ПТС 2-й курс Тема №20 Асептика и антисептика, дезинфекция, стери. Занятие 20 Тема. Асептика и антисептика, дезинфекция, стерилизация
 Скачать 44.35 Kb.
|
|
Клиническое практическое занятие 20 Тема. Асептика и антисептика, дезинфекция, стерилизация. Цель. Изложить принципы асептики и антисептики в хирургической стоматологии. Научить методам обработки рук хирурга и операционного поля. Метод проведения. Групповое занятие. Место проведения. Лечебный и фантомный кабинеты. Обеспечение Техническое оснащение: стоматологические установки, кресла, наборы инструментов хирургического отделения стоматологической поликлиники, оборудование. Учебные пособия: фантомы головы и челюсти с искусственными и естественными зубами, стенды, муляжи, таблицы, слайды, видеофильм, методические пособия, медикаменты для обработки и стерилизации инструментария. Средства контроля: контрольные вопросы, задачи, ситуационные задачи, вопросы для тестового контроля знаний, домашнее задание. Вопросы, изученные ранее и необходимые для данного занятия. Принципы организации медицинского учреждения. План занятия 1. Проверка выполнения домашнего задания. 2. Теоретическая часть. Обработка рук хирурга. Обработка операционного поля. Дезинфекция и стерилизация. Меры профилактики СПИДа и В-гепатита. Собеседование по контрольным вопросам и контрольным задачам. Решение учебных ситуационных задач. 3. Клиническая часть. Демонстрация на пациенте метода обработки операционного поля. 4. Лабораторная часть. Демонстрация преподавателем оборудования и медикаментов для проведения дезинфекции и стерилизации, постановки проб на качество обработки и стерилизации инструментария, способов обработки рук хирурга. Демонстрация на фантоме правил обработки операционного поля. 5. Самостоятельная работа. Проведение студентами проб на качество обработки инструментария, обработка операционного поля на фантоме. Разбор результатов самостоятельной работы студентов. 6. Решение студентами контрольных ситуационных задач. 7. Тестовый контроль знаний. 8. Задание на следующее занятие. Аннотация Важнейшей задачей в работе врача-стоматолога-хирурга является предупреждение воспалительного характера. Основной закон хирургии – все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно. Правила работы для обеспечения этого включают обработку и защиту рук хирурга, операционного поля, подготовку инструментов, помещения, защиту больных и медицинского персонала от инфицирования и предупреждения распространения инфекций. За организацию дезинфекционно-стерилизационных мероприятий в лечебно-профилактическом учреждении отвечает руководитель. Контроль за соблюдением санитарно-эпидемиологического режима чаще всего возлагается на заместителя по лечебной работе, госпитального врача-эпидемиолога и главную (старшую) медицинскую сестру. Термин «антисептика» (греч. Anti – против, sepsis – гниение) впервые предложил английский ученый И. Прингл в 1750 г. для обозначения противогнилостного действия минеральных кислот. Асептикой называют систему профилактических мероприятий, обеспечивающих предупреждение попадания микроорганизмов в рану, органы и ткани больного в процессе любых врачебных манипуляций путем использования организованных мероприятий, физических факторов и химических препаратов. Асептика включает: – стерилизацию инструментов, материалов, приборов, воздуха помещения и пр.; – специальную обработку рук медперсонала; – соблюдение особых приемов при проведении лечебных мероприятий; – осуществление специальных гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреждении. Во врачебных кабинетах, зуботехнических лабораториях и прочих помещениях для снижения обсемененности рабочих поверхностей и воздуха условно-патогенной и патогенной микрофлорой проводят влажную уборку и кварцевание до и после смены и в конце рабочего дня. Текущую уборку (врачебных столиков и кресел) проводят после каждого больного. При влажной и текущей уборке используют следующие дез.