тема 5. Дезинфекция и стерилизация изделий медицинского назначения проводится для обезвреживания либо уничтожения различных микроорганизмов
 Скачать 22.28 Kb.
|
|
Подготовка начального и рабочего раствора азопирама: 1. Закажите в аптеке начальный раствор азопирама (амидопирина 10 г, солянокислого анилина 0,15 г 95% спирта этилового 100 г). 2. Сохранять раствор в закрытом при температуре + 4оС (в холодильнике) в течение двух месяцев, в темном месте при комнатной температуре – в течение месяца. 3. Непосредственно перед проверкой качества предстерилизационной очистки изделий приготовьте рабочий раствор: смешайте одинаковое количество азопирама и 3% раствор перекиси водорода. 4. Проверка рабочего раствора азопирама: 2-3 капли раствора нанесите на кровяное пятно. Если через 1 минуту (не позже) появится фиолетовое окрашивание, которое изменится на сиреневое, реактив пригодный к использованию. Индикация загрязнения: 1. Азопирам определяет наличие гемоглобина, пероксидаз растительного происхождения, хлорамина, хлорной извести, моющих средств с отбеливателем, ржавчины и кислот. 2. При наличии следов крови не позднее чем через 1 минуту после контакта реактива с загрязненным участком появляется окрашивание сначала фиолетовое, которое затем переходит в розово-сиреневое или буроватое. 3. Рабочий раствор (азопирам с перекисью водорода) используют в течение 1-2 часов. При более длительном хранении может появиться спонтанное розовое окрашивание раствора ОСНОВНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К ПРОВЕДЕНИЮ ДЕЗИНФЕКЦИИ , ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКЕ ИНСТРУМЕНТАРИЯ. Дезинфекция и стерилизация изделий медицинского назначения проводится для обезвреживания либо уничтожения различных микроорганизмов. Дезинфекция (лат. de - приставка, означающая прекращение, устранение, inficio - заражать; син. - обеззараживание) - комплекс мер по уничтожению вегетирующих форм патогенных и условно-патогенных микроорганизмов. Существует два основных направления дезинфекции: • профилактическая дезинфекция - предупреждение внутрибольничных инфекций; • очаговая дезинфекция - обеззараживание в выявленном очаге инфекции. Методы дезинфекции медицинских инструментов К основным методам дезинфекции медицинских инструментов относят их кипячение и погружение в дезинфицирующие растворы. Метод кипячения. Кипячение рекомендуют для медицинских изделий из стекла, металла, термостойких материалов, резины. Кипятят в 2% растворе натрия гидрокарбоната в течение 15 мин. Метод погружения в дезинфицирующий раствор. Для дезинфекции методом погружения используют следующие растворы: • 3% раствор хлорамина Б с погружением медицинских инструментов на 60 мин (для обработки инструментов в туберкулёзных стационарах - в 5% раствор хлорамина на 240 мин). • 6% раствор водорода перекиси с погружением на 60 мин или 4% раствор - на 90 мин. • 2% раствор глутарала с погружением на 15 мин. • 70% раствор спирта с погружением на 30 мин. Предстерилизационная очистка является вторым этапом обработки медицинских инструментов, которая проводится после дезинфекции и отмывки изделий от дезинфектанта, с целью окончательного удаления остатков белковых, жировых, механических загрязнений, лекарственных препаратов и т.д. От полноты и качества проведения предстерилизационной очистки непосредственно зависит эффективность последующей стерилизации, поэтому нормативами в практику введен обязательный контроль качества предстерилизационной очистки Разъёмные изделия подлежат предстерилизационной очистке разобранном виде в следующем порядке. • Ополаскивание проточной водой в течение 30 с. • Замачивание в моющем комплексе («Биолот», «Лотос») при полном погружении изделия в течение 15 мин при температуре 50 °С • Мойка каждого изделия с помощью ерша, ватно-марлевого тампона или щётки в моющем комплексе в течение 30 с. • Ополаскивание проточной водой при применении «Биолота» в течение 3 мин, «Лотоса-медицинского» в течение 10 мин. • Выдерживание в дистиллированной воде в течение 30 мин. • Сушка горячим воздухом при температуре 80-85 °С до полною исчезновения влаги КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ. Предстерилизационную обработку считают эффективной, если на изделиях после обработки не обнаружены остаточные количества крови с помощью амидопириновой или азопирамовой пробы. Раствор для проведения амидопириновой пробы: непосредственно перед проведением пробы смешивают равные количества (по 2-3 мл) 5% спиртового раствора аминофеназона («Амидопирина»), 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора водорода перекиси. Раствор для азопирамовой пробы: для приготовления 1-1,5% раствора азопирама разводят солянокислый анилин в 95% растворе 5 этилового спирта. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте в холодильнике в течение 2 мес., при комнатной температуре (18-23 °С) - не более 1 мес. Непосредственно перед пробой готовят рабочий раствор, смешивая равные количества азопирама и 3% водорода перекиси. Рабочий раствор может быть использован в течение 1-2 ч. При более длительном хранении возможно спонтанное окрашивание реактива в розовый цвет. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор на ярком свете или вблизи нагревательных приборов. Для проверки пригодности рабочего раствора азопирама 2-3 капли его наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание пятна, переходящее затем в синее, реактив годен к употреблению. Технология постановки пробы (применяют для многоразовых медицинских инструментов). На нестерильную вату наносят реактив. Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на вате ей протирают поршень шприца, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю. Затем заливают реактив в цилиндр шприца, пропускают его через шприц на другую вату (проверяется цилиндр шприца). После этого на шприце закрепляют иглу, вновь наливают в цилиндр реактив и пропускают его через шприц и иглу (проверяется игла). Интерпретация результата: при наличии кровяных загрязнений на вате появляется сине-зелёное (положительная амидопириновая проба) или фиолетово-синее (положительная азопирамовая проба) окрашивание. Если проба положительная, повторный контроль инструментов следует проводить ежедневно до получения 3-кратного отрицательного результата. Самоконтроль в лечебно-профилактическом учреждении проводят не реже 1 раза в неделю. Контролю подвергают 1% одновременно обрабатываемых изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц. Сотрудники санитарно-эпидемиологической станции контроль качества предстерилизационной очистки проводят 1 раз в квартал. СТЕРЕЛИЗАЦИЯ ИНСТРУМЕНТАРИЯ ДЛЯ МНОГОРАЗОВОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ. Стерилизация (лат. sterilis - бесплодный) - полное освобождение какого-либо веществаили предмета от микроорганизмов путём воздействия на него физическими или химическими факторами. Предстерилизационной очистке должны подвергаться все медицинские изделия многократного использования перед их стерилизацией и/или дезинфекцией с целью удаления белковых, жировых, механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. Методы стерилизации: термические (паровой, воздушный, глассперленовый); химические (газовый, растворы химических соединений); радиационный; плазменный и озоновый (группа хим. средств) В условиях клиники наиболее распространенными методами стерилизации инструментов и медицинских зделий являются: паровой (автоклавирование), воздушный (сухожаровой шкаф), химический ( газовый, р-рами хим. соединений). Стерилизацию следует осуществлять в строгом соответствии с предусмотренным режимом, удостовериться, что указанный режим реализован (прямой и непрямой контроль стерильности), а в последующем - руководствоваться сроками сохранения стерильности материала, изделий. Стерилизация, паровой метод (автоклавирование). Надлежащая стерилизация в автоклаве возможна при строгом соблюдении правил подготовки биксов и их загрузки соответствующими изделиями, для чего следует: обработать внутреннюю поверхность бикса 70% спиртом и на его дно положить простыню с таким расчетом, чтобы затем ее концами накрыть содержимое бикса; заложить в бикс наборы резиновых изделий, перевязочного материала, белья; инструменты завернуть в полотенце или пеленку и заложить в бикс; после загрузки бикса разместить в нем 5 индикаторов: 4 - по внутренней стороне стенок бикса и 1 - в центре бикса (непрямой метод контроля стерильности); на крышке бикса зафиксировать бирку, на которой отметить: вид материала и лечебное отделение, для которого производится стерилизация инструментов и материалов; крышку бикса герметично закрыть. У бикса старого образца сдвинуть металлическую ленту-пояс и тем самым открыть окна на его стенках, которые после завершения стерилизации необходимо закрывать; после стерилизации на бирке бикса поставить дату и подпись