билеты. 1 ч.30 билетов. Обезболивание операций у лошадей

• Название: Обезболивание операций у лошадей
• Анкор: билеты
• Дата: 12.08.2022
• Размер: 220.29 Kb.
• Имя файла: 1 ч.30 билетов.docx
• Тип: Документы; #644789
• страница: 10 из 12

Предрасполагающие факторы: недостаток витаминов А, Д, Е, селена, йода, кобальта, марганца. Избыток протеина, неблагоприятные условия содержания, отсутствие моциона, сокращенный или удлиненный период использования животных, многоплодие, патологические роды, генотип, осеменение животных, больных хроническим субклиническим эндометритом, чрезмерная эксплуатация животных.

Патогенез. У коров на 2-3 день начинается гнилостное разложение последа, аутоинтоксикация организма, нарушается жвачка, снижается аппетит, происходит расстройство пищеварения, повышается температура. Из половых органов выделяются истечения с ихорозным запахом, в матке протекает воспалительный процесс. У кобыл через несколько часов задержание последа вызывает угнетение, подъем температуры, исчезает аппетит; к концу 1х суток возможно развитие септикопиемии. У свиней развивается септикопиемия, у сук и кошек задержание последа осложняется развитием сепсиса и метрита.

Диагноз. При полном задержании последа из наружных половых органов выступает красный или серо-красный тяж. Поверхность его бугристая у коро­вы (плаценты) и бархатистая у кобылы. Иногда наружу свешиваются только лоскуты мочевой и околоплодной обо­лочек без сосудов в виде пленок серо-бе­лого цвета. При сильно выраженной атонии матки в ней остаются все обо­лочки (обнаруживаются при пальпации матки).

Для установления неполного задер­жания последа необходимо тщательно его исследовать. Плаценту осматрива­ют, пальпируют и, если имеются показа­ния, проводят микроскопический и бактериологический ее анализ.

Выделившийся послед расправляют на столе или фанере. Нормальный пос­лед кобылы имеет равномерную окраску, бархатистую плацентарную и гладкую аллонтоидную поверхность. Весь алланто-амнион светло-серого или беловатого цвета, местами с перламутровым оттен­ком. Облитерированные сосуды, образу­ющие большое количество извивов, со­держат немного крови. Оболочки на всем протяжении одинаковой толщины (от­сутствие соединительнотканных разра­щений, отеков). Толщина оболочек лег­ко определяется пальпацией. Чтобы определить, целиком ли вы­делился послед, ориентируются по со­судам плаценты, представляющим со­бой замкнутую сеть, окружающую весь плодный пузырь. Во вр родов пред­лежащий участок оболочек разрывает­ся вместе с проходящими по нему сосу­дами. По обрывам сосудов и судят о це­лостности всей оболочки: при сближе­нии разорванных краев их контуры должны дать совпадающую линию, а центральные концы разорванных сосу­дов при соприкосновении их с перифе­рическими отрезками — образовать не­прерывную сосудистую сеть. Если, на­пример, в полости матки остался учас­ток хориона, это легко выявляется при расправлении сосудистой оболочки по несовпадающим краям разрыва и по резко прерывающимся сосудистым стволам. По местоположению обнару­женного в сосудистой оболочке дефек­та можно определить, в каком месте матки осталась оторвавшаяся часть последа. В дальнейшем при пальпации рукой полости матки удается прощу­пать и остаток последа.
4. Гастриты животных. Этиология, диагностика, лечение и профилактика.
аще всего гастриты вызываются скармливанием недоброкачественных продуктов, подбиранием животными отходов на улице и т.д. Под влиянием микробов в кормах образуются токсические вещества, действующие на нервно-мышечный аппарат желудка. Воспалительный процесс может носить различный характер, но чаще встречается катаральное воспаление слизистой оболочки желудка.

Высшим органом регуляции нервной деятельности всех органов и тканей в организме является кора головного мозга. Раздражение интеро- и экстрорецепторов создает в высших органах центральной нервной системы такое соотношение процессов возбуждения и торможения, которое определяет реакцию каждого органа. Вегетативная нервная система является частью единой регуляторной системы. На основе учения о кортико-висцеральных взаимоотношениях установлена тесная связь коры больших полушарий головного мозга с деятельностью внутренних органов. Известно также, что кортикальные импульсы могут изменить деятельность внутренних органов.

