Извлечение руками
 Скачать 105.35 Kb.
|
|
Способы определения Rh0(D) в клинической практике В клинических условиях (в приёмном покое, хирургическом отделении, операционной), где нет специального лабораторного оборудования, используют экспресс-методы определения Rho(D) (D-фактора). Экспресс-метод определения стандартным универсальным реагентом в пробирке без подогрева Для исследования можно использовать свежую несвернувшуюся кровь, взятую из пальца (или вены) непосредственно перед исследованием, или консервированную кровь без предварительной обработки, а также эритроциты из пробирки после формирования сгустка и отстаивания сыворотки.
Методика проведения реакции. Исследование проводят в центрифужных пробирках объёмом не менее 10 мл. На дно пробирки вносят одну каплю стандартного универсального реагента, представляющего собой антирезусную сыворотку группы АВ(IV), разведённую 33% раствором декстрана (ср. мол. масса 50 000-70 000). Затем в неё добавляют одну каплю исследуемой крови (или эритроцитов). Круго- вым вращением пробирки содержимое размазывают по её внутренней поверхности таким образом, чтобы содержимое растеклось по стенкам. Это значительно ускоряет агглютинацию и делает её крупнолепестковой. Агглютинация на стенках пробирки наступает, как правило, в течение первой минуты, но для образования устойчивого комплекса антиген-антитело и чёткой агглютинации наблюдать следует не менее 3 мин. Затем для исключения неспецифической агрегации эритроцитов в пробирку добавляют 2-3 мл физиологического раствора и перемешивают путём одно-двукратного перевертывания пробирки (без взбалтывания!). Трактовка результатов. Наличие агглютинации (крупные хлопья на фоне просветлённой жидкости) указывает на резус-положительную принадлежность исследуемой крови. Отсутствие агглютинации (в пробирке гомогенно окрашенная розовая жидкость) свидетельствует о резус-отрицательной принадлежности исследуемой крови. Лабораторные способы определения резус-фактора Для определения резус-принадлежности крови больного в условиях лаборатории применяют четыре основных метода. Метод агглютинации в солевой среде Используют специальные сыворотки, содержащие полные антитела анти-резус. Эритроциты в виде 2% взвеси в изотоническом ра- створе хлорида натрия соединяют в пробирках с антирезусной сывороткой. Пробирки помещают на 1 ч в термостат при температуре 37 ?С, после чего осадок эритроцитов на дне пробирки рассматривают с помощью лупы и по его форме учитывают результат. При положительном результате (Rh+) осадок имеет характерный рисунок в виде нитей или зернистости. При отрицательном (Rh-) осадок размещается равномерным слоем и имеет вид правильно очерченного круга.
Метод агглютинации в присутствии желатина B две пробирки помещают по 0,02-0,03 мл осадка исследуемых эритроцитов. Затем в первую пробирку добавляют 2 капли (0,1 мл) 10% раствора желатина и 2 капли (0,1 мл) анти-резусной сыворотки, во вторую (контрольную) пробирку - 2 капли (0,1 мл) 10% раствора желатина и 2 капли (0,1 мл) физиологического раствора. Содержимое осторожно перемешивают. Затем пробирки инкубируют в термостате при температуре 45-48 ?С в течение 30 мин, после чего добавляют 5-8 мл физиологического раствора и переворачивают пробирки 1-2 раза для перемешивания. Результат учитывают, просматривая пробирки на свет невоору- жённым глазом или через лупу. Eсли эритроциты резус-положи- тельны, произойдёт их агглютинация. Отсутствие агглютинации свидетельствует о том, что испытуемая кровь резус-отрицательная. B контрольной пробирке агглютинация эритроцитов должна отсутствовать. Непрямой антиглобулиновыи тест (реакция Кумбса) Эта реакция наиболее чувствительна для выявления неполных антител к ауто- и изоантигенам эритроцитов. К ней, как правило, прибегают при возникновении трудностей в определении резус-при- надлежности крови, связанных с нечёткими результатами, полученными при других методах исследования. Реакция основана на использовании антиглобулиновой сыворотки. При обработке резус-положительных эритроцитов неполными антителами анти-Rh наступает их обволакивание, сенсибилизация по отношению к антиглобулиновой сыворотке, которая агглютинирует сенсибилизированные эритроциты, поскольку имеет антитела к глобулинам. В пробирку вносят антирезусную сыворотку и отмытые физиологическим раствором эритроциты, помещают на 1 ч в термостат при температуре 37 ?С, после чего эритроциты тщательно отмывают. Последующий этап реакции проводят на плоскости. Каплю взвеси эритроцитов смешивают с равным количеством антиглобулиновой сыворотки и учитывают результат. Наличие агглютинации - показатель того, что исследуемый образец крови резус-положительный. Если агглютинация отсутствует, то испытуемая кровь резус-отрицательная.
