Занятие №20. Возбудители дифтерии, коклюша, паракоклюша
 Скачать 196.22 Kb.
|
|
ГБОУ ВПО “Уральская государственная медицинская академия” Министерства здравоохранения Российской Федерации Кафедра микробиологии, вирусологии и иммунологии Методические указания №20 к практическим занятиям для студентов ООП специальности 060101.65 Лечебное дело Дисциплина С2.Б.10 Микробиология, вирусология 1. Тема: Возбудители дифтерии, коклюша, паракоклюша. 2. Цели занятия: Изучить со студентами свойства возбудителей дифтерии, коклюша и паракоклюша, факторы патогенности и патогенез вызываемых заболеваний, методы диагностики, профилактики и лечения дифтерии, коклюша и паракоклюша. 3. Задачи занятия: 3.1. Изучение свойств возбудителя дифтерии. 3.2. Изучение патогенеза дифтерии. 3.3. Изучение методов диагностики, профилактики и лечения дифтерии. 3.4. Изучение свойств возбудителей коклюша и паракоклюша. 3.5. Изучение факторов патогенности возбудителя и патогенеза коклюша. 3.6. Изучение методов диагностики, профилактики и лечения коклюша и паракоклюша. 3.7. Выполнение самостоятельной работы. Шифр Содержание компетенции знать уметь владеть ПК-7 Способность и готовность применять методы асептики и антисептики, использовать медицинский инструментарий, проводить санитарную обработку лечебных и диагностических помещений медицинских организаций, владеть техникой ухода за больными Морфологические, культуральные, биохимические свойства возбудителей дифтерии, коклюша, паракоклюша Готовить мазки и окрашивать их по Граму Техникой посева материала на плотные и в жидкие питательные среды ПК-20 Способность и готовность назначать больным адекватное (терапевтическое и Принципы профилактики и лечения дифтерии, коклюша, паракоклюша Пользоваться бактериологическим инструментарием и микроскопом Техникой посева материала на плотные и в жидкие питательные среды 2 хирургическое) лечение в соответствии с выставленным диагнозом, осуществлять алгоритм выбора медикаментозной и немедикаментозной терапии больным с инфекционными и неинфекционными заболеваниями, к ведению физиологической беременности, приему родов ПК-31 Способность и готовность изучать научно- медицинскую информацию, отечественный и зарубежный опыт по тематике исследования Методы лабораторной диагностики дифтерии, коклюша, паракоклюша Работать с учебной и научной литературой Медико- биологическим понятийным аппаратом 4. Продолжительность занятия в академических часах: 3 часа. 5. Контрольные вопросы по теме: 5.1. Морфологические, тинкториальные, культуральные и биохимические свойства возбудителей дифтерии, коклюша, паракоклюша. 5.2. Факторы патогенности возбудителей дифтерии, коклюша, паракоклюша и патогенез вызываемых заболеваний. 5.3. Методы диагностики, профилактики и лечения дифтерии, коклюша и паракоклюша. 6. Задания и методические указания к их выполнению. На занятии студенту необходимо выполнить: 6.1. Ответить на вопросы преподавателя. 6.2. Принять участие в обсуждении изучаемых вопросов. 6.3. Выполнить самостоятельную работу. Теоретическая справка I. Дифтерия (от греч. diphtheria - пленка, кожа) – острое инфекционное заболевание, характеризующееся общей интоксикацией организма и образованием пленчатых налетов в месте внедрения возбудителя. Дифтерия относится к антропонозным инфекциям. 3 Возбудитель дифтерии – Corynebacterium diphtheriae - обнаружен впервые в 1883 г. Э. Клебсом в срезах пленок, взятых из зева больных. Получен в чистой культуре в 1884 г. Ф. Лёффлером. В 1888 г. Э. Ру и А. Иерсен обнаружили способность дифтерийного микроба продуцировать экзотоксин. В 1892 г. Э. Беринг получил антитоксическую противодифтерийную сыворотку. В последующем он совместно с Ш. Китазато использовал эту сыворотку для лечения больных дифтерией. За введение в практику серотерапии при дифтерии Э. Беринг и Э. Ру в 1901 году были удостоены Нобелевской премии. В 1923 г. Г. Рамон разработал метод