Микробиология. ВБИ. Кичигина Ольга. А-11.. Внутрибольничная инфекция
 Скачать 70.15 Kb.
|
|
13. Понятие о внутрибольничной инфекции (ВБИ). Источники, механизмы и пути передачи. Основные причины возникновения ВБИ, резервуары и типичные места обитания микроорганизмов, часто встречающихся в медицинских учреждениях. Внутрибольничная инфекция- по определению всемирной организации здравоохранения любое клинически выраженное заболевание микробного происхождения, которое поражает больного в результате его поступления в больницу или обращением за мед.помощью вне зависимости от появления симптомов заболевания у пациента во время его пребывания в стационаре или после выписки, а также инфекционное заболевание сотрудника в следствии его инфицирования при работе в этой организации. Источники ВБИ: 1. Пациенты, которые обращаются в ЦБИ. 2. Мед.персонал, студенты мед.учреждений. 3. Родственники и другие посетители, которые навещают больных. 4. Технический персонал. 5. Работники пищеблоков. Механизмы и пути передачи ВБИ: 1. Аэрогенный(аэрозольный) –воздушно-капельный, воздушно-пылевой. 2. Контактный- контактно-бытовой. 3. Фекально-оральный- контактно-бытовой, водный. 4. Гемоконтактный(артифициальный, парантеральный)- контакт с биологическими жидкостями (кровь, выделения больного) Основные причины возникновения ВБИ: 1. Нарушение в организации работы стационара, санитарно-техническом состоянии, материальном обеспечении и соблюдение противоэпид. режима. 2. Не соблюдение инфекционного режима, дезинфекции ПСО, стерилизации, дезинсекции, дератизации. 3. Не соблюдение личной гигиены пациента и мед.персонала. 4. Нехватка изделий мед.назначения, в том числе одноразового(катетеры, дых.трубки и др.) Типичные места обитания микроорганизмов в ЛПУ: 1. Мочевые катетеры( где есть входные ворота для инфекции) 2. Инструменты для в\в введения. 3. Аппараты для искусственного дыхания. 4. Системы, в которых используется вода. 5. Руки мед.персонала 6. Дозаторы мыла. 14. Санитарно-микробиологические исследования воздуха, смывов, стерильного материала в учреждениях здравоохранения. Пробы воздуха отбираются на уровне дыхания сидячего или стоячего человека. Определяется общее микробное число в одном кубометре воздуха и наличие золотистого стафилококка. Исследования проводится в динамике для оценки санитарно-гигиенического режима окружающей среды стационара. Бактериологическое исследование воздушной среды предусматривает: - определение общего содержания микробов в 1 куб. м воздуха. - Определение содержания золотистого стафилококка в 1 куб. м воздуха. Отбор проб воздуха для бактериального исследования проводят в следующих помещениях: - операционных блоках; - перевязочных; - послеоперационных палатах; - отделениях и палатах реанимации и интенсивной терапии и др. помещениях, требующих асептических условий. Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппарата Кротова. Скорость протягивания воздуха составляет 25 л в минуту. Количество пропущенного воздуха должно составлять 100 литров для определения общего содержания бактерий и 250 литров для определения наличия золотистого стафилококка. Исследование воздуха седиментационным методом допускается в исключительных случаях. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками, размером 5х5 см, простерилизованными в бумажных пакетах или в чашках Петри. Для увлажнения тампонов в пробирки с тампонами наливают по 2,0мл стерильного физиологического раствора. При использовании салфеток стерильный физиологический раствор разливают в стерильные пробирки по 2,0мл. Салфетку захватывают стерильным пинцетом, увлажняют физиологическим раствором из пробирки, после протирания исследуемого объекта помещают в туже пробирку. При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят внескольких местах исследуемого предмета площадью примерно в 100-200 кв. см. Инструментарии для медицинских манипуляции по риску различают: Критические - проникают в стерильные ткани или сосуды: имплантаты, скальпели, иглы, другие хирургические инструменты и т.д. Стерилизация -спороцидные химические вещества, длительный контакт. Средства для стерилизации или дезинфекции Полукритические - соприкасаются со слизистыми оболочками (за исключением стоматологических инструментов):гибкие эндоскопы, ларингоскопы, эндотрахеальные трубки, а также другие аналогичные инструменты. Дезинфекция высокого уровня - спороцидные химические вещества, кратковременный контакт. Средства для стерилизации или дезинфекции Термометры, ванны для гидротерапии. Дезинфекция среднего уровня. Больничные дезинфицирующие средства с указанием в маркировке о наличии туберкулоцидной активности. Некритические (соприкасаются с неповрежденной кожей): стетоскопы, настольные приборы, подкладные судна и др. Дезинфекция низкого уровня. Больничные дезинфицирующие средства без указания в маркировке о наличии туберкулоцидной активности. Хирургический инструментарий с помощью стерильного пинцета извлекают из бикса или мягкой упаковки и целиком погружают в пробирки с питательными средами. Как исключение, в отдельных случаях, если все простерилизованные инструменты в одной упаковке крупных размеров (иглодержатели, ранорасширители и т.