|
|
К Правилам контроля качества и безопасности донорской крови и её. Условия и методы исследований для осуществления контроля стерильности
medznate.ru
Приложение 3
к Правилам контроля качества и
безопасности донорской крови и
её компонентов
Условия и методы исследований
для осуществления контроля стерильности
1. Отбор образцов крови и ее компонентов для исследования и анализа
Каждая доза заготовленной донорской крови или компонентов крови, предназначенных для переливания, составляет одну серию, исследование и анализ стерильности которой осуществляется методами, исключающими нарушение герметичность емкости (полимерного контейнера). Контроль стерильности крови и ее компонентов осуществляется путем исследования образцов, выборочно изъятых из общего количества заготовленных емкостей.
Для исследования стерильности донорской крови и ее компонентов проводится отбор не менее чем 1% (каждый сотый контейнер) от заготовленных полимерных контейнеров. Для этой цели могут использоваться устройства для отбора первой порции крови для лабораторных исследований, встроенные в систему для сбора крови, или герметизированные отрезки магистралей полимерного контейнера.
Донорская кровь, заготовленная на выездах, контролируется в количестве не менее 1 образца в неделю (от каждой выездной бригады).
Криопреципитат, заготовленный в полимерные контейнеры закрытым методом, контролируется в количестве 1% от заготовленных в течение рабочего дня контейнеров, но не менее одного контейнера. При изготовлении криопреципитата открытым методом в условиях боксированного помещения или ламинарного шкафа для контроля отбирается в полимерные контейнеры не менее 5 мл супернатантной плазмы от каждой дозы криопреципитата.
Плазма, заготовленная методом плазмафереза, контролируется не реже одного раза в месяц, выборочно 1-2 образца из числа ёмкостей, взятых на контроль отделением контроля качества.
Отмытые эритроциты отбираются от каждой 20-й емкости из общего количества одномоментно изготовленной продукции, но не менее одной дозы. При изготовлении одномоментно менее пяти доз, допускается контроль путем бактериологического посева промывных вод. Отмытые эритроциты используются в течение их срока годности до получения результатов бактериологического исследования, который проводится ретроспективно.
Концентраты гранулоцитов, тромбоцитов, используемые в течение 24 часов после заготовки крови, контролю не подлежат.
Концентраты тромбоцитов со сроком хранения свыше 24 часов при температуре +20ºС - +24ºС контролируются выборочно в количестве не менее 1 образца из числа ёмкостей, заготовленных в течение рабочего дня.
Криоконсервированные эритроциты длительного срока хранения, подготовленные к замораживанию, контролируются на стерильность перед глицеринизацией (около 10 мл отбирается в мешок-сателлит) и после глицеринизации (из эритромассы, остающейся в полимерном контейнере после перевода её в криоконтейнер), а при размораживании – после их деглициниризации (по 5 мл от каждой дозы эритроцитов). Отбор проб производится в стерильные сухие емкости.
Отбор образцов при производственном контроле препаратов крови проводится ежедневно от работы каждого бокса, парового стерилизатора (автоклава), стерилизующей системы, сублимационного аппарата.
Препараты крови (растворы альбумина 5%, 10% и 20%, протеин, препараты иммуноглобулинов, глюнат и другие) контролируются в процессе стерилизующей фильтрации и розлива. Для контроля берется в стерильные сухие флаконы не менее 5 мл раствора в начале, середине и конце розлива в двойном количестве, а при розливе препаратов, подвергаемых в дальнейшем лиофильной сушке, утроенное количество образцов разлитого препарата герметически укупоренного. Эти образцы исследуются в случае пророста образцов жидкого или высушенного препарата для выяснения причин инфицирования.
Препараты крови, подвергшиеся лиофильной сушке, отбираются на контроль по одному образцу от каждой кассеты, этажерки или полки, а при мелкой расфасовке - по два флакона (ампулы) от кассеты.
Оставшаяся после посева на стерильность продукция (кровь, компоненты крови, протеин, альбумин) может быть передана в отделения контроля качества, фракционирования или в любое другое подразделение организации службы крови для последующего контроля или переработки.