Реакция с анти-D-моноклональными антителами На планшете смешивают большую каплю (0,1 мл) анти-D-монокло- нальных антител и маленькую каплю (0,01 мл) исследуемой крови. За реакцией наблюдают в течение 3 мин. При смешивании анти- D-MKA с образцами резус-положительных эритроцитов отмечают быстро наступающую лепестковую агглютинацию. Если кровь резусотрицательная, агглютинация отсутствует. Навык 6 Проба на индивидуальную совместимость позволяет убедиться в том, что у реципиента нет антител, направленных против эритроцитов донора и таким образом предотвратить трансфузию эритроцитов, несовместимых с кровью больного. Проба на совместимость, выполняемая на плоскости при комнатной температуре, имеет целью выявить у реципиента полные групповые агглютинины системы АВ0, MNSs, Lewis и др. Проба на совместимость с применением 10% желатина, 33% полиглюкина, непрямая проба Кумбса предназначена для выявления у реципиента неполных групповых антител. Двухэтапная проба в пробирках с антиглобулином предусматривает выявление и тех и других антител, в том числе групповых гемолизинов. 1.Проба на совместимость на плоскости при комнатной температуре На пластинку наносят 2 - 3 капли сыворотки реципиента и добавляют небольшое количество эритроцитов с таким расчетом, чтобы соотношение эритроцитов и сыворотки было 1:10. Далее эритроциты перемешивают с сывороткой, пластинку слегка покачивают в течение 5 мин, наблюдая за ходом реакции. Учет результатов. Наличие агглютинации эритроцитов означает, что кровь донора несовместима с кровью реципиента и не должна быть ему перелита. Если по истечении 5 мин агглютинация эритроцитов отсутствует, то это означает, что кровь донора совместима с кровью реципиента по групповым агглютиногенам. По истечении указанного времени в пробирки добавляют пару капель физиологического раствора. 2.Непрямая проба Кумбса В пробирку вносят одну каплю (0,02 мл) осадка трижды отмытых эритроцитов донора, для чего выдавливают из пипетки небольшую каплю эритроцитов и касаются ею дна пробирки, и добавляют 4 капли (0,2 мл) сыворотки реципиента. Содержимое пробирок перемешивают встряхиванием, после чего их помещают на 45 мин в термостат при температуре +37°С. По истечении указанного времени в пробирки добавляют пару капель физиологического раствора. Учет результатов проводят невооруженным глазом или через лупу. Агглютинация эритроцитов свидетельствует о том, что кровь реципиента и донора несовместимы, отсутствие агглютинации является показателем совместимости крови донора и реципиента. 3. Проба на совместимость с применением 10% желатина В пробирку вносят 1 небольшую каплю (0,02 - 0,03) мл эритроцитов донора, для чего выдавливают из пипетки небольшую каплю эритроцитов и касаются ею дна пробирки, добавляют 2 капли (0,1 мл) желатина и 2 капли (0,1 мл) сыворотки реципиента. Содержимое пробирок перемешивают встряхиванием, после чего их помещают в водяную баню на 15 мин или термостат на 30 мин при температуре +46 - 48°С. По истечении указанного времени в пробирки добавляют 5 - 8 мл физиологического раствора. Результат учитывают, просматривая пробирки на свет невооруженным глазом или через лупу. Агглютинация эритроцитов свидетельствует о том, что кровь реципиента и донора несовместимы, отсутствие агглютинации является показателем совместимости крови донора и реципиента. 4. Проба на совместимость с применением 33% полиглюкина В пробирку вносят 2 капли (0,1 мл) сыворотки реципиента 1 каплю (0,05) мл эритроцитов донора и добавляют 1 каплю (0,1 мл) 33% полиглюкина. Контакт эритроцитов с сывороткой больного при вращении пробирки следует продолжать не менее 3 мин. Через 3 - 5 мин в пробирку добавляют 2 - 3 мл физиологического раствора и перемешивают содержимое путем 2 - 3-х кратного перевертывания пробирки, не взбалтывая. Результат учитывают, просматривая пробирки на свет невооруженным глазом или через лупу. Агглютинация эритроцитов свидетельствует о том, что кровь реципиента и донора несовместимы, отсутствие агглютинации является показателем совместимости крови донора и реципиента. 