санитарная микробиология. Основы санитарной микробиологии
 Скачать 40.64 Kb.
|
|
РАЗДЕЛ Vl САНИТАРНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ ГЛАВА 11 ОСНОВЫ САНИТАРНОЙ МИКРОБИОЛОГИИ 11.1. Санитарно-микробиологическое исследование: Санитарная микробиология — наука о микрофлоре окружающей среды (воды, воздуха, почвы и др.) и связанных с ней процессах, которые могут оказывать неблагоприятное влияние на здоровье людей. С помощью санитарно-микробиологических исследований решают вопрос о наличии или степени вероятности присутствия опасных для человека микробов или их токсинов в объектах внешней среды (воде, воздухе, почве, пищевых продуктах, лекарствах, различных материалах, оборудовании и др.). Комплексное санитарно-микробиологическое исследование включает: определение косвенных показателей неблагополучия — общей микробной обсемененности (микробного числа), титра или индекса санитарно-показательных микробов, степени микробной порчи; реже прямых — обнаружение патогенных микробов или их токсинов в объекте. Микробным числом называют количество микробов в 1 мл жидкости, 1 г твердого вещества или 1 кубометре воздуха. Для определения делают мерные посевы материала на питательный агар с подсчетом выросших колоний (1 колонию обычно образует 1 клетка). Результат выражают в колониеобразующих единицах — КОЕ/мл, КОЕ/г или КОЕ/м3. Если, например, на чашке с посевом 1 мл воды, разведенной 1:1000, выросло 120 колоний, то микробное число составляет 1,2 • 105 КОЕ/мл. В соответствии с принятым стандартом (ГОСТом) водопроводная вода должна иметь микробное число менее 50. Микробное число почвы определяют аналогично после посевов 10-кратных разведений почвенной суспензии. Санитарно-показательными называют микробы, являющиеся представителями нормальной микрофлоры тела человека и служат показателями санитарного неблагополучия объекта, т. е. его загрязнения выделениями человека. В качестве санитарно-показательных выбраны микробы, отвечающие следующим требованиям: постоянно и в больших количествах присутствующие в выделениях человека и ограниченного круга теплокровных животных; не имеющие других природных резервуаров или естественных сред обитания; сохраняющиеся в объектах в течение определенных сроков, близких к срокам выживания патогенных микробов; не размножающиеся (интенсивно) в объектах внешней среды; легко идентифицируемые, поддающиеся количественному определению. Например, основной показатель фекального загрязнения почвы, пищевых продуктов, рук, спецодежды персонала, воды, лабораторной посуды, предметов обихода, лекарственных средств — бактерии группы кишечной палочки (БГКП) или колиформные бактерии. Воздух оценивают по содержанию стафилококков и стрептококков, попадающих в него вместе с другими микробами из дыхательных путей и полости рта человека. К СПМ относят также эшерихии, клостридии, энтерококки, колифаги (бактериофаги). В ходе оценки состояния объекта определяют индекс — количество СПМ в единице объема (1 литр, 1 г или 1 кубометр) материала или титр — наименьший объем (в мл), или весовое количество (в г) материала, в котором еще обнаруживаются санитарно-показательные микробы. Например, основной показатель фекального загрязнения — колиформные бактерии, их определение проводят в смывах с рук, спецодежды персонала, лабораторной посуды, в нестерильных лекарственных формах, инъекционных растворах и глазных каплях до стерилизации. Воздух оценивают по содержанию золотистого стафилококка, попадающего в него из верхних дыхательных путей, ротовой полости. Его считают показателем капельного загрязнения воздуха. Другими микробами, отражающими санитарное неблагополучие того или иного объекта, являются дрожжевые и плесневые грибы, синегнойная палочка, сальмонеллы. Точность санитарно-микробиологических исследований обеспечивается: правильным отбором, хранением и транспортировкой проб в лабораторию, использованием стандартных методов, комплексностью исследования и его повторностью. 