хлам. В настоящее время в Республике Беларусь зарегистрировано около 100 инфекционных болезней животных, вызываемых биологическими агентами
 Скачать 0.5 Mb.
|
|
Введение В настоящее время в Республике Беларусь зарегистрировано около 100 инфекционных болезней животных, вызываемых биологическими агентами. Только в 2002 году острые респираторные и желудочно-кишечные болезни, возникновение и развитие которых связано с воздействием условно-патогенной микрофлоры, диагностированы у 37235 тыс. телят. В конечном счете, они обусловили падеж 9221 голову. Ветеринарная наука и практика добилась значительных успехов в борьбе с инфекционными болезнями животных, но тем не менее в этой области имеется ряд нерешенных вопросов, связанных прежде всего с появлением новых или малоизученных болезней. В условиях интенсификации животноводства и перевода его на промышленную основу в хозяйствах Республики Беларусь установлено значительное распространение хламидиозов у крупного рогатого скота. Эти инфекционные заболевания наносят животноводческим хозяйствам ощутимый экономический ущерб, который выражается в снижении или потере воспроизводительной функции маток из-за абортов, массовых гинекологических заболеваний, падеже и снижении прироста живой массы молодняка и другое. Хламидиозы - группа контагиозных болезней человека, млекопитающих и птиц, вызываемых антигеннородственными и морфологически аналогичными микроорганизмами - хламидиями (И.И. Терских, 1979; В.И. Белоусов, 1997; Ю.Д. Караваев и др. 1999). Антигены, присутствующие на поверхности хламидий, классифицируют на родо-, видо-, подвидо- и серотипоспецифические. (Караваев Ю.Д. и др., 1999). Все виды хламидий имеют общий термостабильный родоспецифический антиген (ЛПС - липополисахарид). Видо и типоспецифические антигены - термолабильные белки (И.Л. Обухов и др., 1998). Хламидии зависят от энергии эукаритических клеток и характеризуются уникальным циклом развития. Внеклеточные элементарные реорганизуются в хрупкие ретикулярные тельца (размер 800-1200 нм., малоинфекционны) и внедряются в клетку хозяина, где делятся с превращением в инфекционные элементарные тельца, имеющие сферическую форму со средним диаметром 300 нм..(И.А. Калугина, 1992). Возбудитель обнаружен у диких животных и рыб, а также в растениях. Хламидии, выделяемые от животных, могут вызвать заболевание человека. Хламидиозы человека и животных, зарегистрированы на всех континентах земного шара, протекают остро, хронически и бессимптомно, причем пораженные особи длительное время хламидионосителями. (Ф.З. Авзалов, И.А. Курбанова, 1987; О.В. Теплякова, 1986; M.M. Wittenbrink, 1991; F. Horsh, 1989). Заболевание наносит неблагополучным хозяйствам значительный экономический ущерб, который получается из недополучения молодняка, затратами на лекарственные и профилактические препараты, и дезинфекцию. В связи с тем, что хламидиоз крупного рогатого скота, независимо от вида клинической формы проявления, относится к недостаточно изученным болезням, которые представляют серьёзную проблему для животноводства, возникает необходимость всестороннего изучения этой инфекции, особенно в направлении клинико-эпизоотологической характеристики, что открывает перспективу на создание специфических способов борьбы и его профилактики. 1. Специфическая профилактика хламидиоза крупного рогатого скота Вопросы иммунитета и механизмы его формирования при хламидийных инфекциях, несмотря на большое число экспериментальных данных, пока полностью не изучены. Вероятно, очень слабая выживаемость новорожденных телят от первотелок и объясняется отсутствием у них иммунитета. Первый отел в большинстве случаев проходит ненормально в физиологическом отношении и рассматривается как патологические роды, не говоря уже об аборте, который прямо отражает патологические роды не говоря уже об аборте, который прямо отражает патологическое состояние организма коров. Заметно или скрытое переболевание сопровождается выработкой иммунитета определенной напряженности, в результате чего повторные отелы протекают более благополучно, количество мертворожденных уменьшается, выживаемость молодняка увеличивается. При длительном скрытом хламидионосительстве, особенно постоянном пребывании хламидий в кишечнике, не сопровождается переболеванием животных, иммунитет обычно не вырабатывается. D.K. Giri, В.