Ответы к гос. ответы на гос. 1. Обработка рук до и после манипуляций. Цель

Название	1. Обработка рук до и после манипуляций. Цель
Анкор	Ответы к гос
Дата	04.12.2019
Размер	0.54 Mb.
Формат файла
Имя файла	ответы на гос.docx
Тип	Документы #98677
страница	1 из 3

1 2 3

1.Обработка рук до и после манипуляций.

Цель

Обеспечить инфекционную безопасность пациента и медперсонала, профилактику внутрибольничной инфекции.

Показания

1. Перед и после выполнения манипуляции.

2. Перед и после осмотра пациента.

3. Перед едой.

4. После посещения туалета.

5. После надевания и после снятия перчаток.

Противопоказания

Нет.

Оснащение

1. Дозатор, жидкое антисептическое мыло.

2. Индивидуальное сухое полотенце.

3. Перчатки.

4. Дезинфицирующее средство: этиловый спирт 70%-ный или другое, предложенное учреждением в соответствии с нормативными документами (АХД-2000, АХД-специаль и др.).

Последовательность действий м/с для обеспечения безопасности

1. Откройте кран и отрегулируйте напор воды.

2. Вымойте барашки крана.

3. Намыльте руки мылом, начиная с запястья.

4. Мойте правую ладонь левой, а затем левую правой.

5. Мойте межпальцевые промежутки тыльной стороны левой руки правой рукой, и наоборот.

6. Сделайте замок из пальцев с ладонной стороны и потрите их, моя ногтевые ложа.

7. Потрите круговыми движениями каждый палец на левой руке, затем на правой.

8. Ополосните руки теплой проточной водой, начиная с запястья.

9. Закройте кран.

10. Высушите руки индивидуальным или разовым полотенцем, начиная с кончиков пальцев.

11. Выбросьте использованное разовое полотенце.

12. Наденьте чистые перчатки, если этого требует манипуляция.

Оценка достигнутых результатов

Руки вымыты и готовы к манипуляциям.

Обучение пациента или его родственников

Консультативный тип вмешательства в соответствии с вышеописанной последовательностью действий медицинской сестры.

Примечания

1. Руки моют двукратным намыливанием.

2. Если нужно проводить инвазивные процедуры, то руки сразу после мытья обрабатывают одним из дезинфицирующих средств (70%-ный этиловый спирт, АХД-2000, АХД 2000-специаль) и надевают перчатки.
2. Обработка рук и слизистых при контакте с биологическими жидкостями.

Меры предосторожности при возможном контакте с биологическими жидкостями

Цель: предупреждение внутрибольничного заражения гепатитом В, передачи вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) и возбудителя других инфекций, переносимых кровью от пациентов к персоналу, от персонала к пациентам и от пациента к пациенту.

Показания:

все манипуляции, при которых может произойти загрязнение кожи, слизистой кровью, сывороткой и другими биологическими жидкостями.

Необходимые условия:

знания медицинской сестры;
осознание риска заражения во время профессиональной деятельности;
наличие двух раковин или двухсекционной мойки в процедурном кабинете, одна для мытья рук, а другая для инструментов;
достаточное количество защитной одежды, изделий медицинского назначения, перевязочного материала и белья;
достаточное количество дезинфицирующих и стерилизующих средств, разрешенных к применению в РФ в установленном законом порядке;
наличие централизованной стерилизационной (ЦСО).

П Р О Ц Е С С

Все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук кровью или сывороткой, производить в резиновых перчатках, а во избежание разбрызгивания крови – в лицевых масках и защитных очках.
Все повреждения на руках закрывать лейкопластырем, водонепроницаемыми повязками.
Во всех медицинских учреждениях, где может понадобиться проведение реанимации, должны иметься дыхательные мешки.
Вместо искусственного дыхания изо рта в рот новорожденным следует использовать механические или электрические устройства.
Перед транспортировкой пробы крови и других биологических жидкостей должны помещаться в контейнеры с герметичными крышками, наружные части контейнера обработать дезинфектантами.
Разборку, мойку и полоскание инструментов, лабораторной посуды, приборов и всего, соприкасавшегося с кровью или биологическими жидкостями, проводить только после дезинфекции и в плотных резиновых перчатках.
Использованные иглы не следует сгибать, ломать вручную и повторно надевать колпачок.
Разовые инструменты немедленно помещать вместе со шприцем в прочный не протекающий контейнер для уничтожения.
Острые предметы, подлежащие повторному использованию, помещать в прочную емкость для обработки.
При необходимости передать острые инструменты, следует положить их в нейтральную зону, не касаясь одних и тех же предметов одновременно, избегать уколов, порезов острыми инструментами, разбитой посудой.
В рабочих помещениях, где существует риск профессионального заражения, запрещается есть, пить, курить, наносить косметику, брать в руки контактные линзы.
Медицинские сестры, имеющие постоянный контакт с кровью, подлежат профилактическому обследованию на антиген гепатита В и ВИЧ-инфекцию при поступлении на работу и далее 1-2 раза в год.
В случае загрязнения кожи кровью, необходимо обработать ее настолько быстро, насколько позволяет безопасность пациента:

снять перчатки;
обработать кожу тампоном, обильно смоченным спиртосодержащим кожным антисептиком (70% спиртом, 0,5% хлоргексидином);
вымыть водой с мылом;
вытереть салфеткой;
повторно обработать 70% спиртом.

При попадании крови на слизистые – обработать их 0,05% раствором марганцовокислого калия
В случае травмы использованными инструментами:

выдавить кровь;
обработать йодом;
сообщить администрации;
пройти своевременное конфиденциальное лабораторное обследование;
пройти консультирование инфекциониста и/или необходимую профилактику.

В случае загрязнения кровью или другими биологическими жидкостями поверхностей, обработать их дезинфицирующими средствами.

3. Осуществить контроль качества предстерилизационной очистки.
Контроль качества предстерилизационной очистки

Для определения качества предстерилизационной очистки медицинских изделий применяют следующие пробы:

1. Азопирамовая проба используется для наличия остаточных загрязнений кровью.

2. Исходный раствор азопирама готовят путем смешивания 100 г амидопирина и 1 г солянокислого анилина и доведением до объема 1 л 95% этилового спирта. Смесь перемешивают до растворения составных компонентов. Приготовленный раствор азопирама хранится в плотно закрытом флаконе в темноте. Срок хранения при комнатной температуре - не более 1 месяца, при содержании раствора в холодильнике - 2 месяца.

3. Постановку пробы проводят реактивом азопирам, который готовят путем смешивания равных количеств исходного раствора азопирама и 3% раствора перикиси водорода. Реактив азопирам хранится не более 2 часов. Реактив не следует размещать вблизи нагревательных приборов и на ярком свету. Постановку пробы необходимо проводить на холодных инструментах.

4. Нанесении 2 капель реактива на медицинское изделие или при протирании его марлевой салфеткой на загрязненных кровью изделиях появляется фиолетовое, затем быстро переходящее в розово-сиреневое окрашивание реактива. Проба выявляет кроме кровяных загрязнений наличие на изделиях пероксидаз растительного происхождения, окислителей и компонентов коррозии (солей железа и окислов). При выявлении наличия коррозии отмечается бурое окрашивание реактива. В остальных случаях выявляется розовато-сиреневое окрашивание.

5. Амидопириновая проба также применяется для выявления наличия остаточных количеств крови.

