Главная страница
Навигация по странице:

  • Правила обращения с медицинскими отходами

  • Классификация медицинских отходов

  • Пользование бактерицидной лампой

  • Контроль за санитарным состоянием тумбочек

  • Контроль за санитарным состоянием холодильников

  • Предстерилизационная очистка

  • Стерилизация

    		•

    Ответы на коллоквиум по уходу за больными


    Скачать 133.39 Kb.
    НазваниеОтветы на коллоквиум по уходу за больными
    Дата29.01.2018
    Размер133.39 Kb.
    Формат файлаdocx
    Имя файлаOTVETY_NA_KOLLOKVIUM_PO_UKhODU_ZA_BOL_NYM1.docx
    ТипДокументы
    #35369
    страница4 из 6
    1   2   3   4   5   6

    Меры первой помощи при отравлении

    Явления раздражения слизистой оболочки глаз и верхних дыхательных путей – слезотечение, отек и гиперемия конъюнктивы, першение в горле, кашель.

    Меры первой помощи при остром (респираторном) отравлении средством. При поражении дыхательных путей необходимо вывести пострадавшего на свежий воздух или в хорошо проветриваемое помещения, обеспечить покой, тепло, освободить от тесной одежды. Рекомендуется выпить молока.

    При попадании средства в глаза:

    Необходимо промыть глаза проточной водой в течение 10-15 мин и обратиться к врачу. При раздражении слизистой оболочки глаз рекомендуется закапать в глаза альбуцид.

    При попадании средства на кожу:

    Промывают пораженный участок кожи проточной водой. При попадании средства на рабочую одежду нужно снять его, а участок кожи под одеждой тщательно промыть проточной холодной водой.

    Меры первой помощи при попадании средства в желудок.

    Промывают желудок холодной питьевой водой (выпить несколько стаканов холодной воды и вызвать рвоту). После промывания желудка рекомендуется выпить молока. Нейтрализация средства. Остатки средства на объектах в среде жизнедеятельности человека нейтрализуют 1,0% раствором тиосульфата натрия

    1. Правила обращения с медицинскими отходами:

    • сбор отходов внутри организаций, осуществляющих медицинскую и/или фармацевтическую деятельность;

    • перемещение отходов из подразделений и временное хранение отходов на территории организации, образующей отходы;

    • обеззараживание/обезвреживание;

    • транспортирование отходов с территории организации, образующей отходы;

    • захоронение или уничтожение медицинских отходов.

    • Смешение отходов различных классов в общей емкости недопустимо!!!

    • К работе с медицинскими отходами не допускаются лица моложе 18 лет.

    • Персонал проходит предварительные (при приеме на работу) и периодические медицинские осмотры в соответствии с требованиями законодательства Российской Федерации

    Классификация медицинских отходов:

    Класс А (эпидемиологически безопасные отходы, по составу приближенные к ТБО)

    • Отходы, не имеющие контакта с биологическими жидкостями пациентов, инфекционными больными.

    • Канцелярские принадлежности, упаковка, мебель, инвентарь, потерявшие потребительские свойства.

    • Смет от уборки территории и так далее.

    • Пищевые отходы центральных пищеблоков, а также всех подразделений организации, осуществляющей медицинскую и/или фармацевтическую деятельность, кроме инфекционных, в том числе фтизиатрических.

    Класс Б (эпидемиологически опасные отходы)

    • Инфицированные и потенциально инфицированные отходы.

    • Материалы и инструменты, предметы загрязненные кровью и/или другими биологическими жидкостями.

    • Патологоанатомические отходы.

    • Органические операционные отходы (органы, ткани и так далее).

    • Пищевые отходы из инфекционных отделений.

    • Отходы из микробиологических, клинико-диагностических лабораторий, фармацевтических, иммунобиологических производств, работающих с микроорганизмами 3-4 групп патогенности. Биологические отходы вивариев.

    • Живые вакцины, непригодные к использованию.

    Класс В (чрезвычайно эпидемиологически опасные отходы)

    • Материалы, контактировавшие с больными инфекционными болезнями, которые могут привести к возникновению чрезвычайных ситуаций в области санитарно-эпидемиологического благополучия населения и требуют проведения мероприятий по санитарной охране территории.

    • Отходы лабораторий, фармацевтических и иммунобиологических производств, работающих с микроорганизмами 1-2 групп патогенности.

