Главная страница
Навигация по странице:

  • Профилактика и меры борьбы

  • 2. Гастрофилезы непарнокопытных

  • Биология развития

  • Эпизоотологические данные.

  • Профилактика

  • 3. Серологические реакции

  • Ситуационное задание

  • Заразные болезни (книга). Сибирская язва (Anthrax) остропротекающая инфекционная болезнь, характеризующаяся признаками септицемии и тяжелой интоксикации, а также образованием карбункулов


    Скачать 3.81 Mb.
    НазваниеСибирская язва (Anthrax) остропротекающая инфекционная болезнь, характеризующаяся признаками септицемии и тяжелой интоксикации, а также образованием карбункулов
    АнкорЗаразные болезни (книга).doc
    Дата11.01.2018
    Размер3.81 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаЗаразные болезни (книга).doc
    ТипДокументы
    #13872
    КатегорияБиология. Ветеринария. Сельское хозяйство
    страница37 из 44
    1   ...   33   34   35   36   37   38   39   40   ...   44


    Лечение запрещено.

    Иммунитет. Выжившие свиньи остаются долгое время вирусоноси-телями. В их организме обнаруживаются комплементсвязывающие, преципитирующие, типоспецифические и задерживающие гемадсорбцию антитела. Вируснейтрализующие (защитные) антитела не вырабаты­ваются. В связи с этим многочисленные попытки получить инактивированные или живые иммуногенные вакцины не дали положительных результатов. Живые вакцины из ослабленных штаммов вируса вызывают у привитых животных хроническое течение болезни и длительное вирусоносительство, что опасно в эпизоотическом отношении.

    Профилактика и меры борьбы. Профилактика включает общие мероприятия, направленные прежде всего на предотвращение заноса вируса в страну. С этой целью запрещают ввоз свиней (в том числе диких) и продуктов их убоя из стран, неблагополучных и угрожаемых по АЧС. Осуществляют строгий надзор в международных и воздуш­ных портах, на пограничных, железнодорожных и шоссейных пунктах за ввозом животных, продуктов и сырья животного происхождения. Уничтожают пищевые отходы и мусор, собираемые из различных средств транспорта, прибывающего из-за рубежа. Во всех свиновод­ческих хозяйствах должны соблюдаться ветеринарно-санитарные правила по предупреждению заноса возбудителей инфекционных болезней.

    В случае возникновения чумы неблагополучный пункт (хо­зяйство) карантинируют. При необходимости допускается карантиниро-вание группы хозяйств, района или группы районов, области, края, республики. Вокруг очага африканской чумы определяют угрожаемую зону на глубину 5 — 20 км от границ эпизоотического очага и зону возможного заноса вируса, непосредственно опоясывающую угрожае­мую зону, глубиной до 100—150 км.

    Всех свиней в эпизоотическом очаге уничтожают бескровным методом. Убитых и павших свиней, навоз, остатки кормов, тару и малоценный инвентарь сжигают. Несгоревшие остатки можно переме­шать с хлорной известью и зарыть на глубину не менее 2 м. Проводят трехкратно с интервалом 3 — 5 дней дезинфекцию помещений, загонов и других мест, где содержались свиньи. Для дезинфекции используют раствор хлорной извести, содержащий 4% активного хлора; гипохлорит натрия или кальция, содержащий 2 — 3% активного хлора; 5%-ный р-р однохлористого йода; формолсодержащие препараты. Одновременно проводят дезинсекцию и дератизацию.

    В угрожаемой зоне убивают всех свиней во всех категориях хозяйств на специально оборудованных убойных площадках или на ближайшем мясокомбинате. Мясо и другие продукты убоя свиней пере­рабатывают на вареные колбасы или консервы. В хозяйствах зоны возможного заноса вируса все свинопоголовье содержат под ветери­нарным наблюдением и систематически вакцинируют против классиче­ской чумы и рожи. В случае появления заболевания с признаками чумы среди поголовья, вакцинированного против классической чумы, срочно принимают меры против африканской чумы.

    Карантин с неблагополучного пункта снимают через 30 дней после уничтожения всех свиней в очаге чумы и убоя свиней в угро­жаемой зоне Ввод свиней в помещения, где была африканская чума, разрешают через 6 мес после снятия карантина и постановки биологического контроля.

    Ограничения в хозяйствах угрожаемой зоны и зоны возможного заноса вируса отменяют через 6 мес после снятия карантина с небла­гополучного по африканской чуме свиней пункта. В последующем свино­фермы, ранее располагавшиеся в угрожаемой зоне, комплектуют только свинопоголовьем, вакцинированным против классической чумы и рожи. Вывозить свиней из этих хозяйств в другие в течение 6 мес запрещено.

    2. Гастрофилезы непарнокопытных
    Хронически протекающие болезни непарнокопытных (лошадей, ослов и мулов), вызываемые личинками желудочно-кишечных ово­дов семейства Gastrophilidae, рода Gastrophilus.

    Возбудители. Наиболее распространены следующие виды: G. intestinalis — большой желудочный овод, крючок; G. veterinus —овод — якорек; G. nigri-cornis — черноус.

    Большой желудочный овод — имаго (рис. 168) — желтовато-бурого цвета, длиной 10—15 мм. Голова большая, с расположен­ными фасеточными глазами по бокам и тремя простыми — на теме­ни. Среднеспинка темная, покрыта светло-желтыми или бурова­тыми волосками. Крылья с темными пятнами. Брюшко овальное, яйцеклад резко подогнут под брюшко. Яйца желтоватые, клино­видные, поперечно исчерчены, длиной до 1,25 мм. Личинка 1-й ста­дии веретенообразной формы, длиной около 1 мм, белого цвета, состоит из 13 сегментов. На голове два подвижных изогнутых крюч­ка, между ними ротовое отверстие.

    Личинка 3-й стадии овально-цилиндрическая, длиной до 20 мм. Приротовые крючья мощные, изогнутые. Сегменты со 2-го по 10-й несут по два ряда шипов: в первом ряду крупные, во втором мелкие (рис. 169).

