Курсовая работа на тему: Определение видовой принадлежности мяса. Всэ курсач. Определение видовой принадлежности мяса
 Скачать 39.48 Kb.
|
|
| Кость | Корова | Лошадь |
| атлант | Нет задних крыловых отверстий, есть задняя крыловая вырезка | Есть передние и задние крыловые отверстия |
| эпистрофей | Зубовидный отросток полый, полулунной формы | Зубовидный отросток выпуклый, стамескообразной формы |
| грудина | Плоская без гребня, имеет по 6 суставных ямок с каждой стороны | Сжата с боков имеет хорошо выраженный гребень и 8 суставных ямок |
| крестец | Крестец плоский, состоит из 5 сросшихся позвонков, остистые отростки расположены отдельно друг от друга | Крестец выпуклый состоит из 5 полностью сросшихся позвонков, остистые отростки срастаются в сплошной гребень |
| ребра | Широкие, плоские, 13 пар | узкие, бочкообразной формы в сечении, 18 пар |
| лопатка | Шейка короткая, ость высокая нависает над шейкой, заканчивается акромионом, соотношение предостной и заостной частей 1:4 | Шейка длинная, ость низкая, снижаться к шейке лопатки, акромиона нет, соотношение предостной и заостной части 1:3 |
| плечевая кость | Имеет два блоковидных отростка и шероховатость вместо вертлуга | Имеет три, блоковидных отростка, и сильно развитый вертлуг |
| лучевая и локтевая кости | Лучевая и локтевая кости одинаковой длины | Лучевая кость доходит до середины локтевой |
| бедренная кость | Отростки и выступы сглажены, большой вертел монолитный, малый в виде тупого бугра, третий вертел отсутствует | Большой вертел разделен на две части, четко выражены малый и третий вертел |
| малая и большеберцовая кости | Большая берцовая искривлена в медиальную сторону, малая берцовая в виде рудиментарного отростка | Большеберцовая кость имеет трехгранное сечение, малая берцовая кость сопровождают ее до середины |
| грудные и поясничные позвонки | Остистые отростки позвонков плоские, расположены вертикально их верхняя часть направлена вперед | Остистые отростки оканчиваются шишкообразным утолщением и касаются друг друга |
| | Овца | Собака |
| атлант | Крылья толстые, короткие, имеют краниальные отверстия. | Крылья тонкие, узкие, длинные, широко расходятся от тела позвонка. |
| эпистрофей | Гребень с приподнятым задним краем | Гребень выступает вперёд в виде клюва. |
| грудные позвонки | Их 13-14. Рёберные отростки плоские. С первого по десятый остистые отростки направлены назад, а остальные вертикально. | Их 13. Остистые отростки округлённые |
| поясничные позвонки | Количество 6. Остистые отростки расположены перпендикулярно к телу позвонка, плоские, высота меньше ширины. Поперечные отростки широкие, направлены горизонтально. | Количество 7. Остистые отростки отклонены вперёд, вверху сужены, высота больше ширины. Поперечные отростки направлены вниз и вперёд. Имеются добавочные отростки. |
| крестцовая кость | Состоит из 4- позвонков остистые отростки, которых сросшиеся. | Состоит из 3 позвонков остистые отростки, которых не сросшиеся. |
| лопатка | Треугольной формы, ость делит лопатку на неравные части - малую предостную и большую заостную. Ость лопатки заканчивается над шейкой лопатки. | Передний край дугообразный. Ость дельт лопатку на равные части, акромион доходит до суставной поверхности. |
| | Кошка | Кролик |
| лопатка | Соотношение длины и ширины лопатки 1:3, шейка длинная, ость не высокая разветвляется на две части | Соотношение длины и ширины лопатки 1:2, шейка короткая, ость высокая нависает над шейкой, отросток ответвляется и направлен вниз |
| бедренная кость | Имеет большой, малый и третий вертел | Имеет один большой вертел |
| берцовые кости | Малая берцовая кость рудименти-рована и срастается с большеберцовой заканчиваясь в ее верхней трети | Большеберцовая и малоберцовая кости соединены подвижно суставными поверхностями, большеберцовая кость намного толще малоберцовой |
| крестец | Длинный, состоит из четырех позвонков с высокими раздельными остистыми отростками | Короткий с тремя низкими шишкооб- разными отростками на концах |
При определении мяса мелкого рогатого скота и собак следует учитывать, то обстоятельство, что кости мелкого рогатого скота по своей форме напоминают коровьи [9].