6. Для проведения пробы смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. 2 капли приготовленной смеси наносят на сухую поверхность медицинского изделия. Остаточное количество крови на поверхности инструментов проявляется сине-фиолетовым окрашиванием. Не следует проводить пробу на горячих инструментах.

7. Фенолфталеиновая проба применяется для определения наличия остаточных количеств моющих средств.

8. Пробу осуществляют путем нанесения на сухую, негорячую поверхность 2 капель 1 % раствора фенолфталеина. При наличии на поверхности изделий остатков моющих средств отмечается розовое окрашивание.

При выявлении положительной пробы на кровь или моющее средство на поверхности медицинских изделий, изделия обрабатываются повторно до получения отрицательной пробы. Результаты контроля фиксируются в журнале учета качества предстерилизационной обработки.
Контролю качества и эффективности предстерилизационной очистки должен подвергаться 1 % каждого инструмента и вида изделий, которые проходят обработку в течение суток.

Мед. сестра самоконтроль осуществляет после каждой обработанной партии, старшая мед. сестра – один раз в неделю, ЦГСЭН – один раз в месяц в отделениях хирургического профиля и один раз в квартал – в отделениях терапевтического профиля.
4.Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов различной концентрации.

Хлорамин – белый порошок, с резким запахом хлора, содержит 25% и 29% активного хлора. Хранить в теплом сухом помещении. Способы использования: а) в виде сухого порошка – для дезинфекций испражнений рвотных масс, мокроты, засыпают в 1:5 кг выд. 200 г хлорамина. Б) в виде растворов разл. концентрации (1%3%5%) ! готовится непосредственно перед применением из сухого порошка хлорамин + Н2О.

• Приготовление раствора хлорамина

Расчет количества порошка по формуле: концентрация × V (объем) × постоянное число 10

Расчет воды: из общего V (объема) раствора – количество порошка. Н-р; приготовить 1% р-р хлорамина в объеме 10 литров : 1% × 10 × 10 = 100 г порошка хлорамина.

10 л – 100 г = 9,900 мл воды.

Ответ: чтобы приготовить 10 л 1% р-а хлорамина надо взять 100 г хлорамина и 9,900 мл воды. После вычесления в емкость налить немного горячей воды, высыпать осторожно сухой хлорамин в воду и размещать деревянной лопаточкой до равномерной кашицы без омочков. Закрыть крышкой, этикетка.

Перемещать, оформить этикетку: раствор, дата, должность, подпись.

Срок годности раствора 24 часа.

•АЛГОРИТМ Приготовления 1% раствора хлорамина (1л).

Цель: использовать для дезинфеекции согласно приказам по соблюдению санитарно-противоэпидемического режима.

Оснащение: спецодежда; навеска сухого порошка хлорамина 10 г, емкость для воды с маркировокй до 1 литра, емкость для дезраствора, дерев.лопаточка.

Обязательное условие: содержание активного хлора должно соответствовать 0.25% в приготовленном растворе;

Раствор применяется после приготовления однократно.

Этапы: 1. надеть спец.одежду. 2. подготовить оснащение, проверить маркировку.3. налить в емкость небольшое количество воды.4. поместить в емкость навеску сухого порошка хлорамина (10г). 5. долить воды до метки 1 л.6. перемешать раствор лопаткой.7. закрыть крышкой.8. проверить маркировку емкости и бирки. 9. Поставить дату приготовления раствора, роспись.10. снять спецодежду, вымыть руки, вытереть насухо.

•АЛГОРИТМ 5% р-ра такой же.

Приготовление хлорамина (% × V × 10)

Концентрация	Количество хлорамина в граммах
Концентрация	На 1 литр р-ра	На 10 л р-ра
1%	10,0	100,0
2%	20,0	200,0
3%	30,0	300,0
5%	50,0	500,0

• Приготовление маточного раствора

1. 1 кг хлорной извести + 1 литр воды размещать до кашицы.

2. долить до 10 л воды, размешать, закыть плотной крышкой. Отстоять 24 часа. Отцедить в темную посуду.

3. оформить этикеку (наименование раствора, концентрация, дата, роспись)

Срок хранения маточного раствора до 10 суток.

• Алгоритм приготовления моющего раствора на основе СМС “Лотос”

Цель: обеспечение инфекционной безопасности.

Показания: профилактика ВБИ.

Оснащение: маркированная емкость для моющего раствора, мерная емкость для СМС, мерная емкость для Н2О2, вода водопроводная, спецодежда, СМС «лотос» и Олеат натрия, Н2О2 одной из концентрации.

Этапы: 1. Надеть спецодежду.2. подготовить оснащение, проверить маркировку. 3. Отмерить мерной емкости 5 г СМС. 4. Отмерить мерной емкостью раствор Н2О2 : 3 % - 160 мл или 6 % 80 мл или другой концентрации. 5. Если медицинский инструментарий, подвергаемый очистке металлический и используется СМС Лотос, то необходимо добавить ингибитор коррозии – 1,4 г Олеата натрия. Довести общий объем раствора водой до 1 л. 6. Сделать отметку на бирке о времени приготовления раствора и подпись. 8. Снять спецодежду, вымыть руки.

5. Дезинфекция и утилизация одноразового медицинского инструментария однократного применения (шприцы с иглами, системы для внутривенных инфузий)

После проведения инъекции или снятия системы для внутривенных инфузий, не накрывая иглу колпачком, необходимо отсоединить иглу одним из способов:
1. снятие иглы с помощью иглосъёмника
2. отсечение иглы с помощью иглоотсекателя
Поместить неразобранный шприц в жёлтый пластиковый пакет закрепленный на стойке-тележке или в многоразовом контейнере; систему для внутривенных инфузий–в непрокалываемый контейнер.
При заполнении непрокалываемого контейнера на 3/4 (не реже, чем через 72 часа), он закрывается крышкой. При заполнении пластикового пакета на 3/4 (не реже, чем через 8 часов) он закрывается с использованием бирок-стяжек сотрудником, ответственным за сбор отходов в данном подразделении.
Сотрудник ответственный за сбор медицинских отходов маркирует закрытые пакеты и непрокалываемые контейнеры. Затем помещает их в общий контейнер, который перемещается или на участок по обращению с отходами (где находятся установки по обеззараживанию медицинских отходов), или в помещение для временного хранения до последующего вывоза транспортом специализированных организаций к месту обеззараживания (уничтожения).

5. Утилизация:

А) централизованная. Мешки, плотно закрытые, с отходами доставляются в централизованный пункт сбора отходов, откуда они забираются в специально оборудованные машины предприятий, занимающихся переработкой отходов.

Б) Сжигание в печах котельных больниц на настоящий момент недопустимо. В топках котельных, где сжигались отходы, нет устройств, обеспечивающих экологически не загрязняющих атмосферу.

В) утилизация отходов в мусоросборники.

6.Дезинфекция предметов ухода за пациентом

Цель: Обеспечение санитарно-эпидемиологического благополучия в стационаре

Оснащение:

-     спецодежда;

-     использованный предмет ухода:

-     дезинфицирующее средство;

-     ветошь

-     емкость для дезинфекции с крышкой и маркировкой.

Подготовка к процедуре:

1. Надеть спецодежду.

2. Подготовить оснащение.

3. Залить в ёмкость дезинфицирующий раствор нужной копией грации.

4. Выполнить процедуру с использованием предметов ухода.