11.1.1. Вода Среди объектов, подлежащих микробиологическому контролю, важное место отводится исследованию воды. Микробное загрязнение воды более опасно, по сравнению с химическим, так как при отсутствии у воды органолептических признаков загрязнения могут возникать массовые заражения, имеющие тяжелые последствия. В этой связи, например, для питьевой воды не устанавливают нижнего переносимого предела (ПДК, как принято для химических веществ), а считают, что она должна быть свободна от патогенов. В соответствии с действующими нормативными документами контролю подлежат: вода питьевая (централизованного и местного водоснабжения, т.е. из водопровода, колодцев, родников и скважин); вода плавательных бассейнов; вода открытых водоемов (из рек, водохранилищ); сточные воды; вода, очищенная для приготовления лекарств; вода для приготовления инъекционных растворов и глазных капель. Предупредительный надзоросуществляют: при решении вопросов водоснабжения и канализации населенных территорий; при санитарной оценке бассейнов, пляжей, мест коллективного отдыха и т.д. Текущий санитарный надзоросуществляют: при оценке качества питьевого водоснабжения населенных мест; при оценке санитарного состояния поверхностных вод для установления степени влияния биологической контаминации на способность воды к самоочищению; при контроле над обезвреживанием сточных вод; по эпидемическим показаниям для выяснения возможного пути передачи инфекционных заболеваний (проводят обнаружение санитарно-показательных и патогенных микроорганизмов). Контроль воды осуществляют в соответствии с имеющимися нормативами (табл. 11.1). Отбор проб. Пробы воды питьевой из разводящей сети городского водопровода отбирают работники центра госсанэпиднадзора. Для отбора проб используют стерильные флаконы емкостью 500 мл с притертой резиновой, корковой или каучуковой пробкой. Предварительно проводят обжигание кранов пламенем горящего тампона, смоченного спиртом, и спускают воду в течение 10—15 мин при полностью открытом кране. Бумажный колпачок с пробкой снимают с флакона непосредственно перед ее заполнением, не касаясь руками горлышка флакона и пробки. Пробы воды из бассейнов в ходе их эксплуатации отбирают не менее чем в двух точках (глубокой и мелкой части) с 25 — 30 см от поверхности в количестве одного литра один раз в месяц. Пробы воды очищенной, используемой для приготовления лекарственных форм (кроме лекарств для инъекций и глазных капель) отбирают в количестве 500 мл в стерильные бутылки, закрытые ватными пробками и бумажными колпачками. Пробы отбирают из бюретки, у которой предварительно обжигают кончик с помощью ватного тампона, смоченного спиртом. Т а б л и ц а 11.1
Пробы воды очищенной для приготовления инъекционных растворов и глазных капель отбирают в стерильные флаконы в количестве 20 мл непосредственно из баллона сразу же после перегонки или из сосудов, в которых вода стерилизуется. Методика исследования. Общее микробное число. ОМЧ — количество мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных бактерий в 1 см3 (1 мл) воды — определяют у всех видов воды. Исследуемую воду вносят по 1 мл в две стерильные чашки Петри и заливают расплавленным и остуженным питательным агаром (метод глубинного посева). Инкубируют при 37 °С 24 ч, после чего при комнатной температуре еще 24 ч. Подсчитывают на 2-х чашках число выросших колоний (на поверхности и в глубине питательного агара) и рассчитывают среднее арифметическое значение. Для выявления плесневых и дрожжевых грибов исследуемую воду засевают по 0,5 мл на среду Сабуро и инкубируют при комнатной температуре в течение 3 — 4 сут. Подсчитывают число выросших колоний и также рассчитывают среднее арифметическое. Результат (ОМЧ) вычисляют путем суммирования среднего арифметического числа бактерий, дрожжевых и плесневых грибов и выражают в КОЕ/мл. Определение колиформных бактерий. Присутствие колиформных бактерий также определяют в воде всех видов. Общие колиформные бактерии — это Гр- аспорогенные палочки, не обладающие оксидазной активностью и сбраживающие лактозу с образованием кислоты и газа при 37 °С в течение 24 — 48 ч (или сбраживающие глюкозу с образованием кислоты и газа при температуре 37 °С в течение 24 ч). Термотолерантные колиформные бактерии обладают теми же характеристиками, но дополнительно сбраживают лактозу с образованием кислоты и газа при 44,5 °С через 24 ч. Термотолерантные колиформные бактерии быстро