    • Отходы лечебно-диагностических подразделений фтизиатрических стационаров (диспансеров), загрязненные мокротой пациентов, отходы микробиологических лабораторий, осуществляющих работы с возбудителями туберкулеза

    Класс Г (токсикологически опасные отходы 1-4 классов опасности)

    • Лекарственные (в том числе цитостатики), диагностические, дезинфицирующие средства, не подлежащие использованию.

    • Ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование.

    • Отходы сырья и продукции фармацевтических производств.

    • Отходы от эксплуатации оборудования, транспорта, систем освещения и другие.

    Класс Д.(Радиоактивные отходы) Все виды отходов, в любом агрегатном состоянии, в которых содержание радионуклидов превышает допустимые уровни, установленные нормами радиационной безопасности.

    1. Пользование бактерицидной лампой

    Антимикробным действием обладает ультрафиолетовое излучение длиной волны 100—280 нм. При ультрафиолетовом облучении происходит повреждение ДНК в клеточном ядре микроорганизмов, что приводит к их гибели и прекращению размножения. Наиболее чувствительны к воздействию ультрафиолетового излучения вирусы и бактерии. Менее чувствительны грибы и простейшие микроорганизмы. Подтверждено воздействие ультрафиолетового излучения на микобактерии туберкулеза. Бактерицидные лампы делятся на два вида: открытого и закрытого типа. При использовании бактерицидной лампы открытого типа, люди должны покинуть помещение; бактерицидные лампы закрытого типа могут работать в присутствии людей. Работа бактерицидного облучателя любого типа в ЛПУ обязательно учитывается в соответствующем журнале, который ведут медицинские сестры, работающие с бактерицидной лампой, чаще всего процедурные сестры. В журнале ежедневно указывается время работы бактерицидной лампы, количество включений и общее время работы облучателя в часах

    Постельное и нательное бельё в соматических отделениях ЛПУ меняют пациентам не реже 1 раза в 7 дней. Загрязненное выделениями должно меняться незамедлительно.

    При этой процедуре необходимо соблюдать общие меры предосторожности:

    • надевать перчатки при контакте с бельём, загрязнённым биологическими жидкостями;

    • не трясти постельные принадлежности, чтобы предупредить загрязнение окружающей среды;

    • укладывать грязное бельё сразу в мешки (клеёнчатые или полиэтиленовые);

    • не выносить его без мешка из помещения, в котором оно было снято;

    • не сортировать и не встряхивать в помещении, где находятся люди;

    • запрещается сортировка грязного белья в отделении;

    • мокрое постельное и нательное бельё следует складывать в непромокаемый мешок и в нём переносить в другое помещение;

    • класть использованное бельё на мебель и пол не разрешается.

    Допускается временное хранение (не более 12 ч) грязного белья в отделениях при наличии санитарных комнат или других специально отведённых помещений в закрытой таре (металлических, пластмассовых бочках, плотных ящиках, других ёмкостях, подвергающихся дезинфекции). Персонал, работающий с грязным бельём, должен быть обеспечен санитарной одеждой. Чистое бельё хранится в оборудованных помещениях и шкафах. Доставка загрязнённого белья в прачечную и чистого — в ЛПУ осуществляется с помощью тележек, маркированных установленным способом, упакованным и в закрытых контейнерах. Перевозка чистого и загрязненного белья в одной ёмкости не допускается.

    Контроль за санитарным состоянием тумбочек:

    Цель:

    1. Соблюдение санитарно-противоэпидемиологического режима отделения.

    2. Контроль за хранением скоропортящихся продуктов.

    3. Контроль за соблюдением лечебной диеты.

    Показания. Проводится ежедневно в тумбочках всех больных.

    Противопоказания. Категорический запрет больного.

    Оснащение:

    1. 1% раствор хлорамина в ёмкости с маркировкой «Для тумбочек».

    2. Ветошь.

    3. резиновые перчатки

    Техника выполнения:

    1. Ежедневно, не реже 2 раза в день наружные поверхности тумбочек больных обрабатываются 1% раствором хлорамина, перед проведением влажной уборки.

    2. После выписки пациента из стационара обработать все поверхности тумбочки дезинфицирующим раствором 2-кратно с интервалом 15 мин. Протереть тумбочку ветошью, смоченной в проточной воде.

