Физиология возбудимых тканей
 Скачать 102.08 Kb.
|
|
ФИЗИОЛОГИЯ ТЕРМОРЕГУЛЯЦИИ. 34. Измерение температуры тела человека. Для работы необходимо: ртутные медицинские термометры и электротермометры, антисептические растворы для дезинфекции медицинских термометров и датчиков электротермометра, секундомер. Объект исследования - человек. Ход работы. Медицинский термометр встряхивают и помещают в подмышечную впадину на 30 с, записывают показания и встряхивают снова. Продолжают регистрацию температуры, таким образом, через 1; 1.5; 2; 2.5 мин и так до тех пор, пока показания термометра не будут постоянны. Определив необходимое время измерения температуры в подмышечной впадине, дезинфицируют термометр в антисептическом растворе и измеряют температуру в ротовой полости. Для этого коней термометра, заполненный ртутью помещают под язык и закрывают рот. После этого несколько раз (3-4 раза) прополаскивают рот холодной водой и повторяют измерение температуры в ротовой полости. Закончив работу с ртутным термометром, переходят к измерению температуры электротермометром. Поместив датчик электротермометра в подмышечную впадину, регистрируют показания термометра через каждые 10 с до тех пор, пока не будут получены постоянные результаты. 35. Роль кровообращения в поддержании температуры тела. Необходимо: электротермометр, сфигмоманометр. Объект – человек. Ход работы: испытуемый кладет руку на стол и держит ее в спокойном состоянии, не напрягая. Ему на плечо накладывается от сфигмоманометра, к концу одного из пальцев той же руки прикладывают датчик электротермометра и измеряют исходную температуру пальца. Затем в манжетку накачивают воздух, чтобы давление в ней достигло 180-200 мм рт. ст. При таком давлении в манжетке кровеносные сосуды плеча сдавливаются, и кровообращение в области плеча и кисти нарушается. По показанию сфигмоманометра следят, чтобы давление в манжетке во время опыта не снижалось. В течение 10 мин. регистрируют электротермометром температуру пальца. Затем выпускают воздух из манжетки, и кровообращение в области предплечья и кисти восстанавливается. Продолжая регистрировать температуру конца пальца, отмечают время восстановления его исходной температуры. 36. Измерение температуры на различных участках тела. Влияние теплоизоляции. Необходимо: электротермометры, термометры, вентилятор, кушетка, одеяло, простыня. Ход работы: Испытуемый в шортах или купальнике ложиться на кушетку. На различных участках тела фиксируют термодатчики, с помощью которых измеряют исходную температуру кожи. Затем испытуемый ложится, укрывается одеялом и через некоторое время вновь измеряют температуру. Повторить с вентилятором. В норме температура: подмышки – 36.6; лоб – 33.5; ФИЗИОЛОГИЯ КРОВИ 37. Определение СОЭ по Панченкову. Необходимо: прибор Панченкова, часовое стекло, стерильный скарификатор, вата, 5% раствор цитрата натрия, спирт, йод, эфир. Объект: человек. Ход работы: капилляр промывают 5% р-ом цитрата натрия. Затем набирают цитрат натрия до метки Р (реактив) на уровне 50мм и выдувают его на часовое стекло. Затем в тот же капилляр набирают кровь из пальца человека до метрии К (кровь) дважды. Прокол должен быть глубоким, капилляр держать горизонтально, погрузив его кончик в каплю крови. Обе порции выпускают на часовое стекло, смешивая с имеющимися там цитратом натрия. Полученную таким образом на часовом стекле смесь крови с цитратом натрия в отношении 4:1 набирают в капилляр до метки 0 и ставят в штатив. Через час смотрят, какова высота в мм образовавшегося верхнего столбика плазмы в капилляре. Его величина и является СОЭ. В норме = 4-10 мм/ч. 38. Подсчет количества эритроцитов. Для подсчета форменных элементов крови, взятую из пальца, разбавляют в специальных смесителях. Для подсчета числа эритроцитов пользуются счетной камерой. Ход работы: 1.