отмирают во внешней среде, поэтому их обнаружение свидетельствует о свежем фекальном загрязнении воды. Для определения колиформных бактерий в питьевой воде и воде очищенной используют метод мембранных фильтров. Исследуемую воду (3 по 100 мл) пропускают через 3 бактериальных фильтра из нитроцеллюлозы, которые затем помещают на среду Эндо и инкубируют при 37 °С 24 ч. Подсчитывают количество вы-росших на фильтрах лактозоположительных колоний, идентифицированных как колиформные бактерии. Определение колифагов. Присутствие колифагов (бактериофагов, паразитирующих на Е. coli) определяют в воде поверхностных источников и питьевой воде, подготовленной из нее, а также в сточных водах. Они являются индикаторами эффективности охраны грунтовых вод и очистки питьевой воды. Исследование проводят методом агаровых слоев по Грациа. Для титрования колифагов исследуемую воду смешивают с расплавленным и остуженным питательным агаром, куда вносят также индикаторный штамм Е. coli. Полученную смесь выливают вторым слоем на питательный агар в чашке Петри и после застывания среды чашку инкубируют при 37 °С 24 ч. В результате индикаторная культура образует равномерный сплошной рост, а при наличии колифагов в этом «газоне» образуются прозрачные бляшки («негативные колонии» бактериофага). Результат исследования выражают в бляшкообразующих единицах (БОЕ/мл). Определение спор сульфитредуцирующих клостридий. Присутствие спор сульфитредуцирующих клостридий определяют в воде для оценки эффективности работы сооружений по подготовке питьевой воды. Для этого испытуемую воду вносят в расплавленную и остуженную среду Вильсона —Блера. Среда содержит тиосульфат (гипосульфит) и бесцветную соль железа. В результате прорастания спор, размножения клостридий и восстановления ими сульфита образуется сульфид железа, который придает среде черный цвет. При использовании воды из поверхностных водоисточников, а также в крупных населенных пунктах питьевую воду исследуют ежедневно. В случае повторного обнаружения колиформных бактерий и/или колифагов проводят определение в воде возбудителей бактериальных и вирусных кишечных инфекций. Ввиду того что очистка и обеззараживание воды, а также существующие методы санитарно-микробиологического исследования воды по ряду причин могут быть неэффективными, наилучшим способом обеспечения безопасности воды считается охрана водоисточников от микробного загрязнения. 11.1.2. Почва Знания состава и значения микрофлоры почвы для человека, влияния на нее различных условий необходимы для корректной санитарно-микробиологической оценки почв (в плане ее эпидемической безопасности). Санитарно-микробиологическое исследование почвы регламентируется инструкциями по предупредительному и текущему санитарному надзору. Предупредительный надзор осуществляют: а) при планировке, строительстве и реконструкции вновь заселяемых участков и населенных мест; б) при выборе участков для строительства лечебно-профилактических и аптечных учреждений, санаториев, детских учреждений; в) при решении вопросов водоснабжения и канализации населенных территорий; г) при санитарной оценке пляжей, мест коллективного отдыха и т.д. Текущий санитарный надзор осуществляют: а) при оценке санитарного состояния почвы и ее способности к самоочищению после загрязнений (например, почву детских садов, больниц, зон отдыха исследуют 2 раза в год); б) при контроле за почвенными и биотермическими методами обезвреживания сточных вод и отбросов (1—4 раза в месяц); Т а б л и ц а 11.2
Примечание. * — наименьшее количество материала (г), в котором еще обнаруживаются эти СПМ; ** — количество особей СПМ в 1 г исследуемой почвы. в) по эпидемическим показаниям для выяснения возможного пути передачи инфекционных заболеваний. При осуществлении текущего санитарного надзора рекомендуется сокращенный анализ. Он включает: определение ОМЧ, БГКП, титра строгих анаэробов, термофильных бактерий, нитрифицирующих бактерий. В полный санитарно-микробиологический анализ дополнительно входят: определение численности и процентного отношения спор к общему количеству микроорганизмов, количество актиномицетов, грибов, целлюлозоразрушающих микроорганизмов и аммонификаторов, основных групп