МетодДиспАРК. Южный филиал Крымский агротехнологический университет
 Скачать 307 Kb.
|
ВведениеСовременные кроссы кур Хай-Лайн, Хайсекс белый, Хайсекс коричневый, Шевер коричневый и другие в условиях промышленной технологии способны обеспечить яйценоскость 90–95% и более. При такой высокой яйценоскости обмен веществ, функции отдельных органов и систем находятся на пределе возможного, на грани нормы и патологии. У птиц высокопродуктивных кроссов в особом, напряженном режиме функционируют печень, почки, органы эндокринной системы, яичники. Появляется неустойчивость иммунной системы и естественной резистентности организма. Известно, что многие неинфекционные, инфекционные и паразитарные заболевания птиц сопровождаются сходными клиническими симптомами (отсутствие аппетита, исхудание, вялость, взъерошенность перьев, изменений глаз, гортани, зоба и др.). В этих условиях задача ветеринарных специалистов своевременно обнаружить нарушения обмена веществ, выявить доклинические формы болезней. Успешное решение этих задач возможно при использовании комплекса диагностических методов, включающих клинические, биохимические, зоотехнические и другие. При этом важнейшую роль играет биохимический анализ крови. Нарушения обмена веществ, функций отдельных органов и систем в первую очередь отражаются на составе крови. Современный уровень ветеринарных лабораторий позволяет проводить анализ крови по наиболее информативным диагностическим показателям. Введение в лабораторную практику автоматических анализаторов расширяет перечень исследуемых показателей крови, дает возможность специалистам детальнее и квалифицированнее составлять представление о состоянии здоровья птицы. Предложенная методика диспансеризации кур разработана с учетом достижений отечественной науки и апробирована на крупной птицефабрике. Ее использование позволит ветеринарным специалистам держать под контролем состояние здоровья птиц на птицефабрике, своевременно принимать меры по устранению и недопущению причин возникновения заболеваний, снижения яйценоскости, обеспечивать получение экологически безопасной продукции питания.
Под диспансеризацией понимают комплекс мероприятий, направленных на своевременную диагностику нарушений обмена веществ и функций отдельных органов и систем, выявление и устранение причин заболевания птицы. В основу методологии диспансеризации животных и птицы положены принципы выборочной совокупности и непрерывности. Первый достигается путем обследования контрольных групп птицы; второй – благодаря соблюдению перманентности, то есть проведения периодической диспансеризации. Цель диспансеризации – сохранение здоровья птицы при высокой ее яйценоскости и получения экологически безопасной продукции питания. Задачи диспансеризации:
Составляющие звенья диспансеризации.
При анализе производственных показателей учитывают поголовье птицы, ее кросс, яйценоскость, качество яиц, заболеваемость и отход птицы. Кроме того, уточняют регистрируемые в хозяйстве инфекционные и неинфекционные заболевания. Сравнивают нужные показатели с паспортными данными для определенного кросса. Изучают эпизоотическое состояние птицефабрики, схемы вакцинации птицы, показатели напряженности поствакцинального иммунитета. Совпадение получаемых контролируемых производственных показателей с паспортными, эпизоотическое благополучие птицефабрики свидетельствуют о нормальном производственном функционировании предприятия. Отклонения производственных показателей данного кросса птицы от стандартных, недостаточная яйценоскость, низкое качество яиц, большое количество яиц-выливок, высокий падеж молодняка и взрослой птицы свидетельствуют о неблагополучии птицефабрики или определенных ее цехов. 3. Определение клинического состояния птицы При определении клинического состояния, анализе крови подбирают контрольные группы птицы с учетом возраста и физиологического состояния. Необходимость такового отбора контрольных групп вызвана тем, что клинико-биохимические показатели зависят от физиологического состояния и продуктивности птицы в различном возрасте. При очередной диспансеризации контрольные группы подбирают вновь. По возрасту и физиологическому состоянию у кур-несушек выделяют предкладковый (17–19 недель с продуктивностью 20-33%), пиковый (25-32 недель с продуктивностью 93-96%), фазу вторую продуктивного периода (45-70 недель с продуктивностью 90–78%), фазу третью продуктивного периода (старше 70 недель при продуктивности 77–72%). Клиническое состояние птицы определяют путем проведения клинического (общего) осмотра поголовья птицы в корпусе и клинического обследования контрольных особей. 3.1 Клинический (общий) осмотр птицы. При клиническом осмотре обращают внимание на общее состояние, поведение птицы, ее реакцию на приближение человека, наличие аллопеций, расклева, особей с признаками пареза и паралича конечностей. Здоровая птица активно реагирует на приближение человека, приходит в возбужденное состояние, издает звуки. Больные особи слабо реагируют на приближение человека, могут не подниматься, у них выявляют парезы и параличи конечностей и другие признаки болезней. У взрослой птицы клинические признаки заболеваний могут отсутствовать, но отмечается снижение яйценоскости, значительные ее колебания. При клиническом осмотре делают оценку состояния видимых кожных покровов. У здоровых кур гребень и бородка ярко-красного цвета. Клюв и подклювье благодаря кожному пигменту окрашены в желтоватый цвет, исчезновение которого считается неблагоприятным признаком. Цианоз гребня и сережек является признаком сердечно-сосудистой недостаточности, бледность – симптомом нарушения питания, хронических болезней (туберкулез, лейкоз, гиповитаминозы и др.). Оценивают состояние оперения. У здоровой птицы оперение гладкое, блестящее, перья расположены правильными симметричными рядами по длине тела. Цыплята в постинкубационном периоде покрыты пушком желтоватого цвета. При многих неинфекционных и инфекционных заболеваниях, нарушениях зоогигиенических условий ухода и содержания, недостаточном кормлении отмечается потеря блеска, взъерошенность перьевого покрова, запоздалая или преждевременная линька. На коже возможны признаки расклева. Результаты клинического осмотра птицы дают общее представление о состоянии ее здоровья, они используются при постановке диагноза. 