Лабораторные занятия (2). Сущность болезни, ее периоды и исходы
 Скачать 0.5 Mb.
|
|
Лабораторное занятие № 1 Тема: Сущность болезни, ее периоды и исходы. Цель занятия. Изучить физиологическую и патологическую регуляцию функций организма. Материальное оснащение. Эксикатор емкостью 2-3 литра. Подопытное животное - морская свинка. Методика эксперимента. Предварительно подсчитав частоту дыхательных движений у животного, помещают его в эксикатор и притирают крышку эксикатора, чтобы создать избыток углекислого газа и недостаток кислорода в окружающей среде. Наблюдают за состоянием животного, подсчитывают каждые 5 минут частоту дыхания. Эксперимент прекращают, как только животное примет боковое положение. Оформление протокола опыта. Результаты наблюдений заносят в протокол эксперимента, анализируют полученные данные. На основании данных эксперимента составляют график, отмечают на нем фазу адаптации, компенсации и декомпенсации. Делают выводы. Форма протокола опыта: Время наблюдения Частота дыхательных движений Состояние животного Контрольные вопросы: • Понятие о здоровье и болезни. • Представление о болезни на ранних исторических этапах развития ветеринарной медицины. • Приспособительные возможности организма при действии патогенных раздражителей. • Механизмы регуляции адаптации организма. • Защитные рефлексы организма. • Общие принципы классификации болезней. • Понятия о компенсаторных возможностях организма. • Декомпенсация и ее механизмы. Лабораторное занятие № 2 Тема: Общая этиология. Цель занятия. Изучить влияние пониженного атмосферного давления на организм животных. Материальное обеспечение. Насос Комовского, толстостенный стеклянный колокол с подставкой ртутным манометром, пинцет, химический стакан емкостью 200 мл, стеклянная пластинка. Подопытные животные- 2 белые мыши и 1 новорожденный мышонок. Методика эксперимента. Одну взрослую мышь наркотизируют ингаляцией эфира. Вторая мышь служит контролем. Поместив всех 3 мышей под герметически притертый стеклянный колокол, соединенный с насосом Комовского и ртутным манометром, студенты, поэтапно откачивают воздух, наблюдая за состоянием подопытных животных. Обращают внимание на внешний вид, окраску периферических частей тела, поведенческие реакции. Сначала наблюдают за поведением животных при нормальном атмосферном давлении, затем атмосферное давление в колоколе понижают до 600 мм ртутного столба. Наблюдают за животным. Затем понижают до 500, до 400-350 мм ртутного столба. Оформление протокола опыта. Описать клиническую картину состояния животных в условиях пониженного атмосферного давления. Результаты наблюдения записать в протоколе. Контрольные вопросы: • Что такое «гипобария»? • Чем вызвана отдышка, возбуждение, покраснение ушей и лапки. • Представление об этиологии болезни. • Классификация этиологических факторов способных вызвать болезнь. • Внешние условия, усугубляющие или ограничивающие действие болезнетворных факторов на организм животных. • Физические факторы как причина болезней. Лабораторное занятие №3 Тема: Общая этиология. Цель занятия. Влияние химических факторов на организм животного. Материальное обеспечение. Подопытные животные (лягушки), пробковые дощечки, булавки, концентрированный раствор серной кислоты и натрия гидрокарбоната, стеклянные палочки. Методика эксперимента. Двух лягушек прикрепляют булавками к пробковой дощечки. На кожу живота одной из них наносят стеклянной палочкой каплю концентрированной серной кислоты, на кожу другой раствор едкой щелочи. У обеих лягушек на брюшке обнаруживают морфологические изменения. Оформление протокола опыта. Описать клиническую картину морфологических изменений на месте нанесения концентрированных растворов. Контрольные вопросы: • Химические факторы как причина болезней. • Механизм патогенного действия кислот. • Механизм патогенного действия щелочей. Лабораторное занятие №4 Тема: Общая этиология. Цель занятия. Изучить видовые особенности течения электротравмы. Материальное обеспечение. Лабораторные автотрансформаторы, вольтерметры, амперметры, игольчатые электроды. Подопытные животные- белые мыши, лягушки. Методика эксперименты. Прикладывают электроды к левой передней и правой задней конечности у белой мыши и