отчет о проделанной работе фельдшера-лаборанта бак.лаборатории. Морозова. С 2000 по 2002 года работала в муз Городская поликлиника 2 лаборантом
 Скачать 148.5 Kb.
|
|
Я, Морозова Наталья Петровна, окончила Волжское медицинское училище в 1979 году по специальности «Акушерка», в 1994 году прошла специализацию «Бактериологическая лабораторная диагностика», в 2002 году согласно приказу Волгоградского областного отдела здравоохранения прошла профессиональную переподготовку на базе Волжского медицинского колледжа по специальности «Лабораторная диагностика». С 1979 года по 1983 года работала в медсанчасти Волжского химкомплекса в бактериологической лаборатории лаборантом. С 1983 по 1996 года работала в МУЗ «Инфекционная больница» в бактериологической лаборатории бактериологом. С 1996 по 2000 года работала врачом-бактериологом в комбинате питания и торговли. С 2000 по 2002 года работала в МУЗ «Городская поликлиника №2» лаборантом. С 2002 по 2005 года работала в МУЗ «Инфекционная больница» лаборантом бактериологической лаборатории. С 2005 года переводом работаю в МУЗ «Городская детская поликлиника №2»в централизованной бактериологической лаборатории фельдшером-лаборантом. В июле 2011 года централизованная бактериологическая лаборатория была преобразована в бактериологическое отделение клинико-диагностической лаборатории (КДЛ) МБУЗ «Городская детская поликлиника №2». Лаборатория находится в городе Волжском по адресу: ул. Большевистская,42. В июле 2011 года централизованная бактериологическая лаборатория была преобразована в бактериологическое отделение клинико-диагностической лаборатории (КДЛ) МБУЗ «Городская детская поликлиника №2». Устройство бактериологической лаборатории соответствует требованиям Санитарных правил СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней». Бактериологическая лаборатория расположена в отдельно стоящем здании, на входной двери лаборатории размещается вывеска с названием лаборатории и международный знак «Биологическая опасность». Лаборатория имеет 2 входа: один - для сотрудников, другой - для доставки материала на исследование. Получение материала проводится через передаточное окно. Лаборатория обеспечена водопроводом, канализацией, электричеством, отоплением, вентиляцией и пожарной сигнализацией. Все помещения лаборатории имеют естественное и искусственное освещение в зависимости от вида работ в соответствии с требованиями действующих нормативных документов. Помещения лаборатории разделены на "заразную" зону, где осуществляется манипуляции с ПБА III-IV групп патогенности и их хранение, и "чистую" зону, где не проводят работы с микроорганизмами и их хранение. В "чистой" зоне лаборатории расположены следующие помещения: - гардероб для верхней одежды; - помещения для проведения подготовительных работ (препараторская, моечная, приготовление и разлив питательных сред); - помещение для стерилизации питательных сред и лабораторной посуды (стерилизационная); - помещение для работы с документами и литературой; - помещение для отдыха и приёма пищи; - подсобное помещение; - душ; - туалет. В "заразной" зоне расположены следующие помещения: - помещение для приема и регистрации материала; - боксированные помещения; - комнаты для проведения бактериологических исследований; - комната для проведения серологических исследований; - комната для посевов; - термальная комната; - комната для обеззараживания ПБА (автоклавная). Помещения в «заразной» зоне оборудованы бактерицидными облучателями для обеззараживания воздуха и поверхностей в соответствии с нормативами. Помещения в «заразной» зоне оборудованы и спланированы для обеспечения поточности продвижения патогенных биологических агентов. Внутренняя отделка помещений выполнена в соответствии с их функциональным назначением. Лабораторное оборудование и мебель (столы, стеллажи, стулья и т.д.) гладкие, без острых краёв и шероховатостей и имеет покрытие, устойчивое к действию моющих и дезинфицирующих средств. Поверхность столов не имеет швов и трещин. Поверхность пола, стен, потолка в помещениях "заразной" зоны легко обрабатываема. Ширина проходов к рабочим местам или между двумя рядами выступающего оборудования имеет расстояние не менее 1,5 метров, что соответствует требованиям СП 1.3.2322-08. В лаборатории обязательно промаркированы медицинская аппаратура, рабочие столы, стеллажи. Лаборатория оборудована пожарной сигнализацией и обеспечена средствами пожаротушения в соответствии с требованиями пожарной безопасности. Лаборатория проводит бактериологические исследования для лечебно-профилактических учреждений города Волжского. Основными направлениями в работе бактериологической лаборатории являются: - безусловное выполнение требований Санитарных правил СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III – IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней» и СанПиН 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами»; - повышение эффективности работы лаборатории; - улучшение организационно – методической работы с кадрами; - безусловное