Яковенко в а. Субклинический мастит коров
 Скачать 42.7 Kb.
|
1 2 1.2. Диагностика субклинического мастита Успех борьбы с маститом коров и профилактика этого заболевания зависит от своевременной его диагностики. Ранее выявление мастита имеет большое хозяйственное, санитарное и технологическое значение. Своевременная диагностика этого заболевания предупреждает атрофию пораженных долей В.И. Мутовин (1963) отмечает, что на самых ранних стадиях возникновения субклинического мастита иногда можно обнаружить некоторые неясные клинические признаки: незначительное увеличение доли, ее уплотнение, повышение местной температуры. Через несколько дней эти признаки исчезают. Известно, что молоко является биологической жидкостью сложного химического состава, с определенными физическими свойствами. Физикохимические свойства молока изменяются в зависимости от целого ряда факторов: породы и возраста животных, периода лактации, условий кормления и содержания, состояния здоровья животного и др. Поскольку субклинический мастит в начальной стадии протекает без выраженных признаков воспаления, диагностика данного заболевания основана на выявлении физико – химических изменений молока. Была предложена проба отстаивания молока как простая объективно указывающая на нарушение секторной функции молочной железы. При 25 оценке пробы учитывали цвет молока, наличие осадка, примесей в молоке, высоту слоя сливок и их внешний вид. При сопоставлении пробы отстаивания с другими тестами В.И. Мутовин установил, что появление в молоке осадка высотой более 1 мл в 88,9% с повышенной щелочностью и практически всегда с повышенным содержанием клеток Молоко вымени здоровых коров, по данным И.С. Загаевского (1971), имеет слабокислую реакцию (pH 5,8-6,9). Д.Д. Логвинов, (1971) утверждает, что при субклиническом мастите pH молока изменяется в щелочную сторону до 6,7-7,1 и до 6,8-7,3. На свойстве секрета вымени изменять pH в щелочную сторону при поражении долей маститом основано применение различных индикаторов. В 60 годы активно применяли бромтимолблау в форме 0,2%-ного водноспиртового раствора и индикаторных карточек. По данным И. Велиток (1967), бром тимоловая проба является чувствительной и может выявлять больных субклиническим маститом. Также считает В.Я. Никитин (1967). Н.Д. Поташевский (1965) считает, что пробы с универсальным индикатором бромтимолблау на стекле дают более точные результаты на свежем воздухе, так как количество аммиака снижено. По результатам исследований Н.К. Оксамитного, (1970), Д.Д. Логвинова (1971) индикаторные карточки менее чувствительными, чем растворы индикаторов и рекомендует применять первые в качестве вспомогательного диагностического теста, только подсобным методом ранней диагностике мастита, необходимо проводить исследование другими тестами. Составной частью молока являются клетки: лейкоциты, эпителий, количество которых, по данным ряда авторов, варьирует.С развитием воспалительного процесса резко возрастает количество клеточных элементов в моло- 26 ке. Для определения повышенного содержания в молоке клеточных элементов предложены прямые и косвенные методы. Из прямых методов используется подсчет лейкоцитов в молоке в счетной камере и по методу Брида. Эти методы позволяют достаточно точно судить о состоянии молочной железы. А.П. Береснева (1969) определила, что подсчет лейкоцитов в молоке это один из самых точных методов, и должен является основным для диагностики субклинического мастита. И.М. Глезер (1970) рекомендовал экспресс-метод в счетной камере с использованием окрашивающего солюбилизирующего раствора. Раствор разрушает жировые шарики и окрашивает клеточные элементы молока. Из косвенных методов определения количества клеточных элементов в молоке наиболее часто в 19 веке применялась проба Уайтсайда (4%-ным раствором едкого натрия), которая позволяла выявить 94,535% случаев субклинического мастита. Однако Н.К. Оксамитный (1970) доказал, что проба Уайтсайда выделяет только 50,0% больных субклиническим маститом. Он считает пробу Уайтсайда недостаточно чувствительной. Н.