Выполнение дезинфекции методом полного погружения:

Погрузить полностью предмет ухода, заполняя его полости дезинфицирующим раствором.
Снять перчатки.
Отметить время начала дезинфекции.
Выдержать необходимое время процесса дезинфекции данным средством.
Надеть перчатки.
Вымыть предмет ухода под проточной водой, используя моющие средства, высушить.
Вылить дезинфицирующий раствор в канализацию
Хранить предмет ухода в специально отведённом месте.
Снять спецодежду, вымыть и осушить руки.

7. Осуществить предстерилизационную очистку изделий медицинского назначения.

Предстерилизационная очистка (ПСО) – второй этап цикла обработки ИМН, предусматривающий удаление с изделий белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов.

Этапы предстерилизационной очистки

1. Промывание изделий под проточной водой. Изделия с каналами и полостями промывают с помощью шприцев, резиновых баллонов и пр.

2. Замачивание изделий в разобранном виде в моющем растворе в течение 15 минут при температуре 45-50 гр.

Для замачивания могут использоваться:

0.5% моющий раствор порошка "Билот" /5 г порошка и 995 мл воды температуры 40% - 45% C/;
раствор, содержащий 5 г моющего средства /"Прогресс", "Астра", "Лотос"/ + 20 мл 33% раствора перекиси водорода /пергидроль/ + 975 мл воды температуры 50-55% С;
3% натрий двууглекислый /питьевая сода/;
0,5% перекись водорода с моющими средствами "Лотос", "Лотос-автомат", "Астра", "Айна", "Маричка", "Професс".

3. Мойка инструментов в использовавшемся моющем растворе ершами или ватно-марлевыми тампонами в течение 30 сек.

4. Промывание инструментов под проточной водой для удаления остатков моющих средств.

5. Ополаскивание изделий в дистиллированной воде в течение 0,5-1 минуты (удаление солей содержащихся в воде).

6. Подсушка инструментария - проводится в сухожаровом шкафу при температуре 80-90 гр. в течение 15-20 мин. (до полного исчезновения влаги ).

Контроль качества предстерилизационной очистки.

Оценивают путем постановки азопирамовой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. При положительной азопирамовой пробе не позднее чем через 1 минуту после нанесения реактива появляется фиолетовое окрашивание, которое вскоре переходит в розово-сиреневое или буроватое.

При положительной фенолфталеиновой пробе - появление розового окрашивания реактива. Если пробы оказываются положительными изделия повторно очищают до получения отрицательных результатов.
8.Стерилизация, виды, методы.

Стерилизация - полное уничтожение всех видов микроорганизмов и их спор на поверхности и внутри различных предметов, а также в жидкостях и воздухе.

Стерилизации подлежат:

- Изделия и материалы, соприкасающиеся с раневой поверхностью - инструменты, шовный материал, операционное белье, перевязочный материал.

- Изделия и материалы, контактирующие с кровью и инъекционными препаратами - системы для переливания крови, шприцы, инъекционные иглы и т.д.

- Отдельные виды диагностической аппаратуры, контактирующие со слизистой оболочкой - цистоскоп, бронхоскоп и прочее.

Этапы стерилизации:

дезинфекция;
предстерилизационная очистка (ПСО);
стерилизация.

Методы стерилизации:

физические (паровой, воздушный, глассперленовый);
химические (газовый, растворы химических соединений);
радиационный;

Паровой метод (Автоклав)

Автоклав представляет собой установку для стерилизации паром под давлением. Температура насыщенного пара зависит от давления.

• Режимы работы автоклава:

v 132 °C -- 2 атмосферы-- 20 минут -- основной режим. Стерилизуют все изделия (стекло, металл, текстиль, КРОМЕ РЕЗИНОВЫХ).

v 120 °C -- 1,1 атмосфера -- 45 минут -- щадящий режим. (стекло, металл, резиновые изделия, полимерные изделия -- согласно паспорту, текстиль)

110 °C -- 0,5 атмосферы -- 180 мин -- особо щадящий режим(нестойкие препараты, питательные среды).

Стерилизующий агент - горячий пар под давлением.

Упаковки: биксы, крафт-пакеты, бумага-ламинат, бязь.

Материалы: полимеры, стекло, латекс, ткань, коррозийностойкие металлы.

Воздушный метод (Сухо-жаровой шкаф.)

Режим стерилизации: 160°С - 60 мин, 180°С - 15 мин, 200° С - 5 мин.

жаростойкую стеклянную посуду, порошки, масла и т. п. стерилизуют в течение 1 часа при температуре 180°С.

для металлических изделий — в течение 60 минут при температуре 180 градусов;

для посуды, используемой в медицинских лабораториях, других термостойких изделий и предметов — в течение 150 минут при температуре 100 — 160 градусов.

Жидкости, питательные среды, предметы из резины и синтетических материалов нельзя стерилизовать сухим жаром

Стерилизующий агент - сухой горячий воздух (160-200^oС).

Упаковки: крафт-пакеты, бязь.

Материалы: металл, текстильные изделия.

Гласперленовый метод

• Принцип действия стерилизатора основан на приведении хирургических инструментов в контакт с маленькими стеклянными сферами с температурой 250С.

• Стерилизация инструмента производится не более 20 секунд.

• Всего за 5 секунд стерилизует: щипцы, скальпель, зонды, шпатели, долота, расширители, иглодержатели, пинцеты, десневые ножницы и т.д.

Химические методы

Метод химической стерилизации растворами антисептиков. Используют раствор: тройной раствор, 96° этиловый спирт и 6% перекись водорода, спиртовой раствор хлоргексидина, первомур.

Выполняется в закрытых емкостях, покрытых неповрежденной эмалью, а также сделанных из стекла или пластмассы.

Стерилизуемые объекты полностью погружают в раствор в разобранном виде при температуре 18 ± 2°.

При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода - через 6 часов.

Газовый метод

• При стерилизации пищевых продуктов, лекарственных препаратов и разного рода приборов используют окиси этилена.

• Стерилизующий агент - формальдегид или этилен-оксид.

• Упаковки: бумага-ламинат, пергамент, крафт-бумага.

• Материалы: полимеры, стекло, металл.

Радиационный метод

с помощью ионизирующего излучения (у-лучи), ультрафиолетовых лучей и ультразвука.

Изделия: полимерные шприцы, системы переливания крови, чашки Петри, пипетки и др.хрупкие и термолабильные изделия.

Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет.
9.Стерилизация в сухожаравом шкафу,режим стерилизации, контроль за режимом, виды упаковки медицинского инструментария.

Задачи упаковки, содержащей медицинское изделие:

• Обеспечение прохождения процесса стерилизации

• Защита от физических воздействий и механических повреждений стерилизуемого объекта

• Сохранение стерильности до момента использования

Виды упаковок:

1.биксы без фильтра - небольшой срок сохранения стерильности - 72 часа.

2.Стерилизационные коробки (биксы) с антибактериальным фильтром, стерильность в которых сохраняется до 20 дней.

3. КРАФТ- пакеты- бумажные (плоские и со складками), комбинированные бумажно-ламинатные (пленочные).

4. Крафт - пакет заклеенный - срок стерильности 20 суток;

5. Крафт - пакет на скрепах - срок годности 3 суток

6· Двойная мягкая упаковка из бязи. Срок стерильности - 3 суток.

7. Бумажные и нетканые оберточные листы

8.Импульсный термосварочный аппарат - срок стерильности 1 год.

9.Самаклеющаяся лента - срок стерильности - 30 суток.
10.Автоклавирование, режим стерилизации, контроль за режимом,виды упаковки медицинского инструментария.

