реферат. терстом 2 занятие. Методические рекомендации для студентов практическое занятие 2
 Скачать 209.02 Kb.
|
СТЕРИЛИЗАЦИЯ СТОМТАОЛОГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВНапоминаем, что стерилизоваться должны все инструменты и перевязочные материалы, которые соприкасаются с твердыми тканями зубов и слизистой оболочки полости рта, контактируют с кровью и ротовой жидкостью, а также применяются для инъекционного введения лекарственных препаратов. Стерилизация является III этапом обработки изделий медицинского назначения Стерилизацию стоматологических изделий осуществляют физическим и химическим методом. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий и материально- технических возможностей лечебного учреждения. Стерилизация физическими методами: - воздушным (сухожаровым) – стерилизующим средством является сухой горячей воздух - в воздушном стерилизаторе (сухожаровой шкаф) при t-180°C в течение 60 минут, при t - 160°С в течение150минут; - паровым (автоклавированием) – стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением - в паровом стерилизаторе (автоклав) при t-132°C в течении 20 минут, при t - 120°C в течение 45 минут; - в среде нагретых стеклянных шариков - в гласперленовых стерилизаторах, предназначенных для мелких стоматологических инструментов. Не рекомендуется использовать данный метод для стерилизации более крупных стоматологических инструментов с целью стерилизации их рабочих частей. Инструменты простерилизованные в гласперленовом стерилизаторе не подлежат хранению! Стерилизация химическим методом (холодная стерилизация) – стерилизующим агентом является раствор какого-либо химического средства, обладающего сильным дезинфицирующим действием. Данный метод является вспомогательным в стоматологической практике. Данный метод следует применять только в тех случаях, когда особенности материалов изделий не позволяют использовать другие официально рекомендованные методы стерилизации. Осуществляется при полном погружении инструментария в раствор при их свободной раскладке. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими. Используются закрытые емкости из стекла, пластмасс или эмалированного металла (с неповрежденной эмалью). После стерилизации инструменты промываются стерильной водой и сразу используются по назначению. Данный метод следует применять только для стерилизации изделий, содержащих термочувствительные компоненты, не выдерживающие нагревание свыше 100°С, например, стоматологические зеркала, режущие инстументы, гуттаперчевые штифты. При стерилизации в паровых и воздушных стерилизаторах изделия, как правило, стерилизуют упакованными в стерилизационные упаковочные материалы (крафт-пакеты). Медицинский инструментарий, стоматологические наборы, простерилизованные в индивидуальной стерилизационной упаковке (двойная мягкая бязь, пакеты из упаковочной бумаги, пергамента) можно хранить в специально выделенном шкафу. При воздушном методе стерилизации, а также в отдельных случаях при паровом методе, допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде (в открытых лотках), простерилизованный инструментарий хранению в стерилизационной камере не подлежит. Для хранения стерильного материала, простерилизованного в открытом виде, накрывается «стерильный стол». «Стерильный стол» накрывается на 1 рабочую смену (6 часов) с отметкой даты и времени накрытия. Для длительного хранения стерильных изделий используют столы «Панмед-1», «Ультралайт» и т.