ВОЗБУДИТЕЛИ ПИЩЕВЫХ ТОКСИКОИНФЕКЦИИ. Возбудители пищевых токсикоинфекции, кишечных инфекционных болезней человека и пищевых токсикозов
Скачать 311 Kb.
|
Тождество^ культур, выделенных из разных объектов, устанавливают по пробе Динеса. Для этого производят точечный посев сравниваемых культур на две половины чашки Петри с МПА и наблюдают за встречным «роением». Если культуры тождественны, то колонии сливаются, а если Я-антигены исследуемых штаммов микроорганизмов различны, то области «роения» разграничиваются демаркационной линией. Важным доказательством этиологической роли бактерий рода Proteus при пищевых токсикоинфекциях является нарастание уровня антител в крови пострадавших лиц (кровь исследуют на 8—10-е сутки и 18—21-й день), - Профилактика. Профилактика пищевых токсикоинфекции, обусловленных бактериями рода Proteus, такая же, как и при пищевых токсикоинфекциях, обусловленных бактериями рода Escherichia. Bacillus cereus Впервые этиологическая роль Bacillus cereus при пищевых отравлениях была изучена и описана Hauge в 1950 г. Сначала источником пищевых отравлений, обусловленных Вас. cereus, считали кулинарные изделия, содержащие картофельный крахмал. Затем были описаны вспышки пищевых отравлений этой этиологии, обусловленные растительными, мясными, мясо-растительными, рыбными и другими пищевыми продуктами. Особенно быстро Вас. cereus размножается в измельченных продуктах (фарш, котлеты, колбаса, кремы). При накоплении этого микроба изменяются органолептические свойства продукта: на поверхности образуется сероватая пленка, изменяются цвет и запах. Одни исследователи из-за отсутствия возбудителя в испражнениях и короткого инкубационного периода (6—14 ч) определяли пищевые отравления, вызванные Вас. cereus, как интоксикации, другие же это связывали' с антагонизмом кишечной микрофлоры и отсутствием специальных питательных сред для выделения Вас. cereus. Некоторым исследователям удалось выделить Вас. cereus из испражнений больных, используя среды, содержащие спирт. В последнее время патогенез пищевых отравлений, обусловленных Вас. cereus, объясняют следующим образом. Считают, что в результате выделения этим микробом фермента лецитиназы образуются продукты расщепления лецитина (фосфохолин и пр.), оказывающие токсическое действие на организм. Кроме того, при парентеральном заражении мышей была отмечена высокая патогенность штаммов Вас. cereus, выделенных при пищевых отравлениях, и установлено наличие термостабильного энтеротропного и термолабильного нейротроп-ного токсина. Количественный фактор в возникновении пищевых отравлений, вызванных Вас. cereus, имеет такое же значение, как и при отравлениях, обусловленных кишечной палочкой. Морфология. Вас. cereus — палочка длиной 8 мкм, шириной 0,9—1,-5 мкм, подвижная, образует споры. Отдельные штаммы этого микроба могут образовывать капсулу. Грамположительная. Культуральные свойства. Вас. cereus — аэроб, но может развиваться и при недостатке кислорода воздуха. На МПА вырастают крупные, распластанные, серовато-беловатые колонии с изрезанными краями, некоторые штаммы образуют розовато-коричневый пигмент; на кровяном агаре — колонии с широкими, резко очерченными зонами гемолиза; на МПБ — образует нежную пленку, пристеночное кольцо, равномерное помутнение и хлопьевидный осадок на дне пробирки. Все штаммы Вас. cereus интенсивно растут при рН от 9 до 9,5; при рН 4,5—5 прекращают свое развитие. Оптимальная температура развития 30—32°С, максимальная 37—48°С, минимальная 10°С. Ферментативные свойства. Вас. cereus свертывает и пептонизирует молоко, вызывает быстрое разжижение желатина, способен образовывать ацетилметилкарбинол, утилизировать нитратные соли, ферментирует мальтозу, сахарозу. Некоторые штаммы способны расщеплять лактозу, галактозу, дульцит, инулин, арабинозу, глицерин. Маннит не расщепляет ни один штамм. Устойчивость. Вас. cereus относится к микроорганизмам, чрезвычайно широко распространенным в природе. Основной средой его обитания является почва. Лучше Вас. cereus развивается в почвах с нейтральной или слабощелочной реакцией. Из почвы микроб попадает в воздух и водоемы, на пищевые продукты. Размножение начинается при 17—18°С, наиболее интенсивно — при 32°С. Вас. cereus часто обнаруживают в пастеризованном молоке (до 86% исследованных проб), в консервах (до 11,6%) и др. Микроб может развиваться при концентрации поваренной соли в среде до 10—15%, сахара — до 30—60%. Продукты с рН 4,5 и ниже являются неблагоприятной средой для развития Вас. cereus. На жизнедеятельность Вас. cereus кроме рН влияет и вид кислоты. Наибольшим