Режимы автоклава:

1. Более жесткий с температурой +132 °С и давлением в 2 атмосферы. Время стерилизации 20 минут. В этом режиме стерилизуют перевязочный материал, стеклянную, фарфоровую и из нержавейки посуду, устойчивые к коррозии инструменты, стеклянные шприцы, иглы, пинцетыи пр.; белье, спецодежду.
2. Щадящий с температурой +120 °С и давлением 1,1 атмосферы. Время — 45 мин. Так стерилизуют изделия из пластиков (полипропилен, полиэтилен высокой плотности, полистирол), резины, латекса.

Контроль качества-

Физический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью температуры и давления.
Химический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью химических тестов и термохимических индикаторов, изменяющих свое агрегатное состояние и цвет при достижении определенного для него плавления:

для паровых стерилизаторов используется мочевина (карбамид) с розовым красителем температура плавления 132 градуса Цельсия
бензойная кислота с фуксином — температура плавления 120°С; термоиндикаторная бумага, изменяющая свой цвет под воздействием определенной температуры (l20°C-
132 С);
для воздушных стерилизаторов: тиомочевина (тиокарбамид) без красителя, температура плавления 180°С, а также янтарная кислота, температура плавления которой 180°С
термоиндикаторная бумага изменяет свой цвет при температуре 180°С.

Бактериологический (биологический) метод контроля стерильности проводят один раз в месяц. Контроль
может свидетельствовать об инфицировании стерилизуемых объектов и указать на вид микробной флоры. Результаты посевов получают через 48-72 часа

Виды упаковки:

а) крафт-пакет.

б) двухслойная бязевая упаковка

Стерильность в крафт-пакете и двухслойной бязевой упаковке сохраняется 3 суток
11.Значение дезинфекции и стерилизации в профилактике внутрибольничной инфекции.

Дезинфекционно-стерилизационные мероприятиянаправлены на уничтожение возбудителей ВБИ во внутрибольничной среде.

Дезинфекция– это уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на поверхностях (пол, стены, ручки дверей, выключатели, подоконники и т.д.), на жесткой мебели, поверхностях аппаратов, приборов, оборудования, в воздухе помещений, на посуде, белье, изделиях медицинского назначения и предметах ухода за больными, санитарно-техническом оборудовании, в выделениях больных, биологических жидкостях, а также на поверхности операционного поля и руках персонала.

Стерилизация – это уничтожение всех видов микроорганизмов, в том числе спор, на изделиях и в изделиях медицинского назначения.

Дезинфекционно-стерилизационные мероприятия осуществляются с использованием механической обработки (мытье, влажная уборка, стирка, обработка пылесосом, вентиляция, проветривание), а также химических дезинфицирующих средств и физических методов, обладающих бактерицидным действием (высокая температура, водяной пар под избыточным давлением, ультрафиолетовое облучение, ультразвук, СВЧ-поля) и их сочетаний (влажная уборка с последующим ультрафиолетовым облучением). Изделия медицинского назначения, используемые для инвазивных процедур или манипуляций, при которых возможно повреждение слизистых оболочек, после каждого применения подвергаются трехстадийной обработке – дезинфекции, предстерилизационной подготовке (очистке) и стерилизации, причем два последних этапа проводят в центральном стерилизационном отделении больницы.
12. Виды, методы и режимы дезинфекции в лпу.

Виды дезинфекции.

- профилактическая (плановая), проводится регулярно: мытьё рук, мытье окружающих предметов с применением чистящих и моющих средств. Цель профилактической дезинфекции - снизить обсемененность объектов внешней среды, тем самым уменьшить риск заражения людей. Проводится профилактическая дезинфекция либо постоянно, либо периодически, в некоторых случаях она носит разовый характер.

- текущая (по эпид. показаниям), проводится непрерывно в течение всего заразного периода у постели больного, в изоляторах медицинских пунктов, лечебных учреждениях с целью предупреждения распространения инфекционных заболеваний за пределы очага. Цель текущей дезинфекции - уничтожение и предупреждение рассеивания возбудителя инфекции на путях передачи, в самом очаге и за его пределами. Текущая дезинфекция проводится систематически.

- заключительная (по сан-эпид. показаниям), которую производят после госпитализации, изоляции, выздоровления либо смерти больного для освобождения эпидемического очага от рассеянных им возбудителей.

Методы дезинфекции

1) механический,

2) физический,

3) химический

4) биологический методы дезинфекции
Механический метод. Основу механического метода составляют: чистка предметов, влажная уборка, стирка, фильтрация, вентиляция и др. Этими методами можно освободить объекты от пыли и грязи и вместе с последними от значительного количества микробов.
II) Физический метод. Физические методы дезинфекции подразумевают воздействие (уничтожение) на микроорганизмы различными физическими факторами. Это может быть кипячение, прокаливание, обжигание, воздействие солнечным светом, применение ультрафиолетового излучения, обдув горячим воздухом, глажка, высушивание, использование водяного пара, высушивание и даже сжигание. Целесообразность использования каждого вида физического воздействия определяется в зависимости от типа обрабатываемой поверхности, окружающей среды (типа помещения) или другими факторами.

III) Химический метод. Химический метод подразумевает уничтожение микроорганизмов путем применения различных химических средств, обладающих бактерицидным, вирулецидным, фунгицидным и спороцидным эффектами.

IV) Биологический метод. Уничтожение возбудителей инфекционных болезней во внешней среде средствами биологической природы (с помощью микробов-антагонистов) имеет строго специфическое назначение. В условиях стационаров к биологическим средствам дезинфекции может быть отнесена обработка бактериофагами объектов внешней среды для профилактики внутрибольничных инфекций, обусловленных стафилококками, синегнойными палочками и др
Дезинфекционный режим в ЛПУ: уборка помещений различают текущую и генеральную уборку в ЛПУ.
Режим дезинфекции помещений при генеральной уборке

В качестве дезинфектанта целесообразно использовать 3% раствор хлорамина с 0,5% моющего средства «Лотос», «Прогресс», 3% раствор ПВК, 5% раствор Аламинола, Септустина и другие дезсредства в концентрациях, рекомендованных при вирусных гепатитах. При неудовлетворительных результатах исследований микробной обсемененности внешней среды используют 6% раствор перекиси водорода, 5% раствор хлорамина.
13. Внутрибольничная инфекция, определение, способы передачи инфекции. Факторы, влияющие на восприимчивость «хозяина» к инфекции.

Внутрибольничные (нозокомиальные) инфекции – любое клинически распознаваемое инфекционное заболевание, которое поражает больного в результате его поступления в больницу или обращения в нее за лечебной помощью, или инфекционное заболевание сотрудника больницы вследствие его работы в данном учреждении, вне зависимости от проявления симптомов заболевания во время или после пребывания в больнице.

Способы передачи инфекций

1. Контактный передача возбудителя осуществляется при попадании возбудителя на кожу или слизистые.

2. Артифициальный (искусственный) заражение происходит не в естественной среде (через медицинские инструменты, препараты крови, различные протезы).

3. Аэрозольный – передача возбудителя путем вдыхания возбудителя.

4. Фекально-оральный – проникновения возбудителя из кишечника больного (через загрязненную почву, грязные руки, воду и подукты питания) через рот в организм другого человека.

5. Трансмиссивный – передача возбудителя насекомыми-переносчиками.

14. Инфекционный контроль в ЛПУ. Характеристика и способы передачи возбудителей внутрибольничной инфекции. Группы риска.

