Главная страница

Микробиология. 1. отличия понятий контаминации и деконтаминации, дезинфекции и стерилизации, асептики и антисептики. Деконтаминация


Скачать 1.85 Mb.
Название1. отличия понятий контаминации и деконтаминации, дезинфекции и стерилизации, асептики и антисептики. Деконтаминация
АнкорМикробиология
Дата02.03.2021
Размер1.85 Mb.
Формат файлаpdf
Имя файла2_KOLLOKVIUM_PO_MIKROBIOLOGII.pdf
ТипДокументы
#181132
страница1 из 4
  1   2   3   4

"HELPER" - https://vk.com/fastmedhelp
1. ОТЛИЧИЯ ПОНЯТИЙ КОНТАМИНАЦИИ И ДЕКОНТАМИНАЦИИ,
ДЕЗИНФЕКЦИИ И СТЕРИЛИЗАЦИИ, АСЕПТИКИ И АНТИСЕПТИКИ.
Деконтаминация – процесс уничтожения микробов на/в каких-либо объектах; то есть удаление.
Контаминация - 1) попадание потенциально опасных для здоровья человека микроорганизмов на неживые объекты внешней среды (напр., продукты питания, лекарственные препараты), которые могут послужить фактором передачи болезни человеку; 2) внесение (попадание) микроорганизмов окружающей среды в чистые культуры микробов, питательные среды, исследовательский материал.
Дезинфекция – комплекс мер, направленных на уничтожение на/в объектах конкретных
патогенных микробов – возбудителей инфекционных болезней. Примеры патогенных микробов: стафилококк, энтерококк, стрептококк и другие резидентные виды бактерий, а также грибы рода Candida.
Стерилизация – уничтожение всех микроорганизмов в веществе и на поверхности стерилизуемого объекта.
Асептика – система профилактических мероприятий, направленных на предотвращение попадания микроорганизмов в рану, лекарственные препараты, питательные среды и другие объекты.
Антисептика – комплекс мероприятий, направленных на уничтожение микробов, попавших в рану, лекарственный препарат или другой объект. (виды: механическая, физическая, химическая, биологическая)
2. СОВРЕМЕННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ СТЕРИЛИЗАЦИИ И АППАРАТУРА.
o Физические методы
Действие высокой температуры, ионизирующего излучения, фильрование. ГЛАСС-ПЕРЛЕН (температура до 250
°
С). Изделия мед.
Назначения подвергают дезинфекции и предстерилизационной
очистке – направлены на профилактику ВБИ. o Газовая стерилизация
Требует спец.оборудования и применяется для обработки оптики, кардиостимуляторов, сложной техники, изделий из полимеров, стекла, металлов, наконечников турбин стом.установок.
Используют
окись
этилена или
смесь
ОБ
[окись
этилена+бромистый метил], озон и пары раствора формальдегида
в этиловом спирте. Для поддержания температуры 35
°С или 55°С
АНАЭРОСТАТЫ помещают в термостат или водяную баню.
Для упаковки используют полиэтиленовую плёнку – два слоя –
пергамент и спец.упаковосный материал.
Стерилизованные газом изделия применяют после их выдержки – в
течение 1-21 суток – в вентилируемом мопещении.
Срок хранения стирильности – 5 лет, пергамнета или бумаги – 20 суток.
Контроль процесса ведут по показаниям приборов! o Плазменная стерилизация
Преимущества:
§
Высокая эффективность эрадикации микроорганизмов разных групп;

