Документ. Асептика
 Скачать 38.46 Kb.
|
|
МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ ЛУГАНСКОЙ НАРОДНОЙ РЕСПУБЛИКИ ГУ ЛНР «ЛУГАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ СВЯТИТЕЛЯ ЛУКИ» Кафедра общей и факультативной хирургии Реферат По дисциплине «Общая хирургия» На тему: «Асептика » Выполнила Студентка 3 курса I Медицинского факультета Группы № 11б Бороденко Е.Г. Проверил: Кандидат медицинских наук, доцент Ходырев В.Н. Оглавление Введение……………………………………….. 2. Профилактика воздушно-капельной инфекции… 2.1. Операционный блок 2.2. Порядок работы 2.3. Методы борьбы с воздушно-капельной инфекцией 3. Профилактика контактной инфекции 3.1. Стерилизация хирургических инструментов 3.2. Перевязочный материал 3.3. Обработка операционного поля 4. Профилактика имплантационной инфекции 4.1. Способы стерилизации шовного материала 4.2. Методы контроля стерильности Заключение Список литературы 1.Введение Асептика – совокупность методов и приёмов работы, направленных на предупреждение попадания инфекции в рану, в организм больного, создание безмикробных, стерильных условий для хирургической работы. Это достигается путём использования организационных мероприятий, активных обеззараживающих химических веществ, а также технических средств и физических факторов. Современная асептика сохранила два основных принципа: 1).всё, что соприкасается с раной должно быть стерильно; 2).всех хирургических больных необходимо разделять на два потока: «чистые» и «гнойные». Основные пути распространения инфекции Чтобы предупредить попадание инфекции в рану, прежде всего, нужно знать её источники и пути распространения. Инфекцию, попадающую в рану из внешней среды, называют экзогенной. Основные её источники: воздух с частицами пыли, на которых оседают микроорганизмы; выделения из носоглотки и верхних дыхательных путей больных, посетителей и медперсонала; раневое отделяемое из гнойных ран, различные бытовые загрязнения. В рану больному экзогенная инфекция может проникнуть тремя основными путями: воздушно-капельным (воздух, пыль, капли жидкости), контактным (инструменты, бельё, перевязочный материал, руки хирурга) и имплантационным. Инфекцию, попадающую в рану из организма самого больного, называют эндогенной. Основные её источники: инфицированная кожа пациента, инфекция внутренних органов грудной и брюшной полостей и забрюшинного пространства. 2.Профилактика воздушно-капельной инфекции Приемное отделение (приемный покой) предназначено для приема пациентов, направленных из амбулаторных лечебных учреждений (поликлиники, здравпункта и пр.), доставленных машинами скорой или обращающихся за помощью самостоятельно. В приемном отделении больные регистрируются и осматриваются врачом, выполняются дополнительные методы диагностики, при необходимости проводиться лечение, санитарно-гигиеническая обработка. Из него больных транспортируют в лечебно-диагностические отделения. В приемном покое работают врач и медицинская сестра. Из приемного отделения больные попадают в лечебно-диагностическое (хирургическое отделение). Хирургическое отделение должно быть приспособлено для тщательной многократной уборки, причем обязательно влажной и с применением антисептических средств. Ежедневно утром и вечером проводят влажную уборку помещения. Стены моют и протирают влажной тряпкой 1 раз в 3 дня. Очищают от пыли верхние части стен, потолки, плафоны, протирают оконные и дверные рамы 1 раз в месяц, полы должны быть каменными или заливными, либо покрытыми линолеумом или кафелем. Стены выложены плиткой или покрашены краской. В операционной и перевязочной такие же требования предъявляют и к потолкам. Пропускной режим. В хирургическом отделении не может быть постоянного свободного присутствия посетителей. Кроме того, необходимо контролировать их внешний вид, одежду, состояние. Проветривание помещений значительно (до 30 %) снижает обсемененность воздуха. Спецодежда. Использование спецодежды в отделении обязательно. Все работники должны иметь сменную обувь, халаты или специальные костюмы из легкой ткани, регулярно проходящие стирку. Выход в спецодежде за пределы отделения запрещен. 2.1.