микра. Возбудители кишечных инфекций в двух группах детских яслей трое детей почти одновременно (2024 сентября) заболели
 Скачать 1.3 Mb.
|
|
диагноза. Ответ обоснуйте. Ответ: Ошибки: фекалии высевают только на второй неделе болезни, а пациент болен всего лишь 5 дней. Кровь берут в первую неделю болезни, но предварительно высевают её на жидкие среды обогащения (желчный бульон). Патогенез и материал: Инкубационный период (10-14 дней): 2. Возбудитель попадает в пищеварительный тракт, инвазирует трансцитозом слизистую тонкого кишечника. 3. Попадает в макрофаги, а после в пейровы бляшки, нарушая их барьерную функцию. 4. Из пейровых бляшек возбудитель попадает в кровоток и разносится по всему организму. В течение первой недели возбудитель циркулирует в крови, поэтому на анализ берут кровь. В течение второй недели возбудитель попадает в паренхиматозные органы (печень, селезенка, легкие). К концу второй недели возбудитель начинает выделятся мочой, слюной, потом, испражнениями. Методы микробиологической диагностики: На 1ой неделе заболевания и на протяжении всего лихорадочного периода: бактериологический метод – посев крови пациента в желчный бульон с последующим пересевом на деферинциально-диагностические среды (Плоскирева, Левина, висмут- сульфитный агар). Методы микробиологической диагностики на 2ой неделе заболевания (дальнейшая идентификация): • Урокультура и копрокультура – выделение возбудителя из мочи и кала, которые засевают на среды с содержанием желчи; • Серологическое исследование для определения наличия и типа антител в РНГА, которую ставят с O-, H-, Vi-диагностикумами (положительный – диагностический титр не менее 1:200); • Постановка ИФА – выявление антигенов или антител с помощью соответствующих им антител, конъюгированных с ферментом меткой. В инфекционное отделение больницы поступила пациентка с подозрением на холеру. Установлено, что накануне она прилетела из Индии, где отдыхала вместе с семьей. В самолете подавали салат из морепродуктов. Сразу по прибытии в аэропорт у женщины появились рвота, боли в животе, частый жидкий стул, повысилась температура тела. При исследовании испражнений больной в РИФ антигены возбудителя холеры не обнаружили. Назовите бактерии, которые могли вызывать холероподобный гастроэнтерит. Обоснуйте выбор методов микробиологической диагностики, которые помогут поставить диагноз. Ответ: ЭТКП (энтротоксиногенные E.coli служат возбудителями холероподобных заболеваний у детей и взрослых. Материал для исследования – испражнения, рвотные массы. Исследуемый материал засевается на дифференциальные лактозо-содержащие среды (Плоскирева, Эндо, Левина). После инкубации при 37С в течение 18 часов отбираются колонии, которые агглютинируют поливалентной ОВ-агглютинирующей сывороткой, которые идентифицируются до вида по биохимическим тестам, с последующим определением их серологического варианта. Для определения серовара: проводят РСК или РНГА с сывороткой крови больного. ПЦР. После посещения ресторана быстрого питания трое студентов обратились к врачу с жалобами на боли в животе, тенезмы, частый жидкий стул с примесью крови. Врач поставил диагноз: «дизентерия» и направил испражнения всех заболевших на бактериологическое исследование. При посеве фекалий на среду Эндо получен рост колоний красного цвета с металлическим блеском. Оцените полученные результаты бактериологического исследования. Назовите возбудителей, которые могли вызвать это заболевание. Составьте схему идентификации выделенной культуры бактерий. Ответ обоснуйте. Ответ: На дифференциально-диагностической среде выросли окрашенный колонии, что указывает на способность исследуемого микроба ферментировать лактозу. Из возбудителей острых кишечных инфекций на это способны представители рода E.coli категории ЭГКП (энтерогеморрагические), так как именно эта категория вызывает у людей жидкий стул с примесью крови. Метод микробиологической диагностики: Материал для исследования – испражнения, рвотные массы. Исследуемый материал засевается на дифференциальные лактозо-содержащие среды (Плоскирева, Эндо, Левина). После инкубации при 37С в течение 18 часов отбираются колонии, которые агглютинируют поливалентной ОВ-агглютинирующей сывороткой, которые идентифицируются до вида по биохимическим тестам, с последующим определением их серологического варианта. Для определения серовара: проводят РСК или РНГА с