Определение видовой принадлежности мяса по анатомическому строению внутренних органов:
По анатомическим особенностям строения внутренних органов также можно безошибочно установить видовую принадлежность мяса и продуктов убоя [9]. Различия мяса разных видов животных приведено в таблице 2 [10].
Таблица 2. Видовые особенности строения внутренних органов
| Внутренние органы | Корова | Лошадь |
| Язык | Шершавый, кончик заострён, в средней трети валик. | Гладкий, кончик имеет форму шпателя. |
| Лёгкие | В левом 3 доли, а в правом 4-5. Границы между ними выражены. | В левом 2 доли, а в правом - 3. Границы едва заметны. |
| Селезёнка | Плоская, в виде вытянутого овала. | Плоская, треугольная искривлённая в плоскости (вид запятой). |
| Печень | Не ясно разделена на 3 большие доли имеется крупный хвостатый отросток. Желчный пузырь большой грушевидный. | Ясно разделена на 3 доли. Хвостатый отросток маленький. Желчный пузырь отсутствует. |
| Почки | Бугристые. Состоят из 16-18 долек. | Гладкие. |
| Сердце | В фиброзном кольце аорты имеются 2 косточки, а у телят до 4-х недельного возраста – 2 хряща. | В аорте косточки отсутствуют. |
2. Лабораторные методы определения видовой принадлежности мяса
Видовую принадлежность мяса животных можно определить по температуре плавления и коэффициенту рефракции (преломления) жира. Данные константы жира зависят от соотношения в жире предельных (насыщенных) и непредельных (ненасыщенных) жирных кислот. Кроме того, ставят реакцию на гликоген, реакцию преципитации, ПЦР и определяют йодное число [9].
Определение температуры плавления жира:
Капилляр диаметром 1,4-1,5 мм наполняют расплавленным жиром, помещают его в холодную воду или холодильник для остывания, а затем прикрепляют резиновым кольцом к химическому термометру. Столбик жира должен быть на одном уровне со столбиком ртути. Термометр с капилляром помещают в широкую пробирку так, чтобы термометр не касался стенки пробирки. Пробирку закрепляют в стакане с водой, уровень которой должен быть выше верхнего конца капилляра [12].
Воду в стакане медленно нагревают и наблюдают за показаниями термометра и состоянием жира в капилляре (на темном фоне). В тот момент, когда жир станет совершенно прозрачным, отмечают температуру плавления жира. Показатели температуры плавления жира разных видов животных представлены в таблице 3.
Таблица 3. Температура плавления жира,°С
| Жир | Внутренний | Наружный |
| Говяжий | 49,6 | 47,2 |
| Бараний | 54,0 | 49,5 |
| Свиной | 46,0 | 37,5 |
| Конский | 31,5 | 28,5 |
| Козий | 48,0 | 45,0 |
| Кроличий | 38,0 | - |
| Нутриевый | 27,0 | - |
| Собачий | 27,0 | 23,0 |
| Кошачий | - | 39,0 |
Знание температуры плавления жира легко позволяет отличить баранину от мяса собаки, говядину от конины (жир собак и лошадей тает в руках).
При определении точки плавления жира следует обратить внимание на место, откуда был получен жир для анализа, и качество корма, которым питалось перед убоем животное. Исследования показали, что у одного и того же животного почечный жир тверже, нежели подкожный и сальника, а жир свиней, откармливаемых, например, картофелем, мягче, нежели свиней, откармливаемых хлебом [12].
Коэффициент преломления жира:
Коэффициент преломления жира устанавливают при помощи различных рефрактометров — универсального, ИРФ, РПЛ-3 и др. Светопреломляющие свойства (рефракция) жира зависят от количества содержащихся в нем триглицеридов, предельных и непредельных кислот [5].
Коэффициент преломления жира находят при температуре, близкой к температуре его плавления.
На нижнюю призму рефрактометра наносят каплю исследуемого жира. Осветителем направляют пучок света в осветительную призму и ведут наблюдение через окуляр. Деление шкалы, через которое проходит граница светотени, является коэффициентом преломления исследуемого жира [5].
Качественная реакция на гликоген:
Эта реакция основана на том, что в мясе кошек, собак, лошадей, а также диких животных гликогена содержится более 1%, а в мясе других домашних животных — менее 1%.