Операционный блок Операционный блок – наиболее чистое место хирургического стационара. Именно в операционном блоке необходимо наиболее строгое соблюдение правил асептики. Операционный блок всегда должен располагаться отдельно, а в некоторых случаях его даже выносят в специальные пристройки, соединенные переходом с основным больничным комплексом. Для предотвращения загрязненности воздуха в непосредственной близости от операционной раны при организации операционного блока соблюдают принцип зональности. Существует четыре зоны стерильности в операционной: 1. зона абсолютной стерильности (операционная); 2. зона относительной стерильности (предоперационная, стерилизационная, моечная, наркозная); 3. зона ограниченного режима (помещения для хранения крови, гипсовых бинтов, лечебно-диагностической аппаратуры, комнаты для хирургов, операционных сестер, материальная); 4. зона общего больничного режима (кабинет заведующего, комната старшей медицинской сестры, помещение для грязного белья и отходов). 2.2.Порядок работы Главный принцип работы операционного блока - строжайшее соблюдение правил асептики. В связи с этим выделяют разные виды операционных: плановые и экстренные, чистые и гнойные. При составлении расписания операций в каждой операционной их порядок определяют в соответствии со степенью инфицированности: от менее инфицированной к более инфицированной. В операционной не должно быть ненужной мебели и техники, до минимума сокращают объем движений и хождений, вызывающих возникновение турбулентных потоков воздуха. Важным считают ограничение разговоров. В покое за 1 час человек выделяет 10-100 тыс. микробных тел, а при разговоре - до 1 млн. В операционной не должно быть лишних людей. После операции количество микроорганизмов в 1 м3 воздуха возрастает в 3-5 раз, а при присутствии, например, группы студентов из 5-6 человек - в 20-30 раз. Виды уборки. В операционной, как и в перевязочной, существует несколько видов уборки: В начале рабочего дня - вытирание пыли с горизонтальных поверхностей, подготовка стерильного стола и необходимых инструментов. Текущая - периодическое удаление во время операции использованного перевязочного материала и белья из тазов, помещение резецированных органов в специальные емкости и вынос их из операционной, постоянный контроль чистоты помещения и устранение возникающих загрязнений: вытирание пола, столов и пр. После каждой операции - вынос из операционной всех отработанных материалов, протирание операционного стола раствором антисептика, смена белья, освобождение тазиков, при необходимости - мытье пола, горизонтальных поверхностей, подготовка инструментов и стерильного столика для следующей операции. В конце рабочего дня - дополнительно к предыдущему пункту обязательно проводят мытье полов и горизонтальных поверхностей, выносят весь перевязочный материал и белье, включают бактерицидные лампы. Генеральная - 1 раз в неделю операционный зал или перевязочную моют с использованием антисептических растворов, обрабатывают все поверхности: пол, стены, потолки, лампы; передвижное оборудование вывозят и обрабатывают в другом помещении, а после уборки устанавливают на рабочее место. Разделение потоков больных В хирургических отделениях осуществляют разделение потоков больных на «чистых» и «гнойных» - основной принцип асептики. При 11 наличии в больнице только одного хирургического отделения в нем специально выделяют палаты для гнойных больных, должно быть две перевязочные: чистая и гнойная, причем гнойная должна располагаться в том же отсеке, что и палаты для гнойных больных. Желательно также выделить палату для послеоперационных больных - в противоположной части отделения. Если в больнице несколько хирургических отделений, их разделяют на чистые и гнойные. В масштабе крупных городов возможно даже разделение стационаров на чистые и гнойные. 2.3.Методы борьбы с воздушно-капельной инфекцией 1. Ношение масок. Они применяются для уменьшения выделения при дыхании капель секрета из носоглотки и ротовой полости во внешнюю среду медперсоналом. Ношение масок обязательно в операционной (причём каждый раз новой) и перевязочной, при эпидемии гриппа – в палатах, в части случаев – в послеоперационной палате. Маски необходимо использовать при выполнении любых манипуляций, связанных с нарушением покровных тканей. 2. Бактерицидные лампы, излучающие ультрафиолетовые лучи сопределённой длиной волны, обладающие максимальным бактерицидным эффектом. Подобные лучи вредны для человека. Поэтому лампы имеют определённую защиту. Бактерицидные лампы обязательно должны быть в операционных, перевязочных, процедурных кабинетах, послеоперационных палатах и палатах для гнойных больных. 3. Вентиляция помещений на 30% снижают загрязнённость воздуха микробами. Если при этом дополнительно используют кондиционеры с бактериальными фильтрами, эффективность этих мероприятий возрастает до 80%. В особо чистых местах, например в операционных, вентиляция должна быть приточно–вытяжной, с обеспечением необходимой кратности по ГОСТу. 