д.), производят смыв с поверхности инструмента стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или стерильной водопроводной воде и погружают салфетку в пробирку стиогликолевой средой. Аналогичные смывы с других инструментов засевают в пробирки со средой Хоттингера и Сабуро. Методика посева на стерильность игл и шприцев. Для контроля на стерильность отбирают шприцы малой емкости (1,0 или 2,0 мл) в условиях бактериологического бокса, с соблюдением правил асептики погружают в пробирки с питательными средами отдельно цилиндр, поршень, иглы. При необходимости контроля шприцев большой емкости (10, 20 мл и более)исследование стерильности производят методом смыва, при этом стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или водопроводной воде, протирают с помощью пинцета внутренние части шприца и погружают салфетку в питательную среду. 15. Значение своевременного и адекватного взятия материала для микробиологических исследований. Меры предосторожности при сборе и транспортировке исследуемого материала. Предохранение от контаминации исследуемого материала нормальной микрофлорой. Правила взятия. Количество отбираемого материала. Посуда, инструменты и химические реагенты, используемые для сбора материала, их перечень, подготовка к работе, утилизация. Оформление сопровождающихся документов. Значение своевременного и адекватного взятия материала для микробиологических исследований: Цель микробиологического исследования – установить этиологическую роль тех или иных микроорганизмов при возникшем заболевании или клиническом синдроме. Среди факторов, влияющих на достоверность микробиологической диагностики, можно выделить следующие условия взятия и транспортировки биологического материала: адекватный выбор методов микробиологического исследования; полноценность сведений о состоянии обследуемого пациента, важных с точки зрения оценки полученных результатов. Меры предосторожности при сборе и транспортировке исследуемого материала: Правила работы в базовой лаборатории включают: запрет работ с пипеткой при помощи рта; запрет приема пищи, питья, курения, хранения пищи и применения косметических средств в рабочих помещениях; поддержание чистоты и порядка; дезинфекцию рабочих поверхностей не реже 1 раза в день и после каждого попадания на них заразного материала; мытье рук персоналом после работы с заразным материалом, животными, перед уходом из лаборатории; проведение всех работ таким образом, чтобы свести к минимуму возможность образования аэрозоля; обеззараживание всех инфицированных материалов перед выбросом или повторным использованием. Правила взятия исследуемого материала: знание оптимальных сроков для взятия материала на исследование; взятие материала с учетом места максимальной локализации возбудителя путем его выделения в окружающую среду; отбор материала для исследования в необходимом и достаточном объеме с обеспечением условий, исключающих контаминацию проб; по возможности взятие материала до применения антибиотиков и других химиотерапевтических препаратов или после отмены антибиотиков через 2 – 3 дня. Материал доставляется в контейнерах, исключая их опрокидывание. При транспортировке не допускаются смачивание ватных пробок и замораживание материала. Материал поставляется в течение 1 – 2 ч после взятия. При невозможности доставки в указанные сроки биоматериал хранят в холодильнике (кроме крови и материала, исследуемого на наличие менингококка). При увеличении времени доставки проб до 48 ч необходимо использовать транспортные среды. Собранный материал должен быть доставлен в лабораторию и подвергнут исследованию в максимально сжатые сроки, поскольку некоторые микробы не выдерживают высушивания, длительного пребывания при измененном температурном режиме (гонококки, менингококки). К тому же если исследуемый материал наряду с патогенными микробами содержит и другую микрофлору, то последняя может оказать антагонистическое действие на возбудителей данного заболевания. Для взятия и транспортировки биологического материала следует использовать одноразовые стерильные тубсеры (пробирки с тампонами) промышленного производства или транспортные системы со средой. Ватные (хлопковые) тампоны, изготовляемые непосредственно в лаборатории из медицинской ваты, могут быть использованы только в крайнем случае, так как медицинская вата может обладать антимикробными свойствами. Предохранение от контаминации исследуемого материала нормальной микрофлорой Для сбора исследуемого материала должны использоваться стерильные посуда, инструменты и должны соблюдаться правила асептики, чтобы предупредить загрязнение исследуемого материала посторонней микрофлорой. Внесение случайной микрофлоры в исследуемый материал может помешать выделению