    Двенадцатиперстник — черно-коричневого цвета, длиной 12— 684

    13 мм. Голова уже среднеспинки. Грудь и ноги черные. Крылья прозрачные, без пятен. Брюшко темное, покрыто густыми волоска­ми. Личинка 3-й стадии длиной до 20 мм, шипы на сегментах распо­ложены в один ряд.

    Усоклей — имаго темно-бурого цвета, длиной 9—11 мм. Голова крупная. Крылья прозрачные, ноги коричневато-желтые, покрыты волосками. Брюшко удлиненное, темно-коричневое. Личинка 3-й стадии длиной до 18,5 мм, мелкие шипы на сегментах расположены в два ряда, последние 3 сегмента без вооружения.

    Травняк — самки темно-бурого цвета, длиной 16 мм, самцы немного светлее, длиной до 13 мм. Голова уже груди. Лоб узкий. Грудь коричневая, среднеспинка черная с двумя продольными свет­лыми полосами. Крылья дымчатые. Личинки 3-й стадии длиной до 20 мм, от остальных отличаются наличием срединной группы шипов на псевдоцефале. Шипы первого ряда на члениках в 2 раза крупнее шипов второго ряда.

    Якорек — имаго похоже на большого желудочного овода, но меньше его по размерам, длина тела 9—11 мм, серого цвета, крылья пятнистые. Личинка 3-й стадии длиной до 16 мм, с сильно загнутыми назад ротовыми крючками.

    Черноус — имаго серовато-желтого цвета, длиной 10—11 мм. Грудь и брюшко черные, покрыты волосками серо-желтого цвета. Задний край брюшка округленный. Личинка 3-й стадии длиной до 22 мм, первый грудной членик цилиндрической формы, что отли­чает ее от других видов рода.

    Биология развития. Желудочные оводы развиваются с полным метаморфозом. Плодовитость самок в зависимости от вида 300— 2500 яиц. Самки крючка откладывают яйца на лету, приклеивая их к волосу чаще на конечности, плечи, бока; усоклея — на тонкие волоски губ; двенадцатиперстника — на волосы межчелюстного пространства, малого желудочного овода — в области массетеров; черноуса — на волосы вокруг рта; травняка — на растения. Личинки в яйцах развиваются в течение 7—16 сут, однако их вылупления сразу не происходит. Они могут сохранять жизнеспособность в яйце 1,5—3 мес. Чтобы личинки вышли из яйца, необходимы определен­ные условия (влажная среда, температура 37—42 °С, прикосновение постороннего предмета), которые создаются при расчесывании зубами мест прикрепления их или при водопое. Вышедшие из яиц личинки попадают в ротовую полость, прикрепляются к слизистой оболочке различных ее разделов и паразитируют в течение 21— 28 сут, после чего линяют и переходят во 2-ю стадию. Развитие личинок 2-й и 3-й стадий большинства видов происходит в кардиаль-ной части желудка, a G. veterinus — в двенадцатиперстной кишке. Весной следующего года личинки 3-й стадии покидают желудок и вместе с фекалиями выходят наружу. Окукливание происходит в поверхностном слое почвы. Фаза куколки длится 16—54 сут, после его из нее вылупляется имаго. В южных районах оводы могут давать два поколения в год.

    Эпизоотологические данные. В умеренном климате лёт оводов отмечен в июле—августе, на юге сроки лёта более растянуты. Источником инвазии служат больные гастрофилезом животные, которые рассеивают личинки по территории хозяйств, на пастбищах и т. п. Наиболее благоприятные условия для развития имаго и зара­жения лошадей представляет жаркая сухая погода. На лошадь может быть отложено до 3—5 тыс. яиц.

    Патогенез. Болезнь сопровождается значительным воспалением слизистой оболочки ротовой полости, желудка, нативной части и двенадцатиперстной кишки. В желудке и кишечнике образуются язвы, возникает желудочное и кишечное кровотечение. В прямой кишке личинки усоклея и травняка вызывают катаральное воспале­ние, значительное скопление личинок может привести к ее выпаде­нию.

    Симптомы болезни. Животные, больные гастрофилезом, часто истощены, шерсть их взъерошена, без блеска, слизистые оболочки анемичны, аппетит понижен. Отмечают понос, колики. При лока­лизации личинок в глотке и области мягкого неба появляется кашель, во время водопоя из носа таких животных вытекает вода, затрудняются пережевывание и глотание корма. Личинки черноуса и якорька, мигрирующие в коже щек, вызывают дерматит, складки и язвы на губах.

    Диагностика. При обследовании кожно-волосяного покрова обнаруживают яйца оводов, в ротовой полости — личинок 1-й ста­дии. Во время осмотра корня языка и глотки рот лошади раскры­вают с помощью зевника, а ротовую полость освещают рефлекто­ром, язык предельно вытягивают или прижимают шпателем. Наи­более удобно использовать гибкий эндоскоп Мачида ФГС-БЛ.

    Зимой и ранней весной диагноз можно поставить по обнаруже­нии в кале личинок после дачи внутрь 40—60 мг/кг кристалличес­кого хлорофоса в водном растворе, пасты эквалана и других препа­ратов, вызывающих гибель личинок и их массовое выделение. Предложены аллергический и серологический (РНГА) методы диагностики гастрофилеза.

    Лечение. Основополагающим мероприятием в системе мер борьбы с гастрофилезом является ранняя химиотерапия, проводи­мая в конце сентября—ноябре. Для ранней химиотерапии приме­няют хлорофос, амидофос, эстрозоль, эквалан и др.

    Хлорофос используют только кристаллический из расчета 40 мг/кг и применяют следующими методами: орошают 5%-ным раство­ром хлорофоса зернофураж или сено и скармливают по 1 кг на животное; используют кормовые гранулы с хлорофосом. Молод­няку их скармливают 0,5 кг, взрослым животным — 1—1,2 кг гранул на голову; эффективно групповое вольное выпаивание 0,1%-ного 686

    раствора хлорофоса, а также скармливание его со снегом в течение 10—12 ч. Амидофос применяют таким же образом, что и хлорофос. Фасковерм используют внутримышечно в дозе 1 мл на 20 кг массы тела; эквалан применяют внутрь в дозе 0,2 мг/кг массы тела. Препа­ратом эстрозоль лошадей обрабатывают в закрытых помещениях при норме расхода 60 мг/м3 при экспозиции 1 ч.