3.2 Клиническое обследование птицы. Клиническое обследование проводят 80–100 особей, размещенных в стандартных клетках, находящихся в равных производственных условиях с остальными. При клиническом обследовании определяют упитанность, температуру тела (по усмотрению ветврача), осматривают носовые отверстия, глаза, наружные слуховые проходы, ротовую полость, гортань, исследуют трахею, зоб, грудную клетку, органы грудобрюшной полости, клоаку, костяк. Упитанность определяют путем взвешивания, учитывают степень развитости грудных мышц. Различают среднюю (хорошую) упитанность, ожирение и истощение. Температуру тела измеряют термометром с делениями до 45ºС. либо электронными термометрами. Нормальная температура тела у кур – 40,5–42,0ºС. Повышение температуры тела характерно для острых инфекционных заболеваний, перегревания, желточного перитонита и др. Понижение температуры тела характерно для заболеваний, сопровождающихся истощением. Осмотром носовых отверстий устанавливают их проходимость для воздуха, наличие истечений, которые характерны для ньюкаслской болезни, инфекционного ларинготрахеита, ринита неинфекционной этиологии. При осмотре глаз оценивают прозрачность роговицы, цвет конъюнктивы. Бледность, синюшность, желтушность, воспаление отечность конъюнктивы, размягчение роговицы, склеры с последующим расплавлением глазного яблока наблюдаются при гепатодистрофии, анемиях различной этиологии, инфекционном конъюнктивите, глазной форме инфекционного ларинготрахеита. При болезни Марека отмечают серый цвет радужной оболочки вследствие ее депигментации. Сухость и помутнение роговицы, слепота характерны для гиповитаминоза А. Обращают внимание на наружные слуховые проходы. Возможны полная или частичная закупорка слуховых проходов, что сопровождается вялостью, исхуданием, снижением яйценоскости. При осмотре ротовой полости обращают внимание на состояние языка, твердого неба и хоан. Возможно обнаружение разроста роговой части языка (так называемый типун), налета, указывающего на поражение желудочно-кишечного тракта, некроза кончика языка – одного из симптомов интоксикации организма (Т-2 токсикоза). Верхнюю гортань осматривают, предварительно выводя ее в ротовую полость (максимально раскрывают клюв, большим пальцем прижимают язык к подклювью). Отечность гортани, кровоизлияния на ее слизистой оболочке, выделение тягучей слизи характерны для ньюкаслской болезни, сильная воспалительная гиперемия, отечность, фибринозные творожистые наложения – для инфекционного ларинготрахеита, сухость гортани, бледность, легко снимающиеся беловатого цвета пленки наблюдают при А-гиповитаминозе. Исследование трахеи проводят прощупыванием трахеальных колец. Воспаление трахеи сопровождается болезненностью, дыханием открытым клювом, вытягиванием шеи. Осматривая и прощупывая зоб, определяют его размер, консистенцию содержимого. При воспалении зоба и других отделов желудочно-кишечного тракта его содержимое неприятного, кислого запаха. «Твердый» зоб наблюдается при редком одноразовом кормлении комбикормом или кормосмесью, недостатке воды. При исследовании грудобрюшной полости возможно установление увеличения объема живота, которое отмечается при асците, желточном перитоните, гепатите, гепатодистрофии, циррозе и амилоидозе печени, лейкозе. Пальпируют мышечный желудок, расположенный в нижней области живота слева. Отмечают дряблость мышечного желудка, изменение формы, размеров (уменьшение, увеличение). Печень не доступна для пальпации. Клоаку исследуют осмотром и ректально (при подозрении на опухоль, кисты и задержку яйца), определяют цвет слизистой, ее целостность, повреждения. Часто обнаруживают расклев клоаки. Состояние костяка оценивают путем пальпации киля, осмотра и пальпации конечностей (ног, крыльев). Слабость костяка, искривления конечностей, утолщения суставов, деформация грудной клетки и киля свидетельствуют о развитии рахита у цыплят, кур-молодок или остеодистрофии у взрослой птицы. Результаты клинического обследования записывают в журнале диспансеризации кур.
Важнейшим звеном диспансеризации кур является лабораторный анализ крови, особенно определение наиболее информативных диагностических биохимических показателей. Для оценки состояния обмена веществ, иммунного статуса и естественной резистентности организма, функции отдельных органов проводят анализ 10–15образцов крови. Каждый образец крови берут в один или два одноразовых шприца из подкрыльцевой (плечевой) вены от двух-трех взрослых кур или четырех-пяти цыплят контрольных клеток. Перед взятием образца крови для подсчета форменых элементов, определения гемоглобина, фагоцитарной активности нейтрофилов иглу шприца увлажняют 4%-ым раствором гепарина. В шприц для получения сыворотки крови антикоагулянт не вносят. Взятую кровь исследуют по общепринятым, унифицированным методам [1]. 4.1 Общий клинический анализ крови. Общий клинический анализ крови включает подсчет количества эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, определение содержания гемоглобина, гематокритной величины и др. Так как у птиц эритроциты и тромбоциты содержат ядра, поэтому раздельный способ подсчета эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов не приемлем. Вначале определяют общее количество форменных элементов крови в 1 мкл крови, затем в окрашенном мазке подсчитывают 1000 клеток и вычисляют процентное соотношение эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов в общем объеме крови. Зная процентное соотношение форменных элементов крови, вычисляют их абсолютное содержание в 1 мкл или 1 л. В ветеринарной практике к подсчету форменных элементов крови у птиц прибегают редко. Гемоглобин крови определяют гемиглобинцианидным методом. Синтез этого пигмента происходит в печени путем образования хелатного комплекса протопорфирина с двухвалентным железом. Содержание гемоглобина в крови взрослых кур составляет 80–120 г/л. Снижение количества гемоглобина отмечают при дефицитных анемиях вследствие недостатка железа, меди, кобальта, витамина В12, фолиевой кислоты, белков, при хронических интоксикациях, гепатите, гепатодистрофии, расклеве, внутренних кровотечениях. Повышение уровня гемоглобина отмечается при сгущении крови (перегревание, диарея, недостаток питьевой воды). Гематокрит – соотношение объема плазмы и форменных элементов крови, выраженное в процентах по объему (или л/л). Нормативы гематокрита у взрослых кур составляют – 39–43%. Уменьшение гематокритной величины отмечают при анемиях и кровопотерях (расклев), увеличение – при сгущении крови. Для объективной оценки лабораторных показателей крови определение гематокрита обязательно. Показатели фагоцитоза лейкоцитов крови кур. Для оценки естественной резистентности организма кур определяют в крови фагоцитарную активность (ФА) и фагоцитарный индекс (ФИ) фагоцитов (нейтрофилов, эозинофилов, моноцитов). Фагоцитарная активность (ФА) – процентное отношение активных клеток к общему числу сосчитанных лейкоцитов. Фагоцитарный индекс (ФИ) показатель, отражающий интенсивность фагоцитов, то есть среднее число микроорганизмов фагоцитированных одной активной клеткой. Фагоцитарную активность выражают в процентах, фагоцитарный индекс – количеством микробных тел (мт). Фагоцитарную активность и фагоцитарный индекс определяют по методике профессора В.Е. Чумаченко [3]. По данным В.В. Мельник (ЮФ «КАТУ» НАУ) у клинически здоровых кур-несушек высокопродуктивных кроссов фагоцитарная активность нейтрофилов крови составляет 20–22%, фагоцитарный индекс – 10–12 микр. тел.