выполнение плановых заданий по всем видам лабораторных исследований, соблюдение объема и структуры санитарно-бактериологических исследований; - активное внедрение новых методов лабораторных исследований; - регулярное участие в Федеральной системе внешней оценки качества клинических лабораторных исследований (ФСВОК). Функции бактериологической лаборатории: - качественно и в срок выполнять задания по всем видам бактериологических исследований; - представлять в установленном порядке отчеты о работе лаборатории; - вести постоянный анализ объема и структуры, проводимых лабораторией исследований; - своевременно и качественно внедрять нормативно-распорядительную документацию на новые методы исследований; - проводить систематическое повышение деловой (профессиональной) квалификации работников и уровня их правовых знаний. В лаборатории обеспечена полная взаимозаменяемость специалистов. Дежурные бригады, работающие в выходные дни, и дежурные фельдшеры-лаборанты, работающие в вечернее время, обеспечивают работу лаборатории в полном объеме исследований. Работа в бактериологической лаборатории построена на строгом соблюдении СП, СанПиН, Отраслевого стандарта ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы» МЗ СССР – Москва, 1985г., а также в соответствии со следующими приказами, МУ, МР, МУК: СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III и IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней». СанПиН 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами». СП 3.1.5.2826-10 «Профилактика ВИЧ-инфекции». МУ 4.2.698-98 «Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции». МУК 4.2.1887-04 «Лабораторная диагностика менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов». И МЗ СССР 1984 г «Инструкция по бактериологическому и серологическому исследованию при коклюше и паракоклюше». Приказ МЗ СССР № 535 от 22.04.85 г. «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно - профилактических учреждений». Методические указания по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями № 04-723/3 от 17.12.1984г. Методические рекомендации «Бактериологическая диагностика брюшного тифа и паратифов А, В и С» №0100/13745-34 от 29.12.2007г. Методические указания МУК 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам». Методические указания МУК 4.2.2218-07 «Лабораторная диагностика холеры». Инструкция. Эпидемиология, лабораторная диагностика иерсиниозов, организация и проведение профилактических и противоэпидемических мероприятий № 15-6/42 от 30.10.1990г. Методические рекомендации «Бактериологическая диагностика дисбактериоза кишечника у онкологических больных». МЗ СССР № 101-12/364 от 05.11.1982г. Методические рекомендации «Бактериологическая диагностика дисбактериоза», МЗ СССР от 30.12.1988г. Методические указания МУК 4.2.2316-08 «Методы контроля бактериологических питательных сред». Методические указания МУ 2.1.4.1057-01 «Организация внутреннего контроля качества санитарно-микробиологических исследований воды». В лаборатории проводятся следующие исследования материала: на возбудителя дифтерии, на возбудителей менингококковых инфекций, кровь на стерильность и гемокультуру, на возбудителей кишечных инфекций, на дисбактериоз, на условно-патогенные микроорганизмы, на холерный вибрион, на стафилококк и другие микроорганизмы. Также проводятся серологическая диагностика таких заболеваний, как брюшной и сыпной тиф, паратифы, дизентерия, сальмонеллез, кишечный иерсиниоз, псевдотуберкуллез, бруцеллез, менингит, коклюш и паракоклюш, дифтерия и столбняк. При работе с микроорганизмами III – IV групп патогенности необходимо строго соблюдать санитарные правила по безопасности работы и руководствоваться действующими приказами. Во время работы пользоваться средства индивидуальной защиты (перчатки, маска, защитные очки). В случае аварийной ситуации необходимо уметь грамотно оказать экстренную доврачебную помощь. При попадании биологической жидкости на незащищенную кожу следует: - обработать 70%-м спиртом, - вымыть руки с мылом, - повторно обработать 70%-м спиртом. При попадании биологической жидкости в глаза, в нос или в рот: ротовую полостьследует промыть большим количеством воды и прополоскать 70% раствором этилового спирта, слизистую оболочку носа и глаза обильно промыть водой (не тереть). При порезе и уколов следует: - немедленно снять перчатки, - вымыть руки с мылом под проточной водой, - обработать руки 70%-м спиртом, - смазать ранку 5%-м спиртовым раствором йода. Как любой медицинский работник я могу оказать экстренную доврачебную помощь. Обморок возникает в ответ на внешние или психогенные факторы (страх, волнение, вид крови, медицинских инструментов, пункция вены, высокая температура окружающей среды, пребывание в душном помещении и т. д.); или у пациента в анамнезе заболевание сердца и магистральных сосудов. Слабость, тошнота, звон в ушах, зевота, потемнение в глазах, бледность, холодный пот, дыхание частое, ритмичное, пульс частый, потеря сознания, могут быть клонические и тонические