    В зонах с двумя генерациями овода химиотерапию проводят в конце июля—августе и октябре—ноябре.

    Профилактика. Для предупреждения нападения имаго желудоч­ных оводов в период их массового лёта лошадей опрыскивают 0,05%-ной водной эмульсией перметрина с нормой расхода 500 мл на взрослое животное и 250 мл на жеребенка или 0,25%-ной эмульсией с нормой расхода соответственно 100 и 50 мл. Эффективна также 10%-ная водная эмульсия ТСН из расчета 0,5—1,0 л на лошадь, 3%-ная водная эмульсия оксамата — 1,5—2,0 л на лошадь.

    Весной личинок, выпадающих на окукливание, собирают и унич­тожают путем биотермического обеззараживания фекалий.
    3. Серологические реакции

    Микробные клетки несут на своей поверхности разнообразные ан­тигены, среди которых имеются детерминанты, общие нескольким мик­роорганизмам или даже идентичные животным клеткам и уникальные, присущие только данному виду или варианту микроскопических су­ществ. Токсигенные штаммы обычно содержат эти специфичные де­терминанты и в экзопродуктах. Для успешного проведения иммунохи-мического анализа очень важно получить антисыворотку (то есть им­мунную сыворотку) на максимально очищенные специфичные для вида или варианта антигены. Достигается это предварительной дезинтегра­цией микробных структур, выделением и очисткой необходимых анти­генных комплексов, а также путем специфической адсорбции антисыво­ротки, полученной на взвесь целых микробных клеток к их оболочкам или на раствор экзотоксина. Пользуются и разведением антисыворот­ки, чтобы избавиться от неспецифических реакций. Специфич­ную антисыворотку используют для иммунохимической идентификации антигенов в нативном виде или в виде конъюгатов с видимыми под обычным световым микроскопом ферментами, обнаруживаемыми под люминесцентным микроскопом флуорохромами или видимыми под электронным микроскопом контрастерами.

    В ветеринарной практике приходится также анализировать раст­воримые антигены микроорганизмов. Иммунохимической идентификации обычно подвергают клостридии, эшерихии, стафилококки и некоторые другие продуценты экзотоксинов, а также органы и ткани животных, инфицированных сибиреязвенным микробом. Причем в первом случае экзотоксины накапливают обычно культивированием бактерий на спе­циальных средах, во втором — преципитиноген экстрагируют изотони­ческим раствором хлорида натрия. В лабораториях чаще идентифици­руют взвесь микробных клеток, то есть корпускулярный антиген.

    Для обнаружения и идентификации растворимых антигенов при­меняют целый ряд методов, основанных на феномене преципитации. Наиболее популярной в ветеринарной практике является кольцевая реакция преципитации (РП), предложенная Асколи в 1902/. для обнаружения сибиреязвенного антигена в кожевенном сырье. Ста­вят ее в специальных узких пробирках и при появлении помутнения на границе между антисывороткой и антигеном можно идентифицировать гомологичный антисыворотке антиген в течение нескольких минут. Простота и доступность пробирочной РП обеспечили широкое примене­ние ее в ветеринарно-санитарной экспертизе и криминалистике для оп­ределения видовой принадлежности мяса или идентификации крови.

    При постановке РП с меченным радиоактивным йодом антигеном, не превышающим молекулярную массу альбумина (то есть не выпада­ющим в осадок при 50%-ном насыщении сульфатом аммония), можно установить общее количество, образовавшихся антител. Этой методи­кой Фарра экспериментаторы пользуются для определения антигенсвя-зывающёй способности антител.

    На принципе преципитации основана также реакция нейтрали­зации, сущность которой сводится к предннкубации токсинов, фер­ментов или реже вирусов с гомологичными антисыворотками с после­дующим воздействием смеси ингредиентов на живую систему (орга­низм, культуру тканей или клеток). В результате предварительного выдерживания смеси антител с растворимым антигеном в пробирке последний обезвреживается, что подтверждается реакцией живой си­стемы. Реакцию впервые продемонстрировали Беринг и Китазато в 1890 г. на модели столбнячных токсина и антитоксина. В настоящее время ее используют для видовой и особенно внутривидовой идентифи­кации токсигенных Cl. perfringens, Cl.botulinum и некоторых других микроорганизмов.

    Применение реакции преципитации в жидкой среде не позволяет, однако, характеризовать гетерогенность антигенов, то есть количество и концентрацию антигенов в препарате. Данные сведения можно полу­чить, если поставить РП в геле (чаще в агаровом) или реакцию диффузионной преципитации (РДП). Обладая разной скоростью передвижения, различные антигены пре­парата неодинаково диффундируют, образуя в толще прозрачного геля на месте встречи с гомологичным антителом преципитаты Локализация и конфигурация линий преципитатов будут характерны для каждого компонента антигенного препарата, что служит критерием оценки его качества. Путем разведения препарата можно характеризовать относи­тельное содержание в нем антигенов.

    Если в среде геля диффундирует один реагент (обычно антиген), реакцию называют простой или одномерной диффузии, а если навстре­чу друг другу одновременно диффундируют оба реагента (антиген и антитело), ее называют реакцией двумерной или двойной диффузии.

    Реакцию одномерной диффузии можно поставить в пробирке и на стеклянной пластинке. Пробирочный вариант РДП был впервые разра­ботан в 1946 г. Оудином. На дно узкой пробирки помещали антисыво­ротку, смешанную с агаровым гелем и сверху заливали раствором ан­тигена, покрытым слоем вазелинового масла. Антиген диффундировал в подлежащий слой геля и, вступая в реакцию с антителами, образовы­вал в нем линии преципитации. По их количеству и локализации судили о качестве антигенного препарата.