В зависимости от реакции нервной системы на раздражение желудка под влиянием фактора, вызвавшего это раздражение, происходит изменение моторной функции со спазмом пилоруса и рефлекторной рвотой. Секреторная функция желудка нарушается чаще в сторону увеличения секреции соляной кислоты.

Катаральное воспаление характеризуется выделением большого количества слизи, мешающей кормовым массам соприкасаться со слизистой оболочкой. Кормовые массы, изолированные от действия желудочного сока, подвергаются процессам брожения и гниения с образованием газов, органических кислот и продуктов распада белка. Вслед за изменением секреторной и моторной функций нарушается эвакуаторная функция желудка. Задержка пищи в желудке ведет к расстройству функции кишечника, а образующиеся при этом токсические вещества оказывают общее действие на центральную нервную систему.

Диагноз

Основанием для диагноза служат, прежде всего, анамнестические данные о характере кормления, количестве корма и составе кормового рациона, УЗИ диагностика, ОАК и БАК. Также важна информация о перенесении в недавнем прошлом инфекционных заболеваний и условиях содержания (при нерегулярных и редких прогулках у собаки происходит рефлекторное повышение кислотности желудочной секреции, ведущее к воспалению слизистой оболочки желудка).

Лечение хронического гастрита

Прежде всего,  надо устранить причины, вызвавшие гастрит. В первый день собаку следует выдержать на голодной диете, а затем давать легкопереваримые корма малыми порциями. Количество корма по мере выздоровления увеличивается. Чистую  воду дают без ограничения.

5. Проведите экспертизу меда для исключения фальсификации.
Суммарное содержание в меде глюкозы и фруктозы принято обозначать инвертированным сахаром. Количество инвертированного сахара в меде менее 70 % свидетельствует о его фальсификации. Однако нормальное количество инвертированного сахара не гарантирует натуральность продукта.

Для определения содержания инвертированного сахара из исследуемого меда готовят 10%-ный водный раствор. Затем из данного раствора приготавливают 0,25%-ный раствор. Для этого в мерную колбу на 200 мл отмеривают 5 мл 10%-ного раствора меда, доводят до метки водой и перемешивают.

В колбу наливают 10 мл 1%-ного раствора красной кровяной соли К₃Fe(CN)₆, 2,5 мл 10%-ного раствора едкого натра, 5 мл 0,25%-ного раствора меда и одну каплю 1%-ного раствора метиленовой сини. Смесь нагревают до кипения и при слабом постоянном кипении титруют испытуемым 0,25 %-ным раствором меда до исчезновения синей (а к концу реакции слегка фиолетовой) окраски.

Восстановление метиленовой сини редуцирующими веществами меда происходит с некоторым опозданием, поэтому титрование следует вести со скоростью не более одной капли через 2 секунды. Возобновление окраски после остывания смеси в расчет не принимается. Титрование проводят 2-3 раза и выводят среднее значение. Расхождение между параллельными исследованиями не должно превышать 1%.

Если содержимое колбы обесцвечивается без титрования, это указывает на содержание в исследуемом мёде инвертированного сахара более 81,2%. Содержание инвертированного сахара в меде определяют по таблице согласно приложению 4.

Для определения в меде примеси искусственного инвертированного сахара пользуются реакцией, основанной на том, что при превращении тростникового (свекловичного) сахара в инвертированный посредством кислот, часть левулезы (плодового сахара) разрушается, при этом образуется оксиметилфурфурор, растворимый в воде, который в присутствии концентрированной соляной кислоты и резорцина дает вишнево-красное окрашивание.

В фарфоровую ступку берут 4-6 г меда, добавляют 5-10 мл эфира и тщательно растирают пестиком, эфирную вытяжку сливают в фарфоровую чашку (часовое стекло) и добавляют 5-6 кристалликов резорцина (его можно вносить в ступку в процессе приготовления вытяжки). Эфир выпаривают при комнатной температуре. Затем на сухой остаток наносят 1-2 капли концентрированной соляной кислоты.