Отбор образцов препаратов крови отделением контроля качества производится согласно требованиям Государственной фармакопеи. В отделение контроля качества предъявляется готовая серия препарата.
^ 2. Проведение исследований на стерильность
Исследование на стерильность проводится в условиях, исключающих случайное загрязнение препарата - асептических боксах. Возможно использование боксов с ламинарным потоком стерильного воздуха (в соответствии с руководством по эксплуатации от завода-изготовителя).
Ежедневно перед началом исследований асептический бокс подвергаются влажной уборке.
В боксах, предназначенных для проведения контроля стерильности медицинских биологических препаратов, работа с живыми микробными культурами не допускается.
Исследование на стерильность может быть проведено путем прямого посева или методом мембранной фильтрации, который предпочтительнее использовать, если объем содержимого одной единицы продукции превышает 100 мл. Также могут быть использованы различные системы определения бактериальной контаминации продуктов крови, основанные на измерении концентрации кислорода воздуха или изменения уровня кислотно-щелочного баланса (рH) в качестве маркеров бактериального роста в соответствии с инструкциями завода-изготовителя.
Подготовка к проведению исследований:
все доставленные в лабораторию образцы продукции проверяются визуально на целостность укупорки, регистрируются в рабочих журналах, после чего заносятся в предбокс;
полимерные контейнеры, бутылки, ампулы с исследуемыми образцами обрабатываются раствором перекиси водорода с массовой долей 3% или этиловым спиртом с объемной долей 70%. Возможно использование других дезинфицирующих растворов;
при поступлении изделий в матерчатой или бумажной упаковке наружный слой снимается в предбоксе и изделие во внутренней упаковке сразу переносится в бокс;
в предбоксе сотрудники лаборатории тщательно моют руки с мылом, вытирают их стерильным полотенцем, надевают стерильные халаты, шапочки или косынки, четырехслойные марлевые маски, а также тапочки или бахилы;
перед началом исследования на стерильность образцов продукции, сотрудники лаборатории обрабатывают руки антисептическими средствами или 70% этиловым спиртом, затем надевают стерильные перчатки, которые в процессе работы дезинфицируются через каждые 15 минут;
все инструменты и материалы во время работы располагаются на стерильном лотке.
Метод прямого посева в питательные среды:
материал из исследуемых образцов при прямом посеве засевается непосредственно в пробирки с питательными средами;
посев каждого образца исследуемой продукции производится вблизи пламени горелки в толщу питательной среды отдельной стерильной пипеткой (без выдувания) при помощи резиновой груши. Перед посевом пипетка проводится через пламя горелки. Запрещается производить посев пипеткой ртом, без резиновой груши или резиновой трубки;
перед посевом жидких препаратов содержимое ампул или бутылок встряхивается, так как микробы - контаминанты могут осесть на дно;
образцы сухих препаратов предварительно растворяются стерильным растворителем в объеме, указанном на этикетке;
инструменты, предварительно простерилизованные, помещаются в емкость с 95% этилового спирта и обжигаются в пламени горелки при работе с каждым образцом продукции;
концы ампул или горлышки бутылок перед вскрытием обрабатываются 95% этиловым спиртом и обжигаются над пламенем горелки;
запрещается прокаливать пипетки и концы ампул в пламени горелки;
использованные пипетки сразу помещаются в находящиеся на рабочем столе емкости с дезинфицирующим раствором.
Кровь, ее компоненты засеваются по 1,5–2 мл в две пробирки, содержащие по 20 мл тиогликолевой среды. Одна пробирка с посевом в тиогликолевой среде инкубируется при температуре от +30°С до +35°С, другая – при температуре от +20°С до +25°С.
Через двое суток инкубации производится пересев по 1 мл из каждой пробирки в другие пробирки, содержащие по 10 мл тиогликолевой среды. Пересевы инкубируются при температурах, аналогичных первичному посеву.
Пробирки с первичными посевами, из которых произведен пересев, сохраняются в термостатах до окончания процесса контроля стерильности. Общий период инкубации первичного посева и пересева составляет 72 часа (3 суток).