    Манчини в 1965 г. предложил пластинчатый вариант одномерной РДП, который получил название реакции радиальной имму-нодиффузии (РИД) из-за того, что антиген диффундирует из лунок радиально в гель, смешанный с антисывороткой, в результате чего вокруг лунок образуются кольца преципитации. Диаметр этих колец прямо пропорционален концентрации антигена. На этом основании РИД используют для определения содержания растворимых антигенов (иммуноглобулинов всех классов, токсинов, ферментов, антигенных гормонов).

    Но еще в 1948 г. Оухтерлони разработал метод двойной и м-мунодиффузии в агаровый гель. Для этого в пластинке агара вы­резалось несколько лунок — центральная и периферические. В цент­ральную лунку помещали антисыворотку, в периферические — раство­ры различных антигенов или раствор одного антигена в разных разве­дениях. Диффундирующие реагенты взаимодействуют, образуя линии преципитации в промежутке геля между центральной и периферичес­кими лунками. Таким образом устанавливают количество антигенов в препарате, примерную их концентрацию и степень родства. В послед­нем случае обращают внимание на совпадение локализации и конфигу­рации линий преципитации сравниваемых антигенов (реакция иден­тичности), пересечение этих линий (реакция неидентичности) и наличие шпор у скрещивающихся линий преципитации. Реакция идентичности свидетельствует о тождественности сравниваемых антигенов, неиден­тичности— об их различиях, а наличие шпор — о содержании в срав­ниваемых разных препаратах общих антигенных детерминант.

    Данная реакция является самым распространенным методом те­стирования антигенных свойств растворимых препаратов в эксперимен­тальной работе и широко внедряется в практику диагностических лабо­раторий из-за своей простоты и высокой чувствительности.

    В 1953 г. Оакли и Фултроп предложили более четко воспроизводи­мый вариант метода Оудина. Он заключается в том, что в стандартные пробирки оба реагента помещают в смеси с агаром и встреча их происходит в пограничном слое геля такой же концентрации. По чувствительности он превосходит метод Оухтерлони.

    В 1953 г. Грабар и Вильяме предложили комбинированный метод анализа растворимых антигенов, включающий в себя электро­форез антигена (центральная лунка) в агаровом геле с последующим взаимодействием его с антисывороткой (в боковых канавках) по типу реакции Оухтерлони. Этот метод называется иммуноэлектрофорезсм (ИЭФ) и позволяет более четко разделят^, антигены в испытуемом пре­парате, то есть более полно характеризовать набор антигенов в препа­рате. Однако для постановки ИЭФ требуется довольно высокая кон­центрация реагентов, особенно антигенов (табл. 5).

    ИЭФ можно ставить с меченными радиоактивными веществами реагентами, тогда получится радиоиммуноэлектрофорез. С помощью фотоэмульсии он позволяет выявлять самые незначительные количест­ва иммунных глобулинов.

    5. Минимальное количество препаратов растворимых антигенов Е. coli 078: К-80, необходимое для образования видимого преципитата при взаимодействии с препаратом IgG крупного рогатого скота (мг/мл)

    Тест

    Конечная концентрация IgG (мг/мл)

    Потребность гексоз

    О-антигена

    К-антигена

    РДП

    РИД

    ИЭФ

    11,

    12

    8,40

    0,0461

    0,0923

    2,9500

    0,0630

    0,1250

    2,0000

    Растворимые антигены можно также анализировать специфичес­кими реагентами и на довольно высоком уровне чувствительности пу­тем нагружения ими неспецифических носителей — частиц латекса, эритроцитов барана как наиболее резистентных к перепадам осмотиче­ского давления. В таких случаях, правда, будет уже не реакция преци­питации, а реакции непрямой агглютинации или торможения непрямой гемагглютинации.

    Для индикации и идентификации корпускулярных антигенов при­меняют серологические реакции, основанные на феномене агглюти­нации, а также иммунохимические методы, сочетающие принципы серологического и микроскопического анализов и представляющие, по существу, феномен микропреципитации меченых антител. К послед­ним относят антитела, меченные ферментами (для светопольной микро­скопии), флуорохромами (для люминесцентной микроскопии) и конт-растёрами (для электронной микроскопии).

    Антигенный анализ с помощью реакций агглютинации произво­дится со взвесью микроорганизмов, содержащей тысячи и миллионы микробных тел, то есть на уровне популяции, а иммунохимический анализ с использованием меченых антител — на уровне отдельных кле­ток. Причем д^я применения агглютинационного теста обязательно выделение микроба в чистую культуру, иммунохимический анализ на уровне отдельной клегки может производиться и в смешанной культу­ре или взвеси микробов.

    Реакция агглютинации (РА) пробирочная или пластинчатая выявляет только поверхностные антигенные детер­минанты K-.J3- и Н-антигенов микробной клетки. Поскольку К-антиген бактерий покрывает" детерминанты О-антигена, РА ставят с гретой и нативной взвесью идентифицируемой культуры. При этом культуру берут в стационарной фазе роста, когда все поверхностные антигены полностью экспрессированы. Для выявления Н-антигена культуру ис­следуют раньше.

    РА широко используют в ветеринарии для идентификации эшери-хий, сальмонелл и ряда других бактерий. Однако необходимость в вы­делении микробов в чистую культуру и накопления бактериальной массы снижают чувствительность данного теста и требуют много вре­мени для его осуществления. К тому же при постановке РА не учиты­ваются индивидуальные антигенные свойства бактерий исследуемой популяции, исключается возможность визуальной характеристики ан­тигенов.

    Указанных недостатков лишен метод флуоресцирующих антител (МФА), основанный на микропреципитации меченных флу­орохромами антител нг фиксированном антигене. Оседая на гомоло­гичной частице, меченые антитела специфически взаимодействуют с отдельными клетками, будь то в чистой или смешанной культуре. Поскольку преципитирующие на частице антитела мечены, они избира­тельно высвечивают индицируемые объекты. Поэтому даже единичные клетки будут видны в поле зрения микроскопа подобно тому, как свер кают звезды на темном небосклоне. Отсюда более высокая чувстви­тельность МФА по сравнению с РА и возможность использования иммунохимического анализа смешанных антигенов. Последнее делает возможным применение МФА для обнаружения антигенов непосредст­венно в патологическом материале, что не позволяет ни один серологи­ческий метод.