Биохимические исследования проводят преимущественно в сыворотке крови. Для получения сыворотки пробирки с кровью (одноразовые шприцы) помещают в термостат на 1–2 ч при температуре 37ºС. Отстоявшуюся сыворотку переносят в центрифужные пробирки, нумеруют и центрифугируют в течение 10 мин при 3000 об./мин. Сыворотка крови должна быть без гемолиза и не обогащенная фосфолипидами. Гемолизированная сыворотка крови не пригодна для биохимических исследований, так же как и содержащая высокую концентрацию фосфолипидов. В сыворотке крови определяют общий белок рефрактометром или биуретовым методом фирменным стандартным набором реактивов; фракции белков – турбидиметрическим (нефелометрическим) методом; мочевую кислоту – по Фолину фирменным набором реактивов; общий билирубин, общий холестерин, общие фосфолипиды – наборами реактивов, общий кальций – с комплексоном Арсеназо ІІІ, неорганический фосфор – с аскорбиновой кислотой, белково-осадочную пробу – с 120 мг% раствором цинка сульфата по И.П. Кондрахину, резервную щелочность с помощью сдвоенных колб – по И.П. Кондрахину [1,4]. Перечень биохимических показателей может варьировать в зависимости от целей исследования и условий лаборатории. Полученные результаты исследования крови сравнивают с нормативными (Приложение 1), на основании этого делают соответствующее заключение о состоянии обмена веществ и функций отдельных органов. Белки крови выполняют многочисленные функции: поддержание постоянства онкотического давления, рН крови, уровень катионов крови, играют важную роль в формировании иммунитета. Альбумины образуются в печеночных клетках, глобулины – в клетках ретикулоэндотелиальной системы костного мозга и ретикулоэндотелиальных (купферовских или звездчатых) клетках печени. Поэтому содержание сывороточных белков во многом зависит от состояния печени. При болезнях печени снижается уровень альбуминов, увеличивается содержание глобулинов (за исключением цирроза печени), нарастает диспротеинемия. Эти изменения положены в основу белково-осадочных проб. Содержание общего белка сыворотки крови меняется с возрастом. У 50–70 суточных цыплят оно составляет 41–44 г/л, к началу яйценоскости (100–150 суток) достигает 50–55 г/л, у взрослых кур в фазу максимальной яйценоскости уровень общего белка сыворотки крови составляет 43–59 г/л. Содержание общего белка сыворотки крови, определенное рефрактометром, примерно на 15% выше, чем при определении биуретовым методом. Снижение общего белка сыворотки крови (гипопротеинемия) отмечается при длительном недокорме птицы, хронических расстройствах желудочно-кишечного тракта, циррозе печени, туберкулезе, возникновении искусственной линьки. Повышение уровня белка в сыворотке крови (гиперпротеинемия) бывает при белковом перекорме, токсикозах и болезнях, сопровождающихся дистрофией или воспалением печени. Повышение общего белка сыворотки крови в этих случаях бывает за счет глобулиновых фракций при одновременном снижении альбумина. Снижение содержания альбуминов наблюдается при уменьшении его синтеза, обусловленном поражением печени. Увеличение содержания альбуминов встречается очень редко и чаще связано с дегидратацией организма, недостатком поения. Уровень гамма-глобулинов (иммунных белков) повышается при инфекционном воспалительном процессе, а также за счет патологических белков – парапротеинов, относящихся к иммуноглобулинам. Увеличение содержания γ-глобулинов, умеренное повышение уровня β-глобулинов при заметном снижении альбуминов присуще гепатиту, токсической гепатодистрофии печени, злокачественным новообразованиям, лейкопении. Снижение γ-глобулинов отмечается при белковом недокорме, гипофункции иммунной системы, истощении, воздействии на организм ионизирующего излучения. При соблюдении схемы вакцинации кур существенных колебаний в содержании γ-глобулинов в крови не наблюдается. Белково-осадочная (печеночная) проба. Сыворотка крови обладает определенной коллоидной устойчивостью, степень которой зависит от содержания альбуминов и глобулинов. Альбумины обладают более высокой коллоидной устойчивостью, чем глобулины. При поражении печени происходит снижение содержания в сыворотке крови альбуминов и повышение глобулинов, падает коллоидная устойчивость. Печеночную пробу проводят в сыворотке крови кур яйценоского возраста, то есть со 170 дней и старше. Нормальные величины – 1,6–2,6 мл. Показатель ниже 1,6 мл свидетельствует о нарушениях белковосинтезирующей функции печени. Чем меньше показатель белково-осадочной пробы, тем тяжелее патологический процесс в печени (приложение 7). Билирубин сыворотки крови. Билирубин – желчный пигмент, который образуется в клетках печени и селезенке при распаде гемоглобина, миоглобина, цитохромов. Свободный билирубин обезвреживается в печени путем соединения с глюкуроновой кислотой. В сыворотке крови птиц содержится связанный и свободный билирубин. Повышение содержания билирубина отмечается при гепатите, циррозе печени, острой токсической гепатодистрофии, опухолях печени. Мочевая кислота сыворотки крови. Мочевая кислота у птиц является конечным продуктом обмена пуриновых нуклеиновых оснований. Мочевая кислота плохо растворяется в воде, ее соли – ураты – откладываются на висцеральных оболочках брюшины, внутренних органов, в суставах и мочевыводящих путях, вызывая мочекислый диатез, а при отложениях в суставах – подагру. Мочевую кислоту в сыворотке крови определяют с помощью заводского (фирменного) набора реактивов. Уровень мочевой кислоты в сыворотке крови не имеет существенной возрастной динамики. В норме мочевой кислоты у кур и цыплят содержится 4–8 мг/100 мл (0,213–0,47 ммоль/л). Повышение ее уровня в сыворотке крови отмечается при избыточном протеиновом и аминокислотном кормлении, избытке нитратов, недостатке витамина А (Кондрахин И.