При посеве образцов крови и компонентов, заготовленных в полимерные контейнеры, трубка контейнера пережимается зажимом выше места герметизации и отрезается стерильными ножницами между местом герметизации и зажимом. Обрезанный конец трубки быстро проводится через пламя горелки. Зажим ослабляется, и необходимое количество посевного материала вытесняется в пробирки с питательной средой надавливанием на контейнер, расположенный вертикально основанием вверх, свернув свободную от крови или компонента часть контейнера, После посева контейнер вновь дважды герметизируется.
Посев образцов препаратов крови методом прямого посева и методом фильтрации проводится в соответствии с требованиями Государственной фармакопеи.
^ 3. Учет и интерпретация результатов испытания на стерильность
Посевы просматриваются в рассеянном свете ежедневно и по окончании периода инкубации. Наличие роста микроорганизмов в питательных средах оцениваются визуально по появлению мутности, пленок, осадка и других макроскопических изменений. Выявленный рост микроорганизмов необходимо подтвердить микроскопированием мазков, окрашенных по Граму (в любой модификации).
В случае пророста образца компонента крови в течение первых – вторых суток после посева подлежит выяснению причина роста и решается вопрос о необходимости отзыва выданных организациям здравоохранения и неиспользованных для трансфузии компонентов крови этой даты заготовки, которые должны быть возвращены в организацию службы крови, заготовившую их.
На повторный контроль берется 2 – 3 образца крови (ее компонентов), по срокам и условиям заготовки соответствующие первичным образцам, и в случае повторного роста вся плазма крови используется только для переработки на препараты, эритроцитсодержащие компоненты крови утилизируются.
В случае пророста образца криопреципитата, заготовленного закрытым методом, на повторный контроль отбирается 2 – 3 контейнера из серии криопреципитата от того же дня заготовки, и в случае бактериального роста криопреципитата хотя бы из одного контейнера, бракуется вся серия.
Из серии криопреципитата, заготовленного открытым методом, для повторного посева изымаются контейнеры, в образцах которых наблюдался бактериальный рост, для выяснения его причины. Контейнеры, в образцах которых не наблюдалось роста микроорганизмов, считают удовлетворяющими требованиям испытания на стерильность.
Для контроля стерильности крови и ее компонентов в процессе их хранения рекомендуется ежемесячно по направлению отделения контроля качества, производить посев не менее одного образца из числа емкостей, отобранных на контроль.
При повторном проросте отмытых и размороженных эритроцитов рекомендуется для выяснения причин их инфицирования дополнительно контролировать промывные воды после каждой процедуры отмывания.
Разрешается до получения заключения о стерильности образца использовать компоненты крови в течение первых трех суток с момента их заготовки, если при контроле стерильности исследуемые образцы были стерильны в течение предыдущих трех месяцев работы.
Результаты контроля препаратов крови на стерильность и действия при обнаружении бактериального роста в образцах продукции должны соответствовать требованиям Государственной фармакопеи.
Результаты контроля стерильности компонентов и препаратов крови на стерильность регистрируются в журнале установленной формы.
^ 4. Условия контроля стерильности плазмы для
фракционирования и производства продуктов крови
Стерильное сырье, поступающее для фракционирования из организаций службы крови или организаций здравоохранения, отбирается для исследования на стерильность в количестве 1% от числа поступивших емкостей, но не менее одного образца. Посев проводится в том же порядке, что и при проведении исследований на стерильность.
При обнаружении роста микроорганизмов хотя бы в одной пробирке, проводится испытание на общую микробную обсемененность.
В сырье, полученном в нестерильных условиях, определяется общее количество микроорганизмов (2% от количества поступивших образцов).
Определение общего количества микроорганизмов и грибов в препаратах и плазме проводят двухслойным агаровым методом в чашках Петри или в жидкой среде в пробирках методом серийных разведений в соответствии с требованиями Государственной фармакопеи.