    3. Хранить вещи и продукты в тумбочке необходимо на разных полках: личные вещи и предметы гигиены (мыло, зубную щетку, пасту и расческу) — в верхнем ящике тумбочки; продукты — конфеты, печенье, варенье и другие продукты длительного хранения — на других полках (должны быть только предметы личной гигиены, валидол или нитроглицерин, сухое печенье в упаковке и др.);

    4. При обработке тумбочки контролируется санитарное состояние тумбочки, состав и количество продуктов, находящихся в ней (принесённых больному из дома).

    Контроль за санитарным состоянием холодильников:

    Цель:

     Соблюдение санитарно-противоэпидемиологического режима отделения.

     Контроль за хранением скоропортящихся продуктов.

    Техника выполнения:

    1. Осуществлять ежедневный контроль санитарного состояния холодильников и сроков хранения продуктов:

    - продукты должны храниться в пакетах и быть промаркированы: Ф.И.О. больного, № палаты, дата, когда были переданы продукты;

    - проверять показания температурного режима холодильника — показания снимаются утром и вечером и заносятся в соответствующий журнал (температура в холодильнике должна быть в пределах +4-7 °С);

    -на холодильнике вывешивается список продуктов, допускаемых к передаче больным, со сроком их хранения.

    - продукты больному должны передаваться родственниками в целлофановых пакетах и в фабричной упаковке.

    - не разрешается передавать больным мясные и рыбные консервы, грибы, торты, пирожные, колбасы, сельдь.

    2. Проводить размораживание и обработку холодильников 1 раз в неделю (по графику).

    3. Обрабатывать холодильники после разморозки ветошью, смоченной 3%- ным раствором гидрокарбоната натрия, затем 6%-ным раствором столового уксуса (для предупреждения иерсинеоза).

    1. Предстерилизационная очистка

    Предстерилизационная очистка – это комплекс мероприятий по удалению загрязнений органического (белковых, жировых, свернувшейся крови, мочи) и неорганического (остатки заводской смазки, лекарства) характера с изделий медицинского назначения перед их последующей стерилизацией.

    Предстерилизационной очистке должны подвергаться все изделия перед их стерилизацией с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов.

    Предстерилизационную очистку изделий осуществляют после дезинфекции или при совмещении с дезинфекцией в одном процессе (при наличии у дезинфицирующего средства, наряду с моющими, также и антимикробных свойств), в том числе обязательно в отношении возбудителей парентеральных вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции, и последующего отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной водой.

    Предстерилизационную очистку осуществляют ручным или механизированным (в соответствии с инструкцией по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию) способами. Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очистке в разобранном виде. Необходимо знать, что при ручном и механизированном способе очистки использованных инструментов нужно применять моющие средства, обладающие высоким моющим эффектом: — минимальным пенообразованием;

    — отсутствием пирогенности, способности вызывать коррозию;

    — способностью эффективно удалять различные типы загрязнений;

    — совместимостью с материалами обрабатываемых изделий.

    После дезинфекции необходимо:

    — тщательно промыть инструменты и резиновые изделия под проточной водой до полного исчезновения запаха, если этот дезинфицирующий раствор имеет его, например, хлорсодержащее дезинфицирующее средство:

    — замочить в одном из моющих растворов при полном погружении, соблюдая правило: каналы должны быть заполнены моющим раствором без пузырьков воздуха;

    — по истечении времени экспозиции изделие промыть под проточной водой:

    — провести контроль качества отмывки инструментов медицинского назначения от кровяных, белковых, жировых и прочих загрязнений, а также удаление остатков моющих детергентов спиртовым раствором фенолфталеина.

    При замачивании или кипячении в моющем растворе изделия полностью погружают в раствор моющего средства, заполняя им каналы и полости изделий. Мойку изделий осуществляют с помощью ерша, ватно-марлевых тампонов, тканевых салфеток; каналы изделий промывают с помощью шприца. Использование ерша при очистке резиновых изделий не допускается. Контроль проводят на рабочих местах медсестры (самоконтроль), а также старшая медсестра или заведующий ЦСО

    СПОСОБЫ ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ:

    1) ручной способ предстерилизационной очистки – осуществляется моющимися растворами в определённой последовательности

    2) механизированная предстерилизационная очистка (с помощью специального оборудования) проводится струйный, ротационным методами, ершеванием или с применением ультразвука, использованием поверхностно- активных веществ или других добавок.