почвенного микробиоценоза и ряд дополнительных исследований (например, токсичность почв для микроорганизмов). По эпидемическим показаниям в ходе исследований проводят обнаружение патогенных микроорганизмов (табл. 11.2). Отбор проб. Пробы отбирают с прямоугольного участка размером не менее чем 5 х 5 м из 5 точек («метод конверта»). При этом в условиях асептики берут с глубины 20 — 25 см образцы для приготовления смешанной пробы весом 1 кг. Методика исследования. ОМЧ почвы определяют глубинным посевом (на плотной среде) из 10-кратных разведений или методом прямой микроскопии (по Перфильеву). Если предполагается невысокая степень фекального загрязнения, БГКП в почве определяют методом бродильных проб или методом мембранных фильтров (см. выше); при высокой степени — прямым посевом почвенной суспензии (1:10) на среду Эндо. Важным критерием санитарного состояния почвы и ее способности к самоочищению является перфрингенс - титр почвы (минимальное количество почвы, в котором еще определяются Clostridium perfringens). При фекальном загрязнении почвы уже через 4—5 мес. эшерихии исчезают, а клостридии обнаруживают в титре 0,01 г. Определяют перфрингенс-титр глубинным посевом на среду Вильсона—Блера из 10-кратных разведений почвенной суспензии. Число термофильных бактерий определяют глубинным посевом на плотные среды с инкубированием при 60 °С в течение суток. Титр нитрифицирующих бактерий определяют посевом из 10-кратных разведений почвенной суспензии на жидкую синтетическую среду Виноградского. На свежее фекальное загрязнение указывают: обнаружение энтерококков, большое количество БГКП при отсутствии нитрифицирующих бактерий и термофилов, относительно высокое содержание вегетативных форм клостридий. Определение термофильных бактерий помогает оценить загрязнение почвы навозом, компостом или сточными водами и стадию разложения их органического субстрата. Появление нитрифицирующих бактерий указывает на развитие процессов самоочищения. Для более полной оценки процесса самоочищения определяют также группы микроорганизмов, быстро разрушающих органический субстрат: бациллы, актиномицеты, грибы. 11.1.3. Воздух Санитарно-микробиологические показатели воздуха нормируются в зависимости от типа и назначения помещений (табл. 11.3). Их определяют седиментационным или аспирационным методами. Т а б л и ц а 11.3
Методы исследования. Аспирационный метод отбора проб — принудительное осаждение микробных частиц из воздуха. Для этого используют, например, пробоотборник аэрозоля бактериологического (ПАБ-1). Принцип его действия основан на электризации частиц исследуемого воздуха и последующем их осаждении на электроде противоположного знака, роль которого играет металлический поддон с питательной средой (расчетная скорость протягивания воздуха 125—150 л/мин). Принцип действия другого прибора — аппарата Кротова — основан на механическом прокачивании воздуха через клиновидную щель в крышке, расположенной над вращающейся поверхностью питательной среды в чашке Петри. При этом происходит инерционное осаждение бактерий из воздуха на поверхность питательной среды (расчетная скорость протягивания воздуха — 25 л/мин, а чувствительность метода ниже, чем при использовании аппарата ПАБ-1). После инкубирования питательной среды подсчитывают количество выросших колоний и выражают обсемененность воздуха в КОЕ (колониеобразующих единицах) на определенный объем исследованного воздуха. В связи с распространением госпитальных инфекций в воздухе больничных помещений, помимо обычных показателей, определяют содержание грамотрицательных бактерий. Седиментационный метод — осаждение микробов на поверхность плотной питательной среды под действием силы тяжести (гравитации). Открытую чашку Петри с питательной средой ставят на горизонтальную поверхность на высоте рабочего стола и оставляют на определенное время. Затем чашку закрывают и инкубируют в термостате. С помощью этого метода можно ориентировочно определить микробную обсемененность воздуха, используя формулу Омелянского: на 100 см2 поверхности агара за 5 мин оседают бактерии из 10 л воздуха (10 дм3). Результаты получаются заниженными примерно в 3 раза по сравнению с данными, получаемыми