С. Nayak, (1990) обнаружили, что организм коров, выделяющих хламидии с фекалиями и не имеющие клинические признаки заболевания, не оказывал сопротивления к последующему экспериментальному заражению. Более того, хламидии, выделенные из фекалии и повторно введенные в организм стельных коров, инфицировали у них плаценту и плод, что приводило к аборту. Вместе с тем, активное переболевание животных обычно сопровождается выработкой иммунитета, причем роль антител в этом механизме ставится под сомнение (D. Bednarek, 1998) Ещё V.D. Purohit et all (1986) обнаружили, что наличие в сыворотке крови комплементсвязывающих антител в значительных титрах против хламидий не оказывает защитного воздействия при внутривенном введении указанных микроорганизмов стельным коровам, то есть не существует связи между сывороточными антителами и степенью устойчивости организма к хламидиозной инфекции. По мнению Л.А. Вишняковой (1975), только на раннем этапе развития инфекционного процесса антителам принадлежит существенная роль в очищении организма от возбудителей рода Chlamydia, причем возможно развитие штаммоспецифического иммунитета по крайней мере на стадии образования иммунных глобулинов класса М как антител первичного ответа. По мере развития инфекционного процесса в организме больных животных могут накапливаться не только комплементсвязывающие антитела, но и агглютинины, однако в силу слабой иммуногенности хламидий титры антител не всегда отличаются высокими показателями и развившийся гуморальный иммунитет оказывается недостаточным для предотвращения повторного заражения. В механизме защиты организма от хламидиозной инфекции весомая роль принадлежит клеточным факторам. В 1989 году P. Mardh et all заметили, что хламидии свободно размножаются в моноцитах нормальных морских свинок и теряет эту способность при внедрении в аналогичные клетки иммунных животных. И.И. Багдонас (1975) установил высокую чувствительность белых мышей, иммунизированных формолвакциной против хламидиозной пневмонией телят, к интерцеребральному и внутрибрюшинному заражению эпизоотическим штаммом хламидий. Вероятно, механизм устойчивости не был связан с антителами, так как они выявлялись в относительно низком титре (1:32). П.М. Митрофанов (1981), развивая идею о существовании клеточного иммунитета при хламидиозе, отметил, что макрофаги иммунных животных не поддерживают размножение хламидий и совместно с микрофагами подавляет хламидиемию. Поэтому у них степень очищения организма от хламидий значительно выше, чем у не иммунизированных. В иммунных реакциях при хламидиозе участвуют компоненты клеточного местного иммунитета. На это указывает наличие клеточных инфильтратов в органах и тканях, где размножаются хламидии (скопление макрофагов, моноцитов, лимфоцитов и плазматических клеток в соединительной основе слизистой оболочке воздухоносных путей, перибронхиальной, периваскулярной и межальвеолярной тканях легких, в собственной пластинке слизистой оболочки кишечника, а также в межуточной ткани паренхиматозных органов. Формирование указанных клеточных инфильтратов не может быть объяснено только развитием очага синтеза антител). Они могут быть выражением материального субстрата, ответственного за осуществление реакции повышенной чувствительности замедленного типа. П.