П., Семенов А.В. и др.). Общий кальций сыворотки крови. В крови кальций циркулирует в трех формах: 45–50% находятся в ионизированном состоянии, 40–45% – связано с белками, остальное количество образует комплексные соединения с различными низкомолекулярными анионами. Физиологически активным является именно ионизированный кальций. В лабораториях ветеринарной медицины определяют уровень общего кальция в сыворотке крови. Преимущественно кальций – внеклеточный элемент. Около 99% его находится в костной ткани, остальное количество – во внеклеточной жидкости. Кальций – один из важнейших компонентов системы, регулирующей проницаемость мембран. Его ионы способствуют взаимодействию актина и миозина, то есть сокращению мышечных волокон. Всасывание, транспортировка, распределение в тканях и выделение кальция протекает с участием активных форм витамина D и паратгормона. Содержание общего кальция в сыворотке крови имеет четкую возрастную динамику. Стабильное его содержание (9–12 мг/100 мл, или 2,25-3,0 ммоль/л) наблюдается у цыплят и кур-несушек до начала яйцекладки. С началом яйцекладки уровень общего кальция возрастает, достигая к 250–300 дневному возрасту 24–27 мг/100 мл (6,00-6,75 ммоль/л), затем постепенно снижается до 18–20 мг/100 мл (4,5-5,0 ммоль/л). Снижение содержания кальция в сыворотке крови отмечается при недостаточном длительном поступлении его кормом, плохом усвоении вследствие дефицита витамина D и паратгормона, которые обеспечивают его всасывание в кишечнике и препятствуют выделению с мочой. Причиной гипокальциемии может быть гипофункция околощитовидных желез. Так как кальций участвует в нервно-мышечном возбуждении, то при его резком снижении появляются судороги и парезы мышц. Повышение содержания кальция в крови может быть при передозировке витамина D, гиперфункции паращитовидных желез. Неорганический фосфор. Фосфор – один из основных структурных элементов организма. Все виды обмена в организме связаны с превращением фосфорной кислоты. В крови фосфор присутствует в неорганической и органической формах. Органический фосфор связан с белками и липидами. Всего в организме содержится около 10 фракций фосфорных соединений. В клинической практике диагностическое значение имеет неорганический фосфор. У кур уровень неорганического фосфора не имеет четкой возрастной динамики и составляет от 6,8–8,4 мг/100 мл (2,19-2,71 ммоль/л) у цыплят и 6–7 мг/100 мл (1,94-2,26 ммоль/л) у кур-несушек. Снижение уровня фосфора в крови отмечается при длительном недостатке его в рационе, плохом усвоении вследствие расстройства желудочно-кишечного тракта (хронический энтерит, колибактериоз и др.), дефиците витамина D, гиперфункции паращитовидных желез, гипофункции щитовидной железы. Отмечается оно при рахите цыплят. Повышение уровня неорганического фосфора в крови может быть вызвано уменьшением секреции паратгормона, когда тормозится реабсорбция фосфора в почках. Гиперфосфатемия может быть вызвана передозировкой витамина D. Резервная щелочность крови. Под резервной щелочностью понимают запас бикарбонатов крови. Это один из доступных для исследования показателей буферной системы крови, характеризующих состояние кислотно-щелочного равновесия в организме. Величину его выражают в объемных процентах СО2 (об.% СО2) или ммоль/л. Этот показатель не имеет существенной возрастной динамики: у здоровой птицы составляет 48–55 об.% СО2 или 21,4-24,5 ммоль/л бикарбонатов (NaHCO3). Значительное снижение резервной щелочности крови свидетельствует о развитии ацидотического состояния в организме птицы. Его наблюдают при избытке в рационах протеина, развитии мочекислого диатеза, диарейном синдроме различной этиологии. Повышение резервной щелочности отмечается крайне редко и может быть вызвано избытком назначаемого с лечебно-профилактической целью натрия гидрокарбоната. Витамин А и каротиноиды. У цыплят и кур-несушек часто встречается гиповитаминоз А. Для его диагностики используют результаты клинического обследования, определения в желтке яиц, печени каротиноидов и витамина А, учитывают патологоанатомические изменения органов. У цыплят при А-гиповитаминозе наблюдают сонливость, задержку роста, взъерошенность перьев, появление творожистых скоплений в углах глаз, опухание век. У взрослых кур наблюдается исхудание, выпадение перьев, бледность гребешка и сережек, в ротовой полости появление бляшек бело-серого или серо-желтого цвета, сухость слизистой глаз, помутнение, изъязвление роговицы (ксерофтальмия). При вскрытии трупов находят дистрофические изменения слизистых оболочек, полость подглазничного синуса и носовые ходы заполнены экссудатом, у входа в гортань – мелкие беловатые пустулы, в трахее и бронхах – наличие фибрина. Признаки конъюнктивита проявляются поражением эпителия слизистых оболочек глаз. У цыплят и взрослых кур выявляют признаки ксерофтальмии. При гиповитаминозе А количество витамина А в 1 г печени суточных цыплят ниже 30-40 мкг, 10-ти