средства: 3% раствор хлорамина, 0,1% раствор «Клорсепта-17» или «Клорсепта-87», 0,056% раствор «Пресепта», 0,4% раствор «Септодор-форте». Ветошь для уборки кабинета, ерши после использования дезинфицируются в растворах вышеперечисленных препаратов. Генеральная уборка помещений в хирургических, перевязочных и пародонтологических кабинетах (при проведении малых операций) проводится один раз в неделю, в остальных кабинетах раз в месяц. Помещение освобождают от предметов, инвентаря, инструментов. В качестве дезинфектанта используют 5% раствор хлорамина или 5% раствор аламинола или 6% раствор перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства или активированный 0,5% раствор хлорамина. Антисептика – система мероприятий, направленных на уменьшение количества микроорганизмов в ране, снижение опасности их проникновения в рану и развития в ней. С понятием антисептики тесно связано определение дезинфекции. Дезинфекция – процесс, снижающий количество патогенных микроорганизмов, но не обязательно спор бактерий, с неживых объектов или кожного покрова до уровня, не представляющего опасность для здоровья. Дезинфекции подвергается весь стоматологический инструментарий и изделия, применяемые при работе с пациентом. Дезинфекция химическими средствами производится путем полного погружения в раствор. Изделия, не соприкасающиеся непосредственно со слизистой оболочкой полости рта пациента (наконечники, световоды ламп и др.), могут обрабатываться методом 2-х кратного протирания (до и после работы с каждым пациентом) 70% спиртом или 3% раствором хлорамина. Различают физические, механические, химические, биологические и комбинированные методы дезинфекции. Механические – заключаются в первичной хирургической обработке раны: иссечение краев и дна раны, удаление нежизнеспособных тканей и инородных тел. К механической антисептике относится метод промывания ран и полостей антисептическими растворами. При физических – применяется высокая температура, ультрафиолетовые лучи, ультразвуковая стерилизация. К физическим методам стерилизации относятся паровой, горячевоздушный (суховоздушный), методы инфракрасного облучения, фильтрования и радиационный. Химические – применение различных химических веществ с бактерицидным или бактериостатическим действием. Применяя химическую антисептику, нужно стремиться к тому, чтобы общее и местное действие химических антисептиков было достаточно безопасным для макроорганизма и его клеток и губительным для микробов. В группу химических антисептиков входят препараты, применяемые для обеззараживания рук, операционного поля, инструментов и др. Из химических веществ используют йод, спирт, хлорамин и др. Химические методы включают газовый метод и стерилизацию растворами химических препаратов (йод, спирт, хлорамин). Биологические – направлены на повышение защитных сил организма (иммунные препараты), а также на создание условий, неблагоприятных для размножения в ране микроорганизмов. Биологические методы проводят с использованием групп веществ: 1. Антибиотики – вещества с выраженными бактериостатическими или бактерицидными свойствами. 2. Бактериофаги в виде сывороток. Следует особо отметить протеолитические ферменты, применяемые при лечении раны. Уничтожая нежизнеспособные ткани, они лишают микробные клетки питательных веществ, способствуя тем самым более быстрому заживлению раны. Комбинированные способы – подразумевают вышеперечисленные методы в различных сочетаниях. Первым этапом является предстерилизационная очистка инструментария – комплекс мероприятий, направленных на удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Дезинфекция инструментария является вторым этапом обработки инструментария. Третьим, завершающим этапом обработки инструментария является стерилизация. Стерилизация направлена на уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и споровых форм. Она проводится для предупреждения распространения ряда инфекционных заболеваний, возбудители которых передаются через кровь, биологические жидкости. Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой полости рта и могут вызвать ее повреждение. Стерилизации подлежат стоматологические наборы в лотках, фрезы металлические, зеркала, боры и другие инструменты. Наиболее оптимальным вариантом организации предстерилизационной очистки и стерилизации является оборудование и оснащение централизованного стерилизационного отделения. Существуют следующие методы стерилизации: паровой, воздушный, химический: (газовый, холодный.). Паровой метод стерилизации применяется для изделий из коррозионностойких металлов, стекла, изделий из текстильных материалов (хирургическое белье, перевязочный материал), резины (перчатки, трубки, катетеры, бужи), металла и стекла. Автоклавирование проводится при 2 атм. 20 минут при температуре 132°С для изделий из стекла, стойких металлов, текстильных материалов, силиконовой резины. При давлении 1,1 атм. – 45 минут и температуре 120°С стерилизуются изделия из резины, латекса и отдельных полимерных материалов. Надежность паровой стерилизации автоклавер контролирует с использованием визуального метода (время, давление, порядок работы на стерилизаторе) с записью данных каждого цикла автоклавирования в «Журнале работы автоклава», установленного образца. С целью оперативного контроля в установки, в биксы, а также вне их закладываются термовременные химические индикаторы ИС-120, ИС-130 фирмы «Винар». Периодически автоклавер с частотой 1 раз в 2 недели проводит контроль работы парового стерилизатора с использованием биотестов, проверку показаний точности манометра, полноту удаления воздуха из стерилизуемых материалов, а также проверку герметичности камеры. При проведении периодического контроля используются максимальные термометры СП-82. Воздушный метод стерилизации в сухожаровых шкафах рекомендуется для изделий из металла, стекла. Режим стерилизации 180 °С – 60 минут или 160 °С – 150 минут. При 180° С используют индикаторы: термовременные бумажные ИС-180, а на 160 °С – ИС-160 фирмы «Винар», лента индикаторная Индэйр ТМ 1222 фирмы «ЗМ» США. Временно допускается использование химических индикаторов плавления на 180° С – янтарная кислота, тиомочевина, сахароза, гидрохинон; при 160 °С – левомицетин и ТИД-160, ТИД-180 фирмы МКБ г. Омска. Химические индикаторы закладываются в каждую упаковку, а также вне ее в среднюю, верхнюю зоны стерилизационной камеры для самоконтроля за работой стерилизатора медработником. Каждый цикл работы стерилизатора регистрируется в журнале стерилизации, где отмечаются наименования всех изделий, параметры и результаты контроля. Для паровой стерилизации используют стерилизационные коробки без фильтра, двойную мягкую упаковку из бязи, бумагу мешочную влагопрочную (срок хранения – 3 суток без вскрытия), биксы с фильтрами (срок хранения – до 20 суток). Для воздушной стерилизации используют бумагу крепированную (срок хранения в упаковке – 3 суток без вскрытия), пакеты фирмы «Септодонт», лотки с крышками (срок хранения – 6 часов без вскрытия), бумагу различных марок, разрешенную для этих целей. После вскрытия все простерилизованные изделия используются в течение 6 часов с соблюдением правил асептики. Химический метод наиболее часто используют для стерилизации изделий из полимерных материалов, резины, специального стекла, коррозионно-нестойких металлов. Раствор перекиси водорода может использоваться в течение 7 суток со дня приготовления при хранении его в темной закрытой емкости. Раствор дезоксана-1 может использоваться в течение суток. Но стерилизовать повторно в этих растворах нельзя. Для стерилизации используют эмалированные, стеклянные или пластмассовые емкости с плотно закрывающимися крышками. Стерилизуемые изделия полностью погружают в раствор, после окончания стерилизационной выдержки изделия извлекают стерильными пинцетами из раствора и дважды погружают на 5 мин в емкости с дистиллированной водой, каждый раз меняя ее при соблюдении асептических условий. Емкости предварительно стерилизуют паровым методом при t -132 °С в течение 20 минут. После этого стерильным пинцетом инструмент перекладывают в асептических условиях в стерильные биксы, выстланные стерильной простыней. Срок хранения простерилизованных изделий – не более 3-х суток. При газовом методе стерилизации используют: – окись этилена – в дозе 1000 мг/дм3 при давлении газа 0,55 кг/см2 и температуре 18° С – 960 минут; – пары 40% раствора формальдегида в этиловом спирте – в дозе 150 мг/дм3 при температуре в стерилизационной камере 80°С, время стерилизации – 180 минут. Разрешается использовать 10% растворы «Гигасепта ФФ», «Колдспора» в соответствии с методическими указаниями. Газовый метод