М. Митрофанов (1986) при хламидиозе крупного рогатого скота наблюдал, что при заражении животных возбудителем менингопневмонии, в апикальных отделах пораженного эпителия бронхиол выявляются своеобразные внутриклеточные белковые тельца различной формы и величины, присутствие которых способствует резкому уменьшению и даже полному исчезновению хламидий из клеток. Не исключено, что эта своеобразная реакция клеток на присутствие в них паразита направлена на купирование инфекции. Возможно, что появление в инфицированных клетках повышенного количества миелиноподобных структур, обнаруженных при электронно-микроскопическом изучении возбудителя хламидиоза крупного рогатого скота, также является выражением клеточной защитной реакции. Введение хламидиозной вакцины в организм животных сопровождалась не только выработкой специфических антител, но и вызвало выраженную клеточную реакцию со стороны иммунной системы. На 5 - 10 день после вакцинации отмечено увеличение синтеза РНК в паховых, подчелюстных и брыжеечных лимфоузлах, а также в вилочковой железе и селезенке (В.Л. Ковалев, 1987). В настоящее время можно считать точно установленной передачу противохламидийных антител с молозивом матери телятам, ягнятам, поросятам и жеребятам. Так (J.P. Bаnnantine, D.D. Rockey, and T. Hackstadt, 1998) показали значительное накопление комплементсвязывающих антител в сыворотке молока у коров через 10 дней после внутривыменного заражения их возбудителем хламидийного аборта овец. Один выживший теленок, у матери которого в момент рождения титр антител был равен 1: 64, имел титр в сыворотке крови 1:32 после первого кормления его молозивом матери. Максимального уровня (1:128) антитела достигли к 6-му дню и затем снизились до незначительных величин к 35-му дню. Перенос антител новорожденным животным с молозивом, вероятно, является самым важным средством обеспечения противохламидийными антителами в раннем периоде их жизни. По-видимому, пассивно приобретенный иммунитет подавляет возможные пренатальные и неонатальные хламидийные инфекции, которыми новорожденные животные заражаются в энзоотически неблагополучных стадах. Однако следует отметить, что противохламидийные молозивные антитела, передаваемые телятам, не предотвращали размножения хламидий в клетках кишечника, а высоковирулентный штамм хламидий вызывал системную инфекцию после перорального заражения телят. (И.Л. Обухов, А.Н. Панин, К.Н. Груздев, 1997; К. Bаchmaier, et all 1999). Наиболее интенсивно изучались вопросы активной иммунизации животных при хламидиозах для профилактики хламидийных абортов у мелкого и крупного рогатого скота. При этом испытывали как живые, так и инактивированные вакцины. Вакцинация как основное средство профилактики абортов изучается с 1951 года, когда A.D. McEwen et all (1951), который является пионером по профилактике хламидийных абортов у овец, показал, что вакцинированные матки были защищены от заражения небольшой дозой (1мл. подкожно, 105 ЭЛД50) желточной сузпензии. Однако доза, увеличенная в 100 раз, вызывала плацентарную инфекцию у 3 из 6 привитых и у 5 из 6 контрольных овцематок. Для профилактики хламидиоза за рубежом разработаны вакцины двух видов - живые и инактивированные. Конструированием живых вакцин занимались Mitscherlich (1963 - 1965). Живые вакцины готовили различными способами. E. Mitscherlich (1965) готовил вакцину из неочищенных сузпензий желточных мешков куриных эмбрионов из штамма хламидий, прошедшего 64 пассажа. Первоначально возбудитель был выделен из плодовых оболочек ягненка и готовили вакцину из штамма, адаптированного к репродуцированию в клетках хорионаллантоисной полости и прошедшего 124 -130 пассажей на куриных эмбрионах. При этом собранную аллантоисную жидкость до введения замораживали на несколько недель. Вакцину вводили в дозе 2 мл. после разведения 1:3. Инфекционность хламидий в этой вакцине также не определялась и по мнению авторов, повторные замораживания и оттаивание вызывали значительную потерю её. Эти вакцины применяли для профилактики хламидийных абортов коров. При учете эффективности применения живых вакцин исследователи пришли к выводу, что они более перспективны по сравнению с инактивированными препаратами. Живые вакцины были использованы при хламидийном аборте овец. Эти вакцины купировали инфекцию в неблагополучных отарах при введении животным 2 108 ЭЛД50 / мл.. Однако при широком испытании вакцин авторы установили, что введение живых вакцин неэффективно. Прежде всего это связано с тем, что живые вакцины имели ограниченный срок хранения. Количество живых хламидий при температуре 4С в течение 7 суток