п. Все изделия, простерилизованные в неупакованном виде, целесообразно сразу использовать по назначению. Запрещается перенос их из кабинета в кабинет. Карпульные шприцы после каждого пациента обеззараживаются, как и другие стоматологические инструменты (дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация). Для инъекций следует использовать стерильные одноразовые шприцы и иглы, которые после употребления дезинфицируются и утилизируются в установленном порядке. Световод лампы для фотополимеризации можно стерилизовать: методом холодной стерилизации (путем погружения световода в раствор предназначенный для стерилизации оптических приборов, как правило на основе раствора глутарового альдегида («Сайдекс», «Глутарал» - 15 минут, 70 % этиловой спирт – 30 мин., необходимо следовать инструкциям фирмы-изготовителя относительно разведения дезинфицирующего средства и необходимого времени экспозиции); методом автоклавирования (необходимо соблюдать инструкцию фирмы-изготовителя относительно режима стерилизации, как правило автоклавирование световодов проводится при температуре +120 0С, давлении 1,1 кгс/см 2, в течение 45 минут). Надо отметить, что использование стерилянтов в стоматологической практике является вспомогательным методом, т.к. обеспечить условия асептики и антисептики, необходимые для проведения стерилизации химическим способом возможно только в ЦСО. В зависимости от концентрации стерилянт можно использовать как средство дезинфекции. ДЕЗИНФЕКЦИЯ РУК В передаче возбудителей внутрибольничной инфекции в стоматологии существенную роль играют руки. Многочисленными исследованиями доказана значительная обсемененность рук медицинского персонала микроорганизмами. При этом видовой состав зависит от особенностей выполняемой работы. Различают три уровня обработки рук медицинского персонала: обычное мытье; гигиеническая обработка рук; хирургическая обработка рук. Обычное мытье рук обеспечивает удаление грязи и транзиторной микрофлоры, которая попадает на кожу врача во время контакта с пациентом или контаминированными объектами окружающей среды. Осуществляется тщательным мытьем рук: до начала работы; до и после физического контакта с пациентом; при смене одежды и места работы. Мыть необходимо дважды, т.к. в этом случае эффективность составит 65 – 70 % (при однократном – 40 %). Лучше использовать жидкое мыло в одноразовых дозаторах. При использовании мыла в виде брусков необходимо помещать маленькие бруски мыла в специальные стойки, имеющие дренаж, чтобы мыльница обеспечивала высыхание мыла перед последующим использованием. Методика: Снять украшение и часы (т.к. снижается качество); Сухой рукой выдавить жидкое мыло из дозатора или берется сухой рукой сухое мыло; Под струей воды энергично втирать мыло не менее 30 секунд; Смыть остатки мыла под струей воды и повторить; Высушить одноразовым бумажным или индивидуальным полотенцем. В лечебно-профилактических учреждениях не рекомендуется использовать тканевые полотенца многократного пользования, а также полотенца рулонного типа. Гигиеническая обработка рук обеспечивает удаление или уничтожение транзиторной (поверхностной) патогенной или условно- патогенной микрофлоры с целью предупреждения распространения ее через руки персонала на окружающие объекты и обслуживаемых больных, а также после манипуляций, могущих повлечь за собой загрязнение рук персонала при осмотре и лечении пациентов. Гигиеническую дезинфекцию рук обязан проводить весь персонал регулярно. Обработка включает обычное мытье рук и использование дезинфицирующих средств - кожных антисептиков, которые в соответствии с назначением подразделяются на группы: Для гигиенической обработки рук медицинского персонала (врачей, медицинских сестер и др.); Для дезинфекционной обработки рук хирургов, операционной сестры и других участников операции; Для дезинфекционной обработки операционного поля; Для дезинфекционной обработки инъекционного поля и др. (проводят способом протирания стерильным тампоном, смоченным антисептиком) Для предупреждения нарушения целостности и эластичности кожи следует включать в антисептик смягчающую кожу добавки: 1% глицерин, ланолин. Персонал надо предостерегать от ношения колец и использования лака для ногтей, поскольку кольца и потрескавшийся лак затрудняют удаление микроорганизмов. Маникюр может привести к микротравмам, которые легко инфицируются. Кожные антисептики: Специальные жидкие бактерицидные мыла; Спиртовые растворы кожных антисептиков; Бактериальные средства в виде геля. Гигиеническая обработка