микроба – возбудителя данного заболевания. Во избежание загрязнения материала посторенней микрофлорой тот, кто берет материал, должен вымыть руки. При некоторых видах исследований необходимо руки берущего материал, а также место взятия материала у больного дезинфицировать. При необходимости берущий исследуемый материал должен работать в эластичных перчатках. Пробирки и флаконы должны быть закрыты стерильными пробками, а баночки – крышками или бумажными стерильными колпачками. Следует помнить, что если ватная пробка смочена жидкостью, то она становится проницаемой для микробов и, следовательно, не может обеспечить стерильность материала. Персонал, доставляющий материал в лабораторию, должен быть предупрежден об этом и должен нести материал больного, не взбалтывая содержимое пробирок или флаконов. Нельзя доставлять в лабораторию материал в антисанитарном состоянии, когда посуда, пробка или бумага загрязнены этим материалом снаружи. Это может служить источником для заражения окружающих. Количество отбираемого материала: Посуда, инструменты и химические реагенты, используемые для сбора материала, их перечень. Подготовка к работе, утилизация. Исследуемый материал должен соответствовать месту локализации инфекционного процесса (мокрота при пневмонии, кровь при сепсисе, испражнения при дизентерии). Для обеспечения тщательного исследования материал должен быть собран в достаточном количестве. Для микробиологических исследований необходима различная стеклянная посуда. Чашки Петри (диаметр 10 см, высота 1,5 см) применяют для выделения чистых культур, количественного учета микроорганизмов, анализа качественного состава микрофлоры на плотных питательных средах и других исследований; стеклянные поплавки – для изучения процессов брожения; пробирки биологические – для хранения чистых культур и проведения микробиологических исследований; пастеровские пипетки с оттянутым капилляром. Кроме специальной посуды широко используют обычную химическую посуду: колбы плоскодонные конические Эрленмейера, круглодонные, мерные, пипетки, градуированные на 1 мл, пипетки Мора, мензурки, мерные цилиндры, бюксы, склянки и т.д. Колбы и пробирки, используемые для приготовления и стерилизации питательных сред и выращивания микроорганизмов, закрывают ватно-марлевыми пробками, которые изготовляют вручную или при помощи специальной машины. Правильно изготовленная пробка для пробирок должна иметь длину 3 – 4 см, умеренно туго входить в пробирку, быть плотной и не менять своей формы при многократном применении. В микробиологической практике применяют петли, иглы, пинцеты, ножницы, пластмассовые и металлические штативы для пробирок, металлические лотки и др. Петли и иглы изготовляют из платиновой, никелевой или хромоникелевой проволоки и закрепляют в металлическом петледержателе. Для лабораторных исследований в микробиологии используются специальные химические реактивы – реагенты. В процессе всестороннего изучения микроорганизмов применяют реагенты для окраски мазков по Граму, различные реактивы для биохимической идентификации бактерий, наборы реагентов. Окрашивание мазков может производиться с помощью широкого спектра красителей: метиленовый синий, основной фуксин Циля, карболовый генциан‒виолет, реагенты для окраски по способу Ожешки, по Нейссеру, по Цилю-Нильсену, по Гинсу. биохимическую идентификацию патогенных и условно‒патогенных микроорганизмов позволяют проводить следующие реагенты: реактив Эрлиха, раствор Люголя, реагенты для определения цитохромоксилазы, лизиндекарбоксилазы, аргининдигидролазы, уреазы, каталазы и другие. 16. Сбор, хранение и транспортировка материала для микробиологических исследований. Правила взятия исследуемого материала: знание оптимальных сроков для взятия материала на исследование; взятие материала с учетом места максимальной локализации возбудителя путем его выделения в окружающую среду; отбор материала для исследования в необходимом и достаточном объеме с обеспечением условий, исключающих контаминацию проб; по возможности взятие материала до применения антибиотиков и других химиотерапевтических препаратов или после отмены антибиотиков через 2 – 3 дня. Материал доставляется в контейнерах, исключая их опрокидывание. При транспортировке не допускаются смачивание ватных пробок и замораживание материала. Материал поставляется в течение 1 – 2 ч после взятия. При невозможности доставки в указанные сроки биоматериал хранят в холодильнике (кроме крови и материала, исследуемого на наличие менингококка). При увеличении времени доставки проб до 48 ч необходимо использовать транспортные среды. Собранный материал должен быть доставлен в лабораторию и подвергнут исследованию в максимально сжатые сроки, поскольку некоторые микробы не выдерживают высушивания, длительного пребывания при измененном температурном режиме (гонококки, менингококки). К тому же если исследуемый материал наряду с патогенными микробами содержит и другую микрофлору, то последняя может