судороги. Продолжается от нескольких секунд до нескольких минут. Уложить пациента горизонтально без подушки с приподнятым ножным концом, освободить от стесняющей одежды, доступ свежего воздуха. Побрызгать лицо холодной водой (при наличии воды); похлопать по щекам; дать понюхать ватку с нашатырным спиртом или другим раздражителем (при их наличии). Подсчитать ЧСС, ЧДД, измерить АД (при наличии аппарата для измерения АД). Вызов скорой медицинской помощи «03» через третье лицо, если пациент не приходит в сознание более 2-3 минут. Мониторинг жизненно важных функций организма пациента (ЧСС, ЧДД, АД – при наличии аппарата для измерения АД). При ожогах - покраснение или нарушение целостности кожных покровов с образованием волдырей, поражение подлежащих мягких тканей, вызванное воздействием высоких температур или химических веществ. Нарушение дыхания, сердцебиения. Пульс частый, аритмичный, слабый. Тяжесть ожога зависит от температуры, причины, вызвавшей ожог, длительности воздействия, местоположения на теле, обширности повреждения, глубины повреждения, возраста пострадавшего и состояния его здоровья. Лица, старше 60, дети младше 5 лет, хронические больные имеют более низкую степень переносимости ожогов, чем остальные. Различают ожоги по причинам, их вызвавшим (термические, химические, поражение электротоком) и глубине проникновения: 1 степени (поверхностные – затрагивают верхний слой кожи, покраснение кожи без образования волдырей), 2 степени (умеренно глубокие – повреждается эпидермис и кожа, сопровождаются образованием волдырей, отеком), 3 степени (глубокие, сопровождаются разрушением всех слоев кожи и глубоко расположенных тканей), 4 степени (обугливание). Провести первичный осмотр. Вызов скорой медицинской помощи «03» если ожог вызывает затруднения дыхания, повреждена большая поверхность тела или голова, шея, кисти рук, ступни или половые органы, ожог ребенка или престарелого человека, ожог вызван химическими веществами, произошел в результате взрыва или воздействия электрического тока. Создать безопасную окружающую среду, помочь занять удобное положение.. Следить за дыханием при ожоге дыхательных путей. При ожоге 1 и 2 степени охладить ожог холодной водой, снять кольца, часы и другие предметы до появления отека, наложить асептическую повязку, дать обезболивающее (анальгин 0,5 внутрь). При ожоге 3 степени - не обрабатывать рану, наложить стерильную повязку на место ожога, дать обезболивающее (анальгин 0,5 внутрь). Необходимо использовать стерильный перевязочный материал, обработать руки «гигиеническим способом», соблюдать правила асептики. Поддерживать температуру тела при обширных ожогах. Нельзя! Снимать одежду с обожженного места, отрывать одежду, прилипшую к ожоговой ране, вскрывать ожоговые волдыри, использовать жир, спирт, мазь, вату при глубоких ожогах. При химических ожогах: Стряхнуть сухие химические вещества с кожи защищенной рукой (использовать полотенце, перчатки), снять одежду если на нее попало химическое вещество. Промыть ожог под несильной струей холодной воды в течение не менее 20 минут. При попадании в глаз промыть струей холодной воды в течение не менее 20 минут. Мониторинг жизненно важных функций организма пациента (ЧДД, PS , АД - при наличии аппарата для измерения АД) до прибытия скорой медицинской помощи. При гипогликемическом состоянии у пациента в анамнезе сахарный диабет развивается остро. Чувство голода, дрожь в теле, потливость, тревога, возбуждение, головная боль, бледность, тахикардия, слабость, дезориентация или оглушенность, тонус мышц повышен. Потеря сознания, могут быть судороги. Зафиксировать время. Если пациент в сознании дать съесть кусочек сахара, конфету или выпить тёплый, сладкий чай, сок, сладкие напитки. Создать психический и эмоциональный покой. При потере сознания: придать пациенту устойчивое боковое положение, провести профилактику получения травм, произвести ревизию полости рта. Вызов скорой медицинской помощи (03) при потере сознания. Мониторинг жизненно важных функций организма пациента (ЧСС. ЧДД, АД при наличии аппарата для измерения АД). При электротравме – бессознательное или странное поведение у пострадавшего, очевидные ожоги на поверхности кожи, входное и выходное отверстия электрического заряда, обычно расположенное на кистях или ступнях, нарушение дыхания, пульс слабый, аритмичный или не определяется. Тяжесть и исход поражения зависит от силы и характера, длительности его воздействия, сопротивления кожи пострадавшего, пути прохождения»петли тока» (наибольшую опасность представляют «петли тока» рука-рука; левая рука или обе руки-ноги; голова-руки; голова-ноги), общего состояния организма (опьянение, возраст, утомление), сопутствующих сердечно-сосудистой системы, метеоусловий. Создать безопасную окружающую среду – бросить себе под ноги куртку, пиджак, сухую доску и т.