • Методика проточной цитометрии

  • Методика мультиплексного анализа.

  • методика. Методика проточной цитометрии


    Скачать 19.01 Kb.
    НазваниеМетодика проточной цитометрии
    Дата09.10.2018
    Размер19.01 Kb.
    Формат файлаdocx
    Имя файламетодика.docx
    ТипДокументы
    #52931

    Комплексная оценка морфофункциональной реакции клеточных культур при сокультивировании с МНЧ была основана на определении жизнеспособности клеток, детекции основных показателей клеточного гомеостаза (маркеров активации – CD25, пролиферации – CD71 и апоптотической гибели – CD95), а также исследовании уровня провоспалительных и антивоспалительных цитокинов, секретируемых (МНК) по окончании времени инкубации.

    Детекцию основных показателей клеточного гомеостаза (маркеров активации – CD25, пролиферации – CD71 и апоптотической гибели – CD95) проводили методом проточной цитометрии.

    Принцип метода заключается в определении рассеивания света лазерного луча при прохождении через него клеток, окрашенных моноклональными антителами, меченными флуоресцентными метками.

    Методика проточной цитометрии

    После культивации клеток с наночастицами без биополимерного покрытия проводился анализ уровня экспрессии поверхностных маркеров и жизнеспособности с помощью лазерного проточного цитометра.

    1. Перед проведением фенотипического анализа экспериментальных и контрольных культур, проводили оценку их клеточности методом проточной цитометрии с использованием программы «Guava ViaCount» (Millipore, США), на проточном цитометре «Guava EasyCite Plus» (Millipore, США), согласно протоколу производителя.

    2. Далее проводили оценку фенотипического профиля с использованием коктейля моноклональных антител к CD45(ViaBlue); CD25(FITC), CD71(АРС), CD95(PE) («eВioscience», USA), приготовленного ex temporo. Кроме того в набор входил изотипический контроль.

    3. Для выполнения фенотипического анализа приготавливались две аликвоты (1 и 2), каждая из которых содержала 1×10⁶ клеток.

    4. Клеточная суспензия центрифугировалась с ускорением 300×g в течение 10 минут, затем полностью удалялся супернатант.

    5. Каждую аликвоту ресуспендировали в 100 мкл буфера.

    6. Добавлялось 10 мкл фенотипического коктейля в аликвоту 1 и 10 мкл изотипного контрольного коктейля в аликвоту 2.

    7. Содержимое аликвот хорошо перемешивалось и инкубировалось 10 минут в темноте в холодильнике (2-8°C).




    1. Клетки промывались добавлением 1 мл буфера и центрифугировались с ускорением 300×g в течение 10 минут, затем полностью удалялся супернатант.

    2. Осадок клеток ресуспендировали с помощью буфера для анализа.

    3. Анализ проводился с использованием программы «MACSQuantify™ Software’s» (Miltenyi Biotec, Германия), методом проточной лазерной цитометрии на проточном цитометре «MACSQuant Analyzer 10» (Miltenyi Biotec, Германия), согласно протоколу производителя. Результаты цитометрического анализа были проанализированы с помощью программы «KALUZA Analysis Software» (Beckman Coulter, США).

    Методика мультиплексного анализа.

    1. Добавиляли 100 мкл буфера (Bio-Plex assay buffer) в каждую лунку планшета.

    2. После вортексирования приготовленной смеси магнитных частиц (х1), добавили по 50 мкл суспензии магнитных частиц в каждую лунку планшета.

    3. Промыли планшет 2 раза с использованием 100 мкл Bio-Plex assay buffer (на металлической подложке).

    4. Размороженные образцы, стандарты, бланки провортексировали 30 сек. Добавили по 50 мкл в каждую лунку планшета (соответственно заранее приготовленному бланку-протоколу).

    5. Закрыли планшет светозащитной пленкой. Инкубировали на шейкере 1 ч при 850±50 rpm при комнатной температуре.

    6. Вортексировали 5 сек 20х детектирующие антитела (АТ) за 10 мин до конца инкубации. Развели 20х АТ с помощью Detection Ab Dilluent до 1х суспензии.

    7. Промыли планшет три раза с использованием 100 мкл Bio-Plex assay buffer (металлическая подложка).

    8. Вортексировали суспензию 1х АТ. Добавили по 25 мкл в каждую лунку планшета.

    9. Закрыли планшет и инкубировали в течении 30 мин при комнатной температуре при 850±50 rpm.

    10. Вортексировали 5 сек 100х концентрат стрептовидина-фикоэритрина (SA-PE) за 10 мин до конца инкубации. Развели 100х SA-PE с помощью assay buffer до 1х суспензии, поставили в темное место.

    11. Промыли планшет три раза с использованием 100 мкл Bio-Plex assay buffer (металлическая подложка).

    12. Провортексировали суспензию 1х SA-PE. Добавили по 50 мкл в каждую лунку планшета.

    13. Закрыли планшет и инкубировали в течении 10 мин при комнатной температуре при 850±50 rpm.

    14. Промыли планшет три раза с использованием 100 мкл Bio-Plex assay buffer (металлическая подложка).

    15. Ресуспендировали магнитные частицы в 125 мкл assay buffer. Закрыли планшет и встряхнули на шейкере 30 сек при 850±50 rpm.

    16. Подготовленный планшет с образцами тестировали на приборе Bio-Plex, Luminex200

    17. Полученные данные сохранили в формате Microsoft Excel, для дальнейшего их анализа


    написать администратору сайта