Перед началом работы необходимо разобраться в устройстве сетки счетной камеры. Для этого помещают камеру под микроскопом и сначала на малом, а затем под большим увеличением рассматривают сетку, находят малые квадратики и большие квадраты. 2.В предварительно высушенную чистую коническую пробирку точно отмеривают 4 мл физ.р-ра и осторожно выдувают в нее 0,02 мл капиллярной крови. 3.Выпустив предварительно наружу 1-2 капли, наносят капельку на сетку камеры, предварительно путем притирания плотно закрытую покровным стеклом. На предметное стекло в том месте, где на нем расположена сетка, поместите покровное стекло и тщательно прижмите его большими пальцами рук. До появления ньютоновых колец-окрашенных в цвет радуги полосок. Поместите предметное стекло на столик микроскопа, найдите при малом увеличении сетку. Затем, установив большое увеличение, производите подсчёт. 39. Подсчет количества ретикулоцитов. 40. Определение дегенеративных форм эритроцитов. 41. Дифференцировка клеточных элементов костного мозга. Особенности строения клеток , выявляемых при окраске и мокроскопии , позволяют отличать их друг от друга. При описании клетки следует обращать внимание на их размер, строение ядра и цитоплазмы, их отношение, характер зернистости. 42. Нормальная миелограмма. Для клинико-лабораторной диагностики в детской гематологии совершенно необходимо исследование клеточной формулы пунктатов костного мозга. При оценке пунктата костного мозга, кроме количества подсчитанных клеток, необходимо учитывать и соотношение между молодыми и более зрелыми формами нейтрофилов- так называемый костно-мозговой индекс созревания нейтрофилов. В норме этот индекс меньше единицы и, по Г.А.Алексееву, равен 0,6-0,8. Индекс определяется по следующей формуле: Промиелоциты+ миелоциты + метамиелоциты ИСН= Палочкоядерные+ сегментоядерные Индекс созревания эритробластов – это соотношение количества гемоглобиносодержащих нормобластов к количеству всех клеток эритробластического ряда: Полихроматофильные+ оксифильные эритробласты ИСЭ= Эритробласты + пронормобласты+ полихроматофильные+ оксифильные эритробласты В норме этот индекс по Г.А.Алексееву равен 0,8. Наличие большого количества ретикулоцитов позволяет заподозрить скрытое кровотнчение. 43. Определение количества гемоглобина. Производится калориметрическими способами. Гематиновый метод Сали основан на образовании р-ра коричневого цвета при взаимодействии гемоглобина с хлористоводородной кислотой. Прибор представлен штативом, в который вставлены 3 пробирки. Две крайние запаяны и содержат р-р гематина; средняя градуирована, нужна для исследования. Прилагается пипетка и стеклянная палочка. Необходимо: гемометр Сали, пипетка, скарификатор, вата, 0.1% р-р HCI, спирт, эфир, йод, вода. Объект: человек. Ход работы: В среднюю пробирку гемометра наливают 0,1% р-р HCI до нижней метки. Пипеткой берут 20 мкл крови из пальца, и, обтерев кончик ее ватой, тотчас выдувать кровь на дно пробирки так, чтобы верхний слой кислоты оставался не окрашенным. Не вынимая пипетку, споласкивают ее кислотой. После этого содержимое пробирки перемешивают, ударяя пальцами по дну пробирки, и ставят в штатив на 5-10 минут. Это время необходимо для полного превращения гемоглобина в солянокислый гематин. Затем к содержимому пробирки добавляют по каплям воду до тех пор, пока цвет полученного р-ра не будет совершенно одинаков с цветом стандарта боковых пробирок. Цифра, стоящая на уровне полученного р-ра, показывает содержание гемоглобина в исследуемой крови. 