т.; сухой палкой отбросить провод с пострадавшего; обесточить электропроводник. Оценить уровень расстройства сознания, проходимость верхних дыхательных путей. При необходимости восстановление проходимости. При отсутствии самостоятельного дыхания – проведение искусственной вентиляции легких. При отсутствии самостоятельного дыхания и сердцебиения – сердечно-легочная реанимация до восстановления самостоятельного дыхания или до прибытия бригады «03», врача-реаниматолога. Наложить стерильную повязку на место ожога. Мониторинг жизненно важных функций организма пациента (ЧСС. ЧДД, АД при наличии аппарата для измерения АД) до прибытия скорой медицинской помощи. При анафилактическом шоке – возникает на фоне ил сразу после введения лекарственного препарата, сыворотки, укуса насекомого или т.д. Появляется чувство страха, стеснение в груди, беспокойство, головокружение, шум в ушах, ощущение жара, нехватка воздуха, тошнота, рвота, кожный зуд, бледность, холодный липкий пот. Пульс учащен, нитевидное, резкое падание артериального давления (90 мм рт.ст. и ниже), дыхание шумное, хриплое. Потеря сознания, возможно асфиксия, судороги. Восстановить сознание, стабилизация АД. Вызов скорой медицинской помощи «03» через третье лицо. Прекратить попадание аллергена (при внутривенном введение – сохранить венозный доступ). Уложить пациента горизонтально с приподнятым ножным концом (15-200); голову повернуть в сторону; вынуть съемные протезы; зафиксировать язык для предотвращения асфиксии; холод (при наличии холода) на место инъекции; жгут (при наличии жгута) выше места инъекции (укуса). Подсчитать ЧСС, ЧДД, измерить АД (при наличии аппарата для измерения АД). До приезда бригады скорой медицинской помощи ввести 0,1% адреналин 1 мл внутривенно или внутримышечно, в место инъекции раствор 0,1% адреналина 0,5мл, внутримышечно преднизалон 30мг, супрастин 1,0 мл внутримышечно. При необходимости сердечно-легочная реанимация. Мониторинг жизненно важных функций организма пациента (PS, ЧСС. ЧДД, АД при наличии аппарата для измерения АД) до прибытия скорой медицинской помощи. Объем выполняемой работы: В бактериологической лаборатории работа ведётся с микроорганизмами III и IV групп патогенности, особое внимание уделяется соблюдению санитарно - противоэпидемиологического режима работы в лаборатории. Работа осуществляется согласно: СП 1.3.2322 - 08 « Безопасность работы с микроорганизмами III и IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней»; отраслевому стандарту ОСТ 42-21-2-85, введенному в действие на основании приказа № 770 от 10.06.85 г. «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения: методы, средства и режимы»; СанПиН 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами»; приказа №393 Комитета по здравоохранению Администрации Волгоградской области от 12.03.08 года «Об утверждении МР по организации проведения текущей и генеральной уборок помещений ЛПУ»; руководства Р.3.5.1904-04 «Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях». В бактериологической лаборатории используются следующие дезинфицирующие средства: мистраль, велтосепт, бонадерм, хлорамин, перекись водорода, тефлекс, пандезин. Большое значение уделяется соблюдению правил сбора, хранения и утилизации отходов по классам опасности, согласно СанПиН 2.1.7.2790-10. За время работы в бактериологической лаборатории я освоила проведение исследований на следующих разделах: - на кишечную группу инфекций, - на капельную группу инфекций, - клинико-диагностических исследований, - серологических исследований, - санитарно-бактериологических исследований. Кроме того, я освоила первичный посев клинического материала на «микрофлору», на дисбактериоз, посев промывных вод при пищевых токсикоинфекциях, на условно-патогенную микрофлору, на холерный вибрион. В 2010 году в составе бригады бактериологов участвовала в федеральной системе внешней оценки качества клинических лабораторных исследований (ФСВОК). В лаборатории каждый лаборант закреплен за определенным разделом исследований, который меняется каждый год, но все лаборанты знают работу на всех отделах, что обеспечивает взаимозаменяемость. В 2011г я работала на разделе исследований капельных инфекций, где проводила посев материала на дифтерию, менингит и коклюш. Посев материала на дифтерию проводился согласно требованиям МУ 4.2.698-98 от 08.06.1998г. «Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции». Материал для исследования отделяемого зева (миндалин), носа и других пораженных мест отбирают с помощью стерильных тампонов, которые должны быть доставлены в лабораторию не позднее 3-х часов с момента взятия материала. В холодное время года исследуемый материал доставляют в бактериологическую лабораторию в сумках - термосах, во избежание его замерзания. Взятый материал засевают на среду с кровяно-теллуритовым агаром. При посеве со всех сторон втирается тампон на участке площадью 2х1см, а затем этим же тампон засевают по всей чашке, втирая в поверхность среды. Засеянные чашки помещаются в термостат при температуре 37С - на 18-20 часов. Посев спинномозговой жидкости (на возбудителей бактериальных менингитов) производила согласно МУК 4.2.1887-04 «Лабораторная диагностика менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов». Соблюдая