Процедурная медсестра. 3. Гигиена процедурной медсестры и требования к ее внешнему виду

• Название: 3. Гигиена процедурной медсестры и требования к ее внешнему виду
• Анкор: Процедурная медсестра.docx
• Дата: 14.05.2017
• Размер: 175.05 Kb.
• Имя файла: Процедурная медсестра.docx
• Тип: Документы; #7584
• страница: 10 из 10

15.5. Обработка игл для рефлексотерапии

Письмо зам.гп.госуд.санит.врача РФ Ш6РЦ/1830от 21.09.1992 г.

В соответствии с ОСТ 25.1-005-87 «Устойчивость медиц. металлических инструментов к средствам дезинфекции, прелстерилизационной очистке и стерилизации, рекомендованным ОСТом 42-21 -2 85», а также игл из серебра или сплавов серебра.

ДЕЗИНФЕКЦИЯ - погружение в 70 гр. раствор спирт на 90 мин;

ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА - по ОСТУ 42-21-2-85 с использованием CMC «Биолот» или CMC «Лотоса» с перекисью водорода.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ - паровой, воздушный или химический метод по ОСТ-42-21-2-85

Обработку игл из серебра и платины проводить согласно ОСТ-42-21-2-85.

Иглы из серебра и сплавов серебра дезинфицируются спиртом предстерилизационпая очистка по ОСТ-42-21-2-85. Стерилизация только воздушным методом.

 

15. 6. Обработка перчаток

1. 
   Дезинфекция перчаток проводится одним из способов:
   

1. 
   а) погружение в 3% р-р хлорамина на 60 