при использовании аппарата Кротова. Основные показатели санитарного состояния воздуха следующие. Общее микробное число. ОМЧ воздуха — количество колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1 м3 воздуха (подсчитывают колонии, вырастающие на поверхности питательного агара при посеве определенного объема воздуха и инкубации в течение 24 ч при 37 °С и 24 ч при комнатной температуре). Присутствие Staphylococcus aureus. В определенном объеме воздуха определяют наличие золотистого стафилококка (воздух засевают на желточно-солевой агар или желточную среду, где вырастают характерные колонии грамположительных кокков, обладающих ферментом плазмокоагулазой). Присутствие грибов. Определяют наличие в воздухе дрожжеподобных и плесневых грибов — подсчитывают количество колоний, вырастающих на среде Сабуро за 96 ч инкубации при 22 — 28 °С. Присутствие патогенных микроорганизмов. По эпидемиологическим показаниям в воздухе определяют наличие сальмонелл, микобактерий, вирусов. В соответствии с «Методическими указаниями по микробиологическому контролю в аптеках» (М3 СССР, 1985 г.) плановые исследования воздуха на общую бактериальную обсемененность, стафилококк и грибы проводятся не реже четырех раз в год. 11.1.4.Пищевые продукты Гигиенический контроль пищевых продуктов предусматривает их оценку по следующим показателям: величине общей микробной обсемененности (ОМЧ); наличию БГКП; присутствию условно-патогенных бактерий (кишечной палочки, золотистого стафилококка, антракоидной палочки, протеев, клостридий); наличию патогенных микроорганизмов (сальмонелл и др.); присутствию специфических возбудителей микробной порчи продукта. Основными показателями качества продуктов являются ОМЧ и наличие патогенных микроорганизмов. Обнаружение последних ввиду трудоемкости проводят лишь при первичной обработке мяса и анализе мясных продуктов, молока (не всегда), а также при контроле консервного производства. Для различных групп пищевого сырья и продуктов питания действуют соответствующие стандарты (ГОСТы) и критерии санитарного благополучия, а в случае их отсутствия придерживаются гигиенических требований к качеству. Обычно при этом нормируется масса (вес) продукта, в котором не допускается присутствие БГКП, условно-патогенных и патогенных микроорганизмов, а также указывается допустимое микробное число продукта, в КОЕ/г(мл). Отбор проб. Жидкие продукты отбирают стерильной пипеткой или половником, сыпучие — стерильной мешалкой или ложкой (то и другое после тщательного перемешивания). Из кусковых продуктов образцы вырезают стерильным ножом в объеме (массе), достаточном для анализа. Методика исследования. Перед проведением исследования пробы гомогенизируют и готовят их серийные разведения (1: 10, 1:100, 1:1000 и т. д.). Для получения гомогенных суспензий исследуемого материала иногда используют ИХН с добавлением твина-80 или 0,1%-ю лептонную воду. Определение общей микробной обсемененности. ОМЧ определяют у тех продуктов и блюд, которые не должны содержать специфических микроорганизмов (не исследуют кисломолочные продукты, квашения и т.п.). Методики исследования жидких и плотных продуктов такие же, как для воды и почвы соответственно, но посевы инкубируют при 30 °С в течение 72 ч. Определение БГКП (см. выше). Определение Staphylococcus aureus. Определенное количество исследуемого материала засевают для накопления стафилококков в солевой бульон, например: 1 мл(г) в пробирку с 5 мл среды, инкубируют при 37 °С в течение 24 ч. При наличии роста (помутнении среды) делают высевы на желточно-солевой агар для получения изолированных колоний, которые затем идентифицируют по культуральным свойствам, морфологии (в мазке по Граму), ферментации глюкозы и маннита, наличию плазмокоагулазы. Определение других условно-патогенных микроорганизмов. Другие УПМ также определяют микробиологическим методом (с использованием соответствующих накопительных и дифференциально- диагностических сред). Определение сальмонелл. Гомогенизированную навеску продукта (обычно 25,0 г) вносят в среду обогащения (селенитовый бульон) и инкубируют при 37 °С. Через сутки делают высевы на плотные дифференциальные среды (висмут-сульфитный агар) и идентифицируют