Учет реакции:

зеленовато-грязный или желтый цвет – отрицательная;

оранжевая или слабо-розовая окраска – слабо положительная (наблюдается при прогревании меда);

красный, вишнево-красный, оранжевый, быстро переходящий в красный цвет – положительная (мед содержит примесь искусственно инвертированного сахара).

22.2. Определение примеси сахарозы (тростникового сахара).

При фальсификации меда сахарозой ухудшается органолептика, понижается диастазная активность, содержание минеральных веществ и инвертированного сахара, а количество тростникового сахара повышается. Следовательно, для обнаружения данного вида фальсификации необходимо определить органолептические показатели, диастазную активность, содержание золы, тростникового и инвертированного сахара, оптическую активность.

22.3. Определение сахарного меда.

Сахарный (подкормочный, экспрессный) «мед» получается в результате кормления пчел сахарным сиропом. Такой мед является фальсификатом.

Свежеоткаченный сахарный мед имеет жидкую консистенцию, светлую окраску, слабовыраженный аромат. Свойственная натуральному меду терпкость отсутствует.

Химические показатели для сахарного меда следующие:

общая кислотность не более одного нормального градуса;

зольность ниже 0,1%;

содержание тростникового сахара выше 5%.

22.4. Определение брожения меда.

Данный вид порчи является следствием хранения меда с содержанием воды выше 21%. Мед обладает выраженной гигроскопичностью, поэтому хранение его в негерметичной таре при условии высокой влажности окружающего воздуха ведет к повышению содержания в нем воды, осмофильные дрожжи активизируются, мед начинает бродить.

В начале брожения отмечают усиление аромата, затем появляется кисловатый запах, усиливающийся при нагревании меда. Мед вспучивается, на поверхности появляется пена, а в массе меда пузырьки газа. При микроскопировании такого меда обнаруживаются возбудители брожения – дрожжи.

22.5. Определение падевого меда.

Падевый мед определяют по двум реакциям:

спиртовая реакция. В пробирке смешивают 1 см³водного раствора меда 1:1 и 8-10 см³этилового ректификованного спирта массовой долей 96%. Содержимое пробирки перемешивают. Помутнение жидкости и выпадение хлопьев указывает о присутствии пади в меде;

реакция с ацетатом свинца. Приготовление раствора ацетата свинца массовой концентрации 250 г/дм³: 25 г ацетата свинца смешивают в мерной колбе с дистиллированной водой до общего объема 100 см³. В пробирку наливают 2 см³водного раствора меда в соотношении 1:1, добавляют 2 см³воды и 5 капель раствора ацетата свинца массовой концентрации 250 г/дм³, тщательно перемешивают и ставят в водяную баню при температуре 80-100 °C на 3 мин. Образование рыхлых хлопьев, выпадающих в осадок, свидетельствует о положительной реакции на падевый мед.

22.6. Определение примеси свекловичной (сахарной) патоки.

Для определения наличия в меде свекловичной (сахарной) патоки из исследуемого меда готовятся 50 % раствор. 10 г меда растворяют в 20 см³дистиллированной воды.

Затем готовят раствор нитрата серебра массовой концентрации 50 г/дм³. 5 г нитрата серебра помещают в колбу вместимостью 100 см³и доливают дистиллированной водой до метки.

К 5 см³водного раствора меда, приготовленного в соотношении 1:2, прибавляют 5-10 капель нитрата серебра массовой концентрации 50 г/дм³.

Помутнение смеси и появление осадка после внесения нитрата серебра указывает о присутствии в меде свекловичной патоки.

22.7. Определение крахмальной патоки.

Для определения наличия в меде крахмальной патоки готовят раствор меда согласно части второй подпункта 22.6 настоящего пункта.

Затем готовят раствор бария хлорида массовой концентрации 100 г/дм³. 10 г бария хлорида помещают в колбу вместимостью 100 см³и доливают дистиллированной водой до метки.