получения дифтерийного анатоксина (токсоида). Анатоксин представляет собой препарат токсина, утратившего токсические свойства, но сохранившего иммуногенность. Анатоксин получают путем добавления к токсину 0,3-0,4% формалина и инкубирования смеси в течение месяца при 38-40ºС. В настоящее время анатоксин используется для вакцинации людей против дифтерии и для иммунизации животных при получении противодифтерийной сыворотки. Классификация. Возбудитель дифтерии относится к группе коринеформных бактерий, к отделу Firmicutes, семейству Corynebacteriaceae, роду Corynebacterium, виду C. diphtheriae. Название микроба происходит от греч. coryne - булава, bacteria - палочка, diphtheria - пленка. Морфология. С. diphtheriae (палочка Клебса-Лёффлера) - прямые или слегка изогнутые неподвижные грамположительные палочки. Спор и капсул не образуют. Палочки утолщены на концах и напоминают булаву. В мазках бактерии располагаются под углом друг к другу, в виде “растопыренных пальцев”, “иероглифов”, “паркета”, латинских букв V, Y, L и др. На поверхности бактерий имеются фимбрии, облегчающие адгезию к эпителию слизистой оболочки. При окраске препаратов метиленовым синим или по методу Нейссера на полюсах клеток обнаруживаются гранулы - зерна волютина (зерна Бабеша-Эрнста). По химической природе волютин представляет собой полифосфаты, является запасом питательных веществ и энергии. При окраске по Граму зерна волютина не выявляются. При окраске по методу Нейссера палочки окрашиваются в соломенно- желтый цвет, а зерна волютина - в темно-коричневый цвет. Культуральные свойства. Дифтерийная палочка является аэробом или факультативным анаэробом, температурный оптимум для роста 35-37°С, оптимальная рН 7,6-7,8. Лучше растет на средах, содержащих кровь или сыворотку крови животных, хорошо растет на средах с теллуритом калия. В бульоне наблюдается равномерное помутнение или нежная пленка. Элективные среды для выращивания C. diphtheriae: - свернутая кровяная сыворотка (среда Ру); - сыворотка с добавлением сахарного бульона (среда Ру-Лёффлера); - кровяной агар (КА); - кровяной теллуритовый агар (среда Клауберга II); - хинозольная среда Бучина; - цистин-теллурит-сывороточная среда Тинсдаля-Садыковой. Биохимическая активность. С. diphtheriae разлагают глюкозу, мальтозу, галактозу с образованием кислоты без газа, но не ферментируют сахарозу, 4 продуцируют цистиназу (положительная проба Пизу – почернение столбика сывороточного агара или образование коричневого облачка вокруг линии укола в результате образования сернистого свинца при взаимодействии с уксуснокислым свинцом сероводорода, образующегося при расщеплении цистина или цистеина цистиназой), не имеют уреазы (отрицательная проба Закса – цвет бульона с мочевиной и феноловым красным не изменяется) и не образуют индола. Биовары возбудителя. По культуральным и биохимическим свойствам возбудитель дифтерии подразделяется на биовары: - gravis - грубый; - mitis - тонкий, легкий; - intermedius - промежуточный. Биовары различаются между собой по форме колоний на средах с теллуритом, по характеру роста в жидких средах, по гемолитической активности, по ферментации углеводов и морфологии клеток. Биовар gravis на плотных средах образует сухие серовато-черные плоские радиально исчерченные колонии размером 2-3 мм (R-форма, вид “маргаритки”). В жидких средах растет в виде пленки на поверхности и зернистого осадка, жидкость остается прозрачной. Не вызывает гемолиза. Ферментирует глюкозу, мальтозу, крахмал, гликоген. Палочки короткие, с небольшим количеством гранул. Биовар mitis образует мелкие (1-2 мм) гладкие блестящие черные колонии с ровными краями (S-форма), в бульоне вызывает равномерное помутнение и порошкообразный осадок. Обладает гемолитической активностью, разлагает глюкозу и мальтозу. Палочки длинные, изогнутые, содержат много зерен волютина. Биовар intermedius образует круглые гладкие блестящие (S-форма) или шероховатые колонии с изрезанными краями (RS-форма) диаметром менее 1 мм. Клетки самые крупные, с бочковидными очертаниями и внутриклеточными перегородками. Ферментируют глюкозу, мальтозу, гликоген. Антигенная структура. C. diphtheriae содержит соматический термостабильный О-антиген липидно-полисахаридной природы и поверхностный термолабильный К-антиген белковой природы. По особенностям К-антигена выделяют 58 сероваров, в том числе у биовара gravis 14 сероваров, у биовара mitis – 40 сероваров, у биовара intermedius – 4 серовара. Факторы патогенности возбудителя дифтерии: 1. Поверхностные структуры способствуют адгезии микроорганизмов в месте входных ворот инфекции и препятствуют фагоцитозу: - корд-фактор липидной природы; - микрокапсула, содержащая миколовые кислоты. 2. Ферменты агрессии и инвазии: - нейраминидаза – расщепляет нейраминовую кислоту слизи; - гиалуронидазу - разрушает гиалуроновую кислоту. 3. Токсины: - гемолизин – разрушает эритроциты крови; - дермонекротоксин – вызывает некроз клеток в месте локализации возбудителя; - дифтерийный экзотоксин (гистотоксин) – основной фактор патогенности дифтерийного микроба. Он является одним из наиболее сильных биологических 5 ядов. Летальная доза для человека составляет 0,5 мг/кг массы тела. Представляет собой полипептид. Термолабильный - разрушается при 56-60ºС в течение 1-2 часов, при 80ºС - в течение нескольких минут. Инактивация токсина происходит под влиянием прямого солнечного света, УФ лучей (в течение 1-2 часов), кислорода воздуха. Токсин состоит из двух фрагментов - А и В. Фрагмент В обеспечивает адсорбцию и проникновение фрагмента А в клетку. Синтез фрагмента А кодируется бактериальными генами, фрагмента В – генами фага. Дифтерию вызывают только токсигенные штаммы, которые несут в своем геноме гены умеренного бактериофага. Таким образом, способность к образованию токсина проявляется только у лизогенных штаммов, то есть у клеток, содержащих в своем геноме умеренный профаг (бета-фаг), несущий tox-гены. Утрата клеткой профага делает клетку мало токсигенной. Напротив, лизогенизация нетоксигенных С. diphtheriae конвертирующим фагом превращает их в токсигенные бактерии. Конверсия нетоксигенного штамма в токсигенный может происходить как in vivo, так и in vitro. Резистентность. В пыли сохраняют жизнеспособность и вирулентность в течение 5 недель, на различных предметах – до 5,5 месяцев, на посуде и игрушках – до 15 дней, в воде и молоке – в течение 6-20 дней. При 60ºС погибают в течение 10 минут, при кипячении - через 1 минуту. Чувствительны к дезинфицирующим веществам. Возбудитель дифтерии хорошо переносит высушивание и долго сохраняется в высохшей слизи, слюне, в частичках пыли. В высушенных пленках выдерживает температуру 98°С в течение 1 часа, а при комнатной температуре может сохраняться до 7 месяцев. Для обнаружения токсигенности дифтерийных бактерий используют метод преципитации в геле (метод иммунодиффузии Илека). Полоску стерильной фильтровальной бумаги смачивают антитоксической противодифтерийной сывороткой и наносят на поверхность плотной питательной среды в чашке Петри. Испытуемые культуры засевают бляшками по обе стороны от полоски фильтровальной бумаги. Чашки с посевами инкубируют при 37°С, результаты учитывают через 24-48 часов. Результатом взаимодействия токсина и антитоксина является образование в геле четкой линии преципитации. Эпидемиология. В естественных условиях восприимчив к дифтерии только человек. К действию дифтерийного токсина чувствительны некоторые виды животных (кролики, морские свинки, обезьяны). Источник инфекции – больной человек или бактерионоситель. Больные заразны с появления первых признаков болезни до периода реконвалесценции. Особенно опасны больные стертыми, атипичными формами и бактерионосители. Длительность носительства составляет в среднем 2-3 недели, в 9-25% случаев носительство продолжается