пропускают электрический ток напряженностью 30, 60, 120 вольт в течение 5-10 секунд. Наблюдают развитие тетанических судорог и остановку дыхания. При вскрытии грудной клетки наблюдают фибрилляцию сердечной мышцы. Эксперимент повторяют на лягушке. Наблюдают остановку дыхания, исчезновение роговичного рефлекса. Через 30-60 секунд состояние животного возвращается к исходному. Оформление протокола опыта. Записать данные о напряжении и силе тока, вызывающего двигательную реакцию у подопытных животных. Описать видовые особенности течения электротравмы у разных видов животных. Сделать выводы. Контрольные вопросы: • В чем заключается механизм возникновения фибрилляции мускулатуры желудочков сердца. • Механизм патогенного действия электронного тока. • Влияние электрического тока в зависимости от его силы. • Влияние электрического тока в зависимости от напряжения. • Влияние электрического тока в зависимости от продолжительности действия. • Влияние электрического тока на организм животных в зависимости от путей прохождения по организму. Лабораторное занятие №5 Коллоквиум. Лабораторное занятие №6 Тема: Общий патогенез. Цель занятия. Изучить роль возраста животного в проявление компенсаторных механизмов. Материальное оснащение. Стеклянные банки емкостью 5-7 литров, электротермометр, секундомеры, корнцанги, эмалированные кюветы, стеклянные воронки, вода, охлажденная до 3-5 º С. Подопытные животные- крысы белые. Методика эксперимента. Подбирают трех белых крыс-самцов, разных по возрасту. Одна крыса молодая, в возрасте 4-5 месяцев, другая 10-12 месяцев, третья, в возрасте более 1,5 лет. У каждой крысы электротермометром измеряют исходную ректальную температуру. Всех трех животных одновременно опускают в сосуд с водой (3-5 º С) на 5-8 минут. Сразу после извлечения из воды у подопытных животных измеряют ректальную температуру, а затем через 15, 30, 45, 60, 75 минут с момента прекращения охлаждения. Крыс содержат раздельно, в одинаковых условиях при комнатной температуре на кюветах под стеклянными воронками. Обращают внимание на поведенческие реакции, окраску мордочки, ушей, лап, хвоста, мышечную дрожь, характер дыхания. Оформление протокола опыта. Данные, полученные при измерении температуры тела до и в различные сроки после охлаждения, занести в таблицу. Проанализировать результаты опыта. Объяснить почему у старой крысы температура тела восстанавливается медленнее, чем у молодой. Сделать выводы о роли возраста в компенсаторных реакциях. Контрольные вопросы: • Сущность понятия «патогенез». • Причинно-следственные отложения в генезе болезни. • Основное звено патогенеза. • Местное и общее в патогенезе. • Влияние вида, породы, возраста пола, животных на возникновение и течение болезни. • Почему у старой крысы восстанавливается медленнее, чем у молодой? • Роль возраста в компенсаторных реакциях. Лабораторное занятие №7 Тема: Общий патогенез. Цель занятия. Изучить роль компенсаторных механизмов в ответной реакции на действие вредоносного фактора. Материальное обеспечение. Большие стеклянные воронки, пинцеты анатомические, иглы хирургические, нити хлопчатобумажные, глазные ножницы, кюветы, эфир для наркоза. Подопытные животные- лягушки. Методика эксперимента. Лягушку помещают на кювету под стеклянную воронку, наблюдают за поведением лягушки, подсчитывают число дыхательных движений за 1 минуту. Под воронку кладут ватку, смоченную эфиром. Лягушку, находящуюся под легким эфирным наркозом, берут в руки. В верхней трети туловища глазными ножницами делают боковой разрез грудобрюшинной стенки длинной около 1 см. Выдавливают легкое, слегка нажимая на брюшную стенку. Легкое слегка подтягивают анатомическим пинцетом, на основание накладывают две лигатуры, между которыми делают надрез. Удаляют легкое. Операционную рану закрывают наложением непрерывного шва. Такую же операцию делают с противоположной стороны. После удаления обоих легких лягушку вновь помещают под воронку и следят за ее состоянием. Лягушка продолжает жить. Через 20 минут подсчитывают дыхательные движения. Оформление протокола опыта. Занести в тетрадь об исходном состоянии лягушки, частоте дыхания, описать операцию. Объяснить механизм, позволяющий лягушке оставаться живой после