    -







    Рис. 52. Основные варианты метода флуоресцирующих антител (схема):

    а-—прямой одноступенчатый; б— непрямой двухступенчатый; в — непрямой трехступенчатый (ан-. тикочплементарный) /—антиген, 2 — немеченая сыворотка I ступени (б, в); 3 — меченая сыво­ротка против искомого антигена (а), антиглобулиновая II (б) и антикомплементарная III (в) сту­пеней; 4— комплемент сыворотки крови морской свинки.

    Из-за того, что отпадает необходимость выделять микроорганизмы в чистую культуру и сокращается время на постановку реакции пример­но в 20 раз, метод флуоресцирующих антител считается экспрессным. Принципиально важным преимуществом МФА является также возмож­ность дополнительно характеризовать морфологию исследуемых кор­пускул, что невозможно сделать при использовании серологических ме­тодов. Наконец, в отличие от РП и РА метод флуоресцирующих анти­тел выявляет антигенные детерминанты, взаимодействующие с иммуноглобулинами не отдельных (IgM или IgG), а всех классов, при­чем с функцией как полных, так и неполных антител.

    В лабораторной практике наибольшее распространение получили три варианта МФА: прямой, непрямой двухступенчатый и непрямой трухступенчатый (рис.52).

    Прямой „вариант заключается в том, что на фиксированный на стекле антигел_наносят меченою _а^ггисыворотку и инкубируют при тем­пературе тела животного^ 20—г 45_мщи МазокГотмывают от несвязав­шихся антител, покрывают нефлуоресцирующей жидкостью (например, диметилфталатом) и просматривают под люминесцентным микроско­пом. В положительном случае в поле зрения микроскопа видны ярко сверкающие клетки микроорганизмов. При этом микробы с развитым ри­гидным веществом по периферии светятся более ярко из-за суммации света от флуоресцирующих молекул, зафиксировавшихся по боковым участкам стенки клеток. Микроорганизмы с неразвитым ригидным сло­ем в стенке (например, вибрионы, лептоспиры, микоплазмы) обычно уплощаются при фиксации на стекле и поэтому светятся всей поверх­ностью равномерно.

    Прямой вариант достаточно чувствителен, специфичен, прост в ис­полнении и требует мало времени. Но экономически не выгоден, так как на каждый антиген нужно иметь меченую сыворотку. К тому же он при­годен лишь для обнаружения антигенов, то есть для прямой индикации.

    Непрямой двухступенчатый вариант сводится к тому, что на фикси­рованный антиген вначале наносят антисыворотку в немеченом виде (сыворотка

    Тступени), а затем уже антивидовую меченую сыворотку (сыворотка II ступени). В положительном случае между антигеном и сывороткой I ступени образуется иммунный комплекс, для выявления которого мы наносим меченую сыворотку II ступени, содержащую анти­тела, к иммуноглобулинам сыворотки I ступени. Таким образом, имму­ноглобулины сыворотки I ступени будут антителами для индицируемо­го антигена и одновременно антигенами для сыворотки II ступени.

    Сыворотка I ступени физически увеличивает размеры светящегося комплекса, поэтому данный вариант чувствительнее прямого и приго­ден для обнаружения даже самых мелких микроорганизмов (например, вирусов). Так как сыворотка I ступени применяется в немеченом виде, непрямой вариант можно использовать не только для прямой, но и для обратной индикации, то есть для обнаружения антител. Кроме того, данный вариант экономичнее прямого, так как для его осуществления надо иметь столько меченых антивидовых сывороток, сколько имеется продуцентов сыворотки I ступени. Сыворотку I ступени обычно получа­ют на кроликах, лошадях, волах, баранах, свиньях и курах. Следова­тельно," располагая набором из 5 — 7 антивидовых меченых сывороток, производственная лаборатория в состоянии выявлять все интересующие ее антигены и антитела.

    Непрямой трехступенчатый, или антикомплементарный, вариант заключается в последовательной обработке фиксированного на стекле антигена немеченой антисывороткой (сыворотка I ступени), немеченым комплементом (сыворотка II ступени) и, наконец, меченой антикомпле­ментарной—антивидовой сывороткой (сыворотка III ступени). При на­личии в препарате гомологичного сыворотке I ступени антигена между ними образуется иммунный комплекс, на который фиксируется компле­мент (сыворотка II ступени). Для выявления последнего мы и наносим антикомплементарную сыворотку (III ступени) в меченом виде.

    В качестве источника комплемента (сыворотки II ступени) может служить сыворотка любого животного, но наиболее активен компле­мент морской свинки. Поэтому обычно на II ступени применяют сыво­ротку крови морской свинки, а на III ступени — меченую кроличькмсьь— воротку 'против белков крови морской свинки. Таким образом, при на­личии лишь одного меченого реагента можно выявлять любой антиген или любое антитело.

    В качестве флуорохромов для метки антител чаще используют флуо-ресцеинтиоизоционат (ФИТЦ), светящийся изумрудно-зеленым цветом. Но в арсенале пригодных для метки антител флуорохромов имеются красители, светящиеся желтым, оранжевым, синим и другими цветами. Если каждым из них пометить антисыворотки различной специфично­сти, в одном и том же препарате можно наблюдать одновременно со­вершенно разные антигены или антигенные детерминанты, что также выгодно отличает МФА от серологических методов антигенного анализа.