медицинской сестры, проводящей автоклавирование. Возможны различные варианты комплектации биксов: только один вид материала, наборы для типичного или конкретного оперативного вмешательства. Стерилизация, воздушный метод. Надежная стерилизация инструментов возможна при правильном пользовании крафт-пакетами и рациональной укладке изделий в сухожаровом шкафу, для чего следует: в крафт-пакет заложить инструменты, прошедшие дезинфекцию и ПСО; крафт-пакет заклеить по его верхней кромке, либо фиксировать скрепками; на крафт-пакете указать содержимое, дату стерилизации и поставить подпись медицинской сестры, проводящей стерилизацию; все изделия можно разложить в один ряд на металлической сетке (многоразовые стеклянные шприцы - в разобранном виде); на сетку стерилизатора положить 5 индикаторов: 4 - по углам сетки и 1 - в центре (непрямой метод контроля). Крафт-пакет - прочный, влагоустойчивый, воздухопроницаемый материал для упаковки и стерелизации. Стерилизация, химический метод. Осуществляется в стерильных условиях для нетермостойких предметов. Помещение для стерилизации должно быть оснащено вытяжным шкафом, бактерицидным облучателем. Медсестра работает в стерильной спецодежде, перчатках, респираторе. В стерильную емкость со стерилизантом погружаются изделия медицинского назначения, прошедшие дезобработку и ПСО, плотно закрывают крышку. В журнале отмечается время начала стерилизации. По окончании стерилизации мед. изделия извлекаются из раствора стерильными пинцетами или корцангами, перекладываются в другую стерильную емкость со стерильной водой, промываются, просушиваются и выкладываются в бикс со стерильной пеленкой. Время окончания стерилизации также заносится в журнал стерилизации. Стерильность материалов, изделий, сроки сохранения: закрытые биксы нового образца - 20 суток; при открытом биксе любого образца стерильность материалов, изделий сохраняется до 24 часов; крафт-пакеты, заклеенные - 20 суток; крафт пакеты на скрепках - 3 суток. Все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук цельной кровью, плазмой или сывороткой крови, следует проводить в резиновых перчатках. Во время работы все повреждения на руках должны быть закрыты напальчником, лейкопластырем. При угрозе разбрызгивания крови следует работать в маске и защитных очках. Медперсоналу запрещены приём пищи, а также курение в лабораториях и помещениях, где проводят процедуры пациентам. Разборку, мойку, ополаскивание медицинского инструментария, использованных пипеток и лабораторной посуды, соприкасающихся с кровью людей, нужно проводить до предварительной дезинфекции, в резиновых перчатках. После любой процедуры, в том числе парентерального вмешательства, проводят тщательное двукратное мытьё рук в тёплой проточной воде с мылом. Руки необходимо вытирать индивидуальным полотенцем, сменяемым ежедневно, или салфеткой одноразового пользования. При обработке рук следует избегать частого применения дезинфектантов, которые способны вызвать раздражение кожи и дерматиты, в том числе облегчающие проникновение возбудителей инфекции. Для профилактики инфицирования вирусной и бактериальной инфекцией, передающейся через кровь или другие биологические жидкости пациента, в настоящее время в процедурном кабинете должна находиться так называемая «Аптечка при авариях», в состав которой обязательно входят перевязочный материал, ёмкости для разведения растворов, ундинка (стаканчик для промывания глаз), 70% раствор этилового спирта, 5% спиртовой раствор йода, 0,05% раствор перманганата калия, 1% раствор протаргола, 6% раствор водорода перекиси. В случае загрязнения рук кровью (или другой биологической жидкостью пациента) следует немедленно щипающим движением пальцев руки удалить с кожи остатки крови (биологической жидкости) с помощью тампона, обильно смоченного 70% раствором этилового спирта, вымыть их тёплой проточной водой с мылом и повторно обработать новым тампоном, смоченным 70% раствором этилового спирта. В случае попадания брызг крови: • на слизистую оболочку глаз - промыть глаза 0,05% раствором калия перманганата; • на слизистую оболочку носовой полости - обработать её 1% раствором протаргола (закапать в нос); • на слизистую оболочку полости рта - прополоскать рот 70% раствором спирта. 0,5% моющим средством. В случае загрязнения кровью поверхности рабочего стола во время манипуляции следует немедленно обработать стол ветошью, смоченной 6% раствором водорода перекиси . |