сывороткой крови больного. ПЦР. Возбудители респираторных инфекций Больному ребенку был поставлен диагноз: «ангина». Материал из носоглотки был направлен в бактериологическую лабораторию. При посеве на среде Клауберга появился рост мелких черных блестящих колоний. Какие микробы могут дать такой рост? Какой метод следует использовать для крашивания выделенного возбудителя? На какие морфологические и тинкториальные особенности микробов следует обратить внимание? Назовите тесты, на основании которых можно дифференцировать возбудителей и представителей нормофлоры. Какой методикробиологической диагностики является основным и как определить биовар и токсигенность возбудителя? Ответ: Такой рост могли дать Corynebacterium diphtheriа (биовар mitis). Метод окрашивания –метиленовый синий по Леффлеру (зерна волютина темно-синего цвета), по Нейссеру (зерна волютина черно-коричневого цвета). Морфологические особенности: грамположительные, прямые, булавковидные из-за наличия зерен волютина на каждом конце клетки. Бактерии располагаются под углом по отношению друг к другу (напоминая V, X, Y). Тинкториальные особенности: обладают метахромазией. Окрашиваются метиленовым синим по Леффлеру (зерна волютина темно-синего цвета), по Нейссеру (зерна волютина черно- коричневого цвета). Тесты, отличающие патогенные бактерии от нормофлоры: ПЦР (наличие tox+ гена в ДНК); Реакция преципитации в геле для определения дифтерийного экзотоксина (около колоний токсигенных коринебактерий образуются преципитаты, а возле нетоксиногенных преципитат не образуется). Основным методом является бактериологический: взятие слизи из зева или носоглотки. Засевание на среду Клаубергна II или среду Тинсдаля. При оформлении на работу воспитательницей в детский сад гражданка М. прошла тщательное медицинское обследование. Из материала со слизистой носоглотки у нее была выделена дифтерийная палочка. Однако, несмотря на это, гражданка М. была принята на работу. Почему обнаружение у обследованной женщины дифтерийной палочки не послужило поводом для отказа в приеме на работу? Какие исследования были проведены? Ответ: У женщины были обнаружены нетоксиногенные штаммы Corynebacterium diphtheriа, поэтому её взяли на работу. Микробиологические исследования: Взятие слизи из зева или носоглотки. Засевание на среду Клаубергна II или среду Тинсдаля. Для определения токсиногенности: ПЦР (наличие tox+ гена в ДНК); Реакция преципитации в геле для определения дифтерийного экзотоксина (около колоний токсигенных коринебактерий образуются преципитаты). Больная поступила в инфекционное отделение с диагнозом «дифтерия». Диагноз микробиологически подтвержден. Необходимо решить вопрос о проведении экстренной профилактики членам его семьи. Какие исследования необходимо провести и какие препараты следует назначить, если в семье есть ребенок 8 лет, муж больной 36 лет и мать 60 лет? Ответ: Необходимые исследования: РНГА с антигенным эритроцитарным диагностикумом и ИФА. Препараты: До получения результатов проводится антибиотикопрофилактика –феноксиметилпенициллин, эритромицин, пенициллин, тетрациклины (детям нельзя) или другие макролиды. Главным в лечении всех форм дифтерии (кроме бактерионосительства) является введение антитоксической противодифтерийной лошадиной сыворотки (ПДС), которая подавляет дифтерийный токсин. Антибиотики не оказывают существенного действия на возбудителя дифтерии В России вакцинация от дифтерии вакциной АКДС иди АДС проводится на первом году жизни трижды, затем в полтора года, в 6 и в 14 лет, после чего взрослых прививают каждые 10 лет. При осмотре зева больного ребенка были обнаружены грязно-белые пленки на миндалинах, переходящие на дужки миндалин. Врач заподозрил дифтерию и ребенок был госпитализирован. Какие микробиологические исследования необходимо провести для подтверждениядиагноза? Какие препараты следует использовать для этиотропного лечения? Какие исследования необходимо провести перед выпиской выздоровевшего ребенка из больницы? Ответ: Микробиологические исследования: Взятие слизи из зева или носоглотки. Засевание на среду Клаубергна II или среду Тинсдаля. Для определения токсиногенности: ПЦР (наличие tox+ гена в ДНК); Реакция преципитации в геле для определения дифтерийного экзотоксина (около колоний токсигенных коринебактерий образуются преципитаты). Этиотропное лечение: введение антитоксической противодифтерийной