К 5 см³профильтрованного через фильтр водного раствора меда, приготовленного в соотношении 1:2, по капле вносят раствор бария хлорида массовой концентрации 100 г/дм³.

Помутнение и выпадение белого осадка после внесения раствора бария хлорида свидетельствует о присутствии крахмальной патоки.

22.8. Определение крахмала и муки.

Для определения наличия в меде крахмала и муки готовится раствор меда согласно части второй подпункта 22.6 настоящего пункта.

Затем 5 см³раствора меда нагревают в пробирке до кипения, охлаждают до комнатной температуры и прибавляют 3-5 капель 0,1 н раствора йода.

Появление синей окраски свидетельствует о присутствии в меде крахмала или муки.

22.9. Определение прогревания меда.

Мед нагревают для декристаллизации, прекращения брожения и при фальсификациях. При этом ухудшается органолептические показатели (мед темнеет, ослабевает аромат, появляется привкус карамели), снижается ферментативная активность и бактерицидность, содержание оксиметилфурфурола увеличивается. Исходя из вышеизложенного, для определения порчи меда нагреванием следует определять органолептические показатели, ферментативную активность, содержание оксиметилфурфурола и посторонних примесей, согласно настоящим Правил и действующим ТНПА.
Экзаменационный билет

№13

1. Трихомоноз крупного рогатого скота: клинико - эпизотоологические особенности и лечебно - профилактические мероприятия.
Эпизоотологические данные. Источником возбудителя трихомоноза являются больные животные. Возбудитель трихомоноза передается обычно быками после случки с больными коровами, а также при искусственном осеменение коров спермой больных трихомонозом быков и необработанными инструментами. Возможна передача возбудителя трихомоноза, через предметы ухода за животными, подстилку. Источниками инвазии у животных служат околоплодные воды, абортированные плоды и их оболочки. Особенно опасны быки-производители, которые являются паразитоносителями без наличия у них клинической картины болезни. Переносчиками трихомоноза могут быть зоофильные насекомые, например мухи, в организме которых возбудители трихомоноза остаются живыми в течение 5-8 часов

Лечение. Больным животным назначают лекарственные препараты, вызывающие сокращения матки (окситоцин, питуитрин, прозерин и др.) и вызывающие удаление из матки ее воспаленного содержимого. Для орошения слизистой оболочки матки, назначают 8 – 10% -ный раствор ихтиола на глицерине; аммарген в разведении 1:20 000; хинозол, флавакридин или трипанфлавин 1:1000, фурациллин 1:5000, йод на физиологическом растворе, нитрофурановую смесь (ФРЗФ). Для лечения применяют антибиотик трихомоноцид. Больным быкам вводят нейротропные препараты, одновременно обрабатывая полость препуция ихтиоловой и трипафлавиновой мазями, раствором перекиси водорода и др. Положительный терапевтический эффект у быков дает метронидазол (трихопол), внутримышечно вводят 1%-ный раствор трихопола в дозе 80-150мл. Применяется лечение трихополом(метронидозол) в дозе 50мг/кг подкожно и 10мг/кг внутримышечно (3-5инъекций). Для подкожного введения используют изотонический раствор натрия хлорида, внутримышечного –смесь глицерина с водой в соотношении 1:3. Ветеринарные специалисты 2-%-ным раствором трихопола на изотоническом растворе натрия хлорида орошают полость препуциального мешка. После проведенного лечения через 8-10 дней животных исследуют на трихомоноз и при обнаружении трихомонад лечение повторяют. Быков –производителей, подвергшихся лечению, проверяют на трихомоноз в течение 2 месяцев ежедекадно. При отрицательных результатах всех исследований быков используют для получения спермы и исследуют их на трихомоноз не реже одного раза в квартал. Профилактика. Основным профилактическим мероприятием при трихомонозе является искусственное осеменение коров спермой от здоровых быков. Техники по искусственному осеменению должны строго соблюдать существующие ветеринарно-санитарные правила искусственного осеменения животных. При поступлении в хозяйство, ЛПХ, КФХ животных из других хозяйств их карантинируют и исследуют на трихомоноз. Во время летне-пастбищного содержания не допускать контакта с посторонними животными. Места, где стояли больные животные, подвергают дезинвазии. С этой целью используют 5%-ный раствор креолина, горячий 3%-ный раствор кальцинированной соды или 2%-ный раствор едкого натра. После проведенной дезинвазии полы и станки обрабатывают 20%-ной взвесью свежегашеной извести. Запрещается вывоз из неблагополучного по трихомонозу хозяйства коров и молодняка старше 6-месячного возраста.
2. Организация работы по оформлению ветеринарных сопроводительных документов.