рук стоматолога проводится перед манипуляциями в перчатках (ДО и ПОСЛЕ), после контакта с жидкостями организма. Способ применения кожных антисептиков: на увлажненные руки наносятся 3 – 5 мл. средства и втирают до высыхания. Если средство на основе спиртов, то антисептик наносится на сухие руки и втирается не менее 15 секунд. Хирургическая обработка рук (обработка рук хирурга) обеспечивает самый высокий уровень чистоты. Проводится только спиртосодержащими антисептиками. Время обработки составляет не менее 2-5 минут. Препараты: «АХД – 2000», «АХД – 2000 специаль» (АОЗТ Петроспирт, Россия), «Декосепт» (Борер Хеми ГмбХ, Германия), «Лизанин» (ЗАО Петроспирт»,Россия), «Стериллиум» (Боде Хеми Гмбх и Ко, Германия) и т.д. Использование этилового спирта для дезинфекции рук стоматолога является не целесообразным, т.к. частое его применение приводит к сухости кожи рук, а в случаи использования для дезинфекции перчаток приводит к появлению микротрещин, снижающих их барьерную функцию. Правила работы в перчатках: Перчатки меняют на новые после приема каждого пациента! Перчатки надевают на тщательно вымытые руки! Перед надеванием перчаток с рук должны быть сняты украшения и наручные часы! Если врач пользуется нестерильными перчатками, то после надевания их, руки в перчатках следует тщательно вымыть с мылом и обработать раствором антисептика! После того как перчатки сняты, руки должны быть тщательно вымыты! Нельзя касаться руками в перчатках слизистых оболочек своих глаз, носа, полости рта, а также незащищенных участков кожи! Нельзя покидать своего рабочего места в перчатках! В случае разрыва перчатки ее следует немедленно снять, тщательно вымыть руки и надеть новую перчатку! Рекомендуем всем врачам-стоматологам-терапевтам во время работы пользоваться защитными очками, масками и перчатками ПОСТОЯННО! Для сохранения нормального состояния кожи рук в процессе работы рекомендуется: Мыть руки водой комнатной температуры (около +20°С) до и после приема каждого пациента; После мытья тщательно просушивать кожу рук сухим индивидуальным полотенцем (рекомендовано использование бумажных полотенец); Не допускать попадания на открытые поверхности кожи лекарственных аллергенов (антибиотиков, новокаина, полимеров, компонентов адгезивных систем и т.д.); Применять нейтральные сорта мыла, например, «Шелк», «Шелк с антисептиком»; Обрабатывать кожу рук перед началом работы защитными кремами, например Смягчать кожу рук питательными и увлажняющими кремами, например ДЕЗИНФЕКЦИЯ ВОЗДУХА СТОМТАОЛОГИЧЕСКОГО КАБИНЕТА Стоматологические кабинеты должны быть оборудованы Бактерицидными ультрафиолетовыми облучателями. Бактерицидный облучатель - это электротехническое устройство, в котором размещены: бактерицидная лампа, отражатель, пускорегулирующий аппарат и другие вспомогательные элементы, а также приспособления для его крепления. Они устанавливаются в каждом лечебном кабинете и в помещении для обработки стоматологических инструментов. Классификация бактерицидных облучателей: По месту расположения: потолочные; настенные; передвижные. По конструкции: открытого типа; закрытого типа (рециркуляторы); комбинированные (открытые и экранированные). По предназначению: для обеззараживания воздуха и помещений в отсутствии людей (бактерицидные ультрафиолетовые облучатели открытого типа и комбинированные); для обеззараживания как в присутствии людей, так и в их отсутствие (бактерицидные ультрафиолетовые облучатели закрытого типа). Облучатели открытого типа предназначены для обеззараживания помещений бактерицидным потоком ультрафиолетовых лучей. У открытых облучателей, устанавливаемые на потолке или стене, прямой бактерицидный поток от ламп и отражателя (или без него) охватывает широкую зону в пространстве вплоть до телесного угла 4 пи. Они должны включаться только при отсутствии людей в помещении. Во время сеанса облучения на входной двери кабинета должна вывешиваться табличка «Не входить! Идет облучение ультрафиолетом!» Облучатели закрытого типа (рециркуляторы) основаны на прокачке воздуха через камеру, в которой производится его облучение ультрафиолетовыми лучами. Они предназначены для обеззараживания воздуха в помещении во время нахождения там людей. У закрытых облучателей (рециркуляторах) бактерицидный поток от ламп распределяется в ограниченном небольшом замкнутом пространстве и не имеет выхода наружу, при этом обеззараживание воздуха осуществляется в процессе его прокачки через вентиляционные отверстия рециркулятора. Особое место занимают открытые комбинированные облучатели. В этих облучателях, за счет поворотного экрана, бактерицидный поток от ламп можно направить в верхнюю или нижнюю зону пространства. Во время работы данного облучателя можно кратковременно находится в облучаемом помещении. В случае обнаружения запаха озона надо немедленно отключить облучатели от сети, удалить людей из помещения, включить вентиляцию или открыть окна для тщательного проветривания до исчезновения запаха озона. Если будет обнаружено, что концентрация озона превышает 0,03 мг/м3 , то необходимо прекратить использование бактерицидной установки, с дальнейшей заменой озонирующих ламп и их замены. Периодичность контроля не реже 1 раза в 10 дней. Необходимо периодически осуществлять чистку от пыли поверхности отражателя и колбы лампы, так как даже небольшой слой пыли заметно снижает выход бактерицидного потока. Эксплуатация бактерицидных установок осуществляется в соответствии с «Методическими указаниями по применению бактерицидных ламп для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях», №11-16/03, утв. Минздравомедпромом РФ 28.02.1995 и «Руководством по использованию ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях» Р 3.1.683-98, утв. Минздравом РФ 19.01.1998. Работа всех бактерицидных ламп регистрируется по форме, утвержденной Р 3.1.683-1998. ДЕЗИНФЕКЦИЯ ОТХОДОВ (ПОРЯДОК СБОРА, ХРАНЕНИЯ И УДАЛЕНИЯ ОТХОДОВ) Для организации контроля в крупных и средних стоматологических учреждениях приказом руководителя назначается ответственный специалист (эпидемиолог, главная сестра, заместитель главного врача по техническим вопросам), который обязан пройти обучение в государственном центре Госсанэпиднадзора или специализированном центре по обращению с отходами и получить свидетельство (сертификат) установленного образца на право организации работы по обращению с отходами. В небольших учреждениях и в частных клиниках и кабинетах обучение проходит руководитель или его заместитель. Кроме того, в каждом лечебном учреждении должна быть разработана «Инструкция о порядке сбора, хранения и удаления отходов», утвержденная руководителем учреждения. Порядок сбора, хранения и удаления отходов в лечебно- профилактических учреждениях регламентируется Санитарными Правилами и Нормами «Правила сбора и хранения отходов лечебно-профилактических учреждений» СанПиН 2.1.7.728-99. Согласно Лондонской инструкции по отходам от 1988 года Медицинские отходы – это любые отходы, полностью или частично состоящие из тканей человека или животных, крови или др. жидкостей тела, экскрементов, наркотиков или др. фармацевтических продуктов, бинтов или одежды, или предметов медицинского ухода и зубоврачебной практики, или шприцев, игл, или др. острых предметов, которые были в контакте с кровью или экскрементами и, в случае, если их не обезвредить, могут быть опасными для любого человека, вошедшего с ними в контакт, в частности инфицировать его. Все отходы учреждений здравоохранения разделяются по степени опасности их эпидемиологической, токсикологической и радиационной опасности на 5 классов опасности: А, Б, В, Г, и Д. Исходя из степени опасности отходов, к процессу утилизации отходов каждого из классов предъявляются различные требования. В терапевтических стоматологических лечебных учреждениях в основном образуются отходы, относящиеся к классам А, Б и Г. Класс А. «Неопасные отходы» - отходы, не имевшие контакта с биологическими жидкостями пациентов, инфекционными больными, нетоксичные отходы. Пищевые отходы всех подразделений ЛПУ, кроме инфекционных (в т.