удаления обоих легких. Определить вид компенсации. Контрольные вопросы: • Внешние и внутренние барьерные системы. • Саногенез. Механизм восстановления наружных функций. • Компенсация нарушенных функций отдельных органов. • Защитные рефлексы организма. Лабораторное занятие №8 Тема: Реактивность организма, ее роль в патологии. Цель занятия. Изучить роль барьерных приспособлений в ответной реакции организма. Материальное оснащение. Клетки для фиксации крыс, шприцы на 2 мл с иглой, кюветы, набор инструментов для вскрытия, стеклянные воронки, эфир для наркоза, 1%- ный раствор трипановой сини. Животное помещают под стеклянную воронку. Через 30-40 минут туда же кладут ватный тампон, обильно смоченный эфиром. После наступления смерти крысы ее вскрывают. Обращают внимание на окрашивание тканей животного в синий цвет: слизистые и серозные оболочки органов, мышцы, рыхлая соединительная ткань, интима сосудов, паренхима внутренних органов. Неокрашенными остаются спинномозговая жидкость, ткань головного и спинного мозга, а так же стекловидное тело задней камеры глаза. Оформление протокола опыта. Записать ход эксперимента. Ввести результаты патологоанатомического вскрытия. Объяснить причину отсутствия окраски в ликворе и в содержимом задней камеры глаза. Сделать выводы. Контрольные вопросы: • Виды реактивности. • Роль нервной и эндокринной системы в реактивности. • Барьерные приспособления. • Значение конституции в патологии. • Понятие о диатезах. • Влияние пола, возраста и породы на реактивность. Лабораторное занятие №9 Тема: Патологическая физиология периферического кровообращения и микроциркуляции. Цель занятия. Изучить основные расстройства периферического кровообращения на примере нейропаралитической артериальной гиперемии. Материальное оснащение. Пенопластовые дощечки,микроскопы, кюветы, булавки, анатомические пинцеты, глазные ножницы, вата, нитки, 10%-ный раствор этилового спирта. Подопытные животные- лягушки. Методика эксперимента. Лягушку наркотизируют, для чего ее помещают на 3-5 минут в 10%-ный раствор этилового спирта. Фиксируют булавками на дощечки брюшком вниз. Обнаруживают седалищный нерв, берут его на лигатуру. Плавательную перепонку между пальцами задней конечности помещают на столик микроскопа. Под малым увеличением наблюдают нормальный кровоток. Слегка подтягивают седалищный нерв и перевязывают. Обращают внимание на изменение диаметра артериальных сосудов, скорость движения крови, число функционирующих капилляров. Прослеживают динамику возникающих патологических процессов до появления стойких изменений кровообращения. Оформление протокола опыта. Описать и зарисовать картину изменений тока крови до и после перевязки седалищного нерва. Наблюдения анализируют, делают выводы о роли нервной системы в развитии артериальной гиперемии. Контрольные вопросы: • Артериальная гиперемия. Виды артериальной гиперемии. • Возможные последствия артериальной гиперемии. • Состояние обмена веществ в области артериальной гиперемии. • Патологические явления, наблюдаемые при артериальной гиперемии (в сосудах малого и большого круга кровообращения) • Роль нервной системы в артериальной гиперемии. Лабораторное занятие №10 Тема: Патологическая физиология периферического кровообращения и микроциркуляции. Цель занятия. Изучить основные расстройства периферического кровообращения на примере венозной гиперемии сосудов брыжейки кролика. Материальное оснащение. Столик для фиксации кроликов, малый хирургический набор, кишечный жом, иглы, шовный материал, маска для ингаляции наркоза, эфир, салфетки, 5%-ный раствор йода. Подопытное животное- кролик. Методика эксперимента. Животное фиксируют. Готовят операционное поле. Делают легкий ингаляционный наркоз. Проводят разрез (5 см) по белой линии живота. На стерильные салфетки извлекают петли тонкого кишечника. Находят корень брыжейки и накладывают на него кишечный жом. Наблюдают за изменением моторики, цвета, консистенции петли кишечника. Через 3-5 минут кишечный жом снимают. Наблюдают за восстановлением исходного состояния тонкого кишечника. Операционную рану зашивают прерывистым швом. Оформление протокола опыта. Записывают динамику появления внешних признаков венозной гиперемии брыжейки после механического