В сырье для производства продуктов крови и полуфабрикатах продукции общее количество бактерий и грибов суммарно в одном грамме (мл) не должно превышать 100 колоний при отсутствии Enterobacteriaceae, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus.
^ 5. Условия исследований при заготовке
и переработке консервированной крови
Эффективность комплекса мероприятий, осуществляемых при заготовке крови, производстве продуктов крови, направленного на получение стерильного и апирогенного готового продукта, должна находиться под постоянным бактериологическим наблюдением, в процессе которого осуществляется контроль:
воды очищенной и воды для инъекций;
эффективности работы стерилизующих аппаратов;
стерильности материалов первичной упаковки (бутылки, ампулы, пробки, колпачки), игл, инструментов, перевязочного материала, белья и других материалов, подвергаемых стерилизации;
микробной контаминации воздуха асептических боксов и отдельных производственных помещений, рук персонала и кожи локтевых сгибов доноров;
качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения (азопирамовая проба).
Бактериологическое исследование воды очищенной и воды для инъекций, используемых для приготовления лекарственных форм, осуществляется 2 раза в месяц от каждого аппарата. Производят посев воды и посев (смыв) с внутренней поверхности крана дистилляционного аппарата.
Микробиологическая чистота воды очищенной должна соответствовать требованиям Фармакопейной статьи «Вода очищенная» (не более 100 микроорганизмов в 1 мл при отсутствии бактерий семейства Enterobacteriaceае, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus). Исследования на микробиологическую чистоту проводятся согласно требованиям Государственной фармакопеи.
Вода для инъекций должна быть стерильной.
Методика и техника посева простерилизованных изделий:
стерильность изделий определяется не реже 1 раза в неделю и не ранее чем через 24 часа после стерилизации. Для контроля стерильности используется тиогликолевая среда и среда Сабуро;
объектами для контроля стерильности являются: шприцы, иглы, медицинский инструментарий, перевязочные материалы, белье, резиновые перчатки и другие изделия из резины, колпачки, резиновые пробки, посуда (бутылки, флаконы, ампулы), пробирки, пипетки и другие изделия;
стерильность проверяется путем смывов или погружением простерилизованного изделия или его части в питательные среды;
при смывах одновременный посев изделий (или их отдельных узлов и составных частей) производятся в 2 пробирки, содержащие не менее 10 мл указанных выше питательных сред. При погружении количество среды в емкости должно быть достаточным для полного погружения пробы;
посевы выдерживаются в термостате: пробирку с тиогликолевой средой при температуре в диапазоне от +30°С до +35°С, пробирку со средой Сабуро в диапазоне от +20°С до +25°С, в течение восьми суток. При помутнении питательной среды делают мазки, которые окрашиваются по Граму, и проводят микроскопию;
при посеве на стерильность белья простерилизованными и обожженными над пламенем горелки ножницами с помощью пинцета от белья отрезаются небольшие кусочки ткани и погружаются в пробирки с тиогликолевой питательной средой и средой Сабуро. Если стерильность белья контролируются методом смыва, то смыв производят стерильными тампонами, смоченными в стерильном изотоническом 0,9% растворе натрия хлорида, которые затем вносятся в пробирки с тиогликолевой питательной средой и средой Сабуро.
Хирургические инструменты извлекаются из бикса или матерчатой упаковки и подвергаются контролю стерильности методом смыва с поверхности инструментов (2 смыва с одного инструмента).
Контроль стерильности резиновых перчаток и других изделий из резины (колпачки, резиновые пробки) производится методом смыва.
Стерильность посуды (бутылок, флаконов, бидонов, пипеток и других емкостей) проверяется путем смывов с ее наружной поверхности стерильными тампонами, смоченными в стерильном изотоническом 0,9% растворе натрия хлорида, которые помещаются в пробирки с тиогликолевой питательной средой и средой Сабуро. Смыв с внутренней поверхности осуществляются путем ополаскивания ее 10 мл стерильного изотонического 0,9% раствора натрия хлорида и засевания по 1 мл в пробирки с тиогликолевой питательной средой и средой Сабуро.