подозрительные культуры по биохимическим и другим признакам. Исследование консервов. Особым объектом санитарно-микробиологического исследования являются консервы. Эти продукты герметично укупорены, прошли обработку тепловыми или комбинированными методами и предназначены для длительного хранения (в том числе при комнатной температуре). Если в продукте были термостойкие споры некоторых бацилл или клостридий, промышленная стерильность консервов может не достигаться и такой продукт становится небезопасным для здоровья. Среди остаточной флоры консервов могут быть также лактобактерии, дрожжевые и плесневые грибы, способные к вегетации и порче продукта. В зависимости от величины pH и режима тепловой обработки выделяют несколько групп консервированных продуктов, для каждой из которых предусмотрены свои направления санитарно-микробиологического исследования с определением: промышленной стерильности; специфических возбудителей микробной порчи; патогенных микроорганизмов (по эпидпоказаниям). Перед исследованием осматривают упаковку (вскрывшиеся консервы на промышленную стерильность не исследуют). Для стимуляции размножения мезо- и термофильной флоры консервы термостатируют при соответствующей температуре 3-7 сут. После вскрытия содержимое упаковки исследуют микробиологическим методом в соответствии с действующими инструкциями. Т а б л и ц а 11.4
В нестерильных консервах определяют ОМЧ, выявляют наличие лактобактерии, бацилл группы Bacillus subtilis, клостридий, кокков, дрожжевые и плесневые грибы (в зависимости от продукта). Поскольку химический состав продуктов и способы консервирования, а также их исходная и остаточная микрофлора весьма вариабельны, существенно отличаются и критерии доброкачественности разных консервов. Так, в газированных напитках ОМЧ не должно превышать 50 и в 1 мл не допускается наличие лактобактерий и дрожжей, а в квашеной капусте и фруктовых консервах с pH менее 3,8 недопустимо присутствие кокков, дрожжевых и плесневых грибов. Основные показатели качества пищевых продуктов приведены в табл. 11.4. 11.2. Санитарный режим лечебно-профилактических учреждений Лечебно-профилактические учреждения (ЛПУ) — больницы, родильные дома, лечебно-диагностические стационары и центры — ввиду своих особенностей представляют угрозу возникновения и распространения внутрибольничных инфекций (ВБИ). К факторам, способствующим распространению ВБИ, относят: большую концентрацию восприимчивых к инфекции лиц при их круглосуточном пребывании в стационаре, множество специфических путей перемещения микроорганизмов во время лечебно-диагностических процедур и ухода за больными (руки персонала, приборы, инструменты и др.), применение средств и воздействий, ослабляющих антиинфекционную защиту пациентов, нерациональное применение антимикробных средств. Наибольший риск возникает при переливании крови и проведении так называемых инвазивных манипуляций (операций, инъекций, катетеризаций и др.), связанных с повреждением естественных барьеров кожи и слизистых оболочек. При распространении ВБИ в эпидемический процесс могут включаться как пациенты, так и лица из числа персонала. Для сведения к минимуму возможности возникновения и распространения ВБИ в учреждениях необходимо поддерживать санитарный режим. 11.2.1.Режимные мероприятия в ЛПУ Санитарный режим ЛПУ включает: организационные меры (контроль за режимом поступления, пребывания и выписки пациентов, за службой крови и ее препаратов, за назначением инвазивных манипуляций и антимикробных средств, за режимом стерилизации и дезинфекции в ЛПУ); медицинские осмотры и обследование персонала (при поступлении на работу и периодические профилактические): на возбудителей венерических инфекций, золотистый стафилококк, патогенные энтеробактерии (результаты осмотров заносят в индивидуальную санитарную книжку); работу только в спецодежде, соответствующей выполняемым операциям (для работы в асептических условиях необходим комплект стерильной одежды); соблюдение сроков хранения стерильного материала (см. подразд. 