"HELPER" - https://vk.com/fastmedhelp
§
Возможна эффективная комбинация с химической обработкой; кратковременная экспозиция от 10 до 15 минут;
§
Малые габариты аппарата, удобные для обработки стом.инструментов; компьютерное программирование режима стерилизации.
3. ВОЗДЕЙСТВИЕ ХИМИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ. АНТИСЕПТИКИ И
ДЕЗИНФЕКТАНТЫ.
Дезинфектанты – используются для обработки помещений, изделий или материалов.
Антисептики – применяют для обработки кожи и слизистых оболочек человека, поэтому они не должны быть токсичными в используемых концентрациях.
Факторы, определяющие выбор антимикробного агента:
1) Свойства химического вещества: эффективность действия антимикробного агента определяется его химической природой, концентрацией, температурой, рН, продолжительность контакта с зараженным объектом.
2) Характер микробиоты: чувствительность микроорганизма к веществу и уровень микробной контаминации определяют эффективность его действия.
3) Влияние факторов окружающей среды: -
Вода обеспечивает проникновение антимикробных веществ в клетку;
Органические вещества снижают активность антимикробных агентов за счет адсорбции, инактивации;
• Некоторые полимерные материалы (ткани, резина) адсорбируют антимикробные агенты, снижая их концентрацию.
Требования, предъявляемые к химическим дезинфектантам и антисептикам:
§
Хорошая растворимость или способность смешиваться с водой с образованием стойких смесей;
§
Низкая токсичность и отсутствие раздражающего действия на кожу и слизистые оболочки персонала;
§
Широкий спектр антимикробной активности, ее проявление в максимально короткое время;
§
Способность хорошо смачивать объекты и не оказывать на них коррозирующего или другого разрушающего действия;
§
Возможность удаления следов веществ из объекта;
§
Стабильность в процессе хранения;
§
Наличие разрешения на использование вещества в качестве дезинфектанта.
4. КЛАССИФИКАЦИЯ
ИНСТРУМЕНТОВ,
ПРИБОРОВ,
СПОСОБОВ
ОБРАБОТКИ И СРЕДСТВ ВОЗДЕЙСТВИЯ.

"HELPER" - https://vk.com/fastmedhelp
5. СПОСОБЫ КОНТРОЛЯ ЭФФЕКТИВНОСТИ ДЕЗИНФЕКЦИИ И
СТЕРИЛИЗАЦИИ.
ð
КОНТРОЛЬ ЭФФЕКТИВНОСТИ ДЕЗИНФЕКЦИИ
Контроль текущей и заключительной дезинфекции в очагах кишечных инфекций основан на обнаружении в исследуемом материале кишечной
палочки; после дезинфекции в исследуемом материале кишесная палочка должна отсутствовать. Для контроля работы дезинфекторных камер используют эталонные культуры – стафилококк, споры антракоидной
палочки. Качество – должны отсутствовать золотистый стафилококк, синегнойная палочка, бактерии группы кишечной палочки.
Дезинфекция считается эффективной, если через 48 часов на чашках не
вырастают колонии указанных микроорганизмов.
Физический метод: контролируется температурный режим (при помощи максимального термометра) и давление в камере парового стерилизатора (при помощи мановакуумметра). Максимальные термометры закладываются в контрольные точки стерилизационной камеры, количество которых зависит от объема камеры.
Бактериологический метод: контролируется эффективность воздействия на споры тест культуры в биотесте. В качестве биологических индикаторов для паровых стерилизаторов используется биотест со спорами тест-культуры Bacillus stearotermophilus (для паровых стерилизаторов), Bacillus licheniphormis (для воздушных стерилизаторов)
Химический метод: контролируется температура в стерилизационной камере при помощи химических индикаторов.
ð
КОНТРОЛЬ ЭФФЕКТИВНОСТИ СТЕРИЛИЗАЦИИ
Несколько методов.
1) По показаниям приборов – мановауумметров, термометров, таймеров – максимальные термометры, физико-химические и биотесты помещают в определённые точки аппарата.
2) С использованием физико-химических тестов – вместе со стерилизуемым материалом в аппарат закладывают ампулы с кристаллами веществ или специальные бумажные термохимические индикаторы; при нужной температуре вещества расплавляются, а индикаторы меняют цвет.
3) Биологические тесты – в аппарат помещают флакончики с салфетками или бумажными дисками, пропитанными взвесью термостойкого спорообразующего микроба и после стерилизации их инкубируют в МПБ.
4) Молекулярно-генетические методы контроля- геноиндикация – используются в случае оценки стерилизации в отношении трудно-культивируемых бактерий или вирусов.
ПОКАЗАТЕЛЬ ЭФФЕКТИВНОЙ РАБОТЫ СТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ АППАРАТУРЫ –
отсутствие роста тест-культуры в сочетании с удовлетворительными
результатами физического и химического контроля либо отсутствие маркерных
генов по данным ПЦР и гибридизации ДНК.
6. ПОНЯТИЕ О ВНУТРИБОЛЬНИЧНОЙ ИНФЕКЦИИ (ВБИ). ПРИМЕРЫ
ВОЗБУДИТЕЛЕЙ И ПУТЕЙ ПЕРЕДАЧИ.
Инфекция считается внутрибольничной, если она впервые проявляется
через 48 часов или более после нахождения в больнице, при условии
отсутствия клинических проявлений этих инфекций в момент поступления
и исключения вероятности инкубационного периода