4. Применение личной гигиены больных и медперсонала начинается при прохождении больных через санпропускник в приёмном отделении (санобработка, переодевание одежды, контроль на педикулёз). Тяжёлым больным в этом помогают медсёстры (умывание, обработка полости рта, бритьё, перестилание постели). В хирургическом отделение существуют определённые правила, касающиеся медперсонала. Осуществляется контроль соблюдения правил личной гигиены, отсутствия простудных и гнойничковых заболеваний, 1 раз в 3 мес. персонал проходит обследование на носительство стафилококка в носоглотке. 3.Профилактика контактной инфекции Стерилизация – полное освобождение какого-либо предмета от микроорганизмов и их спор путём воздействия на него физическими или химическими факторами. Стерилизация – основа асептики. Методы и средства стерилизации должны обеспечивать гибель всех, в том числе высокоустойчивых, микроорганизмов (как патогенных, так и непатогенных). Наиболее устойчивы споры микроорганизмов. Поэтому возможность применения для стерилизации определённых средств оценивают наличием у них спороцидной активности, проявляемой в приемлемые сроки. Используемые в практике методы и средства должны обладать следующими свойствами: 1)уничтожать микроорганизмы и их споры; 2)быть безопасными для больных и медперсонала; 3)не ухудшать рабочие свойства изделий. В современной асептике используют физические и химические методы стерилизации. Выбор того или иного способа стерилизации зависит, прежде всего, от свойств изделия. Основными считают физические методы стерилизации. К физическим методам относят термические способы – стерилизацию паром под давлением (автоклавирование), стерилизацию горячим воздухом (сухим жаром), а также лучевую стерилизацию. При стерилизации паром под давлением (автоклавирование)действующим агентом служит горячий пар. Стерилизацию просто текучим паром в настоящее время не используют, так как температура пара в обычных условиях (1000С) не достаточна для уничтожения всех микробов. В автоклаве (аппарат для стерилизации паром под давлением) возможно нагревание воды при повышенном давлении. Это повышает точку кипения воды и соответственно температуру пара до 132,9 0С (при давлении 2 атм). Хирургические инструменты, перевязочный материал, бельё и другие материалы загружают в автоклав в специальных металлических коробках – биксах Шиммельбуша. Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нём предметов в течение 72 ч. При стерилизация горячим воздухом (сухим жаром) действующим агентом служит нагретый воздух (прил., рис.8). Её осуществляет в специальных аппаратах –сухожаровых шкафах–стерилизаторах. Лучевую стерилизацию осуществляют с помощью ионизирующего излучения (γ-лучи), ультрафиолетовых лучей и ультразвука. Наибольшее применение в наше время получила стерилизация γ-лучами с использованием изотопов Co60 и Cs137 . Лучевую стерилизацию проводят в специальных заводских помещениях. Стерилизацию инструментов и прочих материалов осуществляют в герметичных упаковках, которая позволяет сохранять стерильность до 5 лет. Благодаря герметичной упаковке удобно хранить и использовать инструменты (необходимо просто вскрыть упаковку). Метод выгоден для стерилизации несложных одноразовых инструментов (шприцев, шовного материала, катетеров, зондов, систем для переливания крови, перчаток и пр.) и получает всё более широкое распространение. Во многом это объясняется тем, что при лучевой стерилизации не изменяются свойства стерилизуемых объектов. К химическим методам относят газовую стерилизацию и стерилизацию растворами антисептиков. Газовую стерилизацию осуществляют в специальных герметичных камерах. Стерилизующими агентами служат пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида) или окись этилена. Инструменты, уложенные на сетку, считают стерильными через 6–48 ч (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере). Отличительная особенность метода – его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, поэтому способ используется прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов. В настоящее время всё большее распространение находит способ стерилизации в озоново-воздушной камере. Активным агентом служит озон, который смешивается с воздухом. Преимущество этого метода состоит в его надёжности, быстроте, сохранении всех свойств обрабатываемых материалов и абсолютной экологической безопасности. В отличие от лучевой стерилизации, метод используют непосредственно в стационарах. Стерилизацию растворами химических антисептиков так же, как лучевую и газовую стерилизацию, относят к холодным способам стерилизации. Она не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем её прежде всего применяют для обработки режущих хирургических инструментов. Для стерилизации чаще используют 6% раствор перекиси водорода. При замачивании в перекиси водорода инструменты считаются стерильными через 6 ч. 3.1.