стерилизации используется в стерилизаторе-аэраторе EAGLE и стерилизаторе «СТЕРРАД». Зеркала после проведения дезинфекции, предстерилизационной обработки стерилизуют по одному из следующих методов: паровым, воздушным, химическим (в соответствии с указанием в паспорте) или рабочую часть – в гласперленовом стерилизаторе. Зеркала, покрытые амальгамой, стерилизуются химическим методом. Стекла для замешивания пломбировочного материала обрабатываются вышеперечисленными методами и стерилизуются в автоклаве. Стеклянные шприцы для многократного использования подвергаются дезинфекции, предстерилизационной обработке и стерилизации одним из разрешенных методов. Мелкий стоматологический инструментарий: боры, эндодонтический инструмент, зеркала без ручек после предстерилизационной обработки во время работы с пациентом допускается стерилизовать в гласперленовом стерилизаторе; боры – 20 секунд, зеркала – 1 минуту, зонды, шпатели – 1,5 минуты, в стерилизаторе «Термоэст» – непосредственно перед использованием. Хранение стерильных инструментов и материалов Инструмент в пакетах (если не нарушена герметичность) может во время рабочей смены находиться в шкафах, на столах и остается стерильным 21 день, если пакеты заклеены, и 3 дня, если пакеты закреплены скрепками. Изделия, простерилизованные без упаковки, хранению не подлежат и должны быть использованы непосредственно после стерилизации. Допускается использовать этот инструмент в течение 6 часов, если в кабинете стоит сухожаровый шкаф и простерилизованный инструмент сразу выкладывают на стерильный стол. Категорически запрещается простерилизованный в ЦСО без упаковки инструмент перекладывать на тележку, покрытую стерильной простыней, а затем этот инструмент использовать в отделениях. Инфекционный контроль качества проведения предстерилизационной обработки инструментов Проводится путем постановки азопирамовой или амидопириновой проб на наличие остатков крови с занесением результатов в «Журнал учета качества предстерилизационной обработки» и фенолфталеиновой – на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства. Фенолфталеиновая проба Для постановки пробы используют 1 % спиртовой раствор фенолфталеина, который состоит из 60 г спирта, 40 г дистиллированной воды, 1 г фенолфталеина. Спиртовой раствор наносится пипеткой на вату и ею протираются обработанные инструменты. При наличии синтетических моющих средств появляется розовое окрашивание. При этом всю партию изделий подвергают сначала ополаскиванию в проточной, а затем дистиллированной воде. Азопирамовая проба Для приготовления 1 л р-ра азопирама берут 100,0 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, вещества смешиваются и заливаются 95° этиловым спиртом до объема 1 литр. Азопирам хранится при температуре 18-23 °С не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива в течение этого времени без выпадения осадка не снижает его качество. Непосредственно перед проверкой качества предстерилизационной очистки изделий готовят рабочий раствор, смешивая в тигельке равные объемные количества «азопирама» и 3% раствор перекиси водорода. Приготовленный раствор наносят на вату и протирают им инструмент. В присутствии следов крови через 0,5-1 минуту после контакта реактива с загрязненными инструментами появляется вначале фиолетовое окрашивание, переходящее в розово-сиреневое или буроватое (буроватое при наличии на инструментах ржавчины). Пригодность рабочего раствора проверяется путем нанесения 2-3 капель реактива на кровяное пятно. Если цвет реактива меняется, то он пригоден к употреблению, если в течение 1 минуты окрашивание не появляется, реактивом пользоваться нельзя. Проба с азопирамом по чувствительности превышает в 10 раз амидопириновую пробу. Амидопириновая проба Перед постановкой пробы в тигельке смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. Появление сине-зеленого окрашивания при нанесении реактива на изделие свидетельствует о наличии остатков крови. Реактив проверяют на скрытую кровь, так же как и в предыдущем случае. При положительной реакции на скрытую кровь всю партию изделий подвергают повторной обработке. Контролю ежедневно подвергают 1 % от одновременно обработанных изделий одного наименования (партии), но не менее 3-5 проб. Подготовка рук хирурга и операционного поля Подготовка рук хирурга 1 способ. Рецептура «С-4» (первомур) – смесь перекиси водорода, муравьиной кислоты. На 1 л р-ра – перекись 30-33% – 17, 1 мл, муравьиная кислота 100% – 6,9 мл, 85% – 8,1 мл. Раствор готовится на одни сутки. Руки моют водой с мылом без щетки 1 мин, ополаскивают водой, вытирают стерильной салфеткой, далее руки опускают в раствор «С-4»в эмалированном тазике на 1 мин, вытирают стерильной салфеткой и одевают в стерильные перчатки. 