"HELPER" - https://vk.com/fastmedhelp
В зависимости от путей и факторов передачи ВБИ: o Воздушно-капельные (аэрозольные); o Вводно-алиментарные; o Контактно-бытовые; o Контактно-инструментальные; o Постинъекционные; o Постоперационные; o Послеродовые; o Посттрансфузионные; o Постэндоскопические; o Посттрансплантационные; o Постдиализные; o Постгемосорбционные; o Посттравматические инфекции;
От характера и длительности течения:
o Острые;
o Подострые;
o Хронические.
По степени тяжести:
o Тяжелые; o Средне-тяжелые; o Легкие формы клинического течения.
В зависимости от степени распространения инфекции: o Генерализованные инфекции: бактериемия (виремия, микемия), септицемия, септикопиемия, токсико-септическая инфекция
(бактериальный шок и др.). o Локализованные инфекции o Инфекции кожи и подкожной клетчатки (ожоговых, операционных, травматический ран, постинъекционные абсцессы, омфалит,рожа, пиодермия, абсцесс и флегмона подкожной клетчатки, парапроктит, мастит, дерматомикозы и др.); o Респираторные инфекции (бронхит, пневмония, легочный абсцесс и гангрена, плеврит, эмпиема и др.); o Инфекции глаза (конъюнктивит, кератит, блефарит и др)
Примеры ВБИ: туберкулёз, гастроэнтерит, синегнойная палочка, золотистый стафилококк.
Для упаковки стерилизуемых изделий медицинского назначения применяют специальные виды бумаги, стерилизационные коробки/биксы, двойную мягкую упаковку из бязи и т.д.
7. МЕТАБОЛИЗМ БАКТЕРИЙ. АНАБОЛИЧЕСКИЕ И КАТАБОЛИЧЕСКИЕ
ПРОЦЕССЫ В КЛЕТКЕ.
В процессе метаболизма выделяют два вида обмена: пластический/конструктивный
(анаболизмс затратой энергии – и катаболизм с выделением энергии) и энергетический
(дыхание и брожение).