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА

                                   РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

                                                      ПРИКАЗ

                                       от 16 ноября 2006 года N 422

Об утверждении Правил организации работы по выдаче

ветеринарных сопроводительных документов

В соответствии с Законом Российской Федерации от 14 мая 1993 года N 4979-1 "О ветеринарии" (Ведомости Съезда народных депутатов Российской Федерации и Верховного Совета Российской Федерации, 1993, N 24, ст.857; Собрание законодательства Российской Федерации, 2002, N 1 (ч.I), ст.2; 2004, N 27, ст.2711; N 35, ст.3607; 2005, N 19, ст.3752; 2006, N 1, ст.10), постановлениями Прави­тельства Российской Федерации от 24 марта 2006 года N 164 "Об утверждении Положения о Мини­стерстве сельского хозяйства Российской Федерации и о признании утратившими силу некоторых решений Правительства Российской Федерации" (Собрание законодательства Российской Федера­ции, 2006, N 14, ст.1543), от 30 июня 2004 года N 327 "Об утверждении Положения о Федеральной службе по ветеринарному и фитосанитарному надзору" (Российская газета N 150, 15.07.2004; Соб­рание законодательства Российской Федерации, 2005, N 33, ст.3421; 2006, N 22, ст.2337; N 26, ст.(:)2846) и от 8 апреля 2004 года N 201 "Вопросы Федеральной службы по ветеринарному и фито­санитарному надзору" (Собрание законодательства Российской Федерации, 2004, N 15, ст.1493, 2005; N 33, ст.3421, 2006, N 26, ст.2846)

приказываю:

1. Утвердить прилагаемые Правила организации работы по выдаче ветеринарных сопроводи­тельных документов.

2. Признать утратившей силу Инструкцию о порядке выдачи ветеринарных сопроводительных документов на подконтрольные госветнадзору грузы, утвержденную Министерством сельского хо­зяйства и продовольствия Российской Федерации 12 апреля 1997 года N 13-7-2/871 (зарегистриро­вана Минюстом России 22 мая 1997 года, регистрационный N 1310).

3. Установить, что бланки ветеринарных сопроводительных документов, изготовленные до вступления в силу настоящего приказа, действительны до их полного использования.

4. Контроль за выполнением приказа возложить на заместителя Министра С.Г. Митина.

Министр А.В. Гордеев

Зарегистрировано в Министерстве юстиции Российской Федерации

24 ноября 2006 года, регистрационный N 8524

Далее: Приложение к приказу Минсельхоза России от 16 ноября 2006 года N 422

Приложение к приказу Минсельхоза России от 16 ноября 2006 года N 422

ПРАВИЛА

организации работы по выдаче ветеринарных сопроводительных документов

I. Общие положения

1.1. Настоящие Правила устанавливают порядок организации работы по выдаче ветеринарных сопроводительных документов и являются обязательными для исполнения должностными лицами, уполномоченными осуществлять оформление и выдачу ветеринарных сопроводительных докумен­тов, юридическими лицами любой организационно-правовой формы и гражданами, занятыми со­держанием, ловлей, добычей животных (в том числе птиц, рыб (других гидробионтов), пчел), а также производством, заготовкой, переработкой, перевозкой, хранением и реализацией продукции животного происхождения, кормов и кормовых добавок.

1.2. Ветеринарные сопроводительные документы, характеризующие территориальное и видовое происхождение, ветеринарно-санитарное состояние сопровождаемого груза, эпизоотическое состоя­ние места его выхода и позволяющие идентифицировать груз, выдаются на все виды животных, продукции животного происхождения, кормов и кормовых добавок (далее - грузы), подлежащих за­готовке, перевозке, переработке, хранению и реализации.