более месяца. Пик заболеваемости приходит на осенне-зимний период. Заражение происходит воздушно-капельным, воздушно-пылевым, контактно-бытовым путем (через различные предметы, бывшие в употреблении у больных или бактерионосителей: посуда, книги, белье, игрушки и т. п.). В случае инфицирования пищевых продуктов (в основном, молочные продукты) возможно заражение алиментарным путем. Больной дифтерией заразен в течение острого периода и в 6 начале периода реконвалесценции. Чаще болеют дети младшего возраста. Однако заболевание встречается у подростков и взрослых. Патогенез. Входные ворота - слизистые оболочки верхних дыхательных путей (миндалины, зев, носоглотка, гортань, трахея), реже – конъюнктива глаз, кожа, слизистая половых органов. В месте входных ворот происходит адгезия возбудителя, его размножение и продуцирование дифтерийного токсина. В результате этого наблюдается некроз эпителия, выход фибриногена из сосудистого русла, превращение фибриногена в фибрин и образование фибринозной пленки. Пленка представляет собой скопление нитей фибрина, некротизированных клеток эпителия, эритроцитов, лейкоцитов, бактерий. В полости рта, зеве, глотке, где слизистая выстлана многослойным эпителием, образуется дифтеритическая пленка, плотно соединенная с подлежащей тканью. На слизистой дыхательных путей, покрытых однослойным эпителием, возникает крупозная пленка, рыхло связанная с подлежащей тканью. Экзотоксин оказывает не только местное, но и общее действие. Развивается токсинемия. При этом поражаются различные органы, но в наибольшей степени страдают сердечная мышца, нервная ткань, надпочечники и почки (в этих тканях происходит дегенерация паренхимы, жировая инфильтрация, некроз, иногда возникают обширные кровоизлияния). Инкубационный период - 2-10 дней (в среднем 5-7 дней). Вследствие отека слизистой оболочки гортани и голосовых связок может наступить удушье. Действие экзотоксина приводит к образованию на поверхности слизистых оболочек пленчатых налетов серовато-белого цвета. На многослойном плоском эпителии образуется дифтеритическая пленка плотно спаянная с подлежащей тканью. На однослойном эпителии трахеи и бронхов образуется крупозная пленка, которая легко отделяется при кашле. Попадание крупозной пленки в голосовую щель вызывает рефлекторный спазм голосовых связок и удушье. Клиника. Температура повышается до 38-40°С. В зависимости от локализации входных ворот различают дифтерию зева, носа, гортани, трахеи, глаза, уха, половых органов, кожи. В месте входных ворот образуется пленка серовато- белого цвета. При локализации процесса в зеве увеличиваются региональные (шейные) лимфатические узлы, в области шеи развивается выраженный отек (“бычья шея”). Иммунитет. После переболевания формируется пожизненный напряженный антибактериальный и антитоксический иммунитет. Повторное заболевание возможно в 5-6% случаев. Лабораторная диагностика. Материал для исследования - слизь из зева и носа, пленка с входных ворот инфекции. 1. Бактериоскопия при окраске по Граму и по Нейссеру (используется редко). 2. Бактериологический метод: - посев на элективные среды; - выделение чистой культуры на скошенном сывороточном агаре; 3. Идентификация культуры: - проба Пизу на цистиназу; 7 - проба Закса на уреазу; - укороченный пестрый ряд (глюкоза, мальтоза, сахароза, мочевина); - способность к росту в анаэробных условиях в столбике 0,5% сахарного агара (растет только дифтерийный микроб). 4. Проверка культуры на токсигенность. 5. Серологические методы при дифтерии являются методами ретроспективной диагностики, поэтому они имеют вспомогательное значение. 