Техника постановки реакции. Берут исследуемую пробу мяса и тонко измельчают, заливают водой в отношении 1:4, кипятят 30 минут, охлаждают и профильтровывают через бумажный фильтр [11].
В пробирку вносят 3-5 мл фильтрата и прибавляют к нему 5-10 капель раствора Люголя, приготовленного по прописи: 1 г кристаллического йода, 4 г йодистого калия и 100 мл воды.
При положительной реакции на гликоген бульон окрашивается в вишнево-красный цвет, который при нагревании до 80°С обесцвечивается, а при охлаждении вновь восстанавливается; при отрицательной — в желтый, при сомнительной — в оранжевый [11].
Мясо собаки, лошади, верблюда, медведя и кошки в большинстве случаев дает положительную реакцию на гликоген (экстракт из мяса кошки может окрашиваться также в оранжевый цвет); мясо овцы, козы, крупного рогатого скота, кролика и свиньи — отрицательную реакцию [11].
Показания этой реакции абсолютного значения для распознавания мяса разных видов животных не имеют. Так, например, мясо молодых животных всех видов дает положительную реакцию на гликоген, а взятое из области головы и шеи, как правило, — отрицательную [11].
Реакция преципитации:
Реакция преципитации основана на выпадении осадка под воздействием преципитирующей сыворотки на соответствующий антиген. Это наиболее точный метод определения видовой принадлежности мяса, даже если оно посолено или прошло тепловую обработку. Для постановки реакции необходимо иметь набор соответствующих преципитирующих сывороток, а также нормальную сыворотку крови животных различных видов [13].
Исследуемое мясо очищают от жира и соединительной ткани, измельчают и заливают свежеприготовленным и остуженным физиологическим раствором. На 1 часть мяса берут 10 частей раствора, настаивают в течение 3 часов, время от времени встряхивают, затем фильтруют через двойной бумажный фильтр, и на 1 мл профильтрованного экстракта добавляют 1 каплю азотной кислоты с удельным весом 1,3. После этого экстракт кипятят [13]. Нормальным является слабо опалесцирующий экстракт. Считается, что разведение его соответствует 1:1000. Совершенно прозрачный экстракт содержит слишком мало белковых веществ, и для постановки реакции необходимо изготовить новый, взяв меньше физиологического раствора на ту же порцию мяса, т. е. в соотношении 1:5 или 1:3. Помутнение экстракта или выпадение в нем осадка после кипячения указывает на повышенное содержание белка. Для постановки реакции такой экстракт необходимо разбавить физиологическим раствором до появления слабой опалесценции [1].
Реакцию производят в уленгутовской пробирке. На 1 мл экстракта осторожно пастеровской пипеткой наслаивают 0,5 мл сыворотки. Появление преципитационного кольца при просмотре в проходящем свете считается положительной реакцией. Для контроля ставят реакцию с нормальной сывороткой и физиологическим раствором.
По реакции преципитации бывает трудно различить мясо животных, стоящих близко в видовом отношении: например, мясо лося дает положительную реакцию с сывороткой для крупного рогатого скота, но у животных, далеко отстоящих друг от друга в видовом отношении, реакция преципитации дает весьма ценные показатели. Ею пользуются не только при определении вида мяса, но и при исследовании кровяных пятен на принадлежность тому или иному животному [14].
Для различия близких по видовому признаку животных рекомендуется при постановке реакции преципитации учитывать ее скорость. Например, сыворотка для крупного рогатого скота с экстрактом его мяса преципитирует значительно быстрее, чем с экстрактом из мяса лося [13].
ПЦР:
Согласно ГОСТу 34106-2017 «Продукция пищевая и сырье. Метод секвенирования фрагментов митохондриального генома животных и рыб для определения видовой принадлежности в однокомпонентной продукции» видовую принадлежность животных можно определить по ДНК с помощью ПЦР [3].
Отбор проб мяса или рыбы: кусок мяса (тушку рыбы) разрезают, из средней части вырезают фрагмент тканей массой 30-200 г. Мелкую рыбу берут на испытание целиком. Отбор проб готовой продукции и полуфабрикатов: на испытание отбирают 30-200 г продукции. Пробы отбирают в одноразовые плотные полиэтиленовые пакеты с застежкой-молнией или чистые емкости из стекла или пластика с герметично закрывающимися крышками [4].