1.3. Партии грузов, перечисленных в приложении N 19 к настоящим Правилам, должны сопро­вождаться:

ветеринарными свидетельствами форм NN 1, 2, 3 (приложения NN 1-3) - при перевозке грузов за пределы района (города) по территории Российской Федерации;

ветеринарными справками формы N 4 (приложение N 4) - при перевозке грузов в пределах рай­она (города);

ветеринарными сертификатами форм NN 5a, 5b, 5c, 5d, 5e, 5f, 5g, 5h, 5i, 5j, 5k (приложения NN 5-15) - при вывозе грузов с территории Российской Федерации;

ветеринарными сертификатами формы N 6.1, 6.2 и 6.3 (приложения NN 16-18) - при перевозке грузов, ввезенных в Российскую Федерацию, по территории Российской Федерации от места тамо­женного оформления до места назначения, при их переадресовке между субъектами Российской Фе­дерации, а также в иных установленных случаях.
3. Особенности топографии лимфатических узлов у различных видов продуктивных животных. Патологоанатомические изменения в лимфоузлах при инфекционных заболеваниях.
Анатомическое положение лимфати­ческих узлов у разных видов убойных животных имеет свои особенности.

У крупного рогатого скота и овец лимфатические узлы овальной формы, окружены жировой тканью и имеют на разрезе серый или интенсивно-серый цвет.

У свиней форма лимфоузлов округ­лая, иногда немного бугристая. На разре­зе цвет лимфатических узлов светло-жел­тый (они похожи на жир, но более плотные и компактные). По сравнению с круп­ным рогатым скотом некоторые лимфа­тические узлы у свиней отсутствуют. Иногда у старых свиней паренхима узла заполнена обычной жировой тканью. В об­ласти головы и особенно шеи располага­ется большое количество отдельных узел­ков, разбросанных в жировой ткани в виде пакетов.

У лошадей отдельные лимфатические узлы отсутствуют, т. е. не срастаются в один большой узел, а соединяются в боль­шие пакеты, состоящие из многочислен­ных узелков различной величины. Об­служивают они несколько иные группы мышц и участки тела, не такие, как у крупного рогатого скота. Обычно у лоша­дей между лимфатическим сосудами на­ходят анастомозы, которые состоят из групп (20-40) узелков, расположенных в виде пакетов. Цвет лимфатических узлов на разрезе бледно-серый.

У птиц лимфатическая система пред­ставлена фабрициевой сумкой, лимфой и лимфатическими сосудами. Лимфатиче­ские узлы как анатомические образова­ния у птиц отсутствуют.