сдавливания вен. Анализируют механизм последовательно возникающих патологических изменений, динамику восстановления кровотока после устранения причины. Делают выводы. Контрольные вопросы: • Венозная гиперемия. Виды венозной гиперемии. • Возможные последствия венозной гиперемии. • Микроциркуляторные изменения, характерные для венозной гиперемии. • Состояние обмена веществ в области венозной гиперемии. • Патологические явления, возникающие при венозном застое в сосудах малого круга кровообращения. • Патологические явления, возникающие при венозном застое в сосудах большого круга кровообращения Лабораторное занятие №11 Коллоквиум. Лабораторное занятие №12 Тема: Патологическая физиология периферического кровообращения и микроциркуляции. Цель занятия. Изучить эмболию в опыте на лягушке при жировой эмболии сосудов брыжейки лягушки. Материальное оснащение. Микроскопы, дощечки для лягушек, булавки, глазные ножницы, глазные анатомические пинцеты, шприц на 1 см 3 с тонкой иглой, вазелиновое масло, физиологический раствор, вата. Подопытное животное- лягушка. Методика эксперимента. Лягушку под спиртовым наркозом кладут на дощечку животом вверх и фиксируют булавками. Вскрывают грудную полость, разрезают перикард и обнажают сердце. Слева сбоку и в задней части живота вскрывают брюшную полость. Осторожно извлекают петлю тонкого кишечника и фиксируют сосуды над отверстием дощечки. В полость желудка сердца вводят 0,2 мл (2-3 капли) вазелинового масла. Под малым увеличением микроскопа наблюдают за появлением в сосудах брыжейки жировых эмболов с последующим развитием в них расстройства кровообращения. Результат опыта (наличие жировой эмболии и нарушение в сосудах брыжейки лягушки), зарисовывают. Контрольные вопросы: • Эмболия. Эмбол. Определение понятий. • Эмболы экзогенного и эндогенного происхождения. • Тромбоз. Тромб. Определение понятий. • Причины, вызывающие образование тромба. • Классификация тромбов по патогенезу и расположению в сосудах. • Исходы тромбозов. • Стаз. Определение понятия. • Механизм развития истинного капиллярного стаза. • Возможные последствия стаза. Лабораторное занятие №13 Тема: Воспаление. Цель занятия. Изучить расстройства кровообращения и микроциркуляции в очаге воспаления (в опыте с воспалением брыжейки лягушки). Материальное оснащение. Препаратные дощечки, микроскоп, булавки, глазные ножницы, анатомические пинцеты, препаровальные иглы, 10%-ный раствор этилового спирта, вата. Подопытное животное- лягушка. Методика эксперимента. Лягушку наркотизируют погружением на 3-5 минут в 10%-ный раствор этилового спирта. Делают боковой разрез брюшной стенки. Выводят петли тонкого кишечника. Брыжейку расправляют булавками над отверстием. Изъятие брыжейки, натягивание, контакт с воздухом, подсыхание вызывает развитие острого воспалительного процесса с изменениями кровообращения. При микрокопировании обращают внимание на начальную и последующую скорость кровотока, распределение плазмы и форменных элементов крови, число и диаметр функционирующих сосудов, характер движения по капиллярам элементов крови. Наблюдают динамику воспаления. Оформление протокола опыта. Фиксируют ход эксперимента. Описывают динамику сосудистых расстройств при воспалении, объясняют ее механизм. Делают выводы. Контрольные вопросы: • Воспаление. Определение понятия. • Этиологические факторы, вызывающие воспаление. • Внешние признаки воспаления. • Расстройство кровообращения и микроциркуляции в очаге воспаления. Лабораторное занятие №14 Тема: Воспаление. Цель занятия. Изучить общие реакции организма при воспалении. Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Материальное оснащение. Штатив и капилляры аппарата Панченкова, часовые стекла, 5%-ный раствор лимоннокислого натрия. Подопытные животные- кролики, у которых предварительно, за 7 дней до занятия, вызвали гнойное воспаление путем втирания в кожу спины скипидара. Методика эксперимента. Вычисляют скорость разделения цельной крови на плазму (светло-желтой окраски) и форменные элементы (красной окраски за счет гемоглобина эритроцитов). Для определения берут градуированный стеклянный капилляр (от 0 до 100 мл), промывают его раствором лимоннокислого натрия. Набирают раствор до метки Р (высота 