5. Двухэтапная проба в пробирках с антиглобулином Первый этап. В маркированную пробирку вносят 2 объема (200 мкл) сыворотки реципиента и 1 объем (100 мкл) 2% взвеси трижды отмытых эритроцитов донора, суспендированных в физиологической растворе или LISS (раствор низкой ионной силы). Содержимое пробирки перемешивают и центрифугируют в течение 30 с. Затем оценивают наличие гемолиза в надосадочной жидкости, после чего осадок эритроцитов ресуспендируют, слегка постукивая кончиком пальца по дну пробирки, и определяют наличие агглютинации эритроцитов. При отсутствии выраженного гемолиза и/или агглютинации переходят к выполнению второго этапа пробы с использованием антиглобулиновой сыворотки. Второй этап. Пробирку помещают в термостат при температуре 37°С на 30 мин, после чего снова оценивают наличие гемолиза и/или агглютинации эритроцитов. Затем эритроциты трижды отмывают физиологическим раствором, добавляют 2 объема (200 мкл) антиглобулиновой сыворотки для пробы Кумбса и перемешивают. Пробирки центрифугируют в течение 30 с, осадок эритроцитов ресуспензируют и оценивают наличие агглютинации. Учет результатов проводят невооруженным глазом или через лупу. Выраженный гемолиз и/или агглютинация эритроцитов указывает на присутствие в сыворотке реципиента групповых гемолизинов и/или агглютининов, направленных против эритроцитов донора, и свидетельствует о несовместимости крови реципиента и донора. Отсутствие гемолиза и/или агглютинации эритроцитов свидетельствует о совместимости крови реципиента и донора.\ Навык 7 7. Биологическая проба на совместимость переливаемой крови Выполняется следующим образом: сразу после пункции вены больной вливается струйно 25 мл донорской крови, после чего система перекрывается зажимом на 3 мин или в течение 3 мин трансфузия продолжается редкими каплями. Затем струйное вливание 25 мл крови повторяется еще два раза с таким же интервалом. Если после трехкратного струйного введения донорской крови изменения в состоянии больной не отмечается, значит переливаемая кровь совместима и трансфузию можно продолжать. Но если после проведения биологической пробы у больной появляется беспокойство, затрудненное дыхание, боли в поясничной области, покраснение кожи лица, сменяющееся бледностью, учащение пульса, снижение артериального давления, значит переливаемая кровь несовместима с кровью больной по системе АВО. Гемотрансфузию надо немедленно прекратить. Навык 8 9. Хирургическая обработка раны. ПХО Первичная хирургическая обработка раны (ПХО) - это ряд хирургических манипуляций, направленных на профилактику раневой инфекции и создание необходимых условий для наиболее эффективного заживления раны. Как правило, ПХО складывается из нескольких этапов: · Визуальный осмотр раны · Тщательная обработка раны · Рассечение раны · Иссечение в пределах здоровых тканей · Прекращение кровотечения · Ушивание раны и ее дренирование Визуальный осмотр раны необходим для определения степени повреждения, вида раны и ее загрязненности. На основании полученных данных моделируется план ее санации. Тщательную обработку раны в качестве самостоятельной манипуляции осуществляют в случаях незначительных повреждений (например, поверхностные резаные раны). Для осуществления мероприятия хирург очищает кожные покровы вокруг раны от загрязнений. Для этих целей используют ватный тампон, который смочен спиртовым раствором или септоцидом. После очистки края раны смазывают спиртовыми растворами йода (йодонат, йодинол). Задаваясь вопросом, чем обработать рану, можно использовать вышеперечисленные препараты, а также хлоргексидин и другие антисептики. По окончанию процедуры на поверхность раны налаживают асептическую повязку. Подобная манипуляция проводится во всех учреждениях медицинского профиля. При отсутствии возможности провести достаточный туалет раны проводится рассечение краев. В зависимости от общего состояния пациента подобную манипуляцию проводят под местным (инфильтративным) или общим наркозом. Важным является использование перекиси водорода 3%. Благодаря своим фармакологическим свойствам этот препарат разлагается до активного кислорода при взаимодействии с тканями, приводя к образованию пены, которая