бактериостатическим действием обладает уксусная кислота. Задержка роста Вас. cereus этой кислотой наблюдается при рН 4,5 и даже 6,0. Подкисление продуктов другими кислотами задерживает рост только при рН 4,0. Патогенность. При заражении белых мышей большими дозами Вас. cereus они погибают. В то же время он непатогенен в отличие от Вас. anthracis для морских свинок и кроликов. Вас. cereus выделяет фермент лецитиназу, являющийся фактором вирулентности. Наличие этого микроорганизма в продуктах может вызывать пищевые отравления. Вас. cereus может вызвать мастит у коров. Диагностика. Учитывая количественный фактор в патогенезе пищевых отравлений, вызываемых Вас. cereus. \ на первом этапе микробиологического исследования проводят микроскопию мазков (окраска мазков по Граму). Наличие в мазках грамположительных палочек толщиной 0,9 мкм позволяет поставить ориентировбчный диагноз: «споровый аэроб группы 1а». По современной классификации в группу 1а входят Вас. anthracis и Вас. cereus. При выяснении этиологии пищевых отравлений большое значение имеет дифференциация Вас. cereus и Вас. anthracis, так как кишечная форма сибирской язвы, вызываемая Вас. anthracis, по клиническим признакам может быть принята за пищевое отравление. Второй этап микробиологического исследования проводят в том случае, если количество обнаруженных при микроскопии палочек достигает в 1 г продукта 108. Затем по результатам микроскопии патологический материал высевают на кровяной агар в чашки Петри и инкубируют при 37°С в течение 1 сут. Наличие широкой, резко очерченной зоны гемолиза позволяет поставить предварительный диагноз на присутствие Вас. cereus. Для окончательной идентификации производят посев выросших колоний а среду Козера и углеводную среду с маннитом. Ставят пробу на лецитиназу, ацетилметилкар-бинол и проводят дифференциацию Вас. anthracis и других представителей рода Bacillus. Вас. anthracis отличается от Вас. cereus рядом характерных признаков: рост в бульоне и желатине, способность образовывать капсулу в организме и на средах, содержащих кровь или кровяную сыворотку. Кроме вышеописанных методов применяют экспресс-методы дифференциации Вас, anthracis от Вас. anthracoi-des, Вас. cereus и других: феномен «ожерелья», пробу с сибиреязвенным бактериофагом, реакцию преципитации — и проводят люминесцентную микроскопию. Можно использовать также цитопатогенный эффект фильтрата Вас. cereus на клетки культур тканей (фильтрат Вас. anthracis такого эффекта не оказывает). От других сапрофитных споровых аэробов Вас. cereus отличается по ряду свойств: способность образования ле-цитиназы, ацетилметилкарбинола, утилизация цитратных солей, ферментация маннита и рост в анаэробных условиях на среде с глюкозой. Особенно важное значение придают лецитиназе. Образование на кровяном агаре зон гемолиза не является постоянным признаком у Вас. cereus. так как некоторые штаммы и разновидности Вас. cereus (например, Var. sotto) не вызывают гемолиза эритроцитов, в то время как многие другие виды споровых аэробов обладают этим свойством. Clostridinm perfringens Пищевые отравления, вызываемые Cl. perfringens (рис. 16), как правило, связаны с употреблением в пищу мясных продуктов: котлет, приготовленных из готового мясного фарша, вареного мяса, хранившегося при комнатной температуре, холодных мясных закусок, пирожков с ливером и др. Термоустойчивые штаммы Cl perfringens широко распространены в природе, поэтому существует реальная опасность выживания спор этого микроорганизма в процессе кулинарной обработки пищевых продуктов и последующего их размножения при благоприятных условиях хранения. Интенсивность размножения Cl. perfringens в готовых блюдах зависит от индивидуальных свойств штамма, массивности обсеменения, вида продукта, его кислотности, температуры хранения. Вегетативные формы быстро погибают при доступе кислорода воздуха, солнечного света и наличия в среде различных антисептиков и антибиотиков. Споры Cl perfringens типов В, С, D, Е погибают обычно при кипяче- нии в течение 15—30 мин. Однако отдельные штаммы типа А, особенно типа F, образуют термоустойчивые споры, переносящие кипячение от 1 до 6 ч. Морфология, культур ал ьные, ферментативные свойства и устойчивость Cl. perfringens описаны в главе 1 Токсинообразование. С1. perfringens выделяет экзотоксин, содержащий различные токсические вещества: миотоксин, гемолизин, нейротоксин Cl. perfringens способен также образовывать токсины в продуктах после их тепловой обработки и при последующем хранении при 18—20°С и выше, причем в результате размножения