    В случае метки антител светорассеивающими ферментами (напри­мер, пероксидаза хрена) иммунные комплексы можно выявлять под обычным светопольным микроскопом, что расширяет возможности и делает более доступным иммунохимический анализ с применением ме­ченых антител. Данный метод обладает многими достоинствами МФА. Однако и он не позволяет рассмотреть детали антигенного строения по­верхности микробной клетки и тем более ее внутренних структур. Это удается сделать с помощью иммунохимического анализа, основанного на использовании антител, меченных контрастирующими, то есть рассе­ивающими электроны веществами на уровне электронной микроскопии. С этой целью антитела конъюгируют с железосодержащим белком пе­чени лошадей или других животных ферритином, ртутьсодержащим соединением—диазофенилмеркуриацетатом или с йодом. Благодаря непроницаемости контрастирующих веществ можно определить количе­ство и локализацию антигенных детерминант на клеточном и субклеточ­ном уровне.
    Ситуационное задание

    У гражданки Петренко заболел подсвинок семимесячного возраста. При исследовании установлено повышение температуры тела до 40,50С, угнетенное состояние, вялость, отсутствие аппетита, запор. На коже спины и боков хорошо заметны красные пятна преимущественно прямоугольной формы, которые бледнеют при надавливании.

    Установите диагноз. Проведите лечение и порекомендуйте мероприятия по профилактике болезни в дальнейшем.
    РОЖА СВИНЕЙ

    Рожа свиней (Erysipelas suum) — инфекционная болезнь, харак­теризующаяся при остром течении септицемией и воспалительной эритемой кожи, а при хроническом — эндокардитом и артритами.

    Историческая справка. Возбудителя рожи свиней идентифицировали и описали Р. Кох (1878), Лёффлер (1881, 1885), Л. Пастер и Л. Тюилье (1882), вакцины из ослабленных штаммов возбудителя рожи получили Л, Пастер (1883), а противорожис-тую сыворотку — Лоренц и Лекланш (1885—1896). Позднее вакцинные штаммы из­готовили Д. Ф. Конев и Виноградник (ВР-2), которые в настоящее время в СССР используются для изготовления противорожистых вакцин.

    Возбудитель — бактерия Erysipelothrix insidiosa — единственный представитель рода Erysipelothrix из семейства Lactobacillaceae. Возбудителя рожи относят к убиквитарным (повсеместно встречающимся) микроорганизмам. В зависимости от условий обитания Е. insidiosa имеют неодинаковые морфологические, вирулентные, антигенные и им-муногенные свойства.

    Микроб нетребователен к питательным средам. Хорошо растет в аэробных и анаэробных условиях на МПБ, среде Хоттингера при температуре 36 — 38 °С и рН среды 7,4 — 7,8 (добавление 0,5% глюкозы и 5 — 10% лошадиной сыворотки стиму­лирует рост). Бактерии неподвижны, не образуют спор и капсул, окрашиваются растворами основных анилиновых красок и по Граму (рис. IV) На твердых пи­тательных средах образуют гладкие (S), шероховатые (R) и переходные (О) колонии. В мазках, приготовленных из свежих жидких культур, S-колоний и opiaHOB животных, павших при остром течении болезни, выявляются прямые или слегка изогнутые бак­терии рожи размером 0,2 — 0,3 х 0,5 — 1,5 мкм, располагающиеся единично или попарно В мазках из старых бульонных культур, R-колоний и в отпечатках из пораженных органов при хроническом течении рожи, обнаруживают удлиненные до 6 — 8 мкм бак­терии, расположенные в виде длинных цепочек (нитевидная форма).

    Возбудитель рожи имеет три антигенных типа — А, В и N. Болезнь вызывает преимущественно тип А, реже тип В и очень редко тип N (его часто выделяют от здоровых животных) Тип В обладает высокими иммуногенными свойствами и его используют для производства вакцин. Из лабораторных животных к бактериям рожи наиболее восприимчивы мыши и голуби.

    Устойчивость возбудителя рожи во внешней среде высокая; в почве и воде, в трупах и навозной жиже он сохраняется многие месяцы Соление и копчение свиных продуктов его не убивают. Бактерии рожи чувствительны к высокой тем­пературе, некоторым антибиотикам и дезинфицирующим средствам, включая растворы едкого натра и формальдегида (2 %-ные), хлорной извести (10 %-ный), фенола (3 %-ный) и другие в общепринятых концентрациях.

    Эпизоотологические данные. Рожа — это наиболее распространенная во всем мире инфекционная болезнь свиней. Ее регистрируют почти повсеместно в виде спорадических случаев или эпизоо-шческих вспышек. Чаще заболевают свиньи в возрасте 3—12 мес. Устойчивость со­сунов до 40 дней связана с пассивным иммунитетом, а у взрослых животных — с возрастной естественной резистентностью и латентным переболеванием.

    Помимо свиней, рожа спорадически встречается среди лошадей, крупного рогатого скота, овец, северных оленей, собак и многих диких млекопитающих и птиц зоопарков. Среди ягнят, индеек и уток, а также среди грызунов рожа может проявиться значительной эпи­зоотической вспышкой. Болеет рожей и человек.

    Среди многих видов домашних и диких животных, в особенности среди свиней, грызунов и птиц, широко распространено микробоно-сительство. Возбудителя рожи нередко можно выделить из организма морских и речных рыб, насекомых и членистоногих. Высокая устойчи­вость возбудителя во внешней среде и перманентная его циркуляция в природе обеспечивают широкий и постоянный резервуар возбудителя рожи и энзоотичность болезни. Это позволило отнести рожу к при-родно-очаговым болезням.

    Источником возбудителя рожи являются явно больные свиньи, выделяющие микробы с мочой и калом, и клинически здоровые свиньи — бактерионосители. При латентной форме бактерии рожи, обычно локализующиеся в миндалинах и кишечных фолликулах, могут при стрессе, особенно под влиянием высокой температуры и при белковой недостаточности, вызвать клиническое проявление болезни. В результате этого эпизоотические вспышки рожи в хозяйствах чаще возникают эндогенно, без заноса возбудителя извне.

    Факторами передачи возбудителя рожи служат инфицированные предметы ухода, корм и вода, продукты убоя животных, трупы, почва и т. д. Переносят возбудителя чаще грызуны, мухи-жигалки и птицы. Основной путь распространения возбудителя — кормовой, реже — трансмиссивный и контактный.