ч. кожно- венерологических), фтизиатрических; мебель, инвентарь, неисправное диагностическое оборудование, не содержащее токсических элементов, неинфицированная бумага, строительный мусор и т.д.; Класс Б. «Опасные отходы (инфицированные отходы)» - потенциально инфицированные отходы. Материалы и инструменты, загрязненные выделениями, в т.ч. кровью. Патологоанатомические и органические операционные отходы (органы, ткани и т.п.). Все отходы из инфекционных отделений (в т.ч. пищевые). Отходы из микробиологических лабораторий, работающих с микроорганизмами 3-4 групп патогенности (Согласно СанПиН 1.2.036-95 «Порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов 1-4 групп патогенности»). Биологические отходы вивариев; Класс В. «Чрезвычайно опасные отходы» - материалы, контактирующие с больными особо опасными инфекциями. Отходы из лабораторий, работающих с микроорганизмами 1-4 групп патогенности. Отходы фтизиатрических, микологических больниц. Отходы от пациентов с аэробной инфекцией; Класс Г. «Отходы, по своему составу близкие к промышленным» - просроченные лекарственные средства, отходы от лекарственных и диагностических препаратов, дезсредства, не подлежащие использованию, с истекшим сроком годности. Цитостатики и другие химпрепараты. Ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование; Класс Д. «Радиоактивные отходы» - все виды отходов, содержащие радиоактивные компоненты. Пользуясь данным классификатором, а также правилами утилизации различных отходов предлагаются следующие методы утилизации медицинских отходов: - отходы класса А (к ним относятся фракции: твердый бытовой мусор, пищевые отходы) сбор отходов осуществляется в многоразовые емкости или одноразовые пакеты, одноразовые пакеты располагаются на специальных тележках или внутри многоразовых баков. Пакеты для сбора отходов класс А должны иметь белую окраску или белую маркировку. Многоразовая тара после сбора и опорожнения подлежит мытью и дезинфекции. Отходы подвергаются термическому обезвреживанию либо захоронению на полигонах после дезинфекции; - отходы классов Б и В (к ним относятся фракции: биологические отходы (патологоанатомические отходы, гистологический материал и т.п.), трупы лабораторных животных, полимерно- пластиковые материалы) непосредственно на местах первичного сбора отходов обеззараживаются методом погружения в дезинфицирующей раствор, обеззараживание проводится путем полного погружения в дезинфицирующей раствор согласно инструкции. После этого отходы собираются в одноразовые герметичные пакеты. Пакеты для сбора отходов класса Б должны иметь желтую окраску или желтую маркировку. Сбор острого инструментария (иглы, эндодонтические инстументы, боры), прошедшего дезинфекцию, осуществляется отдельно от других видов отходов в одноразовую твердую упаковку. Одноразовые емкости (пакеты, баки) с отходом класса Б маркируются надписью «Опасные отходы. Класс Б» с указанием подразделения ЛПУ, названия учреждения, даты и фамилии работника, ответственно за сбор отходов. Отходы классов Б и В подвергаются термическому обезвреживанию; - отходы классов Г и Д (к ним относятся фракции: ртутьсодержащие отходы, фармацевтические отходы, радиоактивные отходы) степень их токсичности определяется согласно «Временному классификатору токсичных промышленных отходов и методическим рекомендациям по определению класса токсичности промышленных отходов» (№ 4286-87, утвержден МЗ СССР 13.05.1987). в терапевтических стоматологических лечебных учреждениях в основном образуются нетоксические и малотоксические отходы класса Г, относящие ко второму, третьему и четвертому классам токсичности. Отходы второго и третьего классов токсичности упаковываются в твердую упаковку, отходы четвертого класса – в мягкую. Отходы класса Г собираются по отработанной схеме и утилизируются специальными предприятиями в соответствии с гигиеническими требованиями. КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ПРОВЕДЕНИЯ ДЕЗИНФЕКЦИОННО-СТЕРИЛИЗАЦИОННЫХ МЕРОПРИЯТИЙ. КОНТРОЛЬ РАБОТЫ СТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ АППАРАТУРЫ. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят центры Государственного санитарно - эпидемиологического надзора и дезинфекционные станции не реже 1 раза в квартал. Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях - не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра ЦС (отделения).. Контролю подлежит: в ЦС - 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях - 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. Методика приготовления реактивов для постановки проб: 1. Азопирамовая проба: Для приготовления 1 л (куб. дм) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (куб. дм) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов. Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет 2 месяца при температуре 4 град. С (в холодильнике); при комнатной температуре (20+/-2 град. С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора в процессе хранения без выпадения осадка не снижает рабочих свойств раствора. Приготовление реактива азопирам: Перед постановкой пробы готовят реактив азопирам, смешивая равные объемные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода. Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться розовое спонтанное окрашивание реактива. При температуре выше +25 град. С раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30-40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов. В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2-3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует. 2. Амидопириновая проба: Готовят 5% спиртовой раствор амидопирина на 95% этиловом спирте. Данный раствор должен храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике; срок годности раствора - 1 месяц. Готовят 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода на дистиллированной воде. Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. Реактив готовят перед применением. 3. Фенолфталеиновая проба: Готовят 1% спиртовой раствор фенолфталеина на 95% этиловом спирте; раствор хранят во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение месяца. Методика постановки проб. Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки. В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку. Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделий на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия. Учет результатов постановки проб. При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 мин, появляется вначале фиолетовое, затем быстро в течение нескольких секунд переходящее в розово - сиреневое или буроватое окрашивание реактива. Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков), окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово - сиреневый цвет. При положительной амидопириновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств крови свидетельствует немедленное или не позже чем через 1 мин после контакта реактива с кровью, появление сине - фиолетового окрашивания различной интенсивности. При постановке азопирамовой и амидопириновой проб окрашивание реактивов, наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается. При положительной фенолфталеиновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива. В случае положительной пробы на кровь или на остаточные количества щелочных компонентов моющих средств, всю группу контролируемых изделий, от которой отбирали контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов. Результаты контроля отражают в журнале по форме N 366/у Контрольные вопросы: 1.Стоматологический инструментарий для осмотра полости рта. 2.Стоматологический инструментарий для пломбирования. 3.Стоматологический инструментарий для снятия зубных отложений. 4.Понятия «асептика» и «антисептика». Их значение в профилактике перекрестной инфекции в стоматологии. 5.Стерилизация: этапы, последовательность. 5.1.Дезинфекция: цель, методы (химический, физический, механический). 