все правила асептики, ликвор в количестве 2-5 мл доставляется при температуре 37 C в контейнере с грелкой или в термосе. Стерильной пипеткой со дна пробирки 0,3-0,5 мл материала и по 2-3 капли засеваются на поверхность чашек с питательной средой, растирая шпателем: сывороточный агар, шоколадный агар, кровяной агар, желточно-солевой агар, мясопептонный агар, среда накопления (полужидкий агар с добавлением 1 мл лошадиной сыворотки). Посевы инкубируются в термостат на 18-20 часов при температуре 37 C, посевы инкубируют при 37°Св течение 24 - 48 часов в атмосфере, содержащей 5 - 10% СО (эксикатор со свечой, СО -инкубатор). Оставшийся материал используют для приготовления мазков – один мазок окрашивается по Грамму, другой - метиленовой синькой. При исследовании на коклюш руководствовалась инструкцией МЗ СССР от 1984г. «Инструкция по бактериологическому и серологическому исследованиям по коклюшу и паракоклюшу». Исследуемым материалом является слизь из верхних дыхательных путей, осаждающаяся при кашле на задней стенке глотки. Взятие материала проводят 2-мя способами: - заднеглоточным тампоном, - «кашлевыми пластинками». Заднеглоточным тампоном материал собирают как с диагностической целью, так и по эпидпоказаниям. Метод «кашлевых пластинок» используют только с диагностической целью при наличии кашля. Материал забирают натощак или через 2-3 часа после еды. Для взятия материала используют 2 вида тампонов, предварительно изогнутых под тупым углом (до его стерилизации): сухой и увлажненный. При методе «кашлевых пластин» сбор материала производят на 2 чашки с казеино-угольным агаром.Во время приступа кашля левой рукой снимают крышку чашки, а правой подносят ее ко рту на расстоянии 10-12 см так, чтобы капельки слизи из дыхательных путей попали на поверхность среды. Чашки затем закрывают крышкой и доставляют в лабораторию. При транспортировке следует оберегать материал от прямых солнечных лучей, сохраняя его в температурных пределах +4- +370С. Засеянные чашки помещают в термостат при температуре 35-370С на 3 суток (72 часа). Для увлажнения воздуха в термостат ставят сосуд с водой. Коклюш хорошо высевается в первые дни заболевания, а обычно в поликлинике забор материала на коклюш проводят в поздние сроки заболевания. Микроб коклюша очень капризен, требователен к правильному забору, доставке и посеву, поэтому при прямом посеве материала коклюш часто не выделяется, и требуется дополнительный метод – серологический. Так же в 2010 году я работала на разделе серологических исследований, выполняя постановку серологических реакций. Работая на этом разделе, я вела следующую документацию: - журнал учета работы кварцевых ламп; - журнал регистрации температурного режима и санитарной обработки холодильников; - журнал регистрации температурного режима и санитарной обработки термостата; При работе на этом отделе мною использовалась следующая документация: - Инструкция по противоэпидемическому режиму в службе крови Волгоградской области от 10.12.2001 года; - Приказ №715 «О постконтактной профилактике заражения вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ) медицинских работников» от 24.07.2006 года; - Санитарно-эпидемиологические правила СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IVгрупп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней»; - Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.5.2826-10; - Документация по бактериологическим и серологическим исследованиям для каждого вида возбудителей инфекционных заболеваний. Я ставила: - РПГА (реакция пассивной гемагглютинации) с комплексным сальмонеллезным диагностикумом, если реакция положительная, то дальше я делала РПГА с групповыми сальмонеллезными диагностикумами; - РПГА с шигеллезным диагностикумом; - РПГА с сыпнотифозным диагностикумом; - РПГА сальмонеллезным Ви-антигенным диагностикумом; - РПГА с дифтерийным диагностикумом; - РПГА со столбнячным диагностикумом; - РНГА (реакция непрямой гемагглютинации) с псевдотуберкулезным диагностикумом; - РНГА с кишечноиерсинеозным диагностикумом; - РНГА с менингококковым диагностикумом; - РА (реакция агглютинации) и - РНГА с бруцеллезным диагностикумом; - РА с коклюшным и паракоклюшным диагностикумами. Также я проводила проверку вновь поступивших диагностикумов на пригодность. В лаборатории при работе с кровью используется только одноразовый расходный материал (планшетки, наконечники, пробирки). Перед поставкой реакций подготавливаются полистированные пластины к работе: каждую лунку пластины протираются 70° этиловым спиртом, затем промываются 5-6 раз очищенной водой с помощью ватно-марлевого тампона и высушиваются. При постановке реакций использовуются резиновые перчатки. Поступающие пробирки с исследуемой кровью должны быть обязательно промаркированы. Бланки направлений для исследования крови помещены отдельно от пробирок с кровью (в полиэтиленовый пакет). Кровь доставляется на отдел в закрытом биксе, дно которого выслано адсорбирующим материалом. Вся работа с кровью ведется в боксе