И. Полянцев (2003) предложил диагностикум «Дон-1». Из каждой доли вымени в соответствующую лунку молочно-контрольной пластины выдаивали по 1 мл молока и к нему добавляли 1 мл «Дон-1». Смешивали молоко с реагентом стеклянной палочкой в течение 20-30 сек, и учитывали результаты по степени образования желеобразного сгустка различной степени плотности. Образование желеобразного сгустка в лунках свидетельствовало о наличии субклинического мастита в молочной железе. В последние годы для более объективной оценки состояния молочной железы предложен ряд тестов, которые позволяют учитывать активную кислотность молока и количество клеток одновременно. К таким тестам относятся тест с димастином, мастидином, масттестом, кенотестом. Объединение 27 двух исследований в один процесс достигается за счет включения в состав тестов поверхностно-активных веществ и индикаторов. Поверхностно-активное вещество взаимодействует с ДНК, содержащейся в ядрах клеток молока, и образует желе подобный сгусток различной плотности, а индикатор окрашивает смесь в тот или иной цвет в зависимости от pH молока. При этом желе образование считается основным диагностическим признаком, а цветной показатель – дополнительным. Тест с димастином, эффективен при диагностике субклинического мастита. Т.И. Падегимас (1968) получил совпадающие реакции по димастину с результатами бактериологического исследования в 86,2% случаев. В. Иешмантас (1968), считает что применение димастина является доступным, быстрым и точным методом. Можно использовать пробу с мастидином. Из каждой доли вымени в соответствующую лунку молочно-контрольной пластины выдоить 1 мл молока и к нему добавить 1 мл 2% водного раствора мастидина. Смешать молоко с реагентом стеклянной палочкой в течение 20-30 секунд и учитывать результаты по степени желеобразования и изменению индикатора (Н.И. Полянцев 2003). Положительная реакция характеризуется образованием желеобразного сгустка темно-сиреневого цвета различной плотности. Так же используют для диагностики субклинического мастита цитологический метод, который состоит в определении количества лейкоцитов в молоке. У здоровых коров оно находится в пределах от 100 тыс. до 500 тыс./мл, тогда как у больных составляет 1-6 млн/мл. Количество лейкоцитов в пробах молока можно определить прямым либо косвенным путем. Для прямого подсчета в настоящее время за рубежом используют электронные счетчики частиц «Фоссоматик», этот прибор обеспечивает ежемесячный электронный контроль числа лейкоцитов в молоке на поголовье 18-20 тыс. коров. При отсутствии прибора применяют непрямой метод. Он основан на использовании поверхностно-активных веществ (сульфанол, триполисуль- 28 фат, акрилсульфат). При их внесении в пробу молока происходит разрушение клеточных мембран лейкоцитов и высвобождение нитей ДНК, при повышении содержания лейкоцитов смесь молока с реагентом приобретает консистенцию желе (К.Д. Валюшкин 2003). Таким образом в диагностике субклинического мастита объективная оценка состояния молочной железы возможна лишь при условии комплексного ее исследования с учетом изменения активной кислотности молока и количества клеток одновременно. 1.3. Лечение коров при субклиническом мастите При субклиническом мастите применяется в основном этиотропное лечение, которое сводится к внутрицитернальному применению противомаститных препаратов, на протяжении лактации, в период запуска или сухостоя. Н.М. Хилькевич (1965), Н.И. Полянцев (2003) рекомендуют перед началом лечения проверить степень чувствительности болезнетворных микроорганизмов к разным антибиотикам. При отсутствии данных о чувствительности микробов к антибиотикам многие авторы рекомендуют применять антибиотики широкого спектра противомикробного действия или синергидные комбинации антибиотиков. И.