Сущность метода заключается в определении нуклеотидной последовательности участка митохондриального генома разных видов животных и рыб и их сравнении с известными последовательностями для идентификации их видовой принадлежности [3].
Этапы:
- экстракция и очистка ДНК. На данном этапе осуществляется лизис клеток с последующей очисткой ДНК от балластных веществ (белков, полисахаридов и других соединений);
- ПЦР с парой праймеров, фланкирующей участок митохондриального генома в области cytB гена. На данном этапе осуществляется накопление копий определенной нуклеотидной последовательности генома;
- детекция ПЦР-продуктов методом электрофореза в агарозном геле для выявления специфической полосы амплифицированной ДНК и оценка концентрации ПЦР-продукта [7];
- секвенирование ПЦР-продукта, очищенного от невключившихся праймеров и дНТФ дидезоксинуклеотидным методом с флуоресцентными красителями;
- определение нуклеотидной последовательности путем разделения продуктов реакции секвенирования, очищенных от избытка дНТФ, флуоресцентно-меченых ддНТФ, праймера и солей, методом капиллярного электрофореза [8];
- сравнение полученной нуклеотидной последовательности фрагмента генома, выделенного из анализируемой пробы, с известными последовательностями из баз данных в целях его идентификации.
Для видовой идентификации сравнивают полученную в соответствии с разделом 14 нуклеотидную последовательность фрагмента генома с известными последовательностями из баз данных.
Таксономическая принадлежность (биологический вид, род) устанавливается на том уровне, который позволяют выявленные нуклеотидные различия.
Если полученная нуклеотидная последовательность 100% идентична аналогичным участкам генома определенного биологического вида, при этом гомология с последовательностями других видов более низкая - принимают, что геном принадлежит данному биологическому виду.
Если полученная нуклеотидная последовательность 100% идентична с аналогичными участками геномов сразу нескольких видов, устанавливают таксономическую принадлежность на том уровне, который позволяют выявленные нуклеотидные различия (например, биологический род).
Если полученная нуклеотидная последовательность не имеет 100%-ной идентичности ни с одной последовательностью из баз данных, проводят филогенетический анализ родства нуклеотидных последовательностей. Это позволяет отнести исследуемый геном к наиболее близкой таксономической группе (биологический вид, род) [4].
Определение йодного числа:
По значению этого показателя судят о преобладании в жире предельных или непредельных жирных кислот. Чем больше в жире содержится ненасыщенных кислот, тем выше его йодное число. Тугоплавкие жиры имеют низкое йодное число, легкоплавкие — высокое [6].
Жиры животных разных видов значительно отличаются один от другого по значению йодного числа. Если, например, бараний жир имеет повышенное йодное число, можно предположить, что к нему добавлен легкоплавкий жир, содержащий ненасыщенные жирные кислоты (конский или собачий). Низкое йодное число, например, свиного жира, свидетельствует о добавлении к нему жира, содержащего насыщенные жирные кислоты (бараний, козий, говяжий).
Для исследования предварительно готовят растворы: в 500 мл 90°-ного этилового спирта растворяют 25 г кристаллического йода; в таком же количестве спирта и такой же концентрации растворяют 30 г двухлористой ртути (сулемы). Растворы хранят в темных склянках и смешивают в равных количествах лишь за 1-3 суток до применения.
Для анализа в коническую колбу вносят 0,6 г жира (при исследовании жидких жиров навеску следует уменьшить), добавляют 15 мл хлороформа и осторожно взбалтывают. Приливают 25 мл раствора Гюбля, закрывают притертой пробкой, смоченной раствором йодистого калия (чтобы не улетучивался йод), снова осторожно взбалтывают и ставят в темное место при комнатной температуре на 18 часов. В течение этого времени колбу периодически встряхивают и наблюдают за состоянием содержимого. Если обнаружится помутнение (жир растворился не полностью), то добавляют еще 5-10 мл хлороформа. Если произойдет значительное ослабление окраски, то приливают точно отмеренное количество раствора Гюбля [6]. По истечении вышеуказанного времени в колбу вносят 15 мл 20%-ного раствора йодистого калия и 100 мл дистиллированной воды. Содержимое титруют при постоянном взбалтывании 0,1 н. раствором гипосульфита натрия до светло-желтого окрашивания. После этого добавляют 1 мл 1%-ного раствора крахмала и продолжают титрование до исчезновения окраски.