50 мл) и выпускают на часовое стекло. Из капли крови, взятой от кролика, в тот же капилляр набирают кровь до метки К и приливают его к раствору лимоннокислого натрия в часовое стекло, тщательно перемешивают жидкости. Затем капилляр наполняют цитратной кровью и укрепляют в штативе в строго вертикальном положении. Результаты оседания эритроцитов отмечают через 1 час. Выражают СОЭ в мм/час. Оформление протокола опыта. Фиксируют ход эксперимента. Отмечают результат оседания эритроцитов. Контрольные вопросы: • Роль биологически активных веществ в генезе воспаления. • Виды экссудата. • Учение о фагоцитозе. • Пролиферация. • Классификация воспалений. Лабораторное занятие №15 Тема: Воспаление. Цель занятия. Исследование морфологического состава гнойного экссудата. Материальное оснащение. Предметные и покровные стекла, гнойный экссудат, краска Романовского-Гимза, метиловый спирт, бактериологические чашки. Методика эксперимента. На предметном стекле размазываю каплю гноя: полученный мазок сушат на воздухе, фиксируют в метиловом спирте в течении 10 минут или в спирте с эфиром 15 минут и окрашивают 5%-ным раствором краски Романовского- Гимза в течении 30-40 минут. Краску сливают, мазок промывают водой, высушивают фильтровальной бумагой и рассматривают под микроскопом, пользуясь иммерсионной системой. В мазке могут быть обнаружены: эндотелиальные клетки, лейкоциты, немногочисленные эритроциты, микроорганизмы, нити фибрина. Оформление протокола опыта. Фиксируют ход эксперимента. Отмечают обнаруженные эпителиальные клетки, лейкоциты и т.д. Контрольные вопросы: • Гнойный экссудат, его состав (морфология экссудата). • Состав гнойного экссудата в разных стадиях воспалительного процесса. • Морфология лейкоцитов в острой стадии воспалительного процесса. • Морфология лейкоцитов в поздних стадиях воспаления. Занятие №16 (семинарское) Тема: Воспаление. Цель занятия. Промежуточный контроль знаний студентов, закрепление лекционного материала, приобретение навыков самостоятельной и экспериментальной работы, имеющих знания в научно-исследовательской работе и врачебной деятельности. Вопросы к семинарскому занятию: • Воспаление. Определение понятия. • Этиологические факторы, вызывающие воспаление. • Внешние признаки воспаления. • Стадии воспаления. • Расстройство кровообращения и микроциркуляции в зоне воспаления. • Альтерация. Определение понятия. Механизм развития альтерации. • Экссудация. Определение понятия. Механизм развития экссудации. • Пролиферация. Определение понятия. Механизм развития пролиферации. • Характеристика нарушения обмена веществ в очаге воспаления. • Роль биологически активных веществ в генезе воспаления. • Виды экссудатов. • Классификация воспалений. • Роль нервной системы в развитии воспаления. • Воспаление как реакция целостного организма на повреждение. • Исходы воспаления. • Биологическая роль воспаления. • Особенности течения воспаления у основных видов сельскохозяйственных животных: лошадей, крупного рогатого скота, свиней и птиц. • Терминология (название) воспалений. Лабораторное занятие №17 Тема: Лихорадка. Цель работы. Изучить роль нервной системы в нарушении теплорегуляции при лихорадке. Материальное оснащение. Столик для фиксации лабораторных животных, шприцы с иглами, 2%-ный раствор новокаина, термометр. Подопытные животные- крысы белые. Методика эксперимента. У подопытной крысы инфильтрируют определенный участок тела 2%-ным раствором новокаина. Через 10-15 минут ей вводят в это же место 0,5-1 мл автоплавированного фильтрата бактериальной культуры. Контрольной крысе инъецируют фильтрат в той же дозе, но без предварительной анестезии места инъекции. Через каждые 30 минут у обеих крыс измеряют ректальную температуру. Оформление протокола опыта. Фиксируют ход эксперимента. Отмечают изменение температуры тела у контрольной и опытной крысы через каждые 30 минут. Делают выводы. Контрольные вопросы: • Лихорадка. Определение понятия. • Этиология лихорадки. • Стадии лихорадки. • Патогенез лихорадки. • Роль нервной и эндокринной систем в патогенезе лихорадочной реакции. Лабораторное занятие №18 Тема: Лихорадка. Цель занятия. Изучить этиологию и патогенез лихорадки у животных. Выяснить значение нервных механизмов в