2 способ. Использование 0,5% раствора гибитана в 70% этиловом спирте в соотношении 1:40 (к 40 мл спирта 1 мл 20% водного раствора хлоргексидина). Руки моют водой с мылом без щетки 1 мин, ополаскивают водой, вытирают стерильной салфеткой, далее дважды по 1 минуте хорошо смоченной стерильной салфеткой втирают раствор гибитана и одевают стерильные перчатки. Подготовка операционного поля Для обработки полости рта перед операцией используют полоскание подогретым раствором фурацилина 1:5000, 0,06% раствором хлоргексидина, 0,1% раствором перманганата калия. На участке операционного поля проводят механическое удаление налета и пищевых остатков марлевым тампоном, смоченным одним из указанных выше растворов. Снимают твердые зубные отложения с удаляемого зуба и рядом расположенных зубов, по причине опасности попадания их в лунку и инфицирования ее во время операции. Слизистая оболочка вокруг края десны обрабатывается 1-2% настойкой йода. Кожа лица при более обширных операциях обрабатывается 70% этиловым спиртом или 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина биглюконата и закрывается стерильной накидкой или стерильным полотенцем. Меры защиты персонала. Профилактика СПИДа и В-гепатита В целях охраны труда и предупреждения инфицирования персонала стоматологических поликлиник, отделений и кабинетов, их сотрудниками должны соблюдаться определенные требования, предусмотренные правилами техники безопасности. 1. Каждый сотрудник при приеме на работу обеспечивается специальной одеждой (халат, костюм, шапочка, обувь), дезинфекция и стирка которой производится централизованно либо в лечебном учреждении, либо в прачечных. Недопустима стирка спецодежды в домашних условиях. Персонал отделений обязан работать в сменной обуви. 2. Весь персонал стоматологических кабинетов должен работать в перчатках. Мелкие ссадины и раны на пальцах и кистях необходимо заклеивать лейкопластырем, пользоваться напалечниками. В кабинетах ведется «Журнал биологических аварий». 3. При обработке зубов, работе в полости рта врач должен одевать защитные очки, маску или щиток. 4. Непременное условие – соблюдение правил личной гигиены, мытье рук перед и после каждого пациента, дезинфекция рук и перчаток. 5. Приготовление рабочих растворов любых дезинфицирующих средств производят в резиновых перчатках, предохранительных очках и респираторе. 6. При попадании пергидроля и других сильнодействующих веществ на кожу их немедленно смывают водой либо нейтрализующими средствами. 7. Не допускается включение бактерицидных ультрафиолетовых ламп при температуре окружающего воздуха выше 30°С, т.к. при этом возможен перегрев приборов включения, выход их из строя и возникновение пожара. 8. Категорически запрещается включать ультразвуковую установку, не залив раствор в ванну. 9. Запрещается погружать инструменты в раствор и извлекать их из раствора во время работы УЗ установки. 10. Перед сливом раствора из ванны необходимо отключить установку от электросети. 11. Нельзя при включенных в сеть стоматологических установках проводить генеральную уборку. При загрязнении кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями кожу обработать дезинфицирующим раствором или 70° спиртом. При нарушении целостности кожных покровов не останавливают кровотечение, а выдавливают кровь из раны, промывают рану водой и обрабатывают 5% спиртовым раствором йода. К универсальным мерам безопасности медицинского персонала от инфекции относятся 7 правил безопасности для защиты кожи и слизистых оболочек при контакте с кровью или жидкими выделениями организма любого пациента: 1. Мыть руки до и после любого контакта с пациентом. 