44. Расчет цветного показателя. ЦП – это соотношение между количеством гемоглобина крови и числом эритроцитов. Позволяет определить степень насыщения эритроцитов гемоглобином. ЦП находят путем деления количества гемоглобина в 1 мкл (в г/л), на число, состоящее из первых 2-х цифр количества эритроцитов с последующим умножением полученного результата на коэффициент 0,3. ЦП = гемоглобин, г/л * 0,3 /число эритроцитов (первые 2 цифры) В норме = 0,86 – 1,05 Если ЦП ниже 0,8 – гипохромная анемия, если 0,8-1,1 – нормохромная, гиперхромная – выше 1,1. 45. Определение осмотической резистентности эритроцитов. Ход работы: в штативе устанавливают 9 пробирок. Пипетку несколько раз промывают тем реактивом, который предстоит отметить. Сначала вносят в пробирки 1% р-р хлорида натрия, затем воду. См. таблицу. В каждую пробирку вносят по капле цитратной крови. Перемешав кровь, оставляют пробирки на час, затем смотрят результат. Если гемолиза не произошло, эритроциты осядут на дно пробирки, а над ними будет чистый раствор. Если произошел частичный гемолиз, излившийся гемоглобин придает раствору красный оттенок. При полном гемолизе жидкость в пробирке будет однородного красного цвета, а на дне ее не окажется эритроцитов. Отмечают, в какой пробирке гемолиз только начался (обычно при 0,5% - 5 пробирка), а в какой произошел полностью (0,4% - 6 пробирка). 46. Виды гемолиза эритроцитов. Необходимо: штатив с 5 пробирками, пипетки, физиологический р-р, вода, 0,1% хлорида HCI, р-р аммиака, 5 мл крови в пробирке. Ход работы: 1) В штатив ставят 4 пробирки, в каждую из которых наливают по 3 мл физ. р-ра, воды, р-р НCI и аммиака. В 5ой пробирке кровь. 2) Во все 4 пробирки вносят пипеткой по 2 капли из 5-й пробирки. Оставшуюся в 5й пробирке кровь помещают на 1час морозильную камеру. Затем пробирку вынимают и оттаивают в стакане с горячей водой. 3) рассматривают содержимое всех 5и пробирок, сравнивают. 47. Подсчет количества лейкоцитов. 48. Дифференцировка видов лейкоцитов. В окрашенных мазках периферической крови дифференцировать все лейкоциты. При этом учитывать размеры видимых клеток под микроскопом, насыщенность цитоплазмы, наличие или отсутствие гранул, особенности форм ядра. 49. Подсчет лейкоцитарной формулы. Начертить квадрат 10 на 10: Э М С П П Э С С С Э. Подсчет рекомендуется проводить всегда в одном порядке: половину клеток считать в верхней, половину – в нижней части мазка, не заходя на самый край и середину, по зигзагу (3-4 поля зрения вдоль мазка, 3-4 поля под правым углом к середине мазка, затем 3-4 поля в сторону параллельно краю, вновь под прямым углом вверх и т.д. в одну сторону). Считаем в 100 кл. 50. Развитие и функции иммунокомпетентных клеток. Взаимодействие клеток в иммунном ответе. 51. Демонстрация мазков с микробным фагоцитозом нейтрофилов. Подсчет фагоцитарного числа и индекса. 52. Работа с картой оценки Т- и В-системы иммунитета человека. Для оценки Т-системы иммунитета пользуются следующими методами: 1.Метод «спонтанных» розеток- определяют количество Т-лимфоцитов в крови 2.Реакция бласттрансформации лимфоцитов in vitro под влиянием ФГА или в микст культуре. 3.Определение динамики бласттрансформации. 4.Оценка продукции лимфоцитами периферической крови гуморальных медиаторов клеточного иммунитета 5.Постановка кожных реакций гиперчувствительности замедленного типа на широко распространенные антигены 6.Контактная аллергия к динитрохлорбензолу. 7.Отторжение аллогенного кожного лоскута 8.Биопсия лимфотических узлов и гистологическая оценка тимусозависимых областей вилочковой железы. Для оценки В- системы иммунитета применяется несколько методов: 1.