6. Фаготипирование. Окончательный ответ по токсигенным бактериям выдается через 48-72 часа. Окончательный ответ по биохимическим свойствам нетоксигенных бактерий выдается через 79-96 часов. Лечение проводится в стационаре. Специфическим методом лечения дифтерии является внутримышечное введение противодифтерийной антитоксической лошадиной сыворотки (антитоксина), применение антибиотиков (пенициллины, тетрациклины, эритромицин и др.) и сульфаниламидных препаратов. Проводят также детоксикационную терапию. Сыворотку следует вводить как можно раньше. Введение сыворотки после третьего дня считается поздним. Сыворотку вводят дробно по методу Безредки для профилактики анафилактического шока. Специфическая профилактика. Для специфической профилактики дифтерии используют препараты, содержащие дифтерийный анатоксин: - адсорбированная коклюшно-дифтерийно-столбнячная вакцина (АКДС- вакцина); - адсорбированный дифтерийно-столбнячный анатоксин (АДС-анатоксин); - адсорбированный дифтерийно-столбнячный анатоксин с уменьшенным содержанием антигенов (АДС-М-анатоксин): - адсорбированный дифтерийный анатоксин с уменьшенным содержанием антигена (АД-М-анатоксин). Компоненты адсорбированы на гидроокиси алюминия. Первая вакцинация проводится в 3 месяца, вторая в 4,5 месяца, третья – в 6 месяцев, ревакцинация – в 18 месяцев, 6 и 14 лет. II. Коклюш и паракоклюш Коклюш - острое инфекционное заболевание дыхательных путей, основным симптомокомплексом которого являются приступы судорожного кашля. Паракоклюш – это острое инфекционное заболевание дыхательных путей, клинически проявляющееся в виде легкой формы коклюша. Возбудитель – Bordetella pertussis - впервые был обнаружен в 1900 г. в мазках из мокроты ребенка и выделен в чистой культуре в 1906 г. Ж. Борде и О. Жангу. Впоследствии возбудитель получил название палочка Борде-Жангу. Возбудитель сходного с коклюшем, но протекающего более легко паракоклюша – Bordetella parapertussis - был выделен и изучен в 1937 г. Г. Эльдерингом и П. Кендриком и независимо от них в 1937 г. У. Брэдфордом и Б. Славиным. Возбудители коклюша и паракоклюша относятся к отделу Gracilicutes, порядку Burkholderiales, семейству Alcaligenaceae, роду Bordetella, видам Bordetella 8 pertussis (палочка Борде-Жангу, возбудитель коклюша) и Bordetella parapertussis (возбудитель паракоклюша). Морфологические и тинкториальные свойства. Бордетеллы грамотрицательные. Возбудитель коклюша имеет форму овоидной палочки (коккобактерии). Паракоклюшная палочка более крупная. Расположены чаще поодиночке. Спор не образуют, образуют капсулу. Неподвижные. Культуральные свойства. Бордетеллы – облигатные аэробы. Оптимальная температура роста - 35-36°С. Требовательны к питательным средам. Для выращивания коклюшной палочки используется среда Борде-Жангу (картофельно- глицериновый агар с добавлением крови и пенициллина), на ней она растет в виде гладких, блестящих, прозрачных куполообразных с жемчужным или металлическим ртутным оттенком колоний. На казеиново-угольном агаре (КУА) вырастают гладкие выпуклые колонии, имеющие серовато-кремовый цвет и вязкую консистенцию. Колонии паракоклюшных бактерий по внешнему виду не отличаются от коклюшных, но крупнее. Биохимические свойства. Бордетеллы не ферментируют углеводов, не образуют индола, не восстанавливают нитраты в нитриты, вызывают гемолиз эритроцитов. Антигенная структура. Выделяют соматический термостабильный О- антиген и поверхностные термолабильные капсульные К-антигены или агглютиногены (факторы 1-16). Резистентность. Возбудитель коклюша – облигатный паразит, поэтому вне организма он быстро погибает (в течение нескольких часов). Чувствительный к действию ультрафиолетовых лучей, дезинфицирующих веществ и температуре. При 50-55 О С погибает через 30 минут, при кипячении - мгновенно. Чувствительный к полимиксину, стрептомицину, тетрациклину. Устойчив к пенициллину и сульфаниламидам. 1. Факторы адгезии: - пили (фимбрии); - филаментозный гемагглютинин; - пертактин - белок наружной мембраны клеточной стенки; - капсулъные агглютиногены. Эти факторы способствуют адгезии бактерий к мерцательному эпителию верхних дыхательных путей. 