2. Рассматривать кровь и жидкие выделения всех пациентов как потенциально инфицированные и работать с ними только в перчатках. 3. Сразу после применения помещать использованные шприцы и катетеры в специальный контейнер для утилизации острых предметов, никогда не снимать со шприцев иглодержатели с иглами и не производить никаких манипуляций с использованными иглами! 4. Пользоваться средствами защиты глаз и масками для предотвращения возможного попадания брызг крови или жидкого отделяемого полости рта в лицо (во время хирургических операций, манипуляций, катетеризации и лечебных процедур в полости рта). 5. Использовать специальную влагонепроницаемую одежду для защиты тела от возможного попадания брызг крови или жидкого отделяемого полости рта. В аптечку для оказания экстренной помощи при попадании крови на кожу и слизистые, уколах и порезах входят: 1. Раствор йода 5% спиртовой. 2. Этиловый спирт 70°. 3. Вата, бинт. 4. Лейкопластырь. 5. Навески марганцовокислого калия по 0,05 г для приготовления 0,05% раствора. 6. Дистиллированная вода в ампулах по 10 мл. 7. Емкость для приготовления раствора марганцовокислого калия. 8. Пипетки для глаз и носа. Логико-дидактическая структура занятия по теме: «Асептика и антисептика. Профилактика СПИДа и В-гепатита»
Контрольные вопросы 1. Что такое асептика и антисептика? 2. Перечислите виды антисептики. 3. Последовательность обработки инструментария. Обработка помещения. 4. Пробы на качество предстерилизационной обработки инструментария. 5. Определение дезинфекции и стерилизации. Виды стерилизации. 6. Режимы суховоздушной стерилизации и способы их контроля. 7. Правила хранения обработанного инструментария. 8. Обработка операционного поля и рук хирурга. 9. Меры защиты персонала. 10. Медикаменты аптечки для оказания экстренной помощи при травмах. Контрольные задачи Задача 1. Что относится к асептике и антисептике?
Задача 2. Что проводится при механической и химической антисептике?
Задача 3. Использование фенолфталеиновой и азопирамовой проб осуществляется:
Задача 4. Обработка помещений, инструментов проводится:
Задача 5. Что происходит при стерилизации и дезинфекции?
Задача 6. Соотнесите к видам антисептики воздействующие средства?
Ситуационные задачи Учебные 1. При проведении стерилизации сухожаровым способом термоиндикаторы были положены в одном месте у дверцы сухожарового шкафа. Качество стерилизации оценивалось по времени работы сухожарового шкафа. В чем допущена ошибка? Ответ обосновать. 2. После обработки в сухожаровом шкафу инструментарий был помещен на стерильный столик. В течение смены была использована половина лотков с инструментом. Оставшийся инструмент планировался к использованию второй сменой врачей. Правильно ли это? Ответ обосновать. 3. После приема больного лоток с инструментом промыли в раковине для мытья инструментов под проточной водой и поместили в моющий раствор. Правильна ли последовательность обработки инструментария? 4. Для обработки инструмента медицинская сестра щетками проводила обработку инструмента в аппарате для ультразвуковой очистки после его включения. Правильно ли это? 5. Обработка рук в области ногтей после их мытья была проведена 10% спиртовым раствором йода. Правильно ли это? 6. Генеральную уборку помещения проводили один раз в три недели. Допустимо ли это? Через какой срок проводится такая обработка? 7. Во время работы в кабинете включили бактерицидную лампу. Правильно ли это? К чему это может привести? 8. Во время операции были открыты окна операционной для проветривания. Правильно ли это? 9. После осмотра пациента с использованием зеркала последнее после обработки было помещено в раствор 6% перекиси водорода на 30 минут. Правильно ли это? Каким образом целесообразно проводить стерилизацию зеркал? 10. Во время работы врач не использовал средства защиты лица и глаз. К каким последствиям это может привести и какие средства защиты следует использовать? Контрольные 1. При проведении стерилизации сухожаровым способом не были использованы термоиндикаторы. Качество стерилизации оценивалось по времени работы сухожарового шкафа. Допустима ли работа с инструментарием, прошедшим обработку? Ответ обосновать. 