4. Методы диагностики беременности у животных.
Диагностика беременности - первостепенное и обязательное мероприятие в каждом хозяйстве. При исследовании животных специалисты должны не только выявлять беременность и ее сроки, но прежде всего устанавливать бесплодие, чтобы своевременно принять меры к быстрейшему его устранению. Поэтому диагностика беременности и бесплодия - единое, нераздельное мероприятие. Методы диагностики беременности и бесплодия подразделены на две группы. I. Методы клинической диагн-ки беременности и бесплодия. 1. Рефлексологический метод ( Применение пробника основано на учете реакции самки на самца или реакции самца на самку) 2. Наружное иссл-е (осмотра, пальпации и аускультации). 3. Внутр исследование: а) ректальное (основан на выявлении сост-я след-х компонентов половой сферы: яичников, рогов, тела и шейки матки, маточных брыжеек, а также проходящих по ним маточных артерий и плода); б) вагинальное(признаки беременности: 1) сухость слиз обол, ее бледн и липкость слизи; 2) плотн закрытие шейки матки и наличие в ее устье слизистой пробки; 3) прощупывание предлежащих частей плода через свод влагалища. В целом метод имеет малую практическую ценность). II. Методы лабораторной диагностики беременности. 1. Исследование цервикальной или влагалищной слизи. 2. Исследование крови. 3. Исследование мочи. 4. Исследование молока на ноличие прогестерона. 5. Обнаружение гормонов*(фолликулин, прогестерон). Можно определять по реакции торможения гемагглютинации ( в присутствии сыворотки беременной самки гемагглютинация эритроцитов не происходит).недостаток лабораторных методов – кропотливость работы, диагностика животных находящихся на сроках беременности которые оприделяются клинически, возможен ошибочный результат. Клиническое исследование: выделяют два вида признаков – вероятные – которые указывают на возможную беременность и истинные-которые присущи только беременным животным. К вероятным признаками относят – отсутствие течки, охоты, полового возбуждения в течении 30 дней после последнего осеменения;улучшение аппетита и упитанности животного; быстрая утомляемость и потливость, у молочных животных ослабление и прекращение функции молочных желез; отек конечностей. Анамнез имеет значение только для уточнения срока беременности. Наружным исследованием получается определить истинные признаки беременности: изменение контуров живота, увеличение молочной железы, отеки конечностей, живота, молочной кислоты. Истинный признак – движение плода. Пальпация брюшной стенки- выявляется только плод. Аускультация – выявляется сердцебиение плода. Пальпацию и аускультацию ведут по прямой линии параллельной позвоночнику и идущей от колена к подреберью. Положительный результат только при 5-6 мес. плодоношении. Ультразвуковое исследование применяют часто при исследовании свиней и мелкого рогатого скота. Стационарные приборы позволяют увидеть плод, переносные улавливают частоту биения сердца плода. Вагинальный метод исследования у коров позволяет выявить сухость слизистой влагалища, липкую слизь, плоное закрытие шейки матки и слизистую пробку. Метод имеет малую практическую ценность. Ректальный метод – самый ценный. Позволяет точно поставить стельность или ее отсутствие и определить срок стельности. Диагностика беременного состояния коровы в первую половину беременности основана на тех изменениях в половом аппарате, главным образом в матке, которые наступают в ней в зависимости от срока стельности. Отыскивать плод ректально в первую половину стельности не рекомендуется. В первые два месяца прощупать его не удается; на третьем-четвертом месяце плод найти можно, но в этом нет никакой нужды, так как есть другие, более надежные показатели беременности. Кроме того, поиски плода вредны и опасны. Существует обязательное правило, заключающееся в том, что все манипуляции по нахождению матки и ее изменений при беременности проводятся нежно, осторожно, непременно мякишами всех пальцев. Применение силы недопустимо во всех случаях и особенно, если корова ведет себя беспокойно. Исследование проводится только в моменты расслабления прямой кишки. Определение беременности и ее сроков (по месяцам) производится по следующим признакам.
5. Определите перкуторные границы печени у крупного рогатого скота.
Печень —орган пищеварения, кровообращения и обмена ве­ществ, синтезирует желчь, депонирует кровь. Вся кровь, оттекаю­щая от кишечника и селезенки, проходит через печень, где проис­ходит нейтрализация вредных веществ, удаляется из нее избыток

воды.

В печени образуется от '/з Д° ^х/г ^всеилимфы. Она участвует в поддержании динамического равновесия состава плазмы крови — белков, Сахаров, холестерина, витамина А, некоторых минераль­ных веществ, воды, инактивирует избыток гормонов, синтезирует мочевину и ряд ферментов. В ней освобождается '/₇часть энергии организма.

Печень расположена в передней части брюшной полости не­посредственно за диафрагмой, большей частью в правом подребе­рье. У жвачных —от уровня 8-го межреберья до позвоночного конца последнего ребра. Задняя верхняя часть печени выступает за край легкого, соприкасается с реберной стенкой и доступна ис­следованию с правой стороны. У верблюда печень выходит за пре­делы заднего края последнего ребра. У лошадей она находится в правом подреберье и достигает уровня середины длины 14—15-го ребер, в левом подреберье — 9-го ребра. У свиней печень располо­жена больше в правой стороне и доходит в правом подреберье до 12-го, в левом — до 10-го ребра. У плотоядных печень лежит почти в центре подреберной области, достигая справа и слева последних ребер.

При исследовании печени общими методами применяют ос­мотр, пальпацию и перкуссию.