    Особо важное значение в распространении рожи имеет почва. Рожа, являясь почвенной инфекцией, имеет выраженную весенне-лет­нюю сезонность и чаще возникает среди ремонтного и откормочного молодняка. Высокая температура в сочетании с повышенной влажностью, содержание свиней в душных, плохо вентилируемых помещениях, сол­нечный стресс, транспортировка, недостаток в рационе протеина, ми­неральных веществ и витаминов снижают устойчивость к роже и од­новременно способствуют возникновению, широкому распространению, тяжести клинического проявления и интенсивности эпизоотического процесса. Эпизоотологической особенностью рожи является ее стацио­нарность, проявляющаяся повторными вспышками преимущественно в теплое время года. Длительность эпизоотической вспышки, забо­леваемость и летальность зависят от технологии разведения свиней, своевременной и точной диагностики болезни, вирулентности и ти­повой принадлежности возбудителя, иммунологической структуры стада и тщательного проведения оздоровительных мероприятий. Эпизооти­ческие вспышки, как правило, не имеют тенденции к широкому рас­пространению : заболеваемость обычно не превышает 20 — 30 /„ ле­тальность — 55 —80 %.

    Патогенез. Попавшие в организм бактерии рожи вначале раз­множаются в местах первичной локализации (миндалины, солитарные фолликулы, места повреждения кожи), вызывая нарастающую сенсиби­лизацию организма (аллергию). Если возбудитель рожи попадает в ор­ганизм с высокой естественной резистентностью, то первичный процесс может ограничиться местной инфекцией, протекающей бес­симптомно или со слабовыраженными клиническими признаками, за­канчиваясь образованием иммунитета. При неблагоприятных условиях внешней среды и стрессе бактерии рожи преодолевают местные за­щитные барьеры, проникают в кровь и паренхиматозные органы, вызывая септицемию. Интенсивное размножение бактерий и накопле­ние токсических продуктов приводит к воспалительным явлениям и глу­боким дистрофическим изменениям в органах и тканях. Генерализо­ванная инфекция сопровождается развитием тромбов, отеков, застойных явлений во внутренних органах и коже, нарушением тканевого об­мена. При остром течении болезни ярко выражены тяжелые клини­ческие признаки септицемии (гипертермия, сердечная недостаточность, отек легких), заканчивающейся летальным исходом.

    У животных с остаточным иммунитетом, а также при внедрении слабовирулентного возбудителя инфекционный процесс носит более доброкачественное течение. Болезнь в таких случаях протекает подостро и хронически и проявляется преимущественно гиперемией и местным воспалением кожи в виде ромбовидных рожистых пятен, веррукозным эндокардитом и артритами. Заметно проявляются за­щитно-иммунологические реакции в местах преимущественной лока­лизации бактерий. Исход болезни зависит от глубины поражения ор­ганов и тканей и степени функциональных нарушений.

    Течение и симптомы. Инкубационный период 2 — 5 дней, но может быть и более продолжительным. В зависимости от количества и ви­рулентности возбудителя, ворот инфекции, восприимчивости животных и факторов внешней среды рожа может протекать молниеносно, остро, по достро и хронически. Различают также септическую, кожную (кра­пивница) и латентную формы.

    Молниеносное течение регистрируют сравнительно редко, преимущественно у откармливаемых подсвинков в возрасте 7—10 мес, содержащихся в плохих зоогигиенических условиях или во время транспортировки. Рожа проявляется резким угнетением, гипертермией и быстро прогрессирующей сердечной слабостью без появления на коже красных пятен (белая форма рожи). Болезнь в течение не­скольких часов заканчивается летальным исходом.

    Острое течение наиболее типично для септической формы рожи, его часто регистрируют в начале эпизоотической вспышки. Болезнь начинается угнетением общего состояния и внезапным по­вышением температуры тела до 42 °С и выше. Заболевшие животные обосабливаются из общей группы и больше лежат; перемещаются неохотно, отмечается напряженная, болезненная, ходульная походка. Животные отказываются от корма, у них появляются запоры, озноб и сердечная недостаточность. Иногда наблюдают рвоту, а у поросят-отъемышей и диарею.

    Ослабление сердечной деятельности приводит к отеку легких, затрудненному дыханию и цианозу кожи в подчелюстной области, а также шеи и брюшной стенки. Эритематозные пятна бледно-розового, а в последующем темно-красного цвета различной величины и формы появляются на 1 — 2-й день после начала заболевания лишь у отдельных животных. Заболевание продолжается 2—4 дня и без лечебной помощи часто заканчивается гибелью животного.

    Подострое течение рожи проявляется сравнительно легче в кожной форме (крапивница), для которой свойственны повышение температуры до 41 °С и выше, слабость, снижение аппетита и жажда. Для крапивницы характерным признаком служат образование через 1—2 дня на коже головы' и туловища, реже на других участках тела, плотных воспаленных припухлостей квадратной, ромбической и реже округлой формы (рис. 27). Количество и размеры эрите-матозных пятен сильно варьируют между собой, захватывая обшир­ные участки кожи. В большинстве случаев крапивница протекает доб­рокачественно, и при выздоровлении животного пятна постепенно бледнеют и исчезают. На их месте в легких случаях эпителий кожи десквамируется, а при тяжелых — наступает омертвление кожи и ее отторжение с заполнением дефектов рубцовой тканью. Болезнь длится 7—12 дней и в большинстве случаев, особенно при своевременном лечении, заканчивается выздоровлением. Лишь иногда она обостряется и переходит в обычную септицемическую форму.

    Хроническое течение рожи в редких случаях представляет самостоятельное проявление болезни. Большей частью это лишь продолжение септической формы или кра­пивницы с осложнениями, проявляю­щимися разлитым (рожистым) некро­зом кожи, веррукозным эндокардитом и хроническим поражением других ор­ганов.

    При сильном некрозе большие участки кожи превращаются в сплош­ное темно-красное возвышение с черно­ватым оттенком в форме плотной и сухой, похожей на панцирь, некроти­ческой корки. Рожистый процесс длит­ся месяцами, пока некротическая ткань не отторгнется путем нагноения Жи­вотные плохо откармливаются, что вызывает необходимость их убоя.