2. После обработки в сухожаровом шкафу инструментарий был помещен на стерильный столик. В течение смены было использовано около трети всех лотков с инструментом. Оставшийся инструмент планировался к использованию второй сменой врачей. Правильно ли это? Ответ обосновать. 3. После приема больного лоток с инструментом промыли в раковине для мытья инструментов под проточной водой и поместили в раствор для дезинфекции. Правильна ли последовательность обработки инструментария? 4. Для обработки инструмента аппарат для ультразвуковой очистки сначала включили, а затем заполнили емкость водой. Правильно ли это? 5. По окончании очистки инструмента из ультразвуковой ванны слили раствор, не выключая оборудование. Допустимо ли это? 6. Генеральную уборку помещения проводили один раз в месяц. Допустимо ли это? Через какой срок проводится такая обработка? 7. При влажной уборке помещения установки не были отключены от сети. К чему это может привести? 8. На незащищенные кожные покровы врача во время операции попала кровь. Чем следует обработать кожу? 9. После осмотра пациента с использованием зеркала последнее после обработки было помещено в раствор 6% перекиси водорода на 15 минут. Правильно ли это? Каким образом целесообразно проводить стерилизацию зеркал? 10. Во время работы врач не использовал средств индивидуальной защиты. К каким последствиям это может привести и какие средства защиты следует использовать? Тестовый контроль знаний 1. Для обработки рук хирурга применяют: а) проточную воду и мыло; б) способ с рецептурой «С-4»; в) протирание 70% спиртом. 2. В сухожаровом шкафу рабочая температура для стерилизации инструментов: а) 134°С; б) 160° С; в) 180° С. 3. Кварцевание кабинета следует проводить: а) один раз утром; б) после каждой смены; в) во время приема пациентов. 4. При газовом методе стерилизации применяют: а) пары спирта; б) окись этилена; в) газообразный хлор; г) пары 40% раствора формальдегида в этиловом спирте. 5. Простерилизованные инструменты допускается хранить в течение: а) 12 часов; б) 24 часов; в) 6 часов. 6. При температуре 180°C инструмент стерилизуют в течение: а) 40 мин; б) 50 мин; в) 60 мин. 7. Полость рта перед операцией может прополаскиваться: а) раствором бикарбоната натрия; б) слабо-розовым раствором марганцовокислого калия; в) дистиллированной водой. 8. Автоклавирование проводят при давлении: а) 1,1 атм; б) 0,2 атм; в) 0,3 атм. 9. Фенолфталеиновая проба проводится для: а) контроля остатков дезинфицирующих средств; б) контроля остатков крови; в) контроля остатков моющих средств. Домашнее задание: а) перечислить виды антисептики; б) методы обработки рук хирурга-стоматолога; в) способы обработки хирургического стоматологического инструментария; г) меры личной защиты врача и обработки инструментария после приема больных, инфицированных ВИЧ-инфекцией и вирусным гепатитом. Литература Основная Пропедевтика стоматологических заболеваний [Текст] : учеб. для студ. вузов / под ред. Н. Н. Аболмасова, А. И. Николаева . - М. : МЕДпресс-информ, 2015. - 784 с. (220 экз.) Пропедевтика стоматологических заболеваний [Текст] : в 4-х ч. : практ. рук. / С. Н. Гаража, Н. Н. Гаража, Я. Н. Гарус [и др.] ; под общ. ред. С. Н. Гаражи, Н. Н. Гаражи. - Ставрополь : Изд-во СтГМУ.- 2013. – 360 с. (60 экз.). Пропедевтическая стоматология [Текст] : учеб. / под ред Э. А.Базикяна. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2010.- 766 с.(195 экз.). Дополнительная Болезни зубов и полости рта[Текст] : учеб. для сузов / И. М.Макеева, С. Т. Сохов, М. Я. Алимова[и др.]. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2012. - 248 с. (1 экз.). Передовые технологии в оперативной стоматологии. Современная клиническая практика [Текст] / под ред. Ж.-Ф. Руле, Н. Уилсона, М. Фуцци ; пер. с англ. А. Суркина, А. Островского. - М. : Квинтэссенция, 2012. - 256 с. (3 экз.) Фантомный курс терапевтической стоматологии [Текст] : учеб. / А.И. Николаев, Л.М. Цепов. - 2-е изд., испр. и доп. - М. : МЕДпресс-информ, 2013. - 432 с.(3экз.). Физикальное исследование в стоматологической практике[Текст] / Г. Т. Терезхальми, М. А. Хубер, Э. К. Джонс ; пер. с англ. М. В. Мешкова ; под ред. Л. Ю. Ореховой. - М. : Изд-во Панфилова, 2013. - 249 с.(1экз.). | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||