А. Кассирский, (1970). Высокий терапевтический эффект при мастите, наблюдается при введении лекарственных веществ в молочную железу через сосковый канал или галактогенным путем, так как в молочной железе ярко выражены процессы всасывания. При внутрицистернальном введении препаратов лактирующим коровам в оттекающей от вымени лимфе поддерживается и высокая концентрация до суток. При внутримышечном введении ниже и непродолжительное время. 29 Для продления срока действия препаратов, вводимых в пораженные доли вымени, рекомендуется применять их в виде суспензии в растительных маслах (И.Е. Мозгов, 1971). Д.С. Коновалов (2005) рекомендовал для лечения субклинического, серозного, катарального и гнойно-катарального мастита применять гентодиамаст внутримышечно в дозе 5 мл по 1 разу в день в течение 3-5 суток при уровне заболеваемости от 6,6% до 10,2%, что обеспечивало повышение лечебной эффективности при субклиническом мастите до 95,2%, серозном мастите – до 85,0%, катаральном – до 83,6%, гнойно-катаральном – до 80,6%. При этом отмечали уменьшение доли родовых и послеродовых осложнений, увеличение выхода приплода на 16,0% и повышение молочной продуктивности на 521кг молока в год. Использование в качестве антимикробных средств 1% водного раствора диоксидина сопровождается повышением лечебной эффективности при субклиническом мастите до 90,5%, при клинически выраженном мастите – до 72% (Гасанов Н.Г., 2000). По данным Г.М. Латыповой (2007) применение мази «Йодилин-маст» при различных формах мастита, особенно субклинического обеспечило в опытной группе полное выздоровление у 86,7% коров (на 6,7% больше, чем в контрольной). После завершения курса лечения суточные удои в опытной группе возросли на 21,8%. Количество соматических клеток в секрете молочной железы опытной группы снизилось до 279,5±10,7 тыс/мл (на 64,4%). Произошло уменьшение лейкоцитов на 17,1% (Р‹0,01) от первоначальных показателей, увеличение количества эритроцитов, гемоглобина на 24,0% (Р‹0,01) и на 14,6% (Р‹0,01) соответственно. При биохимическом исследовании сыворотки крови у коров установлено увеличение общего белка на 6,6% (Р‹0,05), кальция – на 8,9% (Р‹0,05), фосфора – на 6,9% (Р‹0,01) и каротина – на 11,9% (Р‹0,01). Терапевтическое применение йодилин-масти при трещинах на коже сосков вымени приводит к 95-100%-му восстановлению ее цело- 30 стности, а использование мази в сочетании с короткой новокаиновой блокадой при маститах обеспечивает выздоровление до 93,3% животных. И. Идельбаев (2007) выяснил, что терапевтическая эффективность лечения коров с субклиническим маститом кандидозным анатоксином в сочетании с мастицидом составила 93,3%, с диофуром – 100,0%; с аспергилезным анатоксином и диофуром – 100,0%; мастицидом в сочетании с тиосульфатом натрия при внутримышечном и внутривенном введениях – 73,3-80,0%, соответственно; с диофуром в сочетании с тиосульфатом натрия при внутримышечном и внутривенном введениях – 93,3-100,0% животных, соответственно. Экономическая эффективность комплексного способа лечения коров с разными формами мастита с использованием анатоксинов, приготовленных из грибов рода Candida и Aspergillus в сочетании с диофуром в 1,27-3,4 раза выше, чем только от применения диофура. Причем лечение коров с субклиническом маститом во время запуска и сухостоя более эффективно, чем на протяжении лактации, так как в этот период можно подавить патогенные микроорганизмы и профилактировать появлении мастита после отела. С целью повышения эффективности лечения в последние годы прибегают к использованию антибиотиков в комбинации с кортикостероидами (гидрокортизон, пренизолон), ферментами поджелудочной железы, хлористым кобальтом (O.Uvazov, 1971),которые обладают противовоспалительными, противоаллергическими свойствами и способствуют более быстрой нормализации патологического процесса. B. Schiefez (1999) доказал, что кортикостероиды и цитопластические препараты могут способствовать развитию грибов в лечебных долях вымени. Применение антибиотиков для лечения мастита у коров имеет и отрицательное действие, так как они обладают раздражающим действием на ткани молочной железы. 31 По данным GuidryA. (1997) у животного после интрацистернального введения эритромицина в дозе 900 мг возникает беспокойств, а введение раствора стрептомицина в здоровую долю вымени вызывает изменения, характерные для скрытого мастита. В последние годы многие исследователи говорят о снижении терапевтической эффективности антибиотиков. Причиной снижения эффективности антибиотиков при маститах многие авторы считают появление большого количества штаммов микроорганизмов, устойчивых к антибиотикам. Антибиотики губительно воздействуют на возбудителей заболевания, но, но и угнетают физическую микрофлору, которые активирует защитные механизмы. По данным Д.Д. Логвинова (1978),считает, что после применения антибиотиков для лечения маститов возможно появление мастита микозного происхождения. При терапии маститов антибиотиками последние длительное время выделяются с молоком как из леченных, так и из смежных здоровых долей. H. Hauke (1995) установил, что молоком выделяется 26,0 – 49,0% антибиотиков, введенных интрацистернально. При исследовании молока на 110 молочных фермах в19,0% случаев обнаружил наличие пенициллина в дозах 0,1 ед./мл и выше. Выделение антибиотиков с молоком создает ряд других проблем. Употребление в пищу молока, содержащего антибиотики, вызывает у людей аллергические реакции. В США не менее 10,0% населения имеет повышенную чувствительность к пенициллину. Молоко, содержащее примесь антибиотиков, непригодно для технологических целей, особенно для приготовления сыров и кисломолочных продуктов, поскольку присутствующие в молоке антибиотики замедляют разви- 32 тие молочнокислых бактерий и не препятствуют развитию антибиотикоустойчивых микроорганизмов, преимущественно стафилококков. С целью недопущения попадания в пищу молока с примесью антибиотиков его бракуют в течение 5 – 7 дней после прекращения лечебной обработки животного с использованием в корм животным после кипячения. Ряд авторов (F.Six, O.Pfannenmullez, 1988) предлагают при лечении маститов использовать окрашенные противомаститные препараты, чтобы контролировать сроки выделения их с молоком и таким образом, предупреждать использование в пищу. Для этиотропной терапии коров при мастите широко используются сульфаниламиды. Из большого количества сульфаниламидов, вырабатываемых промышленностью, для этих целей чаще всего применяются норсульфазол, белый стрепотоцид и др. в составе готовых лекарственных форм: мастисан, мастицид, мастикур, мастиесте и др. Они действуют бактериостатические, снижают воспалительную реакцию, ускоряют процесс фагоцитоза, уменьшают интоксикацию, способствуют повышению устойчивости организма, однако они не получили широкого распространения при лечении субклинического мастита, так как при местном применении вызывают раздражение тканей. По данным А.Т. Марчук (1969) нитрофурановые препараты (фуразолидон, фуразолин, фурагин) при субклиническом мастите обладают высокой терапевтической эффективностью. В литературе, однако есть сообщения о том, что нитрофурановые препараты обладают кумулятивным действием. По данным А. Буданцева, Е. Шевченко(1985), Иноземцева В.П, Балкового И.И., Нежданова А.Г, (2002) и Г.В. Радионова (2008) остаточное количество антибиотиков обнаруживается в пробах молока на протяжении всего курса лечения и последующие 72-96 и более часов. Наличие их в молоке на сегодня рассматривается как серьезная проблема в медицине. Так, упот- 33 ребление в пищу молока, содержащего остаточные антибиотики, вызывает реакции аллергического и анафилактического характера, дисбактериозы в кишечнике человека. Все это указывает на актуальность работ по созданию не антибиотических противомаститных препаратов. Н.В. Ланская (2001) считает, что применение при мастите коров (клинически выраженном и субклиническом) настоев лекарственных растений: крапивы двудомной, зверобоя, толокнянки, тысячелистника, вводимых интрацистернально в дозе 10 мл после вечернего доения 1 раз в сутки на протяжении 3 дней приводит к выздоровлению. В.М. Карташова (2001) сообщила о положительных результатах применения при мастите коров препарата стрептоэколат, представляющего собой жидкую культуру молочнокислых стрептококков. По данным В.В. Мальцева (2000) эффективность терапии биосаном, созданным на основе лактобацилл, составила при катаральном мастите 81,21%, гнойно-катаральном – 68,4%. Субклинический мастит излечивался у 85,7% животных. По данным А.П. Гончарова (2007) препарат линомаст обладает высокой бактерицидной активностью в отношении основных возбудителей мастита: стафилококков – 0,025 ЛЕ/см3 , стрептококков – 0,38-0,78, кишечной палочки – 3,13 ЛЕ/см3 , псевдомонад – 6,25-12,5 ЛЕ/см3 . Показано, что применение препарата линомаст для лечения больных маститом коров в производственных условиях обеспечивает выздоровление после 1-3 введений 99,5% коров. Терапевтическая эффективность данного препарата при субклиническом и серозном мастите составляет 100,0%, а серозно-катаральном – 94,7%, что в целом обеспечивает снижение уровня заболеваемости коров на фермах на 25,9%. Таким образом, на основании данных обзора литературы видно, что субклиническим маститом заболевает от 3,4до 75,8% коров .Основной при- 34 чиной возникновения скрытого мастита является микрофлора, патогенность которой усиливается на фоне снижения резистентности организма коров и тканей молочной железы. Возникновению мастита способствует нарушение правил доения, содержания, кормления, эксплуатации коров. Применение антибиотиков, особенно без учета чувствительности к ним микроорганизмов, привело к появлению антибиотикоустойчивых штаммов микроорганизмов и снижению их терапевтической эффективности. Антибиотики, применяемые для лечения мастита, длительное время выделяются с молоком как из леченных, так и из смежных здоровых долей. Следовательно, они могут попадать с молоком в организм человека и животных, оказывая отрицательное действие на состояние их здоровья. Поиск новых экологически чистых препаратов и способов лечения коров при скрытом мастите является актуальной задачей ученых и ветеринарных врачей 1.4. Профилактика скрытого мастита Проблему оздоровления молочных стад от мастита нельзя решить лечебными мерами, если они не подкрепляются комплексом организационнохозяйственных, зооинженерных, ветеринарных мероприятий, направленных на повышение неспецифической резистентности организма, своевременное устранение всех тех причин и способствующих факторов, которые могут повлечь за собой новые случаи заболевания (А. Буданцев, Е. Шевченко1985). Профилактическое значение имеют соблюдение технологии заготовки, хранения кормов и подготовки их к скармливанию, соблюдение зоогигиенических параметров в животноводческих помещениях, правильная организация зимнего моциона и летне-пастбищного содержания (Иноземцев В.П, Балковой И.И., Нежданов А.Г 2002). Важное значение отводится зооинженерному и ветеринарному контролю за технологией и гигиеной машинного доения (Родин Н.А. 2000, Ланская Н.В. 2001, Попов Л., 2005, Г.В. Радионова 2008,Слободняк В.И. 2008). 35 Рекомендуется проводить на фермах следующие мероприятия. 1. Кормить коров необходимо в соответствии с нормами, учетом живой массы, продуктивности, периода лактации, состояния организма. Рацион должен быть составлен таким образом, чтобы удовлетворялась потребность животных в белках, углеводах, минеральных веществах, микроэлементах и витаминах. Не допускается однообразное (силосно-сенажное) кормление животных, скармливание заплесневелых, прокисших и мерзлых кормов, которые могут вызвать заболевание желудочно-кишечного тракта. 2. Необходимо соблюдать распорядок дня на ферме. Доят коров всегда в одни и те же часы. Это способствует закреплению у коров рефлекса на молокоотдачу, а следовательно и повышению удоя, увеличению в молоке жира и уменьшению заболеваний коров маститом. Нарушение режима доения и первичной для коров обстановки вызывает недодой. Задержка молока в вымени раздражает ткани молочной железы и при наслаивании патогенной микрофлоры вызывает воспаление. 3.Преддоильную обработку вымени осуществляет оператор машинного доения путем обмывания его проточной теплой водой с последующим обтиранием полотенцем, слегка увлажненным 0,5% раствором хлорамина. Запах хлора молоку не передается. Так же можно применять моющие растворы: Foalan (Фоалан) и Foatec (Фоатек) и другие. 4. Подготовка вымени к доению не должна продолжаться дольше 1 мин, так как это тормозит рефлекс молокоотдачи. Оператор должен обращаться с животными спокойно, ласково, вымя обмывать энергично, смывая загрязнения с кожи, массируя его.Не допускается одновременное обмывание вымени нескольких коров, так как при большом промежутке времени между обмыванием и началом доения (свыше 1 мин) тормозится рефлекс молокоотдачи, что приводит к неполному выдаиванию молока, снижению его секреции, преждевременному запуску коров и нередко к маститу.На подготовленное вымя сразу же надевают доильные стаканы, подогретые до температуры 36 38-40°С. Холодные стаканы, а так же холодная вода тормозит рефлекс молокоотдачи, а следовательно, способствуют уменьшению удоя, снижению жирности молока и увеличению заболеваемости коров маститом. 5. Коров, больных маститом, с травмами трещинами, фурункулами, дерматитами на коже сосков или вымени целесообразно переводить на ручной или трехтактный режим доения и подвергать лечению. 6.В профилактике стафилококкового мастита большое значение имеет подготовка кадров, в частности, операторов машинного доения и механиков по контролю за техническим состоянием доильных установок или аппаратуры. Во избежание накопления стафилококка в узлах доильного оборудования в теплые времена года генеральную чистку и дезинфекцию с разборкой на части доильной аппаратуры проводят при температуре наружного воздуха 20-30 °С и выше, один раз в два дня. Это мероприятие способствует улучшению санитарного качества молока и уменьшению заболевания коров маститом. 7. Эффективное проведение дезинфекции сосков сразу после снятия доильных стаканов при помощи дезинфицирующих растворов (гипохлорид натрия 0,5% раствора хлорамина). Для предупреждения дерматитов и смягчения кожи сосков в дезинфицирующие растворы необходимо добавлять 1% глицерина или использовать спец. средства для гигиены вымени Violit (Виолит) и Kliovit (Клиовит) и другие. 8. Ежемесячно проверять все поголовье на поражение субклиническим маститом. Выделенных коров немедленно подвергают рациональному лечению. 9. Следить за колебаниями вакуума между сосками и сосковой резиной, за частотой пульсации и соотношением тактов в доильном аппарате.Величина вакуума в вакуум-проводе во время доения должна быть в пределах 360-380 мм ртутного столба - для двухтактных. 37 10. В профилактике мастита важная роль принадлежит сосковой резине, которая всегда должна быть эластичной, а доильный аппарат обеспечен двумя ее комплексами, которые используются поочередно. 11. Постоянное ведение селекционно-генетической работы, направленной на повышение устойчивости коров к маститу. Таким образом, на основании данных обзора литературы видно, что субклиническим маститом заболевает от 3,4до 75,8% коров. Основной причиной возникновения скрытого мастита является микрофлора, патогенность которой усиливается на фоне снижения резистентности организма коров и тканей молочной железы. Возникновению мастита способствует нарушение правил доения, содержания, кормления, эксплуатации коров. Применение антибиотиков, особенно без учета чувствительности к ним микроорганизмов, привело к появлению антибиотикоустойчивых штаммов микроорганизмов и снижению их терапевтической эффективности. Антибиотики, применяемые для лечения мастита, длительное время выделяются с молоком как излеченных, так и из смежных здоровых долей. Следовательно, они могут падать с молоком в организм человека и животных, оказывая отрицательное действие на состояние их здоровья. Поиск новых экологически чистых препаратов и способов для лечения коров при скрытом мастите является актуальной задачей ученых и ветеринарных врачей 1 2 |