Параллельно ставят контрольный опыт, в котором используют те же реактивы, в том же количестве, но без жира.
Йодное число (X) определяют по формуле:
X = [(а - ах) К × 0,01269 × 100]/М,
где а — количество 0,1 н. раствора гипосульфита натрия, пошедшее на титрование контрольной пробы (без жира), мл; ах — количество 0,1 н. раствора гипосульфита натрия, пошедшее на титрование раствора с навеской жира, мл; К — поправка для пересчета на точный 0,1 н. раствор гипосульфита натрия; 0,01269 — количество йода, эквивалентное 1 мл 0,1 н. раствора гипосульфита натрия, г; М— масса навески жира, г [6].
Определение йодного числа протоплазматического жира, извлеченного из мышечной ткани. Этот метод может быть использован для определения видовой принадлежности мяса в случае отсутствия жировых отложений.
Мышцы пропускают через мясорубку, отвешивают 250-300 г фарша в несколько бюкс и помещают в сушильный шкаф на 1 час для удаления влаги. Высушенный фарш переносят в патрон из фильтровальной бумаги. Патрон помещают в экстракционный аппарат Сокслета и экстрагируют эфиром в течение нескольких часов. Затем эфир с извлеченным внутритканевым жиром переливают в предварительно взвешенную колбу и осторожно выпаривают в водяной бане [6] .
После удаления эфира колбу подсушивают и взвешивают вновь. По разности между массой колбы с жиром и пустой определяют массу измельченного эфиром жира. В дальнейшем определение йодного числа проводят так же, как указано выше.
Качественная реакция на гликоген:
Реакция основана на факте содержания этого полисахарида в мясе и его способности давать цветовую реакцию с йодом. Цвет раствора зависит от количества гликогена; для каждого вида животных характерен определенный уровень содержания гликогена.
Ход работы. Для проведения реакции берут навеску мяса (около 15 г), измельчают, помещают в колбу, добавляют 4-кратное количество дистиллированной воды (около 60 мл), кипятят 30 мин, образовавшийся бульон фильтруют через бумажный фильтр и охлаждают. Наливают в пробирку 5 мл фильтрата и добавляют 5-10 капель раствора Люголя [11].
При положительной реакции раствор окрашивается в вишнево-красный цвет, при отрицательной — в желтый, при сомнительной — в оранжевый. Посредством этой реакции гликоген обнаруживается при его содержании в мясе в количестве около 1 %, в говядине 0,3-0,7% (примерно такое же количество в баранине и свинине), конине около 1%, мясо собак 2%, медведей 4%.
Таким образом, мясо собаки, лошади, верблюда, медведя и кошки дает в большинстве случаев положительную реакцию на гликоген, учитывая его содержание на уровне вышеуказанной величины (экстракт из мяса кошки может окрашиваться как в вишнево-красный, так и в оранжевый цвета). Реакция на мясо овцы, козы, крупного рогатого скота, кролика, свиньи — отрицательная [11].
При проведении экспертизы следует учитывать, что мясо молодых животных дает положительную реакцию на гликоген независимо от вида животного, мясо же старых и больных, а также взятое из области шеи и головы — отрицательную [11].
Заключение
В практике ветеринарного врача бывают случаи, когда необходимо различить мясо овцы (козы) и собаки, мясо кролика (зайца) и кошки, крупного рогатого скота и лошадей. Дифференциальными признаками могут служить внешние показатели, наличие волос, анатомическое различие костей, физико-химические константы жира, качественное и количественное определение гликогена и реакция преципитации. Цвет и структура мышечной ткани не являются достаточно надежными критериями видовой принадлежности мяса, так как они варьируют в зависимости от пола, возраста, упитанности животных и других причин. Кроме того, при доставке на рынок тушек кроликов домашнего убоя и зайцев на одной из задних лапок ниже скакательного сустава должна быть оставлена неснятой шкурка (не менее 3 см).
Наиболее часто следственные органы привлекают ветеринарных экспертов для установления вида животного, от которого получено мясо, в таких случаях: при кражах, браконьерстве и фальсификациях.