12.1.4); соблюдение правил личной гигиены; влажную уборку помещений (оборудования, стен, полов) с применением дезинфицирующих средств; дезинфекция ультрафиолетом воздуха в операционном блоке, перевязочных и др.; соблюдение правил использования дезинфицирующих и антисептических средств (в том числе сроков хранения); дезинфекцию использованных материалов (см. подразд. 12.1.3); проведение санитарно-микробиологических исследований. Для предупреждения ВБИ в плане текущего надзора проводятся санитарно-микробиологические исследования: рук хирургов, кожи операционного поля, перевязочного и шовного материала, инструментов, воздуха, поверхностей оборудования. Обязательному исследованию подлежат специфические устройства, расположенные в операционном зале, наркозной, пред- и послеоперационной палатах, перевязочной, а также в палатах интенсивной терапии и реанимации, кабинетах физиотерапии и лечебной физкультуры. В акушерских стационарах обязательно обследуют родильные залы, операционный блок, послеродовые и детские палаты, комнаты пастеризации и хранения грудного молока. Важными направлениями является контроль стерильности изделий медицинского назначения и обследование персонала на микробоносительство. Конкретными объектами контроля, например, являются: тазы и щетки для мытья рук хирургов, перчатки, зонды, катетеры, кровать, подготовленная для оперированного больного, ларингоскоп, дыхательный мешок, кушетка для перевязок, халат и рабочий стол медсестры, термометры, лекарственные формы для инъекций, для ухода за кожей новорожденных, внутренняя поверхность холодильника для хранения лекарств и др. Контролируют также качество уборки и дезинфекции помещений. В плане самоконтроля лаборатории ЛПУ проводят санитарно-микробиологические исследования 1 — 4 раза в месяц, лаборатории центров госсанэпиднадзора — 2 — 4 раза в год и внепланово (по эпидпоказаниям, в случае санитарного неблагополучия). Контроль стерильности изделий медицинского назначения описан в подразд. 12.1.4. Смывы с рук берут у всех участвующих в операции; исследование проводят, как указано выше. Для выявления носителей золотистого стафилококка персонал хирургических и акушерских отделений, а также отделений реанимации и интенсивной терапии обследуют 1 раз в квартал. Материал из передних отделов обеих половин носа берут стерильным сухим или увлажненным тампоном и непосредственно засевают штрихами на поверхность желточно-солевого агара в чашке Петри (вращая тампон). В другом варианте на ту же среду засевают, растирая шпателем, 0,1 мл из 5 мл ИХН, в котором в течение 10 минут отмывали тампон. После инкубирования среды подсчитывают количество колоний, образованных Staphylococcus aureus (по культуральным и морфолого-физиологическим признакам). Повторное выделение этих микроорганизмов в высокой концентрации (103 КОЕ в 1 мл и более) свидетельствует о микробоносительстве. Для санации микробоносители проходят специальные процедуры с применением антимикробных воздействий. 11.2.2.Санитарно-микробиологическое исследование оборудования, рук и спецодежды персонала Отбор проб. С рабочих столов, весов, посуды, тары для хранения материала, оборудования, рук и спецодежды персонала пробы отбирают методом смыва стерильным ватным тампоном, помещенным в пробирки со стерильным ИХН или пептонной водой. При отборе проб с крупных плоских поверхностей (столы, халаты и т.д.) используют проволочную рамку-шаблон площадью 100 см2. Перед взятием пробы шаблон фламбируют, а тампоны увлажняют. Для проведения смывов с рук увлажненным ватным тампоном (или марлевой салфеткой, 5x5 см) протирают руки обследуемого, начиная с менее загрязненных участков кожи: тыльную часть ладони, ладонь, межпальцевые поверхности, ногтевые ложа и подногтевые поверхности. Перед исследованием смывную жидкость с тампоном или салфеткой встряхивают в течение 10 мин для десорбции микроорганизмов и далее смывную жидкость используют для посевов. Методика исследования. Определение БГКП (см. выше). Определение Staphylococcus aureus.1 мл смывной жидкости засевают в пробирку с 5 мл солевого бульона, инкубируют в термостате при 37 °С в течение 24 ч (далее, как в разделе по исследованию пищевых продуктов). Требования к микробиологической чистоте: присутствие БГКП, синегнойной палочки, протеев, стафилококка в смывах не допускается. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||