развитии лихорадки. Материальное оснащение. Шприц на 1 мл с иглами, вата, вазелин, термометр, раствор пирогенала, 1%-ный раствор новокаина. Подопытные животные- кролики. Методика эксперимента. У животных измеряют ректальную температуру, затем кроликам вводят пирогенал в краевую вену уха из расчета 30 МПД на 1 кг массы тела. Второму кролику вводят пирогенал в сустав. Для этого заднюю конечность кролика сгибают в коленном суставе и в полость сустава вводят 1 мл 1%-ного раствора новокаина. Через 10 минут отсасывают новокаин из суставной сумки и, не извлекая иглы, вводят 1 мл пирогенала. В последующем температуру тела измеряют через каждые 15 минут. Определяют выраженность температурной реакции у кроликов в зависимости от места рецепции пирогенна. Оформление протокола опыта. Записывают схему эксперимента. Данные полученные при измерении температуры тела заносят в таблицу. Делают выводы о значении нервной рецепции в механизме развития лихорадочной реакции. Занятие №19 (семинарское) Тема: Лихорадка. Цель занятия. Промежуточный контроль знаний студентов. Закрепление лекционного материала. Приобретение навыков самостоятельной работы, освоение экспериментальных методик, имеющих значение в научно- исследовательской работе и врачебной деятельности. Вопросы к семинарскому занятию: • Лихорадка. Определение понятия. • Этиология лихорадки. • Стадии лихорадки. • Патогенез лихорадки. • Понятие о пирогенах. • Состояние основных функций при лихорадке. • Нарушение углеводного, жирового, белкового обменов во время лихорадки. • Роль нервной и эндокринной систем в патогенез лихорадки. • Типы температурных кривых. • Классификация лихорадки по степени повышения температуры. • Особенности лихорадки у сельскохозяйственных животных разных видов. • Значение лихорадки для организма. Лабораторное занятие №20 Тема: Патологическая физиология иммунной системы. Цель занятия. Освоить методики получения лейкоцитов, сыворотки и взвеси бактерий. Материальное оснащение. Шприцы 5 и 20 мл, пробирки, спирт, микроскоп, центрифуга, центрифужные пробирки, пастеровские пипетки, стаканчик, часовое стекло. Собака (для взятия крови с яремной вены). Получение лейкоцитов. У собаки из яремной вены набирают 20-25 мл крови (шприцем), смешивают ее с 2 мл 5%-ного раствора лимоннокислого натрия и центрифугируют 10 минут. Затем пастеровской пипеткой отсасывают плазму, наливают в центрефужные пробирки физиологический раствор, вновь центрифугируют и снова отсасывают скопившуюся над кровью жидкость. Лейкоциты, находятся в верхнем слое над эритроцитами, насасывают в пастеровскую пипетку. Получение сыворотки. Из яремной вены собаки набирают 20-25 мл крови и наливают ее в центефужные пробирки. После свертывания крови сгусток обводят по краям стеклянной палочкой и центрифугируют. Образовавшийся верхний слой сыворотки отсасывают пастеровской пипеткой. Получение взвеси бактерий. Культуру бактерий паратифа или стрептококков, посеянных на агар-агаре, смывают физиологическим раствором в плоскодонную колбу и тщательно взбалтывают. Лабораторное занятие №21 Тема: Патологическая физиология иммунной системы. Цель занятия. Наблюдение фагоцитоза в окрашенном мазке. Материальное оснащение. Предметные стекла, спирт ректификат, для обеззараживания предметных стекол, стаканчик, пастеровские пипетки, микроскоп, метиловый спирт, краска Романовского. Подопытное животное - морская свинка. Методика эксперимента. Каплю экссудата, добытого из брюшной полости морской свинки, размазывают на предметном стекле. Мазки высушивают на воздухе, затем фиксируют 10 минут в метиловом спирте и окрашивают краской Романовского 30 минут. Просматривая весь мазок под микроскопом иммерсионной системой, обнаруживают фазы фагоцитоза (сближение фагоцитов с эритроцитами, захватывание и переваривание их). В этом эксперименте можно установить фагоцитарное число, т.