абактериальной воздушной среды «Ламинар-С» (II класс безопасности). Прием и разборку ведется на лотке, который покрыт многослойной марлевой салфеткой, смоченной 3% раствором хлорамина. Ведение журнала, заполнение протоколов исследований ведется на столе для работы с документацией. При пипетировании сывороток и для приготовлений разведений используются автоматическими пипетками – дозаторы с наконечниками. Пробирки с кровью, сывороткой крови хранятся в контейнерах, пластиковых пакетах в холодильнике при температуре 4-6 градусов. По окончании работы поверхность ламинарного бокса обрабатывается 0,7% раствором пандезина двукратно с интервалом 15 минут, время обеззараживания 60 минут. В случае загрязнения кровью, сывороткой крови поверхность стола обрабатывается двукратным протиранием 0,7% раствором пандезина немедленно и спустя 15 минут, экспозиция 2 часа. Для защиты рук используются одноразовые резиновые перчатки. В процессе работы загрязненные перчатки обрабатываются 0,7% раствором пандезина в «0» этапе. После использования погружаются перчатки в 0,7% раствор пандезина (экспозиция 90 минут), затем они утилизируются, как отходы класса «Б». Дезинфекцию наконечников к автоматическим пипеткам проводят в 6% растворе перекиси водорода с добавлением 0,5% моющего раствора в течение 60 минут с предварительным «0» этапом в аналогичном растворе, затем наконечники утилизируются, как отходы класса «Б». Планшеты для проведения серологических реакций дезинфицируют в 6% растворе перекиси водорода в течение 60 минут с предварительным «0» этапом в аналогичном растворе, планшеты затем также утилизируются, как отходы класса «Б». Пробирки с кровью или сывороткой крови обеззараживаются автоклавированием при 132 градусах 60 минут. Химическим тестом контроля является мочевина или термовременные индикаторы НПФ «Винар». По окончании работы на центрифуге центрифужные стаканы дезинфицируют в 6% растворе перекиси водорода в течение 60 минут с предварительным «0» этапом в аналогичном растворе. Саму центрифугу обрабатывают 6% раствором перекиси водорода с добавлением 0,5% моющего раствора дважды с интервалом 15 мину и экспозицией 60 минут. При аварии во время работы на центрифуге, крышку медленно открывают только через 30-40 минут (после оседания аэрозоля). Центрифужные стаканы и разбитое стекло помещают в дезинфицирующий раствор, поверхность крышки, внутренние части центрифуги, ее наружную поверхность дезинфицируют. Дезинфекция центрифуги проводится после отключения ее от электросети. После дезинфекции лабораторная посуда, которая в процессе дальнейшей эксплуатации соприкасается с раневой поверхностью, подлежит обязательной предстерилизационной очистке, оценке качества предстерилизационной очистки ( азопирамовая проба на наличие крови и фенолфталеиновая проба на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств ) и стерилизации. Работа с микроорганизмами III – IV групп патогенности требуют неукоснительного соблюдения санитарно-эпидемиологического режима. Во время работы я использую средства индивидуальной защиты (перчатки, маску). По окончании работы все объекты, содержащие патогенные биологические агенты, убираю в термостаты. Рабочую поверхность стола дезинфицирую 3% раствором хлорамина путем двукратного протирания. Лабораторную посуду после использования также дезинфицирую. Бактериологические посевы и лабораторную посуду дезинфицирую в паровом стерилизаторе при давлении в 1,5 атмосферы в течении 60 минут. Для контроля режима дезинфекции использую химический тест – сукцинимид или термовременные индикаторы НПФ «Винар». Дезинфекция бактериологических посевов и использованной лабораторной посуды ведется в соответствии с санитарными правилами СП 1.3.2322-08. Далее посуда подвергается предстерилизационной очистке. В строгом соответствии с отраслевым стандартом ОСТ 42-21-2-85 готовится моющий раствор. На 1 литр раствора берется 5 грамм моющего средства «Лотос», добавляют 86,6 мл 6% перекиси водорода и доливается до 1 литра воды. Раствор подогревается до температуры 50 градусов и в нем замачивается лабораторная посуда на 15 минут. После чего обрабатывают их в этом же растворе с помощью ерша. Далее ополаскивают под проточной водой. После этого для обессоливания двукратно ополаскивают в дистиллированной воде и сушат. Проводят азопирамовую и фенолфталеиновую пробы. Затем посуда упаковывается в крафт-бумагу и подвергается стерилизации. Чашки Петри стерилизуются в сухо-жаровом шкафе при температуре 180 градусов в течении 60 минут. Пробирки, пипетки, шпателя, петли стерилизуются в паровом стерилизаторе под давлением в 2 атмосферы при температуре 132 градуса в течении 20 минут. Для контроля работы стерилизатора и сухожарового шкафа использую термовременные индикаторы (ИС-180 и ИС-132) НПФ «Винар». В бактериологической лаборатории постоянно ведется контроль и учеба по работе с отходами, используя при этом СанПин 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами». В бактериологической лаборатории действует утвержденная схема движения