    Веррукозный эндокардит проявля­ется нарушением сердечной деятельнос­ти, прогрессирующей слабостью, оды­шкой, застойными явлениями, анемией и исхуданием. Исход болезни зависит от тяжести поражения сердечных кла­панов.

    Полиартриты рожистого проис­хождения вначале проявляются горя­чей припухлостью и болезненностью чаще скакательных и бед­ренных, реже карпальных и путовых суставов; животные передвига­ются с трудом; позже признаки острого воспаления исчезают и воз­никает деформация суставов, что вызывает хромоту и ограничивает движение животных.

    Патологоанатомические изменения при роже свиней разнообразны, что определяется течением и формой болезни. У свиней, павших при остром течении болезни, находят изменения, свойственные септическому процессу. Кожные покровы неистощенного трупа в области подгрудка и промежности цианотичны, на спине и боках при крапивнице на­ходят различной величины темно-красные участки. Серозные покровы внутренних полостей и органов покрыты нитями фибрина и нередко усеяны мелкими кровоизлияниями. Лимфоузлы увеличены, резко ги-перемированы с четко выступающими фолликулами. Селезенка уве­личена, печень кровенаполнена и паренхиматозно перерождена, почки набухшие, темно-вишневой окраски, с мелкими кровоизлияниями в кор­ковом слое (геморрагический гломерулонефрит), в легких — нередко выраженный отек и иногда очаги бронхопневмонии Сердечная мышца бледновата и размягчена. Слизистая оболочка дна желудка и тонких кишок, как правило, отечна и гиперемирована, с множеством то­чечных и полосчатых кровоизлияний. При хроническом течении рожи находят изменения, свойственные веррукозному эндокардиту (бородав­чатые разращения на клапанах), а при воспалении суставов — фиброзные разращения синовиальных оболочек.

    Диагноз. Прижизненный клинический диагноз при остром течении рожи и кра­пивнице основываегся преимущественно на характерных поражениях кожи, которые проявляются на фоне общих нарушений Необходимо учитывать эпизоотологические данные и высокую лечебную эффективность противорожистой сыворотки и антибиотиков. Для посмертного диагноза наиболее характерны: увеличение селезенки, острый катаральный гастроэнтерит, геморрагический лимфоденит и гломерулонефрит.

    Точный диагноз ставят по результатам бактериологического исследования, для чего в лабораторию пересылают кусочки селезенки, печени, почки и трубчатую кость. В лаборатории проводят микроскопию мазков, окрашенных по Граму, и вы­деляют возбудителя путем посевов на питательные среды. В необходимых случаях эмульсией из паренхиматозных органов заражают белых мышей или голубей. Для диагностики рожи также рекомендована реакция иммунофлуоресценции.

    Дифференциальный диагноз. Острую септическую форму рожи и крапивницу необходимо дифференцировать от чумы, пастереллеза, сальмонеллеза, листериоза, си­бирской язвы, солнечного и теплового ударов. При хроническом течении необходимо исключить хроническое течение чумы, микоплазмозный полисерозит, полиартрит, стрептококковую и коринебактериальную инфекции, рахит и остеомаляцию.

    Лечение. Эффективными лечебными препаратами являются про-тиворожистая сыворотка и антибиотики. Сыворотку вводят подкожно или внутримышечно в дозе 1 — 1,5 мл на 1 кг живой массы жи­вотного. При тяжелом состоянии животного лучший лечебный эффект достигается, если половину дозы сыворотки вводят в ушную вену. При роже эффективны также многие антибиотики — пенициллин, стреп­томицин, окситетрациклин, экмоновоцилин, эритромицин и др. Пред­почтительнее применять пенициллин в дозе 2 — 3 тыс. ЕД на 1 кг живой массы животного с промежутками в 6 — 8 ч.

    Лучшие результаты получают при совместном применении сыво­ротки с антибиотиками. Если после 8—12 ч лечения состояние боль­ных не улучшается, сыворотку и антибиотики вводят повторно. Спе­цифическую терапию необходимо сочетать с симптоматическим ле­чением.

    Иммунитет. Переболевшие рожей свиньи приобретают напряжен­ный и длительный иммунитет, сопряженно связанный со специфическим фагоцитозом и сывороточными антителами. Для иммунизации сви­ней против рожд в СССР в основном применяют живые вакцины (вакцину из румынского штамма ВР-2 и депонированную вакцину из штамма Д. Ф. Конева), а также концентрированную гидроокисьалю-миниевую формолвакцину. Прививают свиней старше 2-месячного воз­раста (поросят обычно спустя 2 недели после отъема). Вакцину из штамма ВР-2 применяют однократно, а депонированную и инакти-вированную вакцины — двукратно с интервалом 12—14 дней. Животных ревакцинируют через 4—5 мес.

    Профилактика и меры борьбы. Эффективная борьба с этой бо­лезнью возможна лишь путем проведения плановых повсеместных, общих и специфических профилактических мероприятий. Общая про­филактика заключается в строгом соблюдении ветеринарно-санитарных правил и технологических требований по размещению, уходу и корм­лению свиней с целью получения и выращивания устойчивого мо­лодняка. Особое внимание обращают на сбалансированность рационов по протеину, микроэлементам и витаминам, а также на профи­лактику теплового стресса. Систематически проводят уборку навоза, очистку помещений и территорию свинофермы, плановую дезинфек­цию и борьбу с грызунами и мухами.

    Важнейшим методом специфической профилактики являются пре­дохранительные прививки вакцинами. Вакцинацию следует проводить планово и систематически со 100 %-ным охватом всего подлежащего прививкам свинопоголовья общественных и индивидуальных хозяйств. Если в хозяйствах проводят предохранительные прививки против дру­гих инфекционных болезней (чумы, болезни Ауески, сальмонеллеза).

    1   ...   33   34   35   36   37   38   39   40   ...   44


    написать администратору сайта