Ci. perfringens не происходит заметного изменения органолептических свойств продукта (исключением является молоко). Токсины Cl. perfringens в течение нескольких часов разрушаются под действием различных факторов внешней среды. Антигенная структура. По антигенной структуре и токсигенным свойствам Cl. perfringens подразделяют на шесть типов: А, В, С, D, E, F, из которых типы В, С, D, Е — патогенны для домашних животных (овец, телят, поросят и др.), а для человека патогенны типы A, F и редко С, D. В этиологии пищевых отравлений играют роль Cl perfringens типов Л, С, D, F. Cl. perfringens типа А вызывает, как правило, легко протекающие и быстро заканчивающиеся пищевые ток-сикоинфекции, Cl. perfringens типа F и иногда типа С — тяжелейшую токсикоинфекцию (некротический энтерит у человека и животных с летальностью до 30—40%). Патогенность. Cl. perfringens способен вызывать газовую гангрену, некротический энтерит и пищевые отравления (токсикоинфекции) человека, а также дизентерию и энтеротоксемию животных. Cl. perfringens патогенен для всех лабораторных животных (голуби, морские свинки, мыши, в меньшей степени кролики). Особенно к нему чувствительны морская свинка и голуби. Морская свинка, голубь и мышь погибают через 18—20 ч после заражения. Диагностика. Диагностику пищевого отравления, вызванного Cl. perfringens типа А, осуществляют на основании клинических признаков и бактериологического исследования, проводимого в трех направлениях; обнаружение токсина в фекалиях; исследование испражнений и подозреваемых продуктов на наличие и массивность обсеменения Cl. perfringens; постановка реакции агглютинации с антигенами, полученными из штаммов, которые выделены от больных, и установление антигенной идентичности штаммов Cl perfringens, изолированных из испражнений больных, рвотных масс и пр , со штаммами, выделенными из подозреваемых продуктов. Профилактика. Профилактика пищевого отравления, вызванного Cl perfringens типа А, включает те же меро- приятия, что и при пищевых отравлениях, обусловленных> сальмонеллами, бактериями рода Е. coli и др. ; Возбудители кишечных инфекционных болезней человека j При нарушении санитарно-гигиенических режимов производства и условий хранения пищевые продукты (молоко, мясо и др.) могут служить источником пищевых инфекционных болезней человека (брюшной тиф, пара-тифы, дизентерия, холера). Возбудители этих болезней— , бактерии родов Salmonella, Shigella, Vibrio. ° Пищевые инфекционные заболевания, где источником инфекции является человек, нередко носят групповой ха- ' рактер, механизм развития пищевых инфекций в принци-, пе во многом сходен с механизмом описанных выше пищевых^ токсикоинфекций. Возникновение пищевых инфекций как и токсикоинфекций связано с попаданием в организм живых бактерий. Однако между пищевыми инфекционными болезнями и токсикоинфекциями имеется принципиальное различие. Для возникновения инфекционного заболевания достаточно, чтобы в пищевом продукте находилось небольшое количество микроорганизмов, которые, попав в организм, активно размножаются в нем, вызывая специфический патологический процесс. Пищевые же токсикоинфекций, как было сказано выше, возникают в результате употребления пищевых продуктов, содержащих большое количество живых бактериальных : клеток определенных видов микроорганизмов, с после-дующим их разрушением и освобождением эндотоксина.-] Род Salmonella , Возбудители тифа и паратифов — S. typhi, S. paratyp-; hi Л и В. Морфология, культуральные ферментативные' свойства, антигенная структура и др. см. с. 62—74 | Род Shigella 1 Бактерии рода Shigella вызывают болезнь, известнукм под названием бактериальной дизентерии. ; Морфология. Бактерии рода Shigella — это мелкие1! палочки (сходны с возбудителями брюшного тифа и na-f< ратифов), неподвижны, спор и капсул не образуют, грам-| отрицательны (рис. 17). 3 Культуральные свойства. Е Бактерии рода Shigella— Е аэробы. На МПА образуют | колонии двух типов- 5- и /?