Главная страница
Навигация по странице:

  • Определение количества микроорганизмов методом счета колоний

  • Изучение и определение группы санитарно- показательных м\о: КМАФАиМ, БГКП ; энтерококков по соответствующим ГОСТам

  • Изучение и определение патогенных и условно-патогенных м\о по соответствующим ГОСТам.

  • Определение спор сульфитредуцирующих клостридий

  • Обнаружение бактерий родов сальмонелла и шигелла

  • микробиология. Титрационный метод. Используется для определения количества санитарно показательнных микроорганизмов (смп)


    Скачать 17.17 Kb.
    НазваниеТитрационный метод. Используется для определения количества санитарно показательнных микроорганизмов (смп)
    Дата17.09.2022
    Размер17.17 Kb.
    Формат файлаdocx
    Имя файламикробиология.docx
    ТипДокументы
    #681051

    Титрационный метод. Используется для определения количества санитарно- показательнных микроорганизмов (СМП).

    1-ый этап : гомогенизация материала. При необходимости приготовление суспензии с целью перевода микроорганизмов в жидкую фазу

    2-ой этап : приготовление серии разведений.

    3-ий этап: посев избранных объемов исследуемого материала (100, 10, 1 мл) и его разведений по 1 мл в жидкую питательную среду. Для повышения точности метода каждый объем может праллельно засеиваться в несколько порций питательной среды. Оптимальным является трехкратное повторение (достаточная достоверность при сравнительно небольшой стоимости)

    4-ый этап: учет наличия роста на жидкой питательной среде и высев из положительных объемов на плотную питательную среду.

    5-ый этап: идентификация микроорганизмов, выросших на плотной питательной среде. При этом учитываются культурные свойства и при необходимости проводятся дополнительные исследования (изучение морфологических, биохимическихсвойств)

    Если использован однорядный метод, как правило, результат выражается в виде титра искомого микроорганизма, за который принимается наименьший объем (наибольшее разведение), в котором еще он был обнаружен. Если был использован многорядный метод, учет результатов проводится с помощью специальных таблиц, позволяющих по комбинации положительных объемов, давших рост, определить титр, индекс (НВЧ).

    Количественные методы исследования микрофлоры пищевых продуктов

    Количественные методы исследования микрофлоры позволяют установить количество микроорганизмов в определенном объеме исследуемого материала – микробную обсемененность.Во всех видах продуктов, кроме кисломолочных, определение количества мезофильных аэробных и факультативно- анаэробных микроорганизмов проводят на плотной среде с термостатированием при 30С в течении 72 часов, в соответствиии с ГОСТом. Результаты исследований выражают количеством колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1 г или см3 продукта.

    Определение количества микроорганизмов методом счета колоний

    Сущность метода счета колоний заключается в посеве определенного количества испытуемого материала в чашки Петри с расплавленной плотной питательной средой. При последующем выращивании посева из каждой клетки в результате ее размножения образуется колония. Таким образом, количество выросших колоний будет соответствовать количеству микроорганизмов, находящихся в посеянной пробе исследуемого объекта.

    1. Отвесить из средней пробы 1 г продукта в стерильный бокс. Принести навеску в стерильную ступку и тщательно растереть. Если продукт очень плотный, то растереть его со стерильный песком. Растертый продукт количественно и стерильно перенести в колбу со 100 см3 стерильной воды (первое разведение 100:1). Если исследуются такие продукты, как мука, крупа, компот, сахар, соль, пряности, то навеску продукта без растирания внести в колбу со 100см3 стерильной воды (первое разведение)

    2. Из колбы первого разведения после тщательного и осторожного взбалтывания (не замочить ватную пробку!!!!) в течение 5 мин, стерильной пипеткой взять 1см3 и внести в первую чашку Петри. Из этой же колбы, той же пипеткой взять еще 1 см3 и внести в пробирку с 9см3 стерильной воды (второе разведение, 1:1000)