оказать антагонистическое действие на возбудителей данного заболевания. Для взятия и транспортировки биологического материала следует использовать одноразовые стерильные тубсеры (пробирки с тампонами) промышленного производства или транспортные системы со средой. Ватные (хлопковые) тампоны, изготовляемые непосредственно в лаборатории из медицинской ваты, могут быть использованы только в крайнем случае, так как медицинская вата может обладать антимикробными свойствами. Предохранение от контаминации исследуемого материала нормальной микрофлорой Для сбора исследуемого материала должны использоваться стерильные посуда, инструменты и должны соблюдаться правила асептики, чтобы предупредить загрязнение исследуемого материала посторонней микрофлорой. Внесение случайной микрофлоры в исследуемый материал может помешать выделению микроба – возбудителя данного заболевания. Во избежание загрязнения материала посторенней микрофлорой тот, кто берет материал, должен вымыть руки. При некоторых видах исследований необходимо руки берущего материал, а также место взятия материала у больного дезинфицировать. При необходимости берущий исследуемый материал должен работать в эластичных перчатках. Пробирки и флаконы должны быть закрыты стерильными пробками, а баночки – крышками или бумажными стерильными колпачками. Следует помнить, что если ватная пробка смочена жидкостью, то она становится проницаемой для микробов и, следовательно, не может обеспечить стерильность материала. Персонал, доставляющий материал в лабораторию, должен быть предупрежден об этом и должен нести материал больного, не взбалтывая содержимое пробирок или флаконов. Нельзя доставлять в лабораторию материал в антисанитарном состоянии, когда посуда, пробка или бумага загрязнены этим материалом снаружи. Это может служить источником для заражения окружающих. Количество отбираемого материала Посуда, инструменты и химические реагенты, используемые для сбора материала, их перечень. Подготовка к работе, утилизация. Исследуемый материал должен соответствовать месту локализации инфекционного процесса (мокрота при пневмонии, кровь при сепсисе, испражнения при дизентерии). Для обеспечения тщательного исследования материал должен быть собран в достаточном количестве. Для микробиологических исследований необходима различная стеклянная посуда. Чашки Петри (диаметр 10 см, высота 1,5 см) применяют для выделения чистых культур, количественного учета микроорганизмов, анализа качественного состава микрофлоры на плотных питательных средах и других исследований; стеклянные поплавки – для изучения процессов брожения; пробирки биологические – для хранения чистых культур и проведения микробиологических исследований; пастеровские пипетки с оттянутым капилляром. Кроме специальной посуды широко используют обычную химическую посуду: колбы плоскодонные конические Эрленмейера, круглодонные, мерные, пипетки, градуированные на 1 мл, пипетки Мора, мензурки, мерные цилиндры, бюксы, склянки и т.д. Колбы и пробирки, используемые для приготовления и стерилизации питательных сред и выращивания микроорганизмов, закрывают ватно-марлевыми пробками, которые изготовляют вручную или при помощи специальной машины. Правильно изготовленная пробка для пробирок должна иметь длину 3 – 4 см, умеренно туго входить в пробирку, быть плотной и не менять своей формы при многократном применении. В микробиологической практике применяют петли, иглы, пинцеты, ножницы, пластмассовые и металлические штативы для пробирок, металлические лотки и др. Петли и иглы изготовляют из платиновой, никелевой или хромоникелевой проволоки и закрепляют в металлическом петледержателе. Для лабораторных исследований в микробиологии используются специальные химические реактивы – реагенты. В процессе всестороннего изучения микроорганизмов применяют реагенты для окраски мазков по Граму, различные реактивы для биохимической идентификации бактерий, наборы реагентов. Окрашивание мазков может производиться с помощью широкого спектра красителей: метиленовый синий, основной фуксин Циля, карболовый генциан‒виолет, реагенты для окраски по способу Ожешки, по Нейссеру, по Цилю-Нильсену, по Гинсу. биохимическую идентификацию патогенных и условно‒патогенных микроорганизмов позволяют проводить следующие реагенты: реактив Эрлиха, раствор Люголя, реагенты для определения цитохромоксилазы, лизиндекарбоксилазы, аргининдигидролазы, уреазы, каталазы и другие. Оформление сопровождающих документов Материал, направляемый в лабораторию, должен иметь сопроводительный бланк со следующими сведениями: -Фамилия, имя, отчество больного. -Номер истории болезни. -Местонахождение больного. -Диагноз заболевания. -Какой материал направляется в лабораторию и откуда он взят. -Точное указание, на какое исследование посылается материал в лабораторию. -Какой день заболевания (от момента появления первых признаков болезни). -Дата взятия материала. -Подпись лица, взявшего от больного исследуемый материал. |