суточных – 40-60, 30-ти суточных – 100-150, 60-120 суточных – менее 200-300, у взрослых кур – менее 300-350 мкг/г (11). Для оценки качества инкубационных яиц общепринято исследовать желток на содержание витамина А и суммы каротиноидов. В 1 г желтка полноценных куриных яиц должно быть витамина А – 8-10 мкг, суммы каротиноидов – 15-20 мкг. Содержание витамина А и каротиноидов ниже приведенных данных свидетельствует о гиповитаминозе. Холестерол. Холестерин в сыворотке крови находится в двух формах: свободной (1/3) и эфиросвязанной с различными жирными кислотами (2/3). С возрастом количество холестерол возрастает. У цыплят его уровень в сыворотке крови составляет 70-130 мг/100 мл (1,82-3,38 ммоль/л), у кур-несушек – 80-200 мг/100 мл (2,08-5,20 ммоль/л). Гиперхолестеролемия отмечается при перекорме птицы, избытке в рационе жиров, в начале голодания. Значительное снижение содержания холестерола указывает на острую желтую атрофию печени, или острое отравление. Фосфолипиды сыворотки крови. Содержание фосфолипидов в сыворотке крови определяют по количеству неорганического фосфора, выделенного после минерализации липидов. Фосфолипиды стабильны в сыворотке крови или в плазме крови в течение суток при комнатной температуре или одной недели при хранении в холодильнике. Фосфолипиды поступают в кровь главным образом из печени, поэтому их уровень тесно связан функциональным состоянием этого органа. Концентрация общих фосфолипидов в норме у кур зависит от возраста и интенсивности яйцекладки. По нашим данным у цыплят 80-90-дневного возраста содержание фосфолипидов в сыворотке крови составляет 270-330 мг/100 мл (3,49-4,26 ммоль/л), у кур в период наивысшей яйценоскости – 560-1200 мг/100 мл (7,2-15,50 ммоль/л) и выше. Повышение концентрации фосфолипидов в сыворотке крови отмечается при жировой гепатодистрофии и гломерулонефрите. Снижение уровня фосфолипидов – частый признак острого и хронического гепатита различной этиологии, оно отмечается также при неполноценном кормлении, особенно белково-витаминной недостаточности, истощении, анемиях.
Важнейшим звеном диспансеризации является анализ кормления и содержания птицы. Постоянный контроль за кормлением и содержанием птицы на птицефабрике осуществляет главный зоотехник и главный врач ветеринарной медицины. На птицефабриках преимущественно используют сухой тип кормления. Нормирование питательных веществ поводится в расчете на 100 г корма. Количество потребляемого корма за сутки рассчитывают на одну голову птицы. Рацион для кур высокопродуктивных кроссов балансируют по более чем 40 показателям. Основными из них являются: обменная энергия, сырой протеи, незаменимые аминокислоты (лизин, метионин+цистин, триптофан, треонин), жир, сырая клетчатка, кальций, фосфор, жирорастворимые и водорастворимые витамины, важнейшие микроэлементы. Обращают особое внимание на структуру комбикормов, руководствуясь общепринятыми рекомендациями. Рекомендуемая структура комбикорма для кур яичных кроссов (%): зерновые злаковые – 60-70, отруби пшеничные – 0-7, жмыхи и шроты – 18-20, корма животного происхождения – 2-5, дрожжи кормовые – 3-6, мука травяная – 3-5, минеральные корма – 5-8, жир кормовой – 3-4, премикс – 1% (приложение 6). Балансирование комбикормов по кальцию, фосфору, натрию в основном производится за счет включения в их состав минеральных добавок: ракушки, известняка кормовых (4-6%), мела (0-4%), муки костной (0-3%), фосфата обесфторенного или монокальцийфосфата, натуфоса (0-3%), поваренной соли (до 0,5%). Полнокомпонентный комбикорм с внесенными добавками полностью удовлетворяет потребность птицы по основным элементам питания, минеральным веществам и витаминам. Однако структура его может не соответствовать физиологическим особенностям птицы, ее возрасту и продуктивности. Несоблюдение физиологически обоснованной структуры комбикорма часто является одной из основных причин нарушения обмена веществ, болезней отдельных органов и систем. Например, при кормлении кур-несушек кросса Хай-Лайн птицефабрики АООО «Южная-Холдинг» полнокомпонентным рационом, в составе которого пшеница составляла 59,3% и отсутствовали кукуруза, как наиболее ценный корм, отмечали гиперпротеинемию, диспротеинемию и гепатодистрофию. При анализе рационов кур учитывают степень обеспеченности потребности энергией, питательными веществами, макро- и микроэлементами, витаминами. При этом пользуются известными отечественными нормами кормления или программами фирм-поставщиков кур определенных кроссов. В соответствии с существующими отечественных и зарубежными нормами для кур высокопродуктивных кроссов в возрасте 32-48 недель в 100 г корма должно быть: обменной энергии – 260-291 ккал, сырого протеина – 16-17,2 г, клетчатки – 6-2,4 г, кальция – 3,1-4,5 г, фосфора общего – 0,7-0,64г, фосфора доступного – 0,45-0,44 г, натрия – 0,3-1,8 г (приложение 2). Из приведенных данных следует, что рационы кур кроссов Хай-Лайн и Декалб белый более насыщены энергией, кальцием. Но меньше содержат натрия, чем рационы, рекомендуемые отечественными авторами. Недостаток в рационах энергии приводит к снижению усвояемости питательных веществ корма, яйценоскости, а также может служить одной из причин развития мочекислого диатеза. В зависимости от яйценоскости, температуры птичника суточное потребление корма в расчете на одну курицу-несушку 115-120 г. Нормы ввода в комбикорма