е. количество захваченных эритроцитов 100 фагоцитами. Оформление протокола опыта. В протоколе отмечают сближение фагоцитов с эритроцитами, процесс захватывания и переваривания их. Делают выводы. Контрольные вопросы: • И. И. Мечников и его вклад в развитие учения о фагоцитозе. • Общее представление о патофизиологии иммунной системы. Лабораторное занятие №22 Тема: Патологическая физиология иммунной системы. Цель занятия. Изучить местное проявление анафилаксии. Материальное оснащение. Кутиметры, ножницы, 70%-ный этиловый спирт. Подопытное животное- кролик массой тела не менее 3 кг. Методика эксперимента. Для сенсибилизации кроликам под кожу в области живота или спины многократно, с интервалом 5-6 дней вводят сыворотку крови лошади в объеме 3-5 мл. После 3-4-х инъекции на месте введения образуется уплотнение , а после 5-6-и развивается воспаление с кровоизлиянием и некрозом кожи в центре. Кроликов демонстрируют в разгар гиперергического воспаления. У кроликов с развившимся феноменом Артюса выстригают шерсть в области воспаления, а кожу протирают ваткой, смоченной спиртом. Кутиметром определяют площадь припухлости, кровоизлияния, некроза и толщину кожной складки. Последнюю сравнивают с толщиной кожи кожной складки нормальной кожи на ближайшем, или симметричном участке тела. Оформление протокола опыта. В протокол описывают способ сенсибилизации и внешние признаки феномена Артюса. Зарисовывают морфологическую картину феномена и объясняют механизм его развития. Контрольные вопросы: • Патогенез аллергических реакций немедленного типа (анафилаксии). • Механизм развития феномена Артюса. • Анафилактический шок и его особенности у животных разных типов. • Местные проявления аллергических реакций и их механизм. • Значение аллергических реакций для диагностики инфекционных и инвазионных болезней. Занятие №23 (семинарское). Тема: Патологическая физиология иммунной системы. Цель занятия. Промежуточный контроль знаний студентов. Закрепление теоретического материала. Приобретение навыков самостоятельной работы, освоение экспериментальных методик, имеющих значение в научно- исследовательской работе и врачебной деятельности. Вопросы к семинарскому занятию. • Виды аллергии. Аллергены. • Патогенез аллергических реакций немедленного типа. • Патогенез аллергических реакций замедленного типа. • Стадии в развитии аллергических реакций. • Местные проявления аллергических реакций. • Специфическая десенсибилизация и неспецифическая. • Анафилактический шок и его особенности у животных разных видов. • Цитотоксины, их происхождение и значение в патологии. • Значение аллергических реакций для диагностики у животных разных видов. • Основные иммуно-компетентные клетки и их кооперация в иммунном ответе. • Вклад И. И. Мечникова в развитии учения о фагоцитозе. • Роль фагоцитоза в неспецифических и специфических факторах защиты. • Первичные и вторичные иммунодефицитные состояния. • Недостаточность Т-системы иммунитета. • Недостаточность В- системы иммунитета. • Иммунологическая толерантность, ее роль в патологии. • Общее представление о синдроме рант (рантинге). • Аутоиммунные заболевания и аутоиммунные процессы. Лабораторное занятие №24. Тема: Нарушение периферического кровообращения. Цель занятия. Проведение опыта по экспериментальному воспроизведению нейропаралитической гиперемии. Материальное оснащение. Столик для фиксации кролика, скальпель, ножницы, пинцет, вата, лигатура, 0,5%-ный раствор эфира. Подопытное животное- кролик. Методика эксперимента. На шее кролика выстригают шерсть по срединной линии, в области трахеи разрезают кожу. Место разреза инфильтрируют 0,5%-ным раствором новокаина. Раздвигают мышцы между трахеей и пищеводом находят сосудисто-нервный пучок, состоящий из сонной артерии и трех нервов. Рядом с артерией лежит депрессорный нерв, в середине симпатический и с противоположного края - блуждающий (самый толстый). Симпатический нерв берут на лигатуру и перевязывают. Рану зашивают. Через 20-30 минут на соответствующей стороне появляется симптом артериальной гиперемии: краснеет и становится более теплой на ощупь ушная раковина, резко расширяются сосуды уха. Нейропаралитическая гиперемия, обусловленная перерезкой симпатического нерва, может продолжаться несколько дней и является результатом выключения вазоконструкторов. Оформление протокола опыта. В протоколе отмечают время проявления гиперемии, записывают основные симптомы, последовательность их развития. Делают выводы. Лабораторное занятие №25 Тема: Нарушение периферического кровообращения. Цель занятия. Проведение опыта по экспериментальному