лошадиной сыворотки. Перед введением ставят кожную пробу с лошадиной сывороткой в разведении 1:100 для определения чувствительности больного к белкам сыворотки. Также применяются пенициллин, эритромицин, цефалоспорины, тетрациклины (детям нельзя). Перед выпиской необходимо провести РНГА с антигенным эритроцитарным диагностикумом. Из центрифугата утренней порции мочи, взятой у больного с подозрением на туберкулез почек, был приготовлен мазок и окрашен по методу Циля-Нельсена. В мазке обнаружены единичные кислотоустойчивые палочки. Можно ли на основании проведенного исследования поставить микробиологический диагноз? Какие микробиологические методы диагностики используют при туберкулезе? Ответ: Нет, нельзя, так как эти бактерии могут быть нетуберкулезными микобактериями. Микробиологические методы при туберкулезе: Серологические: РНГА и ИФА. Аллергический: туберкулинодиагностика: проба Манту. Бактериологический: посев на среду Левенштейна-Йенсена, пересев через 3-4 недели на картофельно-глицериновый агар. Далее идентификация по основным признакам, определение чувствительности к антибиотикам. В воинской части один из военнослужащих заболел дифтерией и существует реальная опасность заражения солдат, живущих с ним в одной казарме. Как выявить наличие иммунитета у этих людей? Каков характер этого иммунитета? Какие специфические профилактические мероприятия следует провести? Ответ: Для оценки антитоксического иммунитета у людей применяют РНГА с антигенным эритроцитарным диагностикумом и ИФА. Характер иммунитета: длительный и напряженный гуморальный иммунитет и ненапряженный серовароспецифиченый антибактериальный иммунитет. Профилактические мероприятия:антибиотикотерапия (нет существенного действия) либо введение АКДС или АДС. Лечение: введение антитоксической противодифтерийной лошадиной сыворотки. Перед введением ставят кожную пробу с лошадиной сывороткой в разведении 1:100 для определения чувствительности больного к белкам сыворотки. При бактериологическом исследовании на среде Борде-Жангу выросли колонии, похожие на капельки ртути с зоной гемолиза. Назовите предполагаемого возбудителя. Как правильно взять материал для посева при этой инфекции? Как продолжить исследование? Ответ: Предполагаемые возбудитель – Bordetella pertussis (возбудитель коклюша). Материал для исследования (слизь с задней стенки глотки) забирают методом «кашлевых пластинок»: во время приступа кашля чашку Петри с питательной средой держат перед лицом пациента, в результате чего осуществляется посев на поверхность среды. Исследование: Бактериологический метод: Для выращивания культуры используют среду Борде-Жангу, молочнокровяной агар, КУА, бордетелагар (аналог КУА). Для подавления роста сопутствующей микрофлоры в среду добавляют пенициллин. Чашки с посевами инкубируют в термостате при 37ОС в течение 2-3 суток. При наличии характерных колоний из них готовят мазки, которые окрашивают по Граму и микроскопируют. Для серологической идентификации бордетелл ставят РНГА и РСК, ИФА. При лабораторном исследовании мокроты больного в микропрепарате, приготовленном по методу Прайса и окрашенном по Цилю-Нельсену, обнаружены тонкие, длинные, слегка изогнутые красные палочки, располагающиеся в виде жгутов («кос»). Назовите предполагаемого возбудителя. В чем сущность метода Прайса ? Какой фактор вызвал образование микроколоний в виде жгутов («кос»)? Ответ: Предполагаемый возбудитель – M.tuberculosis. Образование колоний в виде жгутов вызвавл корд-фактор (димиколат трегалозы) – гликолипид и фактор патогенности. При медицинском обследовании учащихся 1-го класса поставлена проба Манту. С какой целью была поставлена проба Манту? Какие препараты используются для ее постановки? Как и когда оценить результаты пробы Манту? Объясните механизмы, лежащие в основе реакции Манту. Ответ: Цель: своевременное выявление первичного инфицирования детей, а также отбора для ревакцинации БЦЖ неинфицированных лиц. Препараты: очищенный туберкулин в стандартном разведении, который изготавливают из смеси убитых нагреванием фильтратов культур M.tuberculosis и M.bovis. Оценка: для оценки результатов медики используют следующие данные по таблице: размер папулы – 0-2 мм – отрицательная реакция Манту; уплотнение – 2-5 мм – сомнительная реакция; пуговка размером от 5 мм – положительная реакция. Но! Так как применяемый туберкулин содержит полный набор