аминокислот приведены в приложении 3. В соответствии с рекомендациями отечественных авторов в комбикормах для кур-несушек предусмотрены введение 13 аминокислот, программой для кур кросса Хай-Лайн – 4, для кросса Декалб белый – 5 аминокислот. Разница в нормировании аминокислот в рекомендациях отечественных авторов в программах иностранных фирм незначительная. Однако в программах фирм-поставщиков кур указанных выше кроссов не предусмотрены нормирование аргинина, гистидина, лейцина, изолейцина, фенилаланина, фенилаланина и тирозина, валина, глицина, как это имеет место в рекомендациях отечественных кроссов [8,9]. При избыточном потреблении курами-несушками сырого протеина, аргинина, цистина, триптофана, лизина, метионина, гистидина возникает мочекислый диатез [5,6]. Нормы ввода витаминов в комбикорма кур-несушек приведены в приложении 4. Программой для кур-несушек кросса Хай-Лайн не предусмотрено введение в комбикорма витаминов В1, В6, биотина и аскорбиновой кислот. В сравнении с отечественными рекомендациями уменьшено количество вводимых витаминов К и В3, но увеличено содержание витамина В12. повышенное введение витамина В12 обусловлено очевидно тем, что добавка в комбикорма кобальта не предусмотрена. Так как в комбикормах для кур кросса Хай-Лайн не предусмотрено введение тиамина, то у птиц можно ожидать нервные расстройства, а отсутствие витамина В6 будет приводить к плохому усвоению азота корма и появлению дерматита. Недостаток в организме аскорбиновой кислоты ведет к снижению естественной резистентности организма. Норма ввода в комбикорма кур-несушек микроэлементов приведены в приложении 5. В программах для кур кроссов Хай-Лайн и Декалб белый в сравнении с рекомендациями отечественных авторов предусмотрены в большем количестве введение железа, йода, меди, но не предусмотрено введение кобальта, что может приводить к снижению усвоения протеина корма, развитию анемии. При анализе кормления птицы большое внимание уделяется качеству кормов, наличию в них микотоксинов, пестицидов. В комбикорме для птицы не исключено наличие микотоксинов грибов из родов Аспергиллюс, Фузариум, Пенициллиум и др. Определить наличие и концентрацию микотоксинов в кормах можно только в специализированных лабораториях. Воздействие на птицу микотоксинов проявляется расстройством желудочно-кишечного тракта, поражением печени, почек, снижением яйценоскости и др. Что касается содержания птицы, то при диспансеризации контролируемыми показателями и объектами являются: освещенность, температурный режим, вентиляция, содержание в воздухе вредных газов и др. Отклонения от нормы показателей микроклимата в птичниках, плотности посадки птицы сопровождаются снижением яйценоскости, расклевом и другой патологией. Освещенность. Яйценоскость и качество яйца во многом зависит от длительности светового дня и интенсивности освещения. В соответствии с рекомендациями по содержанию финальных гибридов кур кроссов Хай-Лайн, Декалб белый в первые 2-7 дней жизни цыплят продолжительность освещения 20-22 ч в сутки при интенсивности 20-30 люкс. На второй недели жизни световой день уменьшается до 20 часов при интенсивности освещения 5-10 люкс. В последующие недели продолжительность освещения снижают до 8-9 часов к 7-9 недельному возрасту при интенсивности освещения 5-10 люкс. В возрасте 16-17 недель при достижении птицей массы тела 1200-1270г начинают световую стимуляцию: увеличивают продолжительность освещения еженедельно на 15-30 мин до достижения 15-16 ч в сутки, при интенсивности освещения 10 люкс. Световой стимуляцией в комплексе мер достигается максимальная яйценоскость. При укорочении светового дня или недостаточной освещенности снижается аппетит, тормозятся жизненные функции отдельных органов и систем, уменьшается яйценоскость. При повышенной освещенности отмечается повышенная возбудимость, беспокойство, агрессивность, возможный расклев. Температурный режим. При клеточном содержании температура воздуха в птичниках для взрослых кур-несушек поддерживается 22-27°С. Температура воздуха 22°С предусмотрена для кур возрастом 18-28 недель, а 27°С – для кур возрастом 49-64 недель. Температура воздуха выше предельных вершин может приводить к перегреванию птицы, неполному поеданию корма, вялости, сонливости и другим негативным явлениям. При низкой температуре в птичниках отмечается неадекватная яйценоскость фактическому потреблению корма. Вентиляция. При оценке содержания птицы важное значение придают вентиляции. Подача вентиляторами воздуха в птичниках зависит от количества поголовья птицы и температуры окружающей среды. Для кросса Хай-Лайн W98 при температуре окружающей среды 20°С и влажности 40-60% мощность вентиляторов должна обеспечивать 8-10 м3/ч движения воздуха. При температуре окружающей среды 35°С – 12-14 м3/ч, при температуре окружающей среды 10°С – 5-6 м3/ч, а при температуре менее 10°С – 3-4 м3/ч. Минимальное вентилирование – 0,9 м3/ч. Вентиляция работает в автоматическом режиме, то есть включается и выключается в зависимости от температуры воздуха в птичнике. При недостатке вентиляции происходит накопление аммиака, сероводорода, углекислого газа, что приводит к снижению аппетита, ухудшению качества скорлупы яиц, появлению респираторных заболеваний. Допустимая концентрация в воздухе аммиака – не более 15 мг/м3, сероводорода – 5 мг/м3, углекислого газа – 0,25%.