5.2.Предстерилизационная отчистка: цель, методика. 5.3.Стерилизации: цель, способы (стерилизация сухим горячим воздухом, паровой метод, химический метод, гласперленовая стерилизация). 5.4. Контроль качества предстерилизационной очистки и стерилизации (пробы: амидопириновая, фенол-фталеиновая, азопирамовая; применение индикаторов интегрированного действия). 6.Обработка и стерилизация стоматологического инструментария различного предназначения, правила работы со стерильным инструментарием, тактика медицинского персонала при контакте с инфицированным материалом. 7.Средства изоляции от слюны. Методика наложения раббердама. Ситуационные задачи 1. Студент К. для осмотра зубных рядов выбрал шпатель и зонд. Верно ли это? И как бы вы поступили в данном случае? 2. В стоматологическом кабинете медсестра обнаружила, что сухожаровый шкаф не нагревается выше 120 °С. Возможно ли осуществление стерилизации в таком режиме? 3. В стоматологической поликлинике для дезинфекции стоматологического инструментария медсестра использовала 96% спирт. Верны ли действия медсестры? 4. Для лечения кариеса врач-стоматолог использовал лоток, в котором находились следующие инструменты: экскаватор, зеркало, пинцет, штопфер-гладилка. Каких инструментов не хватает в лотке? 5. При осмотре полости рта пациента врач использовал из укомплектованного лотка пинцет и зеркало. При приеме следующего пациента врач использовал тот же лоток, но без указанных инструментов. Допустимо ли это? Тестовые задания входного, выходного контроля: 1. Текущая дезинфекция стоматологических кабинетов при двусменном режиме работы проводится: а) не реже двух раз в сутки б) не реже трех раз 2. Генеральная уборка стоматологических терапевтических кабинетов проводится: а) 1 раз в месяц б) 1 раз в день в) 1 раз в 7 дней 3. Физический способ дезинфекции заключается в: а) кипячение, обработка горячим паром б) использовании дезинфектанта 4. Инструменты, простерилизованные в гласперленовом стерилизаторе хранятся: а) 2 часа б) 1 день в) не подлежат хранению 5. Для приготовления 0,06 % дезинфицирующего хлорсодержащего раствора для генеральных уборок необходимо: а) 4 таб. на 10 л воды б) 2 таб. на 10 л воды в) 6 таб. на 10 л воды 6. Для приготовления 0,015 % дезинфицирующего хлорсодержащего раствора для текущих уборок необходимо: а) 1 таб. на 10 л воды б) 2 таб. на 10 л воды в) 5 таб. на 10 л воды 7. Для приготовления 1 % раствора дезинфектанта необходимо: а) 1 мл концентрата довести до 1 л б) 10 мл концентрата довести до 1 л в) 100 мл концентрата довести до 1 л 8. Для приготовления 3 % раствора дезинфектанта необходимо: а) 30 мл концентрата довести до 1 л б) 3 мл концентрата довести до 1 л в) 0,3 мл концентрата довести до 1 л 9. Содержание активного хлора в сухой хлорной извести не должно быть менее: а) 10 % б) 16 % в) 6 % 10. АДВ в сухом хлорамине в норме: а) 10% б) 16% в) 25% 11. Стерилизация металлических изделий производится в: а) 4 % растворе перекиси водорода, экспозиция 90 минут б) 6 % растворе перекиси водорода, экспозиция 360 минут 12. Дезинфекция металлических изделий производится в: а) 4 % растворе перекиси водорода, экспозиция 90 минут б) 6 % растворе перекиси водорода, экспозиция 360 минут 13. Режим работы парового стерилизатора: а) температура 1320 С, 2 атм., экспозиция 60 минут б) температура 1320 С, 2 атм., экспозиция 45 минут в) температура 1320 С, 2 атм., экспозиция 20 минут 14. Стерилизация металлических изделий производится: а) 1% растворе хлорной извести б) 3% растворе хлорамина в) сухожаровом шкафу 15. Температурный режим работы воздушного стерилизатора: а) 1500 С б) 1800 С в) 2400 С 16. Положительная азопирамовая проба на скрытую кровь дает окрашивание: а) розовое б) фиолетовое (сине-фиолетовая) 17. При попадании материала, инфицированного ВИЧ-инфекцией на слизистую рта необходимо полоскать рот: а) 1% раствор хлорной извести б) 1% раствор хлорамина в) 70 % спирта или 1% раствором борной кислоты г) 70 % спирта или 1% раствора хлорамина 