микобактериальных антигенов, данная реакция не позволяет выявить различия между активной формой заболевания, бессимптомным носительством и перекрестной сенсибилизацией другими видами микобактерий. Поэтому в дополенение к ней используют даскин-тест, содержащий CFP10 и ESAT6 антигены, которые сеть только у вирулентных штаммов микобактерий туберкулеза. Механизмы: Механизм развития туберкулиновых реакций основан на взаимодействии между туберкулином и фиксированными на клетках (лимфоцитах, мононуклеарах) антителами. В результате этого взаимодействия часть клеток — носителей антител погибает и возникает воспаление (положительная туберкулиновая реакция). Патоморфологически положительная туберкулиновая реакция характеризуется отеком всех слоев кожи в первые 24 часа после введения туберкулина, а в более поздние сроки (72 часа) — мононуклеарной реакцией с большим числом гистиоцитов . Образующийся при этом инфильтрат (папула) обусловлен расширением капилляров, пропотеванием тканевой жидкости, скоплением нейтрофилов, моноцитов, эпителиоидных и гигантских клеток. При гиперергических реакциях с выраженным некрозом обнаруживают элементы специфического воспаления с эпителиоидными бугорками. У больного с клинической картиной тяжелой пневмонии из мокроты выделена грамотрицательная палочка, идентифицированная как Legionella pneumophila. Возбудителем какого заболевания является выделенный микроорганизм? Назовите проведенный метод микробиологической диагностики и его основные этапы. Ответ: Данный возбудитель вызывает 2 формы легионеллеза: болезнь легионеров (тяжелая пневмония) либо лихорадку Понтиак (ОРЗ без пневмонии). Метод микробиологической диагностики: В данном случае была проведена бактериологический метод. Материал – мокрота, плевральный экссудат, биопсийный материал легких. Материал посеян на угольно-дрожжевой агар, выросшие коричневые колонии микроскопируют. Далее проводят РА и определение биохимических свойств. Серологический метод: ИФА. Экспресс метод: РИФ и ПЦР. Определение токсигенности выделенной от больного культуры Corynebacterium diphtheriae методом Оухтерлони дало отрицательный результат. Достаточно ли проведенного исследования для окончательного вывода о токсигенности выделенной культуры? Ответ: Нет. В данном случае необходимо также поставить пробы на наличие фермента цистиназы (проба на среде Пизу) - потемнее в виде облака; Проба на уреазу, так как C.diphtheriae в отличие от других коринебактерий не ферментирует данный фермент. Также нужно провести РА с агглютинирующей дифтерийной сывороткой. Клинический диагноз – лепра (лепроматозная форма). Какой материал необходимо взять от больного для проведения микробиологической диагностики? Какие методы диагностики нужно применить для подтверждения клинического иагноза? Ответ: Материал: соскоб с кожи, пункция увеличенных лимфатических узлов., мокрота. Проводится бактериоскопическое исследование. В мазках из вышеперечисленного материала при окраске по Цилю-Нильсену наблюдаются скопления кислотоустойчивых бактерий и внутриклеточное их расположение в макрофагах. Также может проводится постановка кожной пробы (аллергическая проба) с аллергеном M.leprae для дифференциальной диагностики турекулоидной формы. ПЦР и использование моноклональных антител для обнаружения лепрозных антигенов. В детском саду один ребенок заболел дифтерией. Для проведения профилактических мероприятий среди контактировавших детей необходимо определить наличие антитоксического иммунитета. Какие исследования необходимо провести? Ответ: Для оценки антитоксического иммунитета у людей применяют РНГА с антигенным эритроцитарным диагностикумом и ИФА. Защитный титр антител при РНГА=1:40. При проведении исследования мокроты у больного с подозрением на туберкулёз получили отрицательный результат ПЦР при наличии кислотоустойчивых микобактерий в мазках. Какой диагноз можно поставить? Какие препараты следует назначить для лечения? Ответ: В данном случае диагноз: нетуберкулезный микобактериоз; Препараты: циклосерин, этамбутолу и рифампицину. Список литературы: Медицинская микробиология, вирусология и иммунология: Учебник под редакцией В.В. Зверева, А.С. Быкова; Флэш-карточки по частной микробиологии @medstagram_1; Иммунология и аллергология под редакцией А.А. Воробьева, А.С. Быкова, А.В. Караулова; https://vk.com/doc120669542_468326777?hash=d8d6f5eee55c39a776&dl=ee72a000cdc1242bac |