Исследование материала на стерильность может проводиться с использованием экспресс - анализаторов. Сроки выращивания и учет результатов проводятся согласно инструкции завода-изготовителя экспресс-анализаторов.
Контроль микробной контаминации воздуха асептических боксов и отдельных производственных помещений (определение количества колоний образующими микроорганизмами (КОЕ), содержащихся в 1м3 воздуха помещения) осуществляется путем исследования воздуха аспирационным и седиментационным методом.
Пробы воздуха отбираются аспирационным методом с помощью аппарата Кротова, ПАБ, ПОВ-1 и других аналогичных моделей. Скорость протягивания воздуха через аппарат составляет 25 л/мин. Пропускают 100 литров воздуха для определения общего содержания микроорганизмов и 250 литров - для определения St.aureus.
При отсутствии пробоотборников допускается производить исследование микрофлоры воздуха закрытых помещений методом седиментации (оседания) микрофлоры на чашки Петри с агаровыми средами, отбор проб производится на 2% мясопептонный агар (МПА) в течение 10 минут для определения общей обсемененности воздуха и на желточно-солевой агар (ЖСА) в течение 20 минут для определения содержания St. Aureus.
В помещениях для производства стерильных препаратов крови (боксах) чистота воздуха контролируется ежедневно в начале и конце работы бокса.
Отбор проб воздуха производится при соблюдении следующих условий:
уровень высоты отбора проб должен соответствовать высоте рабочего стола;
закрытые окна и двери;
не раньше, чем через 30 минут после влажной уборки помещения и отключения бактерицидных ламп.
Посевы инкубируются при температуре + 37°С в течение 24 часов, затем оставляются на 24 часа при температуре в диапазоне от +20°С до +25°С. После чего подсчитывается общее количество выросших колоний на чашках Петри и производится перерасчет на количество микроорганизмов в 1м3 воздуха; количество плесневых грибов указывается отдельно.
Пересчет количества выросших колоний на 1м3 воздуха при седиментационном методе производится по Омелянскому, при десятиминутной экспозиции стандартных чашек Петри (диаметром девять сантиметров) с агаром множитель для пересчета берется равным восьмидесяти.
Максимально допустимое количество жизнеспособных микроорганизмов в 1 м3 воздуха: асептических боксах в начале работы не более 400 м/о в 1 м3 (не более 5 колоний), а в конце работы - не более 800 м/о в 1 м3 (10 колоний).
В случае роста на чашках Петри более 400 м/о в 1 м3 в начале работы и более 800 м/о в 1 м3 в конце работы, бокс подвергается более тщательной обработке. Если в боксе выявляются спорообразующие микроорганизмы или грибы, то при уборке помещения применяются дезинфицирующие средства в концентрации, используемой для режима дезинфекции при грибковых инфекциях. При появлении колоний грибов, помимо дезинфекции обращается особое внимание на снижение влажности в боксе и предбоксе, что устраняется путем просушивания помещения с помощью электронагревательных приборов.
Воздух процедурных кабинетов, залов для взятия крови и заготовки компонентов контролируется не реже одного раза в месяц. Общее количество колоний на чашках Петри суммарно не должно превышать до работы 400 м/о в 1 м3.
Воздух в стерилизационном отделении контролируется не реже двух раз в месяц. Общее количество колоний на чашках Петри суммарно в помещении для хранения стерильного материала не должно превышать 400 м/о в 1 м3 до работы и 800 м/о в 1 м3 во время работы. В нестерильной зоне число колоний до работы не должно быть выше 800 м/о в 1 м3 на чашках Петри суммарно.
Для выявления St. aureus производится посев на одну из питательных сред: желточно–солевой, молочно-солевой или молочно– желточно–солевой агар.
После инкубации проводится просмотр чашек для определения характера и массивности роста колоний, с последующим снятием с плотных солевых сред на скошенный питательный агар колоний стафилококков, образующих радужный венчик и пигментированные колонии. При отсутствии на чашках пигментированных колоний и колоний с положительной лецитовителлазной активностью для исследования снимаются безпигментные колонии и колонии с отсутствием лецитовителлазной активности, похожие по морфологии на стафилококк. Следует отбирать не менее 2-х колоний различного вида.