Вскрытие трупов проводят, придерживаясь общепринятой методики. Трупу придают спинное положение, скальпелем или ножницами разрезают кожу и мышцы с обеих сторон паховой области, отводят в сторону конечности до горизонтального положения. Затем разрезают кожу по срединной линии тела от клюва до клоаки. Освобождают от кожи поверхность тела и конечности. Вскрывают грудобрюшную полость, извлекают и исследуют расположенные в ней органы. Воздухоносные мешки. Осматривают один непарный и четыре парных воздухоносных мешка. В норме они заполнены воздухом, стенки эластичны, и прозрачны. При микоплазмозе, инфекционном бронхите, респираторной форме ньюкаслской болезни, гриппе птиц, аспергиллезе отмечаются воспаление воздухоносных мешков, отложения фибрина в них. Осматривают серозные покровы, обращают внимание на возможные сероватые наложения, свойственные мочекислому диатезу. Сердце: вскрывая перикард, устанавливают возможность его поражения при пастереллезе и стрептококкозе. Определяют состояние эпикарда и миокарда. Фибринозные наложения на эндокарде встречаются при сальмонеллезе, колибактериозе. Печень: оценивают размеры органа, его цвет, консистенцию, состояние капсулы, устанавливают возможную гепатодистрофию, гепатит, цирроз печени. Увеличение печени отмечается при стрептококкозе, инфекционном бронхите, лейкозе (увеличение в 2-4 раза, красно-коричневый цвет с множественными точечными очагами, на разрезе саловидная поверхность), новообразования при болезни Марека, туберкулезе (желтовато-белые казеозные узелки), кампилобактериозе (просовидные образования серо-белого цвета). Узелковые поражения, некротические очажки, фибринозные наложения отмечаются при туберкулезе, сальмонеллезе, колибактериозе. Желтоватое окрашивание печени, наличие подкапсулярных кровоизлияний с очагами некрозов – признак пастереллеза. Селезенка: расположена в углу, образованном железистым и мускульным желудком. В норме она округлой или овальной формы, красно-бурого цвета. Увеличение селезенки отмечают при лейкозе (в 2–4 раза), туберкулезе, стрептококкозе. При кампилобактериозе находят участки некроза при незначительном увеличении органа. Наличие очажков некроза, новообразований характерно для колибактериоза, лейкоза, саркомы. Желудок. Разрез делают ножницами по выпуклости мускульного желудка до места выхода двенадцатиперстной кишки, удаляют роговую кутикулу и обнажают слизистую оболочку. Выявление кровоизлияний на слизистой оболочке на границе мускульного и железистого желудка является характерным признаком ньюкаслской болезни и инфекционной бурсальной болезни (болезни Гамборо). При болезни Марека обнаруживают утолщения стенки железистого желудка и образование язв на его слизистой. Кишечник у птиц представлен тонкой кишкой, двумя отростками слепой кишки и небольшой прямой кишкой. Для ньюкаслской болезни характерны обширные кровоизлияния на слизистой оболочке прямой кишки, некротическое воспаление слепых кишок; для гриппа птиц – кровоизлияния и катарально–геморрагическое воспаление на слизистой оболочке всего кишечника; для туберкулеза – множественные туберкулы в толще слизистой оболочки; для колибактериоза – воспаление слизистой оболочки двенадцатиперстной и слепых кишок; для грануломатоза – новообразования в слепых кишках; для вибриоза – геморрагическое язвенно-некротическое поражение в области бифуркации слепых кишок; при кандидамикозе – слизистая оболочка содержит кашицеобразную массу сероватого или красноватого цвета; при кокцидиозе – воспаление слизистой с кровоизлияниями, при пуллорозе слепые отростки переполнены творожистой массой с примесью крови. Поджелудочная железа расположена в изгибе двенадцатиперстной кишки. Ее исследуют при осмотре этой кишки. Воспаление поджелудочной железы преимущественно встречаются при стрептококкозе и гриппе птиц. Почки расположены в углублении пояснично-крестцовой кости, имеют три доли, цвет темно-коричневый. Отмечают увеличение почек, бледно пепельный вид (лейкоз), наличие опухолей (болезнь Марека), увеличение почек, светло-серый или темно-коричневый цвет (болезнь Гамборо); отложения мочекислых солей – мочекислый диатез (подагра). Яичник: у птиц имеется только левый яичник, расположенный впереди левой почки и прилегает к надпочечнику. Возможно обнаружение новообразований, дистрофии фолликулов, кровоизлияний, атрофии яичника (синдром снижения яйценоскости), дефектные фолликулы (инфекционный бронхит взрослых кур). Семенники у петухов парные, бобовидной формы, расположены симметрично по обе стороны от средней линии тела, вблизи переднего края почек. Возможно установление воспаления семенников. Надпочечники расположены у переднего края почек, они желто-коричневого цвета имеют форму трехсторонней пирамиды. При поражении надпочечников отмечаются изменения цвета, величины, кровоизлияния и участки некроза. Яйцевод: в просвете яйцевода возможно наличие гельминтов, несформированного яйца, воспаление стенки. Клоакальная сумка – лимфоидный орган грушевидной формы, находится дорсально от клоаки. У кур 4–5 месячного возраста она достигает размера 2,51,5 см. С возрастом этот орган уменьшается, становится величиной с горошину и исчезает вовсе. При инфекционной бурсальной болезни (болезни Гамборо) в клоакальной сумке отмечаются кровоизлияния, фибринозные сгустки, некрозы. Щитовидная и паращитовидная железы. Щитовидная железа кур представлена двумя округлыми или овальными долями расположенными по бокам от трахеи в области певчей гортани. Паращитовидная железа – маленькие шаровидной формы, серовато-красного цвета образования, расположенные по каудальному краю долей щитовидной железы. Зобная железа или тимус представлена в виде небольших парных образований (желез) величиной с пшеничное зерно светло-вишневого цвета. У цыплят 6 пар таких желез, у взрослых кур их меньше. Эти железы в форме четкообразных тяжей находятся справа и слева по ходу пищевода и трахеи. При патологии отмечают атрофию желез, не соответствующую возрасту птицы, или, наоборот, их увеличение и кровоизлияния. Изменения щитовидной, паращитовидной и зобной желез изучены недостаточно. Ротовая полость, пищевод и зоб: вскрывают ножницами одним разрезом, начиная с угла рта. Обращают внимание на наличие каких-либо наложений, кровоизлияний и