Стерилизация хирургических инструментов Стерилизация хирургических инструментов включает последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и собственно стерилизации. Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Использованные хирургические инструменты для обеззараживания(дезинфекции) погружают полностью в ёмкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). В качестве дезинфицирующих средств используют 3% раствор хлорамина (экспозиция 40–60 мин) или 6% раствор перекиси 18 водорода (экспозиция 90 мин). Далее инструменты промывают проточной водой. Для мытья инструменты погружают в специальный моющий (щелочной) раствор. После замачивания инструменты моют щётками в том же растворе, а затем – в проточной воде. Высушивание можно осуществить естественным путём. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу. После высушивания инструменты готовы к стерилизации. Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов. Все хирургические инструменты можно условно разделить на три группы: 1)металлические: режущие (скальпель, ножницы, хирургические иглы и пр.). Основной метод стерилизации – стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или автоклаве при стандартных режимах. не режущие (шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки и пр.). Основной метод стерилизации – холодный химический способ с применением растворов антисептиков. Самыми лучшими способами стерилизации считают газовую и лучевую стерилизацию. 2)резиновые и пластмассовые (катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.). Основной метод стерилизации – щадящее автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что признано некоторым недостатком метода. Одноразовые пластмассовые изделия, а также катетеры и зонды подвергают лучевой заводской стерилизации. 3)оптические(лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.). Основной метод стерилизации - газовая стерилизация. Этим способом обрабатывают все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано со сложным их устройством. При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков. 3.2.Перевязочный материал Перевязочный материал обычно готовят непосредственно перед стерилизацией, используя специальные приёмы для предотвращения осыпания отдельных нитей марли. Перевязочный материал повторно не используют, после применения его уничтожают. К операционному белью относят хирургические халаты, простыни, полотенца, подкладные. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные ткани. Операционное бельё многократного применения после использования проходит стирку, причём отдельно от других видов белья. Перевязочный материал и бельё стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бельё укладывают в биксы. Обработка (мытьё) рук хирурга – очень важная процедура. Существуют определённые правила мытья рук. В основу различных методов мытья рук положены три основных момента: 1) механическая очистка рук стерильными щетками и мылом для смывания бактерий; 2) дезинфекция – уничтожение оставшихся бактерий применением антисептических веществ; 3) дубление кожи 70% или 96% спиртом, который сокращает поры кожи и как бы замуровывает в них бактерии на время операции. Очень важным является соблюдение классической триады при обработке рук: методичность, ступенчатость, пунктуальность. Имеет значение и последовательность мытья: сначала при помощи щетки и мыла моют ладонную, затем тыльную поверхность каждого пальца, межпальцевые промежутки и ногтевые ложа левой руки. Точно так же обрабатывают пальцы правой руки. После этого моют запястья с тыльной и ладонной поверхности левой, затем на правой руке и, наконец, моют предплечья. В заключение еще раз протирают щеткой ногтевые ложа. Мыльную пену постоянно смывают проточной водой, поток которой должен быть направлен от пальцев к локтю. По окончании мытья просушивают кожу стерильными марлевыми салфетками. Затем руки погружают в антисептический раствор, находящийся в тазу, и протирают марлевой салфеткой кожу пальцев, запястья, предплечья. После дезинфекции руки высушивают стерильной салфеткой, дубят спиртом и надевают стерильные перчатки. 