Пробирки с посевами помещаются в термостат при температуре от +35°С до +37°С на 18–20 часов. После суточной инкубации у выделенных штаммов проверяется морфология, тинкториальные свойства (окраска по Граму) и наличие плазмокоагулирующей активности и хлопьеобразующего фактора.
Для идентификации коагулазоположительных стафилококков используются 2 – 3 доступных теста помимо реакции плазмокоагуляции.
Принадлежность культуры, обладающей типичной морфологией, плазмокоагулирующей активностью, при отсутствии пигмента и хлопьеобразования, к виду коагулазоположительных стафилококков определяется по таблице.
Таблица
Микробиологическая чистота субстанций и вспомогательных веществ, используемых при производстве препаратов крови
Вид стафилококка
|
Коагулаза
|
Пигмент
|
Реакция Фогес- Проскауэра
|
Продукция кислоты в аэробных условиях из
|
Хлопьеобразование
|
Гемолиз
|
Манит
|
Мальтоза
|
St.aureus
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
St intermedius
|
+
|
-
|
-
|
+/-
|
+/-
|
+/-
|
+
|
St hyicus
|
+
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
Контроль стерильности эффективности обработки рук персонала во время производственного процесса заготовки и переработки крови контролируется выборочно у нескольких работников, не реже одного раза в неделю, кожи локтевых сгибов доноров – не реже двух раз в неделю. Смывы с локтевых сгибов берутся от 3% доноров.
Проверка эффективности обработки рук персонала и кожи локтевых сгибов доноров проводится одним из следующих методов:
ладони, околоногтевые и межпальцевые пространства обеих рук персонала или конец локтевого сгиба донора на 3 - 4 сантиметра ниже места венепункции, тщательно протираются стерильными марлевыми салфетками, смоченными в растворе нейтрализатора (в зависимости от применяемого антисептика) или в стерильном изотоническом 0,9% растворе натрия хлорида. После взятия пробы марлевая салфетка помещается в широкогорлую посуду с раствором нейтрализатора, воды или изотонического 0,9% раствора натрия хлорида и стеклянными бусами и встряхивается в течение 10 минут для отмыва марлевой салфетки. Промывную жидкость засевают по 0,5 мл в две пробирки с пятью миллилитрами тиогликолевой среды и среды Сабуро. Посевы инкубируют при температуре 30ºС - 35ºС и 20ºС - 25ºС в течение 48 часов;
пальцами рук прикасаются к поверхности плотной питательной среды (МПА) в чашке Петри и делают ими несколько круговых движений. Засеянные» чашки термостатируются при температуре в диапазоне +(30-35)°С в течение двух суток.
Кожа локтевых сгибов доноров и рук медицинского персонала должны быть стерильны.
^ 6. Условия проведения исследований для
внутрилабораторного контроля стерильности
В бактериологических лабораториях должен осуществляться внутрилабораторный контроль стерильности рабочих условий, в которых проводятся исследования на стерильность крови, ее компонентов и препаратов.
При внутрилабораторном контроле стерильности проводятся следующие виды исследований:
стерильности каждой партии приготовленной питательной среды;
стерильности каждой партии лабораторной посуды, инструментария;
микробной контаминации воздуха в боксе;
чистоты рук сотрудников при работе в боксе;
работы сухожаровых шкафов, автоклавов;
работы термостатов;
температурного режима холодильников;
контрольных проб с использованием заведомо стерильных препаратов.
Ежедневно поверхности, оборудование бокса и предбокса подвергаются тщательной влажной уборке стерильной ветошью с применением любых дезинфицирующих и моющих средств, зарегистрированных в Республике Казахстан и разрешенных к применению органами и учреждениями Государственного санитарно-эпидемиологического надзора. Рабочий раствор дезинфицирующих и моющий средств готовится в концентрации в соответствии с утвержденными методическими указаниями.
Норма расхода дезинфицирующих средств - 100-150 мл/м2.