- j формы. Постоянная диссо- I циация S-формы в #-фор- I му является важным диагностическим признаком для микроорганизмов этой группы. По культур а льным признакам возбудители дизентерии сходны с возбуди- I телями паратифов и возбудителями брюшного тифа (см. род Salmonella). Так, на среде Плоскирева и Левина вырастают прозрачные колонии. Ферментативные свойст- «-»«-. ва. Бактерии рода Shigella не разжижают желатина, не расщепляют мочевину, не образуют сероводорода и индола, не продуцируют аце-тилметилкарбинола; дают положительную реакцию с метиловым красным, декарбоксилируют глютаминовую кислоту и орнитин. Бактерии рода Shigella не ферментируют салицина, инозита, сбраживают глюкозу, маннит, араби-нозу, раффинозу, глицерин, иногда сорбит без образования газа; некоторые типы шигелл ферментируют рамно-зу, ксилозу, мальтозу. У Sh. sonnei в отличие от других шигелл встречаются салициноположительные варианты. Устойчивость. Возбудители дизентерии могут сохраняться в почве, пищевых продуктах, на различных предметах в течение 10—15 дней. При нагреващнг до 60°С погибают через 10 мин, в растворах хлорамина, хлорной извести — через 5—6 мин, под воздействием прямого солнечного света — через 2Q—30 мин. Патогенность. Из животных в естественных условиях болеют только обезьяны. При искусственном заражении per os вызвать заболевание у лабораторных животных не удалось. В результате парентерального заражения кроликов большими дозами дизентерийных бактерий животные погибали. Внутривенное и внутрибрюшинное заражение обусловливает гибель белых мышей, котят, щенят. В настоящее время для определения патогенности ди-1 зентерийных бактерий широко Применяют кератоконъ-1 юнктивальную пробу на морских свинках или кроликах | (у животных развивается кератоконъюнктивит). Свеже- j выделенные вирулентные штаммы размножаются и в аль- \ веолярном эпителии белых мышей при их интраназаль- \ ном заражении, а также вызывают гибель куриных эм- ' брионов даже при введении единичных бактерий. : Диагностика. Для микробиологического исследования, отбирают пробы пищевых продуктов, рвотных масс, " испражнений (лучше всего комочки слизи). Бактериоло- * гическое исследование ведут в двух направлениях: выде- '•. ление чистой культуры; обнаружение специфических антител в крови больных. Профилактика. Профилактика бактериальной дизен-_ терии человека включает: своевременное выявление больных и бактерионосителей; раннюю госпитализацию и лечение; санитарно-коммунальное благоустройство на- (' селенных мест и санитарный надзор за пищевыми предприятиями; повышение санитарной культуры населения. Род Vibrio Микроорганизмы рода Vftrio относятся к семейству Spirillaceae. Возбудитель холеры — Vibrio cholerae asi-aticae. В кишечнике человека и животных, во внешней среде, особенно в воде, находится большое количество вибрионов (холероподобные, парахолерные, водные). Дифференцировать холероподобные вибрионы чрезвычайно трудно, так как они имеют много общих морфологических и биологических свойств и часто изменяются под действием различных внешних факторов. В этиологии заболевания особое значение имеет вибрион El-Tor, который рассматривается как биотип, вернее, мутант истинного холерного вибриона. Морфология. Холерный вибрион имеет форму палочки, изогнутой в виде запятой, длиной 1,5—4 мкм и шириной 0,2—0,4 мкм (рис. 18). Он характеризуется большим полиморфизмом: может встречаться в виде длинных нитей, крупных шаров, мелких гранул. Подвижный, спор и капсул не образует, по Граму не окрашивается. Культуральные свойства. Возбудитель холеры является строгим аэробом. Хорошо растет на всех питатель- • ных средах со щелочной реакцией (рН 7,6—8,0) при оптимальной температуре 37°С. На поверхности щелочного МЛА появляются круглые, прозрачные колонии с гладкой поверхностью и ровными краями. В 1%-ной пептонной воде с 0,5% Nad вибрионы вырастают за 6—8 ч, образуя слабую муть и нежную пленку на поверхности среды, в то время как другие микроорганизмы на этой среде вырастают только за 20—24 ч. Ферментативные свойства. Холерный вибрион вырабатывает протеолитические и сахаролитические ферменты. Разжижает желатин, свернутую кровяную сыворотку, яичный белок, фибрин, плазму. При расщеплении белков образуются сероводород и индол. Ферментирует глюкозу, мальтозу, маннит и другие углеводы с образованием кислоты без газа. Токсинообразование. Холерные вибрионы (не все штаммы) продуцируют экзотоксин. Патогенное действие вибрионов обусловливается также и эндотоксинами. Белые мыши, которым эндотоксин вводят внутривенно, погибают через 2—3 сут. Антигенная структура. Холерный вибрион имеет два антигена: термостабильный соматический 0-антиген и термолабильный Я-антиген. В настоящее время холерные и холероподобные вибрионы классифицируют по схеме, разработанной Гарднером и Венкатраменом. Согласно этой схеме все вибрионы по 0-антигену разделены на две серологические подгруппы. Первая подгруппа OI включает истинные холерные вибрионы, не ге-молизирующие эритроциты и гемолитический вибрион El-Tor. Вторая подгруппа — холероподобные водные и другие вибрионы, вызывающие гемолиз эритроцитов. В этой подгруппе пять серологических типов, которые обозначены как ОН, ОПТ, OIV, OV, OVI. |