Осмотром области печени при резком ее увеличении об­наруживают выпячивание правого подреберья.

Для выявления болезненности печени проводят баллоти­рующую пальпацию по межреберьям ипроникаю-щую пальпацию за последним ребром справа в верхней части реберной стенки.

У верблюда печень пальпируют за последним ребром в верхней части правой брюшной стенки, при увеличении ее можно прощу­пать за нижней реберной стенкой почти в середине правой голод­ной ямки.

У плотоядных печень исследуют сначала в стоячем положении, подводя пальцы рук под реберные дуги, затем животное кладут на правый бок, пальцы правой руки подводят под правое предребе-рье, а левой рукой постепенно усиливают давление в области ле­вой реберной дуги. Можно исследовать печень также в спинно^ положении, подводя пальцы под последние ребра. У собак печень недоступна пальпации, у кошек она пальпируется легко. При. пальпации определяют болезненность, консистенцию, свойства поверхности выступающего за последнее ребро края печени, у здоровых животных край печени острый (при увеличении зак­руглен), поверхность гладкая, консистенция упругая. Бугристую поверхность и плотную консистенцию печени выявляют при циррозе; при жировой дегенерации она, наоборот, приобрета»т мягкую или тестоватую консистенцию. При гепатите, абсцессах, иногда при гепатозе, кетозе и послеродовой гемоглобинур^и чувствительность печени повышена. Чем быстрее увеличивает^ печень, тем она болезненнее вследствие растяжения глиссоновой

капсулы.

Перкуссией устанавливают увеличение или уменьшение:

области печеночного притупления, болезненность печени. У рога­того скота область печеночного притупления находится справа в верхней части 10-, 11- и 12-го межреберий в виде неправильного четырехугольника, прилегающего к задней перкуссионной грани­це легких (рис. 54). Верхняя граница притупления сливается с То­чечным, а задняя проходит по линии, от латерального края попе­речно-реберного отростка 1-го поясничного позвонка вниз и впе­ред до пересечения границы легкого с 10-м ребром. При отсутствии смещения печени вперед удобным для исследования ориен­тиром могут служить данные перкуссии по 12-му межреберью. В норме печеночное притупление в этом межреберье не доходит до линии седалищного бугра. При увеличении печени ее границы до­стигают этой линии и значительно ниже, при резком увеличении границы выходят за 13-е ребро; могут доходить до линии плечево­го сустава.

На размер и расположение печеночного притупления влияют возраст, беременность, состояние легких (эмфизема), наполнение преджелудков и кишечника, поэтому иногда обнаруживают сме­щение печеночного притупления вперед, вниз или его уменьше­ние. При уменьшении объема рубца печень может отходить от грудной стенки и быть недоступной для исследования.

У крупного рогатого скота печень ректально пальпируется только при резком увеличении и каудовентральном смещении. У верблюда благодаря широким межреберным промежуткам и рас­положению печени за пределами последнего ребра перкуссией легко установить увеличение печени. Она доступна и для ректаль­ного исследования.

У лошадей печень не обнаруживают ни пальпацией, ни перкус­сией вследствие сагиттального ее положения. При значительном увеличении, когда она подходит к реберной дуге или выходит из-под нижнего края легкого, печень становится доступной для пер­куссии в области 14—16-го межреберий справа, а при выходе за последние ребро пальпируется и перкутируется по линии макло-ка. У свиней печень в правом подреберье доходит до 12-го, а в ле­вом до 10-го ребра и доступна исследованию только у нежирных особей. У плотоядных печень исследуют в стоячем положении за задним краем легкого. У собак справа печеночное притупление создает полосу от 10-го до 13-го ребра, слева —в области 11-го межреберья.

Область печеночного притупления увеличена при гепатите, ги­пертрофическом циррозе, амилоидозе, абсцессах, иногда при ток­сической дистрофии, фасциолезе, эхинококкозе, лейкозе, кетозе, опухолях и туберкулезе (у собак). При эмфиземе легких, экссуда-тивном плеврите и пневмотораксе зона печеночного притупления может быть увеличена за счет смещения печени назад.

Из специальных методов наиболее доступны лапароскопия и биопсия.