Инфекционный контроль

Инфекционный контроль — это система организационных, профилактических и противоэпидемических мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения инфекционных заболеваний и стационаре, которая базируется на
результатах эпидемиологиичеекой диагностики.

Целью инфекционного контроля является снижение заболеваемости, легальности и экономического ущерба от внутрибольничных инфекций (ВБИ).
Для достижения этой цели разработаны конкретные комплексы мероприятий для ЛПУ разной специализации. Система инфекционного контроля включает восемь аспектов.

1. Структура управлении и распределение обязанностей по инфекционному контролю.

Каждое ЛПУ должно иметь комитет инфекционного контроля, полномочия которого распространяются на все его подразделения и службы. В состав комитета входят председатель (заместитель главного врача по лечебной работе), врач-эпидемиолог и/или помощник эпидемиолога, главная медицинская сестра и врачи-специалисты (хирург, терапевт, инфекционист и т.д.). Состав комитета может быть расширен за счет привлечения других специалистов, исходя из профиля ЛПУ. Комитет инфекционного контроля решает вопросы распределения обязанностей и обеспечения мероприятий по инфекционному контролю, согласовывает проводимые мероприятия с администрацией ЛПУ и координирует их.

2. Система учета и регистрации ВБИ.

Принципиальное положение этого направления — наличие в стационаре системы активного
выявления госпитальных инфекций. Перечень ВБИ, подлежащих регистрации и учету, определен приказом Министерства здравоохранения Российской Федерации от 26 ноября 1997 г. № 345 «О совершенствовании мероприятий по профилактике внутрибольничных инфекций в акушерских стационарах», письмом Министерства здравоохранения Российской Федерации от 24 марта 2003 г. № 2510/2921-03-24 «О профилактике внутрибольничных инфекций в Российской Федерации» и письмом Министерства здравоохранения СССР от 2 сентября 1987 г. № 28-6/34 «Методические указания по эпидемиологическому надзору за внутрибольничными инфекциями».

3. Микробиологическое обеспечение инфекционного контроля.

Необходимые микробиологические исследования своевременно и полно выполняют на базе клинико-диагностической лаборатории учреждения или на договорных условиях с внешней лабораторией.
Объем и качество микробиологических анализов должны соответствовать микроэкологическим условиям данного ЛПУ. По результатам исследований специалисты анализируют и оценивают
чувствительность выделенных штаммов микроорганизмов к антибиотикам, дезинфектантам, антисептикам и физическим факторам воздействия. Создание базы данных штаммов, полученных в микробиологической лаборатории, обеспечивает проведение полноценного эпидемиологического анализа.

4. Эпидемиологический анализ ВБИ.

Эпидемиологический анализ проводится в соответствии с четко сформулированными целями
и задачами, исходя из потребностей и особенностей данного ЛПУ. Он невозможен без информационного обеспечения. Для этого используют стандартные и специально разработанные учетные формы, а также компьютерные базы данных. Обработка полученной информации проводится общепринятыми методами эпидемиологического анализа:
• ретроспективным — на его основе формулируются гипотезы о ведущих факторах, причинах и условиях возникновения ВБИ в данном ЛПУ;
• оперативным — диагностика фазового состояния эпидемического процесса ВБИ, слежение за формированием госпитальных штаммов и прогноз эпидемической ситуации.
Результаты эпидемиологического анализа своевременно и регулярно сообщают администрации и комитету инфекционного контроля ЛПУ.
5. Профилактические и противоэпидемические мероприятия в системе инфекционного контроля.

Реализация данного направления предполагает разработку инструкций, указаний, алгоритмов эпидемически безопасных диагностических и лечебных процедур, а также проведение эффективных процедур стерилизации, дезинфекции и обработки рук персонала. В ЛПУ должна быть разработана и применена адекватная технология использования антибиогиков, антисептиков и других средств лечения и профилактики ВБИ с учетом микробиологических данных о резистентности циркулирующих штаммов.

6. Обучение персонала.

Приоритетным направлением данного аспекта является разработка дифференцированных программ для обучения специалистов разного профиля по проблемам инфекционного
контроля с учетом специфических особенностей ЛПУ. Следует обязательно проводить обучение персонала в области инфекционного контроля при приеме на работу и в дальнейшем регулярно
продолжать его.

7. Охрана здоровья персонала.

Основу этого направления составляют:
• выявление и оценка профессиональных факторов риска в данном ЛПУ;
• подготовка и анализ соответствующей информации;
• разработка и внедрение программ профилактики профессиональной заболеваемости.

8. Охрана здоровья пациентов.

Направление заключается в выполнении медицинской сестрой требований санитарно-противо-
эпидемического режима:
• соблюдения чистоты самого пациента, белья, посуды, предметов личной гигиены, предметов ухода, помещения;
• предотвращения распространения инфекции.
Ухаживая за больным, медицинская сестра должна помнить, что при несоблюдении санитарно-противоэпидемического режима можно заразиться от него инфекционным заболеванием или
заразить другого больного.
Характеристика основных возбудителей внутрибольничных инфекций

Стафилококки.
Золотистый стафилококк
Эпидермольный стафилококк
Стрептококки
Пневмококки.
Энтерококки.
Семейство кишечных бактерий.
Синегнойная палочка.
Грибы.

Группы риска ВБИ (внутрибольничной инфекции):

1) больные:

- без определенного места жительства, мигрирующее население,

- с длительными не долеченными хроническими соматическими и инфекционными заболеваниями,

- не имеющие возможность получать специальную медицинскую помощь;

2) лица, которым:

- назначена терапия подавляющая иммунную систему (облучение, иммунодеприсанты)

- проводятся сложные диагностические, операционные вмешательства;

3) родильницы и новорождённые, особенно недоношенные и переношенные;

4) дети с врождёнными аномалиями развития, родовой травмой;

5) медперсонал ЛПУ (лечебно-профилактического учреждения).

15. ЦСО: устройство, функции

ЦСО – централизованное стерилизационное отделение

Устройство ЦСО Предусматривается разделение всех помещений на две изолированные зоны: стерильную и нестерильную.

В нестерильной зоне должны находиться следующие помещения

приема, разборки, ПО и сушки инструментария, шприцев, игл, катетеров;
ремонта;
обработки резиновых перчаток;
контроля, комплектации и упаковки инструментария;
для хранения нестерильных материалов, инструментов и белья; кладовая упаковочных материалов и тары;
стерилизационная, оснащенная паровыми и воздушными стерилизаторами (загрузочная сторона, нестерильная половина);
кабинет заведующего;
комната старшей медсестры; санузел для персонала;
санпропускник для персонала, работающего в стерильной зоне.

На стерильной зоне располагают

стерилизационную (разгрузочная сторона, стерильная половина);
склад для стерильных материалов;
экспедицию (выдачу стерильного материала);
помещение для персонала стерильной зоны.

Все зоны отделены стенами. Поступления материалов, изделий осуществляется через шлюзы в одном направлении по принципу «от грязного к чистому, стерильному».

Все помещения ЦСО оборудуют приточно-вытяжной вентиляцией, которая должна работать на протяжении всего рабочего дня. Помещения упаковочной и стерилизационной оснащают бактерицидными лампами.