2. Токсины бордетелл: а) Пертуссис-токсин (коклюшный термолабильный экзотоксин). Он связывается с клетками, проникает в них, вызывает накопление цАМФ и гибель клетки. б) Внеклеточная аденилатциклаза (аденилатциклазный гемолизин) нарушает “переваривающую” способность фагоцитов. в) Трахеальный цитотоксин вызывает некроз и десквамацию мерцательного эпителия. г) Дермонекротический токсин вызывает местную воспалительную реакцию эпителия респираторного тракта. д) Термостабильный эндотоксин стимулирует выработку цитокинов, повреждающих эпителиальные клетки респираторного тракта. 9 3. Ферменты патогенности – гиалуронидаза, плазмокоагулаза. Эпидемиология. В естественных условиях к коклюшу восприимчив только человек. Источник инфекции при коклюше и паракоклюше – больной человек типичной или стертой формой, особенно в период до появления спазматического кашля. Путь передачи возбудителя - воздушно-капельный. Бордетеллы обладают специфическим тропизмом к реснитчатому эпителию респираторного тракта хозяина. К инфекции восприимчивы люди всех возрастов, но особенно дети от 1 года до 10 лет. Наиболее тяжело коклюш протекает у детей первого года жизни, среди них регистрируется наиболее высокая летальность. Патогенез. Входные ворота - слизистые оболочки гортани, трахеи, бронхов. Бордетеллы не проникают внутрь клетки (неинвазивные микробы) и не поступают в кровь. Первая стадия – адгезия возбудителя на поверхности клеток. Вторая стадия – местное повреждение тканей токсинами микроба. Возбудитель размножается на поверхности клеток эпителия, обусловливая развитие воспалительных катаральных явлений и возникновение очагов некроза. В более низкие отделы (мелкие бронхи, бронхиолы, альвеолы) возбудитель распространяется бронхогенным путем. Бактериемии при коклюше не бывает. Третья стадия – стадия системных проявлений. Следствием некротических поражений является постоянное раздражение рецепторов афферентных волокон блуждающего нерва; возбуждение передается в область кашлевого центра, где формируется стационарный очаг возбуждения. В результате развивается основной симптомокомплекс коклюша – приступы судорожного кашля. Клиника. 1. Инкубационный период продолжается от 5 до 21 дня (в среднем 7-10 дней). 2. Катаральный период характеризуется появлением незначительного кашля, насморка, субфебрильной температуры. Кашель не поддается медикаментозному лечению, постепенно усиливается и к концу второй недели приобретает приступообразный характер. В этот период возбудитель обильно выделяется из организма. Продолжительность катарального периода около двух недель. 3. Конвульсивный (судорожный, спазматический, пароксизмальный) период. Появляется основной симптомокомплекс коклюша - приступы судорожного неукротимого “лающего” кашля, возникающие до 20-30 раз в сутки. Приступы могут развиваться под влиянием неспецифических раздражителей (звук, свет, инъекции и т.д.). Приступы заканчиваются отделением густой, вязкой мокроты. Кашель сопровождается цианозом лица и тела. При приступах кашля характерна поза больного – согнутая спина, высунутый язык. Может наступить асфиксия вследствие остановки дыхания; иногда наблюдается разрыв межреберных мышц. Температура тела в течение всего конвульсивного периода обычно остается нормальной. Продолжительность конвульсивного периода – 4-6 недель. 4. Период угасания (разрешения, выздоровления) – постепенно уменьшается число приступов, затем они исчезают; состояние нормализуется. Продолжительность периода угасания – 2-4 недели. 