уменьшалось вдвое и более раз. В связи с этим для хранения живых вакцин требовались холодильники в процессе хранения и очень оперативное применение их после изготовления. Необходимо отметить, что результаты апробации как живых, так и инактивированных вакцин, используемых для профилактики абортов у овец и коров, очень разноречивы. Разноречивость результатов, по-видимому, обусловлена эпизоотической ситуацией в местах применения вакцин, сроками вакцинации животных и другими причинами. При разработке инактивированных вакцин A.D. McEwen et all (1951) предложили использовать в качестве исходного материала желточные мешки куриных эмбрионов, зараженных возбудителем хламидиоза. Инактивацию возбудителя проводили формалином при температуре 37С. Вакцина оказалось весьма эффективной. В неблагополучных по заболеванию хозяйствах она защищала животных при однократной подкожной инъекции. При хламидийных инфекциях, иммунитет и механизмы его формирования, несмотря на большое количество экспериментальных данных, пока полностью не изучены. Наиболее интенсивно изучаются вопросы активной иммунизации животных против хламидиоза крупного рогатого скота в настоящее время. В Казанском ордена Ленина ветеринарном институте имени Н.Э. Баумана (1976 - 1980) разрабатывались инактивированные, моно-, би и поливалентные вакцины против энцефалитов, энтеритов и пневмоний телят хламидийного происхождения. При этом для конструирования вакцин использовали различные методы инактивации возбудителя и разные адъюванты. Испытание показало высокую иммуногенность препаратов. В ВИЭВе создана эмульгированная вакцина против хламидиозного аборта овец, которая применялась длительное время на просторах СНГ для активной иммунизации овец. В связи с тем, что хламидии выделенных от абортированных коров, свиней и овец, имеют между собой определенное морфологическое, тинкториальное и антигенное родство, были проведены эксперименты по определению иммуногенной активности вакцины против хламидиозного аборта овец на крупном рогатом скоте и свиньях. При этом было установлено, что вакцина против хламидиозного аборта овец биофабричного производства обладает достаточной иммуногенной активностью не только для овец, но и для крупного рогатого скота и свиней и была рекомендована для применения в производственных условиях. Результаты вакцинации показали, что она защищает 96 -98% вакцинированных животных (Н.И. Налетов с соавтр., 1991; В.П. Толстов, 1996). В 80-е годы широкое применение в СССР получила инактивированная эмульгированная вакцина фирмы “Филаксия”, по данным сотрудников ВИЭВ и специалистов на местах, менее иммуногенна, чем вакцина разработанная в ВИЭВе (Н.З. Хазипов с соавтр., 1980). В Англии с 1982 года выпускали вакцину для профилактики абортов хламидийной этиологии. Достаточно иммунизировать вводимых в стадо животных и все стадо один раз в три года, чтобы предотвращать заболевание в хозяйстве. Препарат не обладает 100% эффективностью, однако существенно снижает потери от энзоотического аборта (D.C.Bowen, 1983). Получена противохламидийная вакцина в Народной Республике Болгария (Г. Попов, П. Мартинов, 1989). В 1996 году Р.Х. Хамадеев с соавтр., разработали моно-, би- и поливалентные эмульгированные, адсорбированные и гелевые экспериментальные противохламидийные вакцины. Сравнительное испытание иммуногенности 3 типов вакцин, показало, что эмульгированная вакцина обуславливает формирование иммунитета, способного защитить телят от экспериментального заболевания при контрольном заражении. Адсорбированная и гелевая вакцины по иммуногенности были менее эффективны и не предупреждали развитие инфекции у зараженных телят. В Чехии была использована вакцина против риккетсиоза и хламидиоза, которую вводили подкожно, двукратно с месячным интервалом. Реактогенность комбинированной вакцины была низкой, а иммуногенность достаточна высокой. До вакцинации наблюдали 7 абортов и 22 задержания последа, после вакцинации - 3 аборта и 10 задержаний (J. Kazar et all, 1987). В результате иммунизации матерей инактивированной вакциной против хламидиозного аборта овец, клостридиоза, листериоза и сальмонеллеза число абортов составило 7,1%, а у невакцинированных - 80% (Е.