"HELPER" - https://vk.com/fastmedhelp
Анаболизм включает реакции, обеспечивающие синтез макромолекул органических соединений, из которых строится тело микробной клетки, и протекает с поглощением энергии.
В процессе катаболизма происходит расщепление крупных молекул до более простых соединений, при этом рвутся химические связи и освободившаяся энергия этих связей идёт на процессы ж/д или запасается в клетке в виде фосфосодержащих органических соединений
(АТФ, УДФ, волютин).
Особенность метаболизма бактерий – высокая интенсивность. Это обусловлено тем, что:
1) Интенсивность метаболизма прямопропорциональна отношению величины площади ЦПМ к объёму клетки – правило Рубнера.
2) Бактерии – самые ферментативно насыщенные биологические системы. Они синтезируют до 3000 белков, основная часть которых ферменты.
3) Клеточная стенка и ЦПМ характеризуются высокой проницаемостью.
4) Бактерии обладают способностью выделять ферменты в окр.среду – внеклеточное расщепление субстрата.
8. КЛАССИФИКАЦИЯ БАКТЕРИЙ ПО ТИПАМ ПИТАНИЯ.
ИСТОЧНИКИ УГЛЕРОДА
По типу питания:
АВТОТРОФЫ – способны строить сложные соединения углерода из CO
2
и H
2
O.
Нитрифицирующие бактерии, железобактерии.
ГЕТЕРОТРОФЫ- нуждаются в готовых соединениях. Подразделяются на:
§
САПРОФИТЫ – используют готовые орг.соединения, но НЕ ЗАВИСЯТ от других организмов. Примеры: микробы, вызывающие процессы гниения и брожения.
§
ПАРАЗИТЫ – это микробы, зависимые в получении питательных веществ от макроорганизма. Виды: облигатные – способны размножаться только в живой клетке, они не растут на питательных средах – и факультативные. Риккетсии и
хламидии.
ИСТОЧНИКИ АЗОТА o ПРОТОТРОФЫ – микробы, способные синтезировать все необходимые орг.соединения из глюкозы и солей аммония. o АУКСОТРОФЫ – микробы, нуждающиеся в готовых факторах роста – аминокислотах,
витаминах, пуриновых и пиримидиновых основаниях.
ИСТОЧНИКИ ЭНЕРГИИ
ð
ФОТОТРОФЫ – способны использовать энергию солнечного света;
ð
ХЕМОТРОФЫ – получают энергию за счёт хим.реакций. a) Хемолитотрофы – получают энергию при расщеплении неорг. соединений. b) Хемоорганотрофы – получают энергию при расщеплении орг.соединений;
9. ОСНОВНЫЕ
МЕХАНИЗМЫ
ПОСТУПЛЕНИЯ
ПИТАТЕЛЬНЫХ
ВЕЩЕСТВ В БАКТЕРИАЛЬНУЮ КЛЕТКУ.
1) ПРОСТАЯ ДИФФУЗИЯ – вещества поступают в клетку ПО градиенту концентраций БЕЗ затрат энергии. Так в клетку поступает вода и ограниченное число веществ.
2) ОБЛЕГЧЕННАЯ ДИФФУЗИЯ вещества поступают ПО градиенту концентраций, БЕЗ затрат энергии, НО ПРИ УЧАСТИИ ферментоподобных белков переносчиков – пермеаз.