Определение В-лимфоцитов в крови. 2.Определение в крови уровня иммуноглобулинов. 3.Определение наличия и уровня изогемагглютининов в сыворотке крови, а также естественных антител к широко распространенным бактериям и вирусам. 4.Стимуляция биосинтеза иммуноглобулинов В-лимфоцитами in vitro. 5.Исследование антителогенеза после активной иммунизации несколькими убитыми вакцинам. 6.Исследование катаболизма иммуноглобулинов в организме. 7.Биопсия лимфотических узлов, костного мозга, участков слизистой оболочки кишечника 8.Кожные реакции, выявляющие гиперчувствительность немедленного типа. 53. Определение групп крови. Для проведения определения группы крови требуются:
На предметное стекло помещают отдельно (не смешивая) по капле стандартной сыворотки I, II, III групп. Добавляют к каждой капле 2-3 капли крови, групповую принадлежность которой мы хотим определить. ! Нельзя допустить попадания одной сыворотки к другой, иначе р-р будет недостоверен, поэтому перемешивание крови и сыворотки надо производить чистыми стеклянными лопаточками (новой для каждой капли). Через 2-4 минуты добавляем к каждой капле 1-3 капли р-ра NaCl 0,9% для лучшей оценки. Агглютинация наступила, если заметны невооруженным глазом эритроциты, склеившиеся между собой в виде комочков. Принцип определения группы крови.
Примечание: + - видна агглютинация (склеившиеся эр.); “-“ – нет агглютинации. 54. Определение резус-фактора. Проведение определения резус-фактора крови экспресс-методом: Для проведения требуются:
На предметном стекле делаем пометку К (контроль) и Rh(резус-фактор). Рядом с К капаем 4-6 капель контрольной сыворотки, а рядом с Rh 4-6 капель стандартной антирезус сыворотки так, чтобы они не смешивались.
Рядом с каждой капель сывороток капаем 2-3 капли крови. Смешиваем контр сыворотку с кровью (обязательно первой, чтобы контроль был чист!), затем – стандартную сыворотку с кровью. К каждой капле добавляем 1-2 капли физиологического р-ра – для лучшего определения. Покачивая предметное стекло, определяем наличие или отсутствие агглютинации. 55. Современные правила переливания крови. 1) определить показания и противопоказания к переливанию, собрать трансфузиологический анамнез 2) определить гр. крови и резус-фактор пациента 3) выбрать соответствующую кровь и проверить срок годности, паспорт флакона, герметичность и внешний вид 4) перепроверить гр. донора (из флакона) по системе АВО 5) провести пробу на индивид. совместимость по системе АВО 6) провести пробу на индивид. совместимость по резус-фактору 7) провести биологическую пробу (3раза с интервалом в 3 мин. больному внутривенно струйно вводят 20-25 мл крови) 8) гемотрансфузия со скоростью 44-60 капель в мин. 9) при этом контролировать состояние пациента 56. Определение времени свертывания крови. Время свертывания зависит от – состояния свертывающей и противосвертывающей систем, состояния сосудистой стенки, числа тромбоцитов и их способности к агрегации и адгезии. Необходимо: стерильный скарификатор, фильтровальная бумага, разграфленная на 16 секторов, песочные часы, вата, спирт, йод. Объект – человек. Ход работы: проколоть палец. Выступившую каплю крови стирают ватой и затем через каждые 30 сек кровоточащую точку пальца прикладывают к очередному сектору фильтровальной бумаги так, чтобы в каждом секторе был отпечаток только одной капли. Отметить сколько секторов имеют следы крови. Определить длительность кровотечения и сравнить с нормой (4 минуты). 57. Анализ тромбоэластограммы. 58. Анализ электрокоагулограммы. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||