    3. Из этой пробирки (второго разведения) после тщательного взбалтывания содержимого новой пипеткой отобрать 1 см3 жидкости и внести во вторую чашку Петри. Той же пипеткой из той же пробирки перенести 1 см3 во вторую пробирку с 9 см3 стерильной воды( третье разведение, 1:10000). После взбалтывания содержимогоэтой пробирки( третье разведение) из нее новой пипеткой 1 см3 жидкости перенести в третью чашку Петри. Таким образом, получаем разведения 1:1000, 1:10000

    4. В чашки Петри вылить из пробирок теплый расплавленный мпа и перемешать пробу с питательной средой.Смешивать осторожно, легким вращательным движением закрытой чашки, чтобы не замочить ее края. Чашки поставить на горизонтальную поверхность для застывания среды. На крышке чашки карандашом указать фамилию студента, номер групппы и разведение.

    5. После застывания пит. Среды чашки перевернуть вверх дном и поместить в термомтат. Подсчитать колонии, выросшие на пит.среде в чашках Петри. Определить степень обсемененности бактериями изучаемого пищевоо продукта и оценить его по полученным результатам. Установить название семейства и рода преобладающих в посеве бактерий

    Изучение и определение группы санитарно- показательных м\о: КМАФАиМ, БГКП ; энтерококков по соответствующим ГОСТам

    1. Для обнаружения развития бактерий группы кишечной палочки следует смотреть пробирки со средой Кесслера. О развитии бактерий судят по помутнению среды, а о наличии газообразования- по накоплению газа в поплавке. Отметить тот наименьший объем исследуемого материала, который не вызвал указанне изменения среды, это и будет титр кишечной палочки. В случае отсутствия газообразования титр условно устанавливают по помутнению среды.

    2. После определения титра установить сходство выросших на среде. Эндо колоний с колониями, характерными для бактерий группы кишечной палочки. Среда Эндо является дифференциально-диагностической средой, т.е на этой среде по характеру роста возможно отличить кишечную палочку от других бактерий. В состав среды Эндо входят МПА, лактоза, фуксин и сернисто-кислый натрий.

    Отметить наличие или отсутствие типичных для кишечной палочки колоний, имеющих темно-красный или красный цвет с золотистым металлическим блеском. Образование таких колоний происходит вследствие того, что кишечная палочка сбраживает лактозу с выделением альдегидов. При взаимодействии альдегидов с находящейся в среде Эндо фуксинсернистой кислоты выделяется свободный фуксин.

    1. Для установления сходства морфологических признаков выросших на среде Эндо бактерий с признаками кишечной палочки из типичных и нетипичных колоний приготовить препараты: «раздавленная капля» и окрашенный по методу Грама. При микроскопировании препаратов отметить форму клеток, подвижность, наличие или отсутствие спор и отношение к окраске по Граму. Показатель БГКП приведен в соответствие с принятой международной номенклатурой. К БГКП относятся грамотрицательные, не образующие спор палочки, сбраживающие лактозу с образованием кислоты и газа при 36+-1С.

    Изучение и определение патогенных и условно-патогенных м\о по соответствующим ГОСТам.

    Обнаружение патогенной микрофлоры проводят путем посева продукта в регламентированных нормативными документами количествах на соответствующие питательные среды. В продуктах массового потребления патогенные микроорганизмы, в том числе сальмонеллы, не допускаются в 25г продукта. Исследование пищевых продуктов на листерии регламентировано ГОСТом

    Определение спор сульфитредуцирующих клостридий

    Определение методом прямого посева. Исследуемую пробу 20мл (2 пробирки по 10мл) прогревают на водяной бане в пробирках при температуре 75С в течение 15 мин для исключения вегетативных форм. Посевы заливают горячим железо-сульфитным агаром в количестве, превышающем объем воды в 2 раза. Посевы быстро охлаждают и инкубируют при 44С в течение 16-18ч. Подсчитывают черные колонии, выросшие в толще питательной среды. Результат анализа выражают в КОЕ спор сульфитредуцирующих клостридий в 20мл воды.

    Обнаружение бактерий родов сальмонелла и шигелла

    Посев исследуемой пробы в количестве 1л на среды накопления: селенитовый бульон, магниевую среду. Инкубация при 37С 18-20ч. Затем высев на элективно-дифференциальные среды и дальнейший традиционный ход исследования.


    написать администратору сайта