3.3.Обработка операционного поля Обработка операционного поляявляется важным этапом при выполнении хирургических операций. Предварительно проводят санитарно-гигиеническую обработку (мытьё в ванне или под душем, смену постельного и нательного белья). В день операции сбривают волосяной покров в области операционного поля (сухое бритьё). На операционном столе операционное поле обрабатывают антисептиками. Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и прочего подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки. 4.Профилактика имплантационной инфекции Имплантация – внедрение, вживление в организм больного искусственных, чужеродных материалов и приспособлений с определённой лечебной целью. Профилактика имплантационной инфекции – обеспечение строжайшей стерильности всех предметов, внедряемых в организм больного. В отличие от контактного пути распространения инфекции, при имплантационном отмечают практически 100% контагиозность. Оставаясь в организме больного, где существуют благоприятные условия (температура, влажность, питательные вещества), микроорганизмы долго не погибают и часто начинают размножаться, вызывая нагноение. При этом внедрённое в организм инородное тело в последующем длительно поддерживает воспалительный процесс. В части случаев происходит инкапсуляция колоний микроорганизмов, которые не погибают и могут стать источником вспышки гнойного процесса через месяцы или годы. Хирурги при лечении пациентов оставляют в организме больного шовный материал, дренажи, протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т. д., различные металлические конструкции, синтетическая сетка, гомофасция, а иногда и трансплантированные органы и др. Все имплантаты, безусловно, должны быть стерильны. Способ стерилизации зависит от того, из какого материала они выполнены и какая у них конструкция. Резиновые дренажи и катетеры можно стерилизовать в автоклаве или кипятить, некоторые изделия из пластмассы, а также из разнородных материалов следует стерилизовать с помощью химических методов. В тоже время основным, практически наиболее удобным и надёжным методом признана заводская стерилизация γ-лучами. Основным вероятным источником имплантационной инфекции остаётся шовный материал. 4.1.Способы стерилизации шовного материала В настоящее время основной способ стерилизации шовного материала – лучевая стерилизация в заводских условиях. Это в полной мере касается атравматического шовного материала: иглу с нитью помещают в герметичную упаковку, где указано всё об игле с нитью. Шовный материал стерилизуют, затем он в упаковке поступает в лечебные учреждения. Также можно стерилизовать и просто нити. Кроме того, отрезки нитей можно поместить в герметичные стеклянные ампулы со специальным антисептическим раствором, а катушки в специальные герметичные контейнеры с таким же раствором. Классические способы стерилизации шёлка и кетгута в настоящее время запрещены для использования из-за их длительности, сложности и не всегда достаточной эффективности. Стерилизация конструкций, протезов, трансплантатов. Способ стерилизации имплантатов целиком зависит от материала, из которого они изготовлены. Металлические конструкции для остеосинтеза стерилизуют вместе с металлическими нережущими инструментами в автоклаве или сухожаровом шкафу. Более сложные протезы, состоящие не только из металлических, но и из пластмассовых деталей, лучше стерилизовать химическими способами. В последнее время ведущие фирмы производители протезов выпускают их в герметичных упаковках, стерилизованных лучевым методом. Кроме различных конструкций и протезов, источником имплантационной инфекции могут стать аллогенные органы, изъятые из другого организма при операции трансплантации. Стерилизация 30 трансплантатов невозможна, поэтому при заборе органов необходимо соблюдать строжайшую стерильность: операции забора органов выполняют с соблюдением тех же правил асептики, что и обычные хирургические вмешательства. 4.2.