В «грязную» зону ЦСО поступает использованный материал, в том числе и прошедший этап дезинфекции на рабочих местах, согласно требованиям нормативных документов. Тележки, на которых доставляется этот материал, моются и дезинфицируются в специальных комнатах ЦСО. Весь загрязненный материал принимается и сортируется, затем перемещается в комнаты для подготовки специальных инструментов, мойки, дезинфекции и ПСО. Проводится контроль каждого этапа обработки ИМН, и изделия передаются в «чистую» зону. Все инструменты в «чистой» зоне проходят технический контроль изделий и упаковку в биксы, бязевые упаковки, современные упаковочные материалы с размещением в контрольные точки термовременных индикаторов процесса стерилизации. Укладка белья, склад чистых изделий проводится в «чистой» зоне. Пройдя технический контроль, упакованное белье и изделия автоклавируются и перемещаются через шлюз на стерильный склад, откуда производится выдача готовой стерильной продукции или ее складирование в пределах срока реализации. Невостребованные стерильные материалы переводят на склад чистых изделий.

Функции ЦСО:

прием и хранение до обработки использованных в отделениях нестерильных изделий подготовленных к стерилизации материалов;
разборка, бракераж, учет и замена битых и неисправных изделий;
предстерилизационная очистка (мытье, сушка);
комплектование, упаковка, укладка в стерилизационные коробки или упаковка многоразового или одноразового применения;
стерилизация изделий;
контроль качества ПО, стерилизации изделий и регистрация:

— результатов учета качества ПО изделий от крови и ПАВ (поверхностно активных веществ);
результатов контроля работы стерилизаторов;
результатов исследований на стерильность;

ведение документации и строгий учет приема и выдачи изделий с указанием названия, количества, размеров шприцев, игл и др., а так же остатков за отделением; 8. выдача стерильных изделий отделениям больницы (поликлиники); 9. мелкий ремонт и заточка инструментов 10. инструктаж медицинского персонала отделений о правилах предварительной обработки ИМН перед отправкой их в ЦСО, о правилах комплектования и укладки в стерилизационные коробки на местах

16. Характеристика современных средств дезинфекции

Наиболее широко в ЛПУ используется химический метод дезинфекции. Применять можно только те дезинфицирующие средства, которые прошли обязательную проверку на безопасность применения в соответствии с требованиями российского законодательства и государственную регистрацию в установленном порядке, имеют свидетельство о государственной регистрации, сертификат соответствия и методические указания по применению.

Средства для дезинфекции поверхностей в помещениях ЛПУ должны соответствовать следующим требованиям:

1. Обеспечивать гибель возбудителей ВБИ: бактерий, вирусов, грибов – при комнатной температуре.

2. Обладать моющими свойствами или хорошо совмещаться с моющими средствами.

3. Иметь относительно низкую токсичность (4-3 класс опасности) и быть безвредными для окружающей среды.

4. Быть совместимыми с различными видами материалов (не портить обрабатываемые поверхности).

5. Быть стабильными, неогнеопасными, простыми в обращении.

6. Не оказывать фиксирующего действия на органические загрязнения.

7. Не оказывать отрицательного влияния на здоровье людей.

8. Быть стабильным при хранении, удобным при транспортировке, экономичным.

Дезинфектанты, применяемые в ЛПУ

Дезинфекционные средства, применяемые в ЛПУ, по назначению делят на три основные группы:

1. для обеззараживания изделий медицинского назначения;

2. для дезинфекции помещений, предметов обстановки и ухода за пациентами;

3. антисептики для обработки рук медперсонала.

Химические средства дезинфекции (7 групп)

1. Галогенсодержащие.

2. Кислородсодержащие.

3. ПАВ.

4. Гуаниды

5. Альдегидсодержащие.

6. Спирты.

7. Фенолсодержащие.

V. Токсичность дезинфицирующих препаратов. Меры предосторожности.

После проведения экспериментов все дезинфектанты оцениваются по классификации опасности веществ и включают в себя 4 класса опасности при разных путях поступления в организм.

1 класс - Чрезвычайно опасные

Химические средства этой группы не допускаются для использования в области медицины

2 класс - Высоко опасные рекомендуются для использования в ЛПУ обученным персоналом строго со средствами защиты, в отсутствие людей (в очагах) и больных, с последующей уборкой и проветриванием помещений.

Относятся:

- хлорактивные;

- некоторые альдегиды;

- перекись водорода и др.

3 класс - Умеренно опасные

Относится наибольшее количество химических средств, используемых для

дезинфекции. Дезинфицирующие средства, обладающие слабым сенсибилизирующимдействием (повышение чувствительности организма к воздействию раздражителей, вызывающее аллергическую реакцию), рекомендуются для дезинфекции в ЛПУ ссоблюдением мер предосторожности. К работе с такими средствами не допускается персонал с аллергическими заболеваниями и повышенной чувствительностью к химическим веществам.4 класс - Мало опасныеПри разных путях поступления в организм (ингаляционным, контактным, через рот) дезинфицирующие средства, не обладающие сенсибилизирующим действием, могут широко использоваться в ЛПУ.

17. Профилактика передачи вирусов парентеральных гепатитов и ВИЧ-инфекции в ЛПУ; пути инфицирования, общие методы предосторожности.

Снижение степени риска передачи вирусов парентеральных гепатитов и ВИЧ инфекции основана на тщательно продуманной системе профилактических мероприятий, в число которых входят:

Применение форм и методов работы, отвечающих правилам техники безопасности и самым высоким современным стандартам.
Строгое соблюдение универсальных мер профилактики, использование соответствующих индивидуальных защитных приспособлений.
Активная вакцинация лиц, относящихся к группе риска.
Эпиданализ случаев профессионального заражения ВГВ, проведение необходимых противоэпидемических мероприятий в каждом конкретном случае.
Документальная регистрация случаев заражения.

Универсальные меры профилактики:

Мед. работники, имеющие дело с кровью или другими биологическими жидкостями, должны рассматривать всех пациентов как потенциальный источник инфицирования вирусами гепатитов и ВИЧ – инфекцией.
Следует строго соблюдать меры предосторожности, как использование перчаток, масок, халатов и дез. средств (например, очки предохраняют глаза, влагонепроницаемая одежда защищает кожу и т д.).
Инъекци, перевязки и утилизацию отработанных материалов надо производить в строгом соответствии с имеющимися правилами и рекомендациями.

Проводить ежегодное диспансерное обследование мед. персонала:

Исследование крови на ВИЧ – инфекцию, сифилис, гонорею, маркеры вирусных гепатитов «В», «С».
Флюроографическое исследование органов грудной клетки.
Осмотр врачами специалистами.
Проведение специфической иммунопрофилактики (гепатит В).

Для профилактики ВИЧ-инфицирования на рабочем месте медицинский персонал должен выполнять следующие меры предосторожности:

тщательно выполнять манипуляции с режущими и колющими инструментами (иглы, скальпели, ножницы и т. п.), при открывании флаконов с медикаментами, пробирок с кровью и ее компонентами, ампул с сывороткой следует избегать уколов, порезов перчаток и рук,
нельзя переливать кровь и ее компоненты без получения отрицательного ответа на «Ф.50.»,
нельзя использовать одноразовый инструментарий повторно,
нельзя использовать инструментарий многоразового использования, который не прошел весь цикл очистки и тест-контроль на скрытую кровь и стерильность,
нельзя проводить забор крови иглой без шприца,
нельзя хранить инфицированный материал с кровью и ее компонентами в открытых емкостях без дезсредств,
нельзя надевать колпачки на использованные иглы для избежания риска травматизма,
нельзя использовать жесткие щетки для мытья рук для избежания риска микротравматизма,
нельзя производить транспортировку биологического материала для лабораторных исследований в открытых емкостях с ватно-марлевыми пробками для избежания риска ЧП,
строго соблюдать правила личной гигиены.