При краже мяса или живых животных с последующим их убоем и разделкой на мясо обвиняемый выдает обнаруженное у него мясо одного вида животного за мясо другого. В таких случаях для более достоверного доказательства эксперту необходимо установить не только вид мяса, но и по мясу определить пол животного. Эти же особенности необходимо учитывать и в случаях установления вида мяса (лоси, олени) при браконьерстве. Видовая фальсификация мяса, т. е. замена мяса одного вида животного мясом другого вида, имеет место в сети общественного питания, когда, например, мясо более ценных видов подменяется мясом других, менее ценных видов животных. На рынках могут иметь место случаи реализации менее ценного мяса одного вида животных за мясо другого вида (конина вместо говядины, козлятина вместо баранины). Особые затруднения в определении вида мяса у эксперта возникают в тех случаях, когда для исследования в качестве объекта вещественного доказательства доставляются мелкие кусочки мяса, а не целые туши или четвертины.
Список литературы
1. Боровков М.Ф. Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии и стандартизации продуктов животноводства: Учебник/Под ред. проф. М.Ф. Боровкова. 4-е изд., стер.-СПб.: Издательство «Лань», 2013.- 480 с.: ил. – (Учебники для вузов. Специальная литература).
2. Видовая принадлежность мяса. https://testslab.ru/stati/vidovaya-prinadlezhnost-myasa/ (12.01.2020);
3. ГОСТ 34106-2017 Продукция пищевая и сырье. Метод секвенирования фрагментов митохондриального генома животных и рыб для определения видовой принадлежности в однокомпонентной продукции. http://docs.cntd.ru/document/1200146263 (12.01.2020);
4. ГОСТ 31719-2012 Продукты пищевые и корма. Экспресс-метод определения сырьевого состава (молекулярный). http://docs.cntd.ru/document/1200098767 (12.01.2020);
5. Жиры показатели преломления. https://chem21.info/info/937714/ (12.01.2020);
6. Йодное число. https://himfaq.ru/encyklopedia/20180317-yodnoe-chislo/ (12.01.2020);
7. Коновалова Е.Н., Вавилова О.В., Гладырь Е.А., Зиновьева Н.А. Оценка чувствительности и специфичности метода ПЦР для видовой идентификации коров, свиней и кур/ Е.Н. Коновалова, О.В. Вавилова, Е.А. Гладырь, Н.А. Зиновьева// Достижения науки и техники АПК. - №6. - 2012. - 17-23с.;
8. Коновалова Е.Н., Гладырь Е.А., Зиновьева Н.А. Мультиплексная ДНК-идентификация видового происхождения животноводческой продукции/ Е.Н. Коновалова, Е.А. Гладырь, Н.А. Зеновьева// Сельскохозяйственная биология. - №3. - 2011. - 23-24с.;
9. Лыкасова И.А., Крыгин В.А., Безина И.В., Солянская И.А. Ветеринарно-санитарная экспертиза сырья и продуктов животного и растительного происхождения. Лабораторный практикум/ И.А Лыкасова, В.А.Крыгин, И.В.Безина, И.А. Солянская. - 4-е изд. стер. - СПб.: Издательство «Лань», 2015.- 148 с.
10. Малышева Е.С., Овчаренко Н.Д., Мезенцев С.В. Оценка видовой принадлежности мышечной ткани на основе микроструктурного анализа/ Е.С. Малышева, Н.Д. Овчаренко, С.В. Мезенцев// Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - №3. - 2015. - 45-47;
11. Определение содержания гликогена в мышцах. http://www.refsru.com/referat-2790-4.html (12.01.2020);
12. Определение температуры плавления животных жиров. https://www.intertech-corp.ru/docs/TA_articles/lard.html#::text (12.01.2020);
13. Определение видовой принадлежности мяса с помощью реакции преципитации. https://testslab.ru/stati/opredelenie-vidovoj-prinadlezhnosti-myasa/ (12.01.2020);
14. Пронин В.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии и стандартизации продуктов животноводства. Практикум: учебное пособие для ВО/ В.В. Пронин, С.П. Фисенко. - 4-е изд., стер. -СПб.: Издательство «Лань», 2020.- 240 с.
15. Серегин И.Г., Никитченко В.Е., Рысцова Е.О. Идентификация мяса и других продуктов убоя животных при ветсанэкспертизе/ И.Г. Серегин, В.Е. Никитченко, Е.О. Рысцова// Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство. - №9. - 2015. - 56-58с.