Бокс обрабатывается в резиновых перчатках и марлевой маске, а при необходимости – в респираторе.
Для обеззараживания воздуха в боксе применяются бактерицидные лампы из расчета 2 – 2,5 ватт мощности на кубический метр, которые включаются не ранее, чем через 30 минут после окончания влажной уборки. Облучение проводится в течение 1,5 – 2 часов. Время работы бактерицидных ламп регистрируется в специальных журналах. Применение бактерицидных ламп должно соответствовать их техническим данным по паспорту.
Генеральная уборка бокса проводится один раз в неделю дезинфицирующими средствами в концентрации, указанной в инструкции для вирусных и грибковых инфекций. После проведения генеральной уборки бактерицидные лампы включаются на 2 часа.
При обнаружении в воздухе боксов грибов и плесени, проводится внеочередная генеральная уборка.
Необходимо чередовать дезинфицирующие средства для предотвращения появления устойчивых форм микроорганизмов.
^ 7. Подготовка посуды для питательных сред
Пробирки (бутылки, колбы) с бактериальным ростом продукции подлежат утилизации.
После работы питательные среды без бактериального из использованной лабораторной посуды роста собираются в емкости и после обеззараживания сливаются в канализацию.
Использованная лабораторная посуда (чашки Петри, пробирки, колбы, бутылки и т.д.) и резиновые груши помещаются в 4% раствор перекиси водорода с 0,5% моющим средством или любое дезинфицирующее средство с моющим эффектом, зарегистрированное в Республике Казахстан. В пипетки, перед погружением в раствор, предварительно насасывается этот раствор с помощью резинового баллончика. Выдерживается экспозиция, обеспечивающая надежную дезинфекцию и предстерилизационную очистку. Посуда моется ершами в этом же растворе и многократно (8 – 10 раз) ополаскивается вначале обычной проточной водой до полного удаления запаха дезинфицирующего средства, а затем очищенной водой, после чего производится их дальнейшая обработка.
Сушится посуда при комнатной температуре (холодная сушка) или в сухожаровом шкафу при температуре +85-90°С. Высушенная посуда просматривается на свет. Стекло должно быть совершенно прозрачным без матового налета и пятен. Сухая посуда закрывается (в пробирки, бутылки вставляются пробки, к чашкам Петри подбираются крышки) и помещается в пеналы или заворачивается в бумагу. У колб и бутылок горловина дополнительно обертывается бумажными колпачками.
Посуда стерилизуется сухим горячим воздухом при температуре 180ºС - 190ºС – 60 минут, при температуре 160ºС - 170ºС – 150 мин, или водяным насыщенным паром под избыточным давлением при 2,0 (±0,2) кгс/см2 /+132 +134º С/ - 20-22 минуты, при 1,1(±0,2) кгс/см2 /+120ºС - + 122ºС/ - 45-48 минут.
^ 8. Исследование питательных сред
Подготовка питательных сред к исследованиям (варка, розлив. стерилизация, хранение) проводится в соответствии с инструкциями производителя.
Контроль каждой приготовленной партии питательных сред, используемых в работе бактериологической лаборатории, после автоклавирования должен предусматривать оценку их качества по стерильности путем термостатирования контрольных образцов (не менее 2% от партии) в течение 48 часов.
Контрольные образцы тиогликолевой среды, предназначенной для обнаружения бактерий, инкубируются в течение 48 часов при температуре от +30 до +35ºС. Образцы среды Сабуро, предназначенной для обнаружения грибов, инкубируют в течение 72 часов при температуре от +20ºС до 25ºС.
Учет результатов проводится путем визуального просмотра образцов. Во время термостатирования рост микроорганизмов не должен наблюдаться. В случае пророста (помутнения) среды в оставленных на контроль образцах, бракуется вся партия. Образцы сред, выдержанные в термостате, для исследований не используются.
Одновременно с исследуемыми образцами продукции проводится параллельный контроль питательных сред (не менее одного образца каждой питательной среды) в течение всего периода их термостатирования.
medznate.ru
medznate.ru |
|
|
Скачать 57.09 Kb.