В целях профилактики ВИЧ – инфекции, вирусных гепатитов В, С, все изделия медицинского назначения, применяемые при манипуляциях с нарушением целостности кожи и слизистых оболочек или соприкасающихся с поверхностью слизистых оболочек и раневой поверхностью, после каждого использования должны в обязательном порядке подвергаться предстерилизационной очистке.

ПРЕДСТБРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА – проводится с целью удаления белковых, жировых, механических загрязнений, остатков микроорганизмов, лекарственных веществ и ржавчины.

Качество предстерилизационной очистки проверяют на скрытую кровь с помощью амидопириновой и азопирамовой проб.
На остаточное количество моющих средств на изделиях медицинского назначения – фенолфталеиновой пробой.
Контролю подвергается 1 % от одновременно обработанного инструментария (но не менее 3-5 ед. изделий одного наименования).
Изделия, дающие положительную пробу на кровь или моющее средство, обрабатывают повторно до получения отрицательного результата.
Пробы проводят после каждой предстерилизационной очистки и 1 раз в IО дней советом м/с или помощником эпидемиолога.
Регистрировать данные в журнал.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ – полное уничтожение микробов и их спор на инструментах и на предметах ухода, соприкасающихся с раневой поверхностью и слизистыми.

Стерилизацию проводят паровым, воздушным или химическим методом в зависимости от технических возможностей и вида стерилизуемого материала.
Для контроля стерилизации применяют термовременные индикаторы стерилизации.
При отсутствии центрального стерилизационного отделения в стационаре стерилизацию проводят в отделениях в сухожаровом шкафу.

18. Накрытие стерильного стола.

Цель: соблюдение стерильности медицинского инструментария.

Оснащение:

- манипуляционный столик;

- рабочий стол: стерильный бикс (инструментарий, ватные шарики, марлевые салфетки, стерильные перчатки); этиловый спирт 70%; сухая стерильная емкость для пинцетов или стерильная емкость с одним из дезинфицирующих растворов; емкость для использованного материала;

- стерильный бикс на педальной установке: халат, маска, перчатки, колпак, 2 большие простыни, полотенце, пинцет, зажим, пеленка, емкость для пинцета.

Последовательность выполнения:

1. Перед накрытием стерильного стола медицинская сестра: моет руки, надевает маску, перчатки, обрабатывает дважды столик дезинфицирующим раствором с интервалом 15 минут, затем смывает остатки дезинфицирующего раствора чистой ветошью.

2. Снимает перчатки, моет руки.

3. Проверяет бикс с одеждой (герметичность, дату стерилизации), ставит дату вскрытия и время на бирке.

4. Проводит гигиеническую обработку рук.

5. Открывает бикс на педальной установке, проверяет изменение цвета индикатора согласно эталону.

6. Достает стерильный пинцет из бикса и им по очереди достает: емкость для пинцета, стерильный халат, маску, перчатку (надевает их согласно алгоритма).

7. Стерильным пинцетом достает простынь и кладет ее в левую руку, пинцет кладет в сухую стерильную емкость (бикс).

8. На вытянутых руках разворачивает простынь, сложенную в 4-е слоя и накрывает процедурный столик движением «от себя» так, чтобы нижние края свисали на 20-30 см.

9. Достает вторую простынь, сложенную в 4-е слоя, разворачивает и кладет поверх первой.

10. Сзади захватывает цапками все 8-м слоев простыней, впереди захватывает 2-мя цапками только 4-е верхних слоя по краям. Стол накрыт.

11. Открывает стерильный стол за передние цапки «от себя», сложив слои гармошкой, не доводя до края 10-15 см, цапки свисают за стол.

12. Выкладывает пинцетом на столик необходимый стерильный инструмент в удобном порядке (или по принятой схеме).

13. Взявшись за передние цапки, поднимает их вверх, расправляет «гармошку» и движение «на себя» закрывает стол, не касаясь стерильной части стола.

14. Прикрепляет к левому верхнему углу простыни бирку (дата стерилизации стерильного стола, время накрытия и подпись медицинской сестры).

Внимание!

1. Стерильный стол накрывается до 6 часов.

2. После взятия со стола инструментария тут же закрывается.

3. Со стерильного стола медицинская сестра берет инструментарий стерильным сухим пинцетом.

4. Неиспользованный инструмент, взятый со стерильного стола, обратно не возвращается
19. Сборка инструмента со стерильного стола и крафт-пакета.

Сборка шприца со стерильного стола

Оснащение: стерильный пинцет; шприцы, иглы (многоразовые); стерильный лоток; ёмкость с дезинфицирующим раствором (для пинцета).

Последовательность выполнения:

Медицинская сестра моет, высушивает руки, проводит гигиеническую обработку, надевает стерильные маску и перчатки.

Проверяет дату стерилизации, дату и время накрытия стерильного стола.

Открывает стерильный стол за цапки для белья движением «от себя».

Стерильным пинцетом (сухим) берет со стерильного стола лоток и кладет его дном на ладонь руки (рука с лотком за пределами стола).

Тем же пинцетом положить в лоток поршень, цилиндр и 2 иглы (для набора раствора и для инъекции). Поршень и цилиндр укрепляет на боковую сторону лотка.

Ставит лоток на рабочий стол.

За цапки закрывает стерильный стол движением «на себя».

Пинцетом берет цилиндр и перекладывает в левую руку.

Правой рукой пинцетом берет поршень и вводит его в цилиндр. Закрывает съёмную крышку (собирает шприц над лотком).

10. Надевает иглу для набора лекарственных средств на подигольный конус, взяв её пинцетом за канюлю.

Закрепляет иглу на подигольном конусе пинцетом (можно пальцами за канюлю).

Ставит пинцет в ёмкость с раствором хлоргексидина (или другой раствор).

Собранный шприц возвращает в стерильный лоток, укрепляет его рукояткой за боковую сторону лотка.
Сбор шприца из крафт-пакета

Оснащение: бикс со стерильными шприцами в крафт-пакетах; бикс с ватными шариками; ёмкость со стерильным пинцетом; стерильный лоток; этиловый спирт 70 %.

Последовательность выполнения:

Медицинская сестра мост руки, высушивает, обрабатывает антисептиком.

Проверяет бикс с крафт-пакетами со шприцами (дату стерилизации, ставит дату использования).

Открывает бикс, проверяет индикатор стерилизации и пинцетом вынимает крафт-пакет со шприцем.

Вскрывает (снимает скрепки или обрезает верхнюю часть пакета) и использует его как стерильную салфетку.

Стерильным пинцетом захватывает цилиндр подигольном конусом вниз и перекладывает в левую руку.

Пинцетом захватывает поршень под рукоятку и вращательным движением вводит в цилиндр, фиксирует съёмную крышку.

Пинцетом берёт иглу за канюлю и присоединяет к подигольному конусу, закрепляет канюлю пальцами.

Ставит пинцет в емкость с антисептиком.

Собранный шприц кладет на внутренную поверхность крафт-пакета или в стерильный лоток, укрепляет его рукояткой за боковую сторону лотка
20. Гепатит: понятие, пути заражения, профилактика.
21. СПИД: понятие, пути заражения, профилактика.

СПИД – синдром приобретенного иммунодефицита, смертельно опасная болезнь, вызванная ВИЧ (вирусом иммунодефицита человека). На данный момент лекарства, способного победить это заболевание, у человечества не имеется. Именно поэтому основой борьбой считается его профилактика.