    Существует группа дезинфицирующих средств, позволяющих провести дезинфекцию и предстерилизационную очистку одномоментно:

    - 2% раствор викрона 10 мин при комнатной температуре;

    - гротонат 30 мин при комнатной температуре;

    - 3% раствор пероксимеда 60 мин при температуре +50°С. Приготовление моющих растворов для предстерилизационной очистки

    Перекись водорода вызывает коррозию инструментов, сделанных из металла, не стойких к ней. Для устранения отрицательного эффекта к раствору добавляют ингибитор коррозии – 1% раствор бензоата натрия (или 0,14% раствор олеата натрия)

    КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ:

    1) на присутствие следов крови и тканей – азопирамовая проба, амидопириновая (первая проба в 10 раз активнее второй). Азопирам очень чувствителен ко всем следам загрязнений. Может быть изменение цвета от наличия дезинфицирующего средства, ржавчины, лекарственных и растительных остатков, хромовой смеси для чистки посуды, СМС с отбеливателем (бурое окрашивание).

    2) на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств (фенолфталеиновая проба), которые могут вызвать аллергические, пирогенные реакции, гемолиз эритроцитов.

    3) на загрязнение масляными растворами и жировыми веществами – судан III

    1. Стерилизация – уничтожение на любых объектах микроорганизмов всех видов на всех стадиях развития, т.е. стерилизующие методы обладают спороцидным действием.

    Методы стерилизации:

    1. Термические

    1. Паровой метод – водяной насыщенный пар под избыточным давлением в автоклаве

    Насыщенный пар под давлением по своей бактерицидности ещё выше, чем увлажнённый воздух. Автоклавы называются медицинскими паровыми стерилизаторами. В паровом стерилизаторе стерилизующим фактором является насыщенный пар, т.е. пар, находящийся в равновесии с жидкостью, из которой он образовался. температура до 138°С и высокое давление до 2,5 атм.,

    Для лечебных учреждений рекомендуется два режима стерилизации:

    1-й режим – температура 132°С, давление 2 атм., время 20 мин. Первый режим (основной) предназначен для стерилизации изделий из бязи, марли (перевязочного материала, белья и т.д.), стекла, включая шприцы с пометкой «200°С», изделий из коррозийностойкого металла.

    2-й режим – температура 120°С, давление 1,1 атм., время 45 мин. Второй режим (щадящий) рекомендуется для изделий из тонкой резины, латекса (хирургические перчатки и др.) и отдельных видов полимеров (полиэтилен высокой плотности).

    Все изделия, стерилизуемые паром под давлением, предварительно помещают в специальную упаковку – стерилизационные коробки (биксы или контейнеры) с фильтром или без фильтров, упаковки из двуслойной х/б ткани или крафт-пакеты из плотной бумаги.

    1. Воздушный метод – сухим горячим воздухом в сухожаровом шкафу

    Недостатки метода:

     Медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий;

     Необходимость использования более высоких температур;

     Нельзя использовать для стерилизации изделий из резины, полимеров;

     Невозможность использования всех имеющихся упаковочных материалов

    Воздушный метод стерилизации рекомендуется для изделий из металла и стекла. Стерилизации подвергаются сухие изделия в упаковках из бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной.

    Рабочая температура в стерилизационной камере – 180°С, время выдержки – 60 мин. Пакеты из бумаги готовят вручную или заводским способом. Швы на бумажных пакетах заклеивают клеем на 5% крахмала. Свободный конец после заклеивания перегибают трижды и герметично заклеивают.

    1. Химический метод – с применением растворов стерилизующих средств и газов

    1. Холодные

    1. газовый

    Газ обладает стерилизующим действием при нормальной температуре, при данном методе стерилизации могут быть использованы:
    - окись этилена с бромистым этилом (чтобы этилен не взорвался).
    Этим методом стерилизуют: оптика, кардиостимуляторы, полимерные материалы (резина, пластмасса, стекло, металл; время экспозиции - 6 часов, t в камере - 35*С)

    - пары 40% раствора формальдегида в этиловом спирте.
    Этим методом стерилизуют: эндоскопические инструменты, аппараты искусственного кровообращения, изделий из пластмасс и кетгута; время экспозиции: для пластмасс и резины - 180 мин.; для стекла и металла - 120 мин.; t - 80*С, доза формальдегида - 150 мл на 1 л (должен распыляться).
    1. 1   2   3   4   5   6

    написать администратору сайта