узелков на слизистой оболочке. Пальпацией зоба определяют степень его наполнения. При исследовании носовой полости гортани, трахеи исключают: инфекционный ларинготрахеит (в просвете носовых ходов, синусов, трахеи – скопление слизистого секрета, в гортани и трахее казеозные пробки), дифтеритическую форму оспы (крупозное, дифтеритическое воспаление слизистой оболочки носа, гортани, трахеи), инфекционный бронхит (ринит, гиперемия слизистых оболочек носа, подглазничных синусов и воздухоносных мешков), респираторный микоплазмоз (воспаление слизистых верхних дыхательных путей, поражение воздухоносных мешков), инфекционный насморк, респираторную форму ньюкаслской болезни, грипп птиц (отложение фибрина в воздухоносных мешках), стафиллококкоз (слизистая гортани и трахеи отечна, с кровоизлияниями), аспергиллез и др. Легкие: небольшие по объему, ярко красного цвета, расположены от первого ребра до почки в углублении между позвоночником и позвоночными отростками ребер. Вскрывают и осматривают главный бронх, который проходит через все легкие. Отмечают уплотнения легкого, воспаление, наличия некротических фолликулов (респираторный микоплазмоз, гемофиллез, аспергиллез). При подозрении на ньюкаслскую болезнь, грипп птиц вскрывают и осматривают головной мозг, устанавливая кровоизлияния, нарушение рисунка. После извлечения и осмотра головного мозга вскрывают и исследуют носовую и придаточные пазухи. Подглазничные впадины поперечным разрезом в области внутреннего угла глаза, надавливают пальцами верхней половине клюва, осматривают возможные выделения из носовой полости. Результаты вскрытия трупов птицы записывают в специальный журнал. Во всех случаях подозрения на ньюкаслскую болезнь, грипп птиц, инфекционный ларинготрахеит, инфекционный бронхит и другие инфекционные болезни в лабораторию посылают свежие трупы или соответствующие органы. При подозрении на отравление в лабораторию отправляют корма и трупы целиком.
7.1 Оценка клинического состояния птицы Оценку клинического состояния птицы на конкретном объекте делают по результатам анализа данных общего осмотра и результатов клинического обследования, учитывают поведение птицы, состояние оперения, слизистых оболочек, упитанность и другие признаки. При достаточности характерных клинических признаков делают заключение о наличии нозологической болезни или сочетания заболеваний (полиморбидности) с выделением преобладающей и сопутствующей патологии. 7.2. Оценка состояния обмена веществ и функций органов По результатам исследования крови делают оценку состояния отдельных видов обмена веществ и функций важнейших органов. О состоянии белкового и нуклеинового обмена судят по содержанию в сыворотке крови общего белка, белковых фракций, мочевой кислоты. Функцию печени характеризуют показатели общего белка и альбумина, белково-осадочной пробы, билирубина. О состоянии фосфорно-кальциевого обмена делают заключение по результатам исследования в сыворотке крови общего кальция и неорганического фосфора. Если предоставляется возможность, то проводят определение ионизированного кальция и других его форм. Состояние жирового обмена оценивают по содержанию в сыворотке крови холестерола и фосфолипидов. Заключение о состоянии кислотно-щелочного равновесии в организме делают на основании результатов определения резервной щелочности крови в определенный период исследования. Результаты исследований крови в сочетании с данными общего осмотра, клинического обследования птицы, результатов вскрытия трупов дают основания для постановки диагноза на неинфекционные болезни птиц. 7.3 Оценка результатов вскрытия трупов птицы Результаты вскрытия трупов птицы дают основание опытному врачу ветеринарной медицины заподозрить инфекционное заболевание или поставить патолого-морфологический диагноз неинфекционной болезни. Результаты патологоанатомического вскрытия используют для подтверждения поставленного диагноза на основании общего осмотра, клинического обследования и исследования крови. На птицефабриках вскрытие трупов птицы проводят ежедневно в целях раннего обнаружения бактериальных, вирусных, инвазионных, микоплазменных и иных болезней, а также диагностики отравлений. 7.4 Оценка полноценности кормления, условий содержания птицы. Полноценность кормления оценивают по результатам зоотехнического анализа рационов, условий содержания – по соблюдению параметров микроклимата в птичниках. При оценке кормления учитывают: количество потребленного корма одной курицей в различные продуктивные периоды, структуру комбикорма (набор компонентов), содержание энергии и питательных веществ, в том числе и аминокислот в 100 г корма, количество вводимых в используемых комбикорма микроэлементов и витаминов. Анализируемые показатели сравнивают с нормами программ фирм-поставщиков птицы определенных кроссов, а также с отечественными регламентами. Заключение о содержании птицы делают по режиму освещенности, температуре в птичнике, работе вентиляции, концентрации в воздухе углекислого газа, аммиака, сероводорода. Оценку качества кормов делают по результатам органолептики, лабораторных микотоксикологических и других исследований. Учитывают клиническое состояние птицы, возможное наличие массовых желудочно-кишечных расстройств. 7.5 Заключения и предложения производству. После обобщения и осмысления результатов диспансеризации: оценки клинического статуса птицы, состояния обмена веществ и функции отдельных органов, данных вскрытия трупов, зоотехнической характеристики рационов, качества кормов, условий содержания птицепоголовья делают заключение и предложения производству. В заключении указывают возможное наличие преобладающей и сопутствующих болезней, нарушений обмена веществ, функций печени и других органов. Определяют основные причины внутренней патологии, указывают пути и методы их устранения. Результаты диспансеризации предоставляются руководителю птицефабрики. По ним принимаются соответствующие меры. Список литературных источников. 1. Методы ветеринарной лабораторной диагностики // И.П. Кондрахин, А.В. Архипов, В.И Левченко и др.; Под ред. И.П. Кондрахина. – М.: КолосС, 2004. – 520 с. 2. Біохімічні методи дослідження крові тварин / В.І. Левченко, Ю.М. Новожицька, В.В. Сахнюк та ін. – Київ, 2004. – 104 с.
|