"HELPER" - https://vk.com/fastmedhelp
3) АКТИВНЫЙ ТРАНСПОРТ –вещества поступают ПРОТИВ градиента концентраций с участием пермеаз. Концентрация веществ в микробной клетке выше, чем в питательной среде => с затратом энергии.
4) ТРАНСЛОКАЦИЯ –похож на активный, но переносимая молекула видоизменяется в процессе переноса.
10. ТРЕБОВАНИЯ К ПИТАТЕЛЬНЫМ СРЕДАМ.
Питательные среды являются основой микробиологической работы, и их качество нередко определяет результаты всего исследования. Среды должны создавать оптимальные
(наилучшие) условия для жизнедеятельности микробов.
Среды должны соответствовать следующим условиям:
1) Быть питательными, т.е. содержать в легко усвояемом виде все вещества, необходимые для удовлетворения пищевых и энергетических потребностей. Ими являются источники органогенов и минеральных (неорганических) веществ, включая микроэлементы. Ми- неральные вещества не только входят в структуру клетки и активизируют ферменты, но и определяют физико-химические свой- ства сред (осмотическое давление, рН и др.). При культивировании ряда микроорганизмов в среды вносят факторы роста − витамины, некоторые аминокислоты, которые клетка не может синтезировать;
2) Иметь оптимальную концентрацию водородных ионов − рН, так как только при оптимальной реакции среды, влияющей на проницаемость оболочки, микроорганизмы могут усваивать питательные вещества.Для большинства патогенных бактерий оптимальна слабощелочная среда (рН 7,2−7,4). Исключение составляют холерный вибрион − его оптимум находится в щелочной зоне (рН 8,5−9,0) и возбудитель туберкулеза, нуждающийся в слабокислой реакции (рН 6,2−6,8). Чтобы во время роста микроорганизмов кислые или щелочные продукты их жизнедеятельности не изменили рН, среды должны обладать буферностью, т.е. содержать вещества, нейтрализующие продукты обмена;
3) Быть изотоничными для микробной клетки, т.е. осмотическое давление в среде должно быть таким же, как внутри клетки. Для большинства микроорганизмов оптимальна среда, соответствующая 0,5 % раствору натрия хлорида;
4) Быть стерильными, так как посторонние микробы препятствуют росту изучаемого микроба, определению его свойств и изменяют свойства среды (состав, рН и др.);
5) Плотные среды должны быть влажными и иметь оптимальную для микроорганизмов
консистенцию;
6) Обладать определенным окислительно-восстановительным потенциалом, т.е. соотношением веществ, отдающих и принимающих электроны, выражаемым индексом
RH2. Этот потенциал показывает насыщение среды кислородом. Для одних микроорганизмов нужен высокий потенциал, для других − низкий. Например, анаэробы размножаются при RH2 не выше 5, а аэробы − при RH2 не ниже 10. Окислительно- восстановительный потенциал большинства сред удовлетворяет требованиям к нему аэробов и факультативных анаэробов;
7) Быть по возможности унифицированным, т.е. содержать постоянные количества отдельных ингредиентов. Так, среды для культивирования большинства патогенных бактерий должны содержать 0,8−1,2 мл аминного азота NH2, т.е. суммарного азота аминогрупп аминокислот и низших полипептидов; 2,5−3,0 гл общего азота N; 0,5 % хлоридов в пересчете на натрия хлорид; 1 % пептона.
Желательно, чтобы среды были прозрачными − удобнее следить за ростом культур, легче заметить загрязнение среды посторонними микроорганизмами.
11. КЛАССИФИКАЦИЯ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД, ИХ ПРИМЕНЕНИЕ.

"HELPER" - https://vk.com/fastmedhelp
Потребность в питательных веществах и свойствах среды у разных видов микроорганизмов неодинакова. Это исключает возможность создания универсальной среды.
Кроме того, на выбор той или иной среды влияют цели исследования.
Исходные компоненты.
По исходным компонентам различают натуральные и синтетические среды.
§
Натуральные среды готовят из продуктов животного и растительного происхождения.
В настоящее время разработаны среды, в которых ценные пищевые продукты (мясо и др.) заменены непищевыми: костной и рыбной мукой, кормовыми дрожжами, сгустками крови и др. Несмотря на то, что состав питательных сред из натуральных продуктов очень сложен и меняется в зависимости от исходного сырья, эти среды нашли широкое применение.
§
Синтетические среды готовят из определенных химически чистых органических и неорганических соединений, взятых в точно указанных концентрациях и растворенных в дважды дистиллированной воде. Важное преимущество этих сред в том, что состав их постоянен (известно, сколько и какие вещества в них входят), поэтому эти среды легко воспроизводимы.
Консистенция (степень плотности).
Среды бывают жидкие, плотные и полужидкие. Плотные и полужидкие среды готовят из жидких веществ, к которым для получения среды нужной консистенции прибавляют обычно агар-агар или желатин.
Агар-агар − полисахарид, получаемый из определенных сортов морских водорослей. Он не является для микроорганизмов питательным веществом и служит только для уплотнения среды. В воде агар плавится при 80−100 °С, застывает при 40−45 °С.
Желатин − белок животного происхождения. При 25−30 °С желатиновые среды плавятся, поэтому культуры на них обычно выращивают при комнатной температуре. Плотность этих сред при рН ниже 6,0 и выше 7,0 уменьшается, и они плохо застывают. Некоторые микроорганизмы используют желатин как питательное вещество — при их росте среда разжижается.
Кроме того, в качестве плотных сред применяют свернутую сыворотку крови, свернутые яйца, картофель, среды с селикагелем.
  1   2   3   4


написать администратору сайта