И. Постников, А.Ф. Дмитириев, 1997). С использованием штамма “250” возбудителя хламидиозного аборта коров и нетелей сократилось в четыре раза (Р.Х. Хамадеев, А.З. Равилов, Ф.М. Хусаинов, 1991). Опыты с использованием экспериментальной серии вакцины против хламидиоза крупного рогатого скота показали, что вакцинация коров в неблагополучных хозяйствах защищает 93 - 97% животных, сохранность телят повышается на 7 - 9% (В.Н. Зимина, 1988). По данным Г.П. Щербань, В.Н. Зимина (1986, 1989) телятам поступающим на доращивание, вводили сыворотку реконвалесцентов в дозе 0,7 мл. на 1 кг. массы животного, через 10 двукратно вакцинировали. В результате перестали регистрировать заболевание телят с признаками пневмонии хламидиозной этиологии. Гибель сократилась на 80 - 90%, вынужденный убой на 40 - 50%. Кроме того увеличились на 120 - 160 грамм в сутки привесы. В результате иммунизации инактивированной эмульсионной вакциной против хламидиоза 6862 голов крупного рогатого скота, выявлено, что в хозяйствах в 5,4 раза сократилось количество абортов и мертворожденных телят, в 3,7 раза снизились падеж и вынужденный убой животных и в 4,2 раза уменьшились общие потери молодняка. Данная вакцина использовалась в течение 3 лет с положительным результатом использовали для оздоровления 36 неблагополучных по хламидиозу хозяйств Татарстана и Российской Федерации (Р.Х. Хамадеев, Ф.М. Хусаинов, А.З. Равилов, 1996) Мероприятия по предупреждению и ликвидации хламидиоза крупного рогатого скота В Республике Беларусь мероприятия по предупреждению и ликвидации хламидиоза крупного рогатого скота проводят на основании “Инструкции по профилактике ликвидации хламидиоза животных”, утвержденной ГУВ с Государственной ветеринарной инспекции 15 апреля 1991 года. При установлении диагноза на хламидиоз с учетом эпизоотической ситуации, клинических признаков, нарастания титра комплементсвязывающих антител при исследовании проб сывороток крови, микроскопического обнаружения хламидий в хозяйствах проводят общие ветеринарные, зоогигиенические и хозяйственные мероприятия по предупреждению заноса хламидиоза крупного рогатого скота, основными среди которых являются: изолированное содержание ферм с соблюдением существующих санитарных норм; оборудование санпропускников; использование обслуживающим персоналом двух комплектов спецодежды с регулярной специальной обработкой её; 30-дневное карантинирование вновь поступающих в хозяйство животных; устранение всех отрицательных факторов, способствующих снижению естественной резистенности организма. Мероприятия по ликвидации хламидиоза крупного рогатого скота проводят согласно существующей инструкции. Хозяйство объявляют неблагополучным и вводят ограничения. При этом запрещается ввоз и вывоз животных и кормов неблагополучной фермы; перегруппировку животных внутри хозяйства; доступ лиц не связанных с обслуживанием животных неблагополучного хозяйства. Клинических больных животных выделяют в отдельные группы и лечат антибиотками тетрациклинового ряда, проводят дезинфекцию помещений и вакцинацию животных, навоз биотермически обеззараживают. В настоящее время в связи с открытием нового вида возбудителя, усовершенствованием серологической диагностики и разработкой новых средств специфической защиты стоит вопрос о разработке новой инструкции по предупреждению и ликвидации хламидиоза крупного рогатого скота в Республике Беларусь. Целью и задачами наших исследований явилось: Изучить эпизоотическую ситуацию по хламидиозу крупного рогатого скота в колхозе «Ивацевический» Ивацевического района Брестской области. В сравнительном аспекте, изучить применения вакцин для специфической профилактики хламидиоза крупного рогатого скота в колхозе в колхозе «Ивацевический» Ивацевического района Брестской области. Рассчитать экономическую эффективность применяемых вакцин для специфической профилактики хламидиоза. 4. Составить план мероприятий по ликвидации и профилактике хламидиоза крупного рогатого скота. |