отходов по территории лаборатории, при этом соблюдается поточность. В бактериологической лаборатории МБУЗ «Городская детская поликлиника №2» возможно образование отходов следующих классов: 1. Отходы класса А (неопасные) – отходы, не имеющие контакта с биологическими жидкостями пациентов, инфекционными больными, нетоксичные отходы. Мебель, инвентарь, неисправное диагностическое оборудование, не содержащие токсичных элементов. Неинфицированная бумага, смет, строительный мусор. Медицинский обслуживающий персонал, непосредственно осуществляющий сбор и удаление отходов в бактериологической лаборатории – санитарки лаборатории. Отходы класса «А» собираются на рабочих местах ( в местах образования ) в одноразовые пакеты белого цвета маркированные «Неопасные отходы. Класс «А». Одноразовые пакеты предварительно помещаются внутри многоразовых баков (ведер) с крышками, промаркированных «Отходы класса «А» и располагающихся в помещениях «чистой» зоны. После герметизации и маркировки пакетов, отходы выносятся в надворные контейнеры, предназначенные для твердых бытовых отходов и расположенные на хозяйственной территории. 2. Отходы класса Б (опасные) – потенциально инфицированные отходы. Медицинский обслуживающий персонал, непосредственно осуществляющий сбор, подготовку к дезинфекции и удаление отходов данного класса – санитарки лаборатории. Отходы класса Б собираются на рабочих местах в одноразовые пакеты желтого цвета маркированные «Опасные отходы. Класс Б». Одноразовые пакеты предварительно помещаются внутри многоразовых емкостей ( ведер ) с крышками, промаркированных «Отходы класса «Б». Использованная писчая бумага и другой мусор из «заразной» зоны лаборатории собираются на рабочих местах в одноразовые пакеты желтого цвета предварительно помещенные внутри многоразовых емкостей (ведер) с крышками, промаркированных «Отходы класса «Б» и в конце рабочей смены обеззараживаются автоклавированием. Возможна доставка отходов (напр.остатки исследуемого материала, емкости из под крови и др.) в специально закрывающихся емкостях (баках, ведрах, биксах) непосредственно в автоклавную для обеззараживания водяным насыщенным паром под избыточным давлением. Все отходы класса Б после дезинфекции, герметизации и маркировки пакетов выносятся в надворные контейнеры предназначенные для отходов класса Б. 3. Отходы класса Г – ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование. Лампы люминесцентные и бактерицидные. Использованные люминесцентные лампы, ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование выносятся из бактериологической лаборатории в место временного хранения (вспомогательное помещение) для последующего вывоза транспортом специализированного предприятия. Работа в бактериологической лаборатории направлена на снижение инфекционной заболеваемости и на стабилизацию эпидемической обстановки в городе. Для повышения своих знаний и расширения кругозора изучаю различную документацию (приказы, методические рекомендации и другую литературу). Посещаю занятия, которые в нашей лаборатории регулярно проводятся с сотрудниками по методам бактериологических исследований, по безопасности работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности, что способствует повышению квалификации сотрудников и соблюдению санитарных норм и требований при проведении лабораторных исследований. Занятия проводят врачи-бактериологи совместно с фельдшерами-лаборантами. Посещаю занятия по противопожарной безопасности. Регулярно сдаю зачеты по санитарно-противоэпидемическому режиму при работе с микроорганизмами III-IV групп патогенности. Прохожу переподготовку по работе с паровым стерилизаторами (окончила курсы автоклаверов в феврале 2012 года на базе ООО «Профессия»). В 2010 году бактериологическая лаборатория получила аттестат аккредитации испытательного лабораторного центра № ГСЭН.RU.ЦОА.045.690, зарегистрирован в Реестре Системы от26.05.2010 года, действителен до 26.05.2013 года. Лаборатория участвует в Федеральной системе внешней оценки качества клинических лабораторных исследований (ФСВОК) с 2007 года. Каждый год мы получаем для расшифровки пробы, по три пробы в два цикла, по разделу клиническая микробиология. Для обеспечения требований СП 1.3.2322-08 (пункт 2.3.31) для работы в лаборатории имеются пять боксов (II класс безопасности) абактериальной воздушной среды «Ламинар-С», которые используются для обеспечения физической защиты работающего персонала, воздуха и поверхностей рабочей зоны, окружающей среды от исследуемых микроорганизмов. В работе лаборатории применяются хромогенные питательные среды для исследования на сальмонеллы, кандиды, холеру, для обнаружения и подсчёта уропатогенных бактерий, для идентификации стрептококков группы В. Хромогенные среды предназначены для быстрого (в течение 24 ч) обнаружения в исследуемом материала целого ряда микроорганизмов, имеющих большое значение для клинической и санитарной микробиологии. В лаборатории используется готовая транспортная среда Эймса для сбора, выделения, безопасного хранения и