Методы контроля стерилизации Методы контроля стерильностиделят на прямой и непрямые. При прямом методе контроля стерильности выполняют бактериологическое исследование. Специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают её в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где проводят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязнённость. Бактериологический метод контроля стерильности наиболее точен. Отрицательный момент – длительность проведения исследования. Результат посева готов лишь через 3–5 суток, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводят в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медперсонала или в дефектах используемого оборудования. Непрямые методы контроля используют в основном при термических способах стерилизации. С их помощью можно определить величину температуры, при которой проводили обработку, не давая точный ответ на вопрос о присутствии или отсутствии микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результатов и возможности их использования при каждой стерилизации. При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110–120оC. После стерилизации при открытии бикса сестра прежде всего обращает внимание на эту ампулу. Если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными. Аналогичные непрямые способы используют при стерилизации в сухожаровом шкафу. Однако здесь применяют вещества с более высокой температурой плавления. Заключение В последние годы стали применять в основном химические методы обработки рук: широко распространена обработка рук первомуром. Этот методы чрезвычайно надежен: перчаточный сок, образовавшийся в течение 12 часов, после того как надели перчатки (в эксперименте) оставался стерильным. Асептика включает: а) стерилизацию инструментов, материалов, приборов и др.; б) специальную обработку рук хирурга; в) соблюдение особых правил и приемов работы при проведении операций, исследований и др.; г) осуществление специальных санитарно-гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреждении. Способы стерилизации · паром под давлением (бельё); · кипячение (металлические инструменты, кроме режущих); · суховоздушные шкафы (можно обжигать инструмент над пламенем); · холодная стерилизация (погружение резиновых перчаток в хлорамин); · 96 % этиловый спирт (30 мин.). Профилактика экзогенного заражения Методы асептики используют в борьбе с экзогенной инфекцией. Источниками последней выступают больные и бактериологические носители, особенно если они среди медицинского персонала. Профилактике капельной инфекции в операционных залах и перевязочных кабинетах способствуют обустройство их специальной системой вентиляции (преобладанием притока воздушных масс над вытяжкой, установкой ламинарного потока кондиционированного воздуха), организация особого режима работы в них, проведение мер, которые направлены на уничтожение уже существующих микроорганизмов: своевременная влажная уборка, облучение воздушных масс с помощью бактерицидных ламп, а также строгое соблюдение медперсоналом требуемых санитарных норм. Профилактика контактного обсеменения обеспечивается стерилизацией белья для операции, перевязочного и шовного материалов, резиновых перчаток, инструментария, специальной обработкой рук хирурга и поля для операции. Все, что соприкасается с раной, должно быть освобождено от бактерий, или, другими словами, должно быть стерильно. В этом и заключается основной принцип асептики. Стерилизация материала для швов имеет особое назначение в профилактике заражения раны. Ответственность за правильно проведенную стерилизацию возложена на операционную медицинскую сестру. Требования к антисептическим средствам Препараты, которые применяются для антисептической обработки, должны соответствовать следующим требованиям: 1. широкий спектр действия; 2. быстрота действия; 3. полная дезинфекция (асептика) транзиторных микроорганизмов; 4. снижение контаминации резидентной микрофлоры до нормального уровня; 5. длительное действие после обрабатывания (не менее 3 часов); 6. отсутствие кожно-раздражающего, аллергенного, канцерогенного, мутагенного и другого побочного действия; 7. медленное развитие устойчивости микрофлоры; 8. ценовая доступность. Список литературы · Гостищев В. К. Общая хирургия. -- «ГЭОТАР-Медиа», 2006. · Антибактериальная терапия абдоминальной хирургической инфекции. Под ред акад. Савельева В.С. - М., 2006 · Асептика, антисептика : учеб. пособие для иностранных студентов / В. А. Белобородов, Е. А. Кельчевская ; ГБОУ ВПО ИГМУ Минздрава России. - Иркутск : ИГМУ, 2013. · Т.Х.Каюмов. Лекции по теме: Асептика и антисептика. 2007 г. •Справочник врача общей практики/ Н. П. Бочков, В. А. Насонов, Н. Р. Палеева.Москва: Эксмо-П •Асептика и антисептика: Учебное пособие / В.А. Голуб, О.А. Косивцов.- Волгоград: Изд-во ВолгГМУ, 2019.- с. •Хирургические болезни. Учебно - методическое пособие/ Под редакцией Чернядьев С.А. – Екатеринбург,2018. –54с. •Асептика : учеб.-метод. пособие / Н. Я. Бовтюк. – Минск : БГМУ, 2011. – 36 с. |