воспроизведению миопаралитической гиперемии уха кролика. Материальное оснащение. Теплая вода, ксилол или толуол, ножницы, вата или марля. Подопытное животное- кролик (белой масти). Методика эксперимента. Рассматривая оба уха кролика в проходящем свете, отмечают их окраску, количество и расположение сосудов. Одно ухо подвергаю различного рода воздействиям. Сначала его надавливают и растирают пальцами; сравнивая это ухо с контрольным можно заметить, что раковина его резко покраснела, в ней появилась более густая сеть сосудов, ухо стало более теплым на ощупь. После исчезновения гиперемии ухо погружают в теплую воду (температура 50- 52ºС) на 5 минут, в результате чего тоже наступает гиперемия от термического воздействия. Внешние признаки артериальной гиперемии выступают более рельефно при смазывании уха ксилолом или толуолом (химическое воздействие). Ухо становится заметно теплее и диффузно-красным, сосуды его резко расширяются, количество их резко возрастает. Оформление протокола опыта. В протоколе отмечают время проявления гиперемии, записывают основные симптомы, последовательность их развития. Фиксируют разницу эффектов после химического и термического воздействия. Анализируют симптомы и делают выводы. Контрольные вопросы: • Артериальная гиперемия. Определение понятия. • Классификация артериальных гиперемий в зависимости от механизма дилатации. • Рефлекторное (центрального происхождения) влияние на развитие артериальной гиперемии. • Механизм влияния раздражающих факторов на экстеро - и интерорецептора. Лабораторное занятие №26 Тема: Нарушение периферического кровообращения. Цель занятия. Проведение опыта по экспериментальному воспроизведению венозной (застойной) гиперемии. Материальное оснащение. Пробка с боковой бороздкой, толстая нитка, вата, марля. Подопытное животное- кролик. Методика эксперимента. В ушную раковину кролика вставляют пробку с боковой бороздкой так, чтобы локализация центральной артерии соответствовала вырезке на пробке; затем перетягивают лигатурой основание уха с тем, чтобы были заметны вены. Таким образом, создается затруднение оттока крови по венам при наличии нормального притока ее по центральной артерии. Через 60 минут после перевязки уха сравнивают его при проходящем свете с контрольным и обнаруживают, что на ухе, перетянутом лигатурой, вены и капилляры резко расширены (увеличение сети венозных капилляров), оно диффузно-синюшное (цианоз) и несколько увеличено в объеме (отечно), т.е. являет типичную картину венозной гиперемии. Оформление протокола опыта. В протоколе отмечают последовательность развития венозной гиперемии, ее основные симптомы. Делают выводы. Контрольные вопросы: • Венозная гиперемия. Определение понятия. • Причины возникновения венозной гиперемии. • Признаки венозной гиперемии. • Микроциркуляторные расстройства в области венозной гиперемии. • Стаз. Механизм его развития. • Последствия остановки кровотока в различных органах и тканях. Лабораторное занятие №27 Тема: Нарушение периферического кровообращения. Цель занятия. Проведение опыта по экспериментальному воспроизведению местной анемии (ишемии). Материальное оснащение. Пробка с двумя бороздками, лигатура, вата, марля, стаканчик, скальпель, ножницы, пинцеты, аккумулятор, электроды, 0,5 %-ный раствор эфира. Подопытное животное- кролик. Методика эксперимента. У кролика по описанной ранее методике отпрепаровывается симпатический нерв. Его берут на лигатуру и перевязывают. При этом возникает нейропаралитическая артериальная гиперемия. После раздражения периферического конца нерва индукционным током (2 вольта) артериальная гиперемия сменяется анемией: ухо становится холодным, бледным, не просматривается ряд мелких сосудов. Анемия в данном случае возникла в результате раздражения вазоконструктора (в симпатическом нерве проходят сосудосуживающие волокна). Оформление протокола опыта. В протоколе отмечают последовательность развития анемии уха кролика. Отмечают симптомы. Делают выводы. Контрольные вопросы: • Анемия. Определение понятия. • Причины, вызывающие анемию. • Характерные признаки анемии. • Дифференциация анемий по вызвавшим их причинам. • Первичные и вторичные анемии. • Дифференциация анемий по патогенетическому признаку. |