перемещения микроорганизмов различных видов. Она состоит из двух пробирок с пробками и зонд-тампона, вмонтированного в крышку. Для идентификации микроорганизмов в нашей лаборатории используются тест-системы, для идентификации стрептококков, энтеробактерий, «неферментёров», нейссерий, стафилококков, энтерококков - производства Lachema. В лаборатории используются прибор «Денси-Ла-Метр», который предназначен для удобного и быстрого определения мутности бактериальной суспензии. Стандартизация бактериальных суспензий чрезвычайно важна при проведении идентификации микроорганизмов, определении их чувствительности к антибактериальным препаратам и при решении других задач. В нашей лаборатории широко используется одноразовая посуда, которая обладает несомненными преимуществами: -пластиковая лабораторная посуда однократного применения стандартна (изделия имеют постоянный вес, форму, объем); -механическая устойчивость и надежная герметичность обеспечивает безопасность при транспортировке, центрифугировании, и исключает возможность потери пробы на этих этапах; -при работе с одноразовой лабораторной посудой не требуется мытья и обработки потенциально опасного материала, которым должен считаться любой биологический материал, поступающий в лабораторию; -метод утилизации полимерных материалов прост и безопасен (путем автоклавирования); -сведение к минимуму ошибок и увеличения диагностической значимости получаемых результатов. В бактериологической лаборатории имеются охлаждающие термостаты, которые предназначены для получения и поддержания внутри рабочей камеры стабильной температуры (не зависящей от температуры окружающей среды), необходимой для проведения бактериологических и серологических исследований. Своей главной задачей в работе считаю: 1)постоянное повышение профессионального уровня знаний; 2)повышение качества работы, освоение новых методик; 3)регулярное участие в решении задач федеральной системы внешней оценки качества клинических лабораторных исследований. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ТАБЛИЦА СЕРОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ТАБЛИЦА ИССЛЕДОВАНИЙ НА ДИФТЕРИЮ
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ТАБЛИЦА ИССЛЕДОВАНИЙ НА МЕНИНГОКОКК
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ТАБЛИЦА ИССЛЕДОВАНИЙ НА КОКЛЮШ
В бактериологической лаборатории используется широкий спектр серологических исследований, количество которых в 2011 году составило 5,2% от всего объема исследований. В 2011 году увеличился объем исследований на тифо-паратифны, их рост по сравнению с 2011 годом составил 53,9%. В2011 году уменьшился объем выполненных серологических исследований на псевдотуберкулез (на 7% по сравнению с 2010 годом), иерсиниоз (на 6% ), коклюш и паракоклюш (в 2,7 раза), на шигеллы (в 1,8 раза), сыпной тиф (в 1,4 раза) и бруцеллез (в 1,7 раза), что, конечно же, было связанно с потребностью ЛПУ в данных видах исследований. Количество положительных результатов при проведении серологических исследований на конкретные виды возбудителей инфекций вполне соответствует категориям лиц, направляемых для обследования, а именно, бактериологическая лаборатория выполняет в большей степени исследования в профилактических целях, и этот объем занимает около 43% от общего количества исследований. Как видно из таблицы, количество исследований на дифтерию и высеваемость у подозрительных на заболевания дифтерией уменьшается. Это возможно связано с полноценной иммунизацией населения и отсюда низкой заболеваемостью данной инфекцией в регионе. Количество анализов на менингококк в анализируемый период – уменьшилось. Так же уменьшилась и высеваемость. Часто отрицательный результат исследования может быть связан с нарушениями в технике взятия и доставке материала из ЛПУ. Возбудитель коклюша очень капризен, требователен к правильному забору, доставке и технике посева материала, поэтому при прямом посеве материала возбудитель коклюш чаще всего не выделяется, и необходим дополнительный метод – серологический. Что и видно на примере сравнений таблиц исследования на коклюш. Список использованной литературы: 1). «Лабораторное дело» журнал, подшивка за 2006 год; 2). «Эпидемиология и инфекционные болезни» журнал, подшивка за 2003 год; 3). «Медицинская практика» журнал, подшивка за 2007 год; 4). «Микробиология» Москва 2001год; 5). «Микробиология для студентов медицинских училищ» учебник 1999год; 6). Отраслевой стандарт «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы». ОСТ 42-21-2-85 МЗ СССР 1985г; 7). СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности и гельминтами» МР Москва 2008г.; 8). СанПин 2.1.7.2790-10 «Санитарно- эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами» 2010г.; 9). МУ 4.2.698-98 «Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции»; 10). МУК 4.2.1887-04 «Лабораторная диагностика менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов». 11). «Инструкция по бактериологическому и серологическому исследованиям при коклюше и паракоклюше», МЗ СССР 1984г; |