18. Обработка кожи при попадании на нее ВИЧ-инфицированного материала производится: а) 3% раствором перекиси водорода б) 1% раствором борной кислоты в) 1% раствором хлорамина г) 6% раствором перекиси водорода или 70% спирта 19. При попадании ВИЧ-инфицированного материала на слизистую глаз проводят промывание: а) 3% раствором перекиси водорода б) 6% раствором перекиси водорода в) 1% раствором борной кислоты г) 1% раствором хлорамина 20. Отходы, класса Б, по степени опасности относят к: а) «опасным отходом» (инфицированные) б) «неопасные отходы» 21. Стерилизация обеспечивает: а) бактерицидность б) спороцидность 22. Дезинфекция обеспечивает: а) гибель вегетирующей флоры б) уничтожение спор 23. Через кровь больного человека врачу передаются: а) стрептококковые инфекции б) ВИЧ в) гепатит А г) гепатит В и С д) стафилококковые инфекции 24. Стерилизацию инструментов осуществляют: а) в сухожаровом шкафу б) в автоклаве в) кипечением г) в ультразвуковой установке д) в системе «Терминатор» 25. Для контроля качества предстерилизационной очитски инструментов от крови используют пробы: а) фенолфталеиновую б) бензидиновую в) бактериодогическую г) амидопириновую д) азопирамовую 26. Для контроля качества предстерилизационной очистки инструментов от моющих средст проводят пробы: а) фенолфталеиновую б) бензидиновую в) бактериодогическую г) амидопириновую д) азопирамовую 27. Перевязочный материал стерилизуют: а) в автоклаве б) в сухожаровом шкафу 28. Полное отсутствие микроорганизмов обеспечивается: а) асептикой б) антисептикой в) дезинфекцией 29. При попадании ВИЧ-инфицированного материала в нос необходимо: а) промыть водой, закапать 70 % спирт б) промыть водой, закапать 1% водный раствор борной кислоты в) промыть водой, закапать 0,05% раствором перманганата калия 30. Аптечка для оказания первой помощи должна быть: а) в каждом стоматологическом кабинете б) одна аптечка у старшей мед. сестры отделения в) одна аптечка на два кабинета Алгоритмы практических манипуляций Этапы: 1. Подготовка рабочего места - 5 мин 2. Демонстрация преподавателем проведения контрольных проб этапов предстерилизационной очистки, стерилизации. - 25 мин. 3. Самостоятельная работа по освоению навыков проведения контрольных проб этапов предстерилизационной очистки, стерилизации - 75 мин. 4.Уборка рабочего местам - 5 мин. Темы рефератов. 1.Организация санитарно-эпидемиологического режима в стоматологическом кабинете. 2.Констроль качества проведения дезинфекционно-стерилизационных мероприятий. Темы УИРС. Дезинфекция стоматологических инструментов. Предстерилизационная очистка и стерилизация стоматологических инструментов. Дезинфекция поверхностей стоматологического кабинета. Дезинфекция воздуха стоматологического кабинета. Средства изоляции от слюны. Формы отработки практического занятия. Студент, получивший неудовлетворительную оценку на теоретической либо практической части занятия, отрабатывает тему занятия устно и практические навыки во время индивидуальной отработки преподавателя. Студент, пропустивший практическое занятие, также отрабатывает теоретическую и практическую части занятия во время индивидуальной отработки у преподавателя, предварительно написав реферат по теме пропущенного занятия. Список литературы:Основная литература 1. Пропедевтическая стоматология. Под редакцией профессора Э.А. Базикяна – Учебник для медицинских ВУЗов – М. «ГЭОТАР-Медиа». – 2009. 2. Пропедевтическая стоматология. – М.М. Пожарицкая, Т.Г.Симакова. – М. «Медицина». – 2004. – 304с. Дополнительная литература 1. Поюровская И.Я. Стоматологическое материаловедение: Учебное пособие /И.Я.Поюровская.-М.:ГЭОТАР-Медиа, 2007.- 192с. 2. Базикян Э.А. Стоматологический инструментарий: Цветной атлас. /Э.А.Базикян. – М.:ГЭОТАР-Медиа, 2007.- 168с. Периодические издания
Библиотечно-информационные ресурсы и средства обеспечения образовательного процесса, в т.ч. электронно-библиотечные системы и электронно-образовательные ресурсы (электронные издания и информационные базы данных).
|