Пути передачи ВИЧ

Источником ВИЧ-инфекции может быть бессимптомный вирусоноситель или больной СПИДом человек. Основным механизмом передачи инфекции является кровоконтактный.

Пути заражения:

Половой - при любом виде секса, независимо от ориентации человека. Наибольший риск возникает при вагинальном и анальном сексе, однако и при оральном возможно заражение СПИДом.
Гемотрансфузионный - после переливания крови, плазмы, тромбоцитарной, эритроцитарной, лейкоцитарной массы или других компонентов крови больного СПИДом здоровому человеку.
Инструментальный или инъекционный, характерный для наркоманов, пользующихся общими иглами. Однако такой способ заражения случается и в медицинских учреждениях, где медперсонал не соблюдает правил и норм использования шприцов, игл и других врачебных инструментов. Данный путь передачи вируса обусловил распространение одноразовых шприцов, что является профилактикой СПИДа.
Перинатальный - от инфицированной матери к плоду, включая прохождение ребенка по родовым путям.
Молочный – через грудное молоко, зараженное ВИЧ также можно заразиться СПИДом.
Трансплантационный – это пересадка инфицированного костного мозга, внутренних органов или искусственное оплодотворение инфицированной спермой.
Бытовой и профессиональный, когда заражение случается через поврежденную кожу и слизистые оболочки, контактирующие с некоторыми секретами больных СПИДом. Одновременно с тем ВИЧ не может передаваться через слюну, слезы, пищу, воду или воздух. Слюна опасна, если содержит примеси крови.

Профилактика СПИДа включает в себя необходимость: иметь только одного сексуального партнера; избегать половых связей с малознакомыми и подозрительными людьми, проститутками, наркоманами; не иметь групповых контактов; использовать презервативы; не пользоваться чужими станками, бритвами, зубными щетками, использованными медицинскими приборами; настаивать на одноразовых инструментах в кабинете стоматолога, гинеколога, косметолога и других специалистов. Борьба со СПИДом должна проводиться в виде профилактических мероприятий со стороны сферы здравоохранения.

К медицинской профилактике относится: обследование лиц из групп риска, доноров крови; пропаганда секса с презервативом; обследование всех беременных на ВИЧ-антитела; контроль деторождения и отказ от грудного вскармливания у инфицированных женщин.

В больницах и иных медицинских заведениях профилактика СПИДа подразумевает: тщательное мытье рук с обеззараживающим средством после работы с инфицированным материалом; при лечении ВИЧ-больных применять инструментарий только одноразового использования; при загрязнении постельных принадлежностей, предметов обихода, окружающей среды секретами и выделениями больного СПИДом нужно проводить дезинфекцию.

22. Приготовление и использование 10%, 0,5%, 1% растворов хлорной извести

Хлорная известь - порошкообразный продукт белого цвета. Выпускается в пакетах по 1 кг или в мешках по 30 кг. Продукт содержит 26-32-35 % активного хлора, при растворении в воде образуется взвесь. Сначала из порошка готовят маточный раствор хлорной извести, затем, используя маточный раствор (10% осветленный раствор хлорной извести) готовят рабочие растворы хлорной извести.

Приготовление 10% осветленного раствора хлорной извести.

Перед приготовлением 10% осветленного раствора хлорной извести медработник, кроме халата и шапочки, должен надеть фартук из прорезиненной ткани и резиновые сапоги. Также он должен использовать защитные средства: перчатки резиновые, защитные очки, респиратор (РУ-60).

1 кг сухой хлорной извести помещают в эмалированную ёмкость и растирают с добавлением небольшого количества воды до состояния равномерной кашицы деревянной лопаткой. Затем добавляют остальное количество воды до 10 л, перемешивают до образования однородной взвеси и оставляют для отстаивания в эмалированной посуде с крышкой на 24 часа (впервые 4 часа необходимо несколько раз перемешать взвесь). После этого осветленный раствор осторожно сливают или отфильтровывают в маркированную эмалированную или стеклянную ёмкость с крышкой. Заполняют клеёнчатую бирку. Срок годности 10% осветленного раствора хлорной извести - 7-10 суток.

Приготовление рабочих растворов хлорной извести.

Рабочие растворы хлорной извести готовятся непосредственно перед применением. Используются однократно. Экспозиционная выдержка - по инструкции.

Способы применения - протиранием, погружением (замачиванием), орошением.

% рабочего раствора	Количество 10% осветленного маточного раствора хлорной извести в литрах	Количество воды в литрах	Применение
0,5 %	0,5	9,5	Профилактическая дезинфекция в соматических отделениях.
1 %	1	9	Для проведения дезинфекции при кишечных инфекциях.
3 %	3	7	Для проведения дезинфекции при вирусных гепатитах и ВИЧ-инфекции.
5%	5	5	Для дезинфекции при туберкулезе.

Примечание:

сухая хлорная известь применяется способом засыпания для дезинфекции выделений (мочи, кала, рвотных масс и т.д.);

для приготовления активированных растворов хлорной извести применяют раствор нашатырного спирта.
23. Приготовление и использование 1%, 3%, 5% растворов хлорамина

Для приготовления раствора хлорамина необходимо:

для получения 1%-го раствора для 1 литра воды требуется 10 г хлорамина;
для получения 3%-го раствора для 1 литра воды требуется 30 г хлорамина;
для получения 5%-го раствора для 1 литра воды требуется 50 г хлорамина.

Рабочий раствор хлорамина необходимо приготавливать перед применением непосредственно. Если правильно хранить раствор хлорамина — в закрытой темной банке — раствором можно пользоваться в течение максимум четырех дней.

24. меры профилактики и контроля внутрибольничной инфекции.

Профилактика ВБИ

1. Соблюдение санитарно-гигиенического режима (старшая медсестра должна проводить с вновь прибывшими на работу инструктаж по комплексу противоэпидемических мероприятий, а также своевременный медицинский осмотр персонала).

2. Соблюдение порядка приема пациентов в стационар (осмотр на педикулез и чесотку, санитарно-гигиеническая обработка поступающих пациентов).

3. Использование защитной одежды: халат, перчатки, маска, очки, фартук.

4. Соблюдение порядка сбора и хранения грязного белья, одежды пациента.

5. Проведение дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации предметов медицинского назначения, предметов ухода (согласно приказам Минздрава: ОСТ 42-21-02-85, приказ № 320 от 05 марта 1987г., приказ № 335 от 26 декабря 1988г., приказ № 408 от 12 июля 1989г., а также методическим указаниям по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации предметов медицинского назначения № МУ 287-113 от 30 декабря 1998г.)

6. Проведение активного выявления инфекционных пациентов, соблюдение сроков наблюдения за контактными больными.

7. Своевременное проведение деконтоминации рук (социальный, гигиенический и хирургический уровни).

8. Осуществление контроля за своевременным проведением влажной уборки помещений с использованием дезинфицирующих растворов, включением кварцевой лампы и проветриванием.

9. Своевременное проведение генеральной уборки (в палатах - 1 раз в месяц, в процедурном кабинете и столовой – 1 раз в неделю).

10. Соблюдение режима питания: выполнение требований по оснащению раздаточных и буфетных; соблюдение сроков реализации готовой пищи, порядка сбора и удаления пищевых отходов, порядка обработки посуды, ветоши, уборочного инвентаря и их хранения, порядка хранения передач.

11. Соблюдение правил сбора, хранения и удаления отходов в ЛПУ.

1 2 3