выполняет роль адсорбента для микроорганизмов и загрязняющих веществ, находящихся в ране. После обработки раствором перекиси удаляются видимые инородные тела из раны при помощи пинцета. Иссечение раны в пределах здоровых тканей называется полным. Частичным называется в случае, если происходит ликвидация размозженных или мертвых тканей. Раны, локализующиеся на лице, кистях рук, как правило, не иссекают из-за большого косметического дефекта. Также противопоказано иссечение краев раны, если в них определяется наличие крупных сосудов и нервных стволов. После выполнения всех манипуляций проводится остановка кровотечения путем перевязки (лигирования) крупных сосудов и прижиганием (коагулированием) более мелких. При повреждении крупнокалиберных сосудов на них накладывается специальный сосудистый шов. Последним этапом первичной хирургической обработки является ушивание раны наглухо. Обработка гнойных ран имеет свою отличительную особенность. Она заключается в отсутствии необходимости ушивания раны, края раны просто стягиваются лигатурами, но обязательным является создание путей оттока отделяемого раны, во избежание повторного нагноения. Данная манипуляция получила название дренирования. Дренаж представляет собой узкую трубочку, одним концом находящейся в ране, другим – вне ее. Также может быть использован активный дренаж, для закачивания в рану антисептических средств и выкачивания экссудата. На усмотрение хирурга, в случае риска развития раневой инфекции, в последующем и сепсиса, назначается антибиотикотерапия продолжительностью до 7-10 дней. Как правило, используются антибиотики широко спектра действия, чтобы подавить условно-патогенную флору. Навык 9 ОСТАНОВКА НАРУЖНОГО КРОВОТЕЧЕНИЯ ПАЛЬЦЕВОЕ ПРИЖАТИЕ ПОВРЕЖДЕННОЙ АРТЕРИИ НА ПРОТЯЖЕНИИ Показания: Остановка наружного кровотечения при повреждении крупных магистральных артерий. Пальцевое прижатие дает возможность приготовить необходимые средства для более надежного способа остановки кровотечения (жгут, закрутка), удобного для транспортировки пострадавшего в лечебное учреждение. Методика выполнения 1. Определить источник кровотечения. Если источник кровотечения скрытое под одеждой, обращают внимание на обильное и быстрое промокание одежды кровью. 2. Пальцевое прижатие артерии производится в анатомических точках близкого прилежания сосудов к костям, к которым их можно прижать. Эти точки важно не только знать, но и уметь быстро и эффективно прижимать в этих местах артерию, не тратя время на ее поиски . Артерию можно прижимать пальцем (пальцами), кулаком. 3. При ранении головы и шеи пальцевое прижатие артерий производят ниже раны, при ранении конечностей - выше. Рис. 14 Точки прижатия магистральных артерий. Точки прижатия артерий: • Височную артерию прижимают пальцами в 2 см кверху и кпереди от наружного слухового прохода. • Лицевую артерию прижимают к нижней челюсти в 2 см кпереди от угла. • Общую сонную артерию прижимают 11-V пальцами у середины внутреннего края кивательной мышцы к сонному бугорку поперечного отростка VI шейного позвонка. Первый палец кисти служит при этом противоупором. • Подключичную артерию прижимают позади ключицы в средней трети к I ребру. • Подмышешую артерию прижимают в подмышечной ямке к головке плеча. • Плечевая артерия прижимается к внутренней поверхности плечевой кости в бороздке между двуглавой и трехглавой мышцами с внутренней стороны. • Лучевую артерию прижимают к лучевой кости в месте определения пульса. • Локтевую артерию прижимают к локтевой кости. • Брюшную aopтy прижимают к позвоночнику кулаком в области пупка. •Бедренную артерию прижимают плотно сжатыми большими пальцами или кулаком у середины нижней трети паховой связки к горизонтальной ветви лобковой кости. • Подколенную артерию прижимают к задней поверхности большеберцовой кости в области подколенной ямки. • Заднюю берцовую артерию прижимают к задней поверхности внутренней лодыжки голени. После того, как артериальное кровотечение остановлено, готовят и осуществляют временную остановку кровотечения наложением ленточного резинового жгута или закрутки. МАКСИМАЛЬНОЕ СГИБАНИЕ КОНЕЧНОСТИ |