10 Иммунитет. После перенесенного заболевания формируется пожизненный гуморальный иммунитет. Лабораторная диагностика. Основной метод - бактериологический. Для выделения чистой культуры в качестве материала используют слизь с задней стенки глотки, которую высевают на КУА или среду Борде-Жангу. Материал берут с помощью клювовидного (через рот) или прямого (через нос) тампона с задней стенки глотки. Посев также может быть сделан методом “кашлевых пластинок” (во время кашля ко рту больного на расстоянии 8-10 см подносят открытую чашку с питательной средой). Выросшую культуру идентифицируют по культуральным, биохимическим и антигенным свойствам. В качестве ускоренного применяют иммунофлуоресцентный метод – РИФ с материалом из зева больного и флюоресцентной сывороткой (позволяет получить ответ через 4-5 часов после взятия материала). Серологические методы (реакция агглютинации, непрямой гемагглютинации, связывания комплемента) используют как вспомогательные при выявлении атипичных форм, а также для ретроспективной диагностики, поскольку антитела к возбудителю появляются на третьей неделе заболевания. Специфическая профилактика. Для специфической профилактики коклюша используют адсорбированную коклюшно-дифтерийно-столбнячную вакцину (АКДС), где коклюшный компонент представлен убитыми коклюшными бактериями. Для лечения применяют антибиотики (гентамицин, ампициллин, эритромицин, тетрациклин), которые эффективны в катаральном периоде и не эффективны в судорожном периоде заболевания. Возбудитель паракоклюша, Bordetella paraрertussis, близок к возбудителю коклюша по морфологическим и культуральным признакам. Паракоклюш проявляется клинически как легкая форма коклюша. Постановка диагноза возможна лишь при помощи микробиологических методов исследования. Взятие материала и лабораторная диагностика проводится так же, как при коклюше. Коклюш и паракоклюш – два самостоятельных заболевания. Дети, переболевшие коклюшем, могут заболеть паракоклюшем и наоборот. После обсуждения теоретических вопросов преподаватель объясняет порядок проведения самостоятельной работы. Самостоятельная работа: 1. Окрасить два готовых фиксированных мазка из культур дифтерии (один – щелочным метиленовым синим по Леффлеру в течение 3-5 минут, второй – по Граму). Препараты промикроскопировать, зарисовать в рабочей тетради. 2. Зарисовать в рабочей тетради схемы лабораторной диагностики дифтерии и коклюша. 7. Оценивание знаний, умений, навыков по теме занятия: Ответы на вопросы и активность на занятии оцениваются по 5-балльной системе. 8. Литература для подготовки темы: 8.1. Основная: 11 1. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология: учебник для студентов медицинских вузов. Под ред. А.А. Воробьева. Учебники и учеб. пособия для высшей школы. Издательство: Медицинское информационное агентство, 2012. – 702 с. 2. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. В 2-х т. Том 1 : учеб. по дисциплине “Микробиология, вирусология и иммунология” для студентов учреждений высш. проф. образования, обучающихся по специальностям 060101.65 “Лечеб. дело”, 060103.65 “Педиатрия”, 060104.65 “Медико-профилакт. дело” / под ред. В.В. Зверева, М.Н. Бойченко. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. – 448 с.: ил. 3. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. В 2-х т. Том 2 : учеб. по дисциплине “Микробиология, вирусология и иммунология” для студентов учреждений высш. проф. образования, обучающихся по специальностям 060101.65 “Лечеб. дело”, 060103.65 “Педиатрия”, 060104.65 “Медико-профилакт. дело” / под ред. В.В. Зверева, М.Н. Бойченко. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. – 480 с.: ил. 8.2. Дополнительная: 1. Коротяев А.И. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для студентов мед. вузов / А.И. Коротяев, С.А. Бабичев. - 5-е изд., испр. и доп. – СПб.: СпецЛит, 2012. – 759 с.: ил. 2. Медицинская микробиология: учебник. 4-е изд. Поздеев О.К. / Под ред. В.И. Покровского. – 2010. – 768 с. 3. Руководство по медицинской микробиологии. Общая и санитарная микробиология. Книга 1 / Колл. авторов // Под редакцией Лабинской А.С., Волиной Е.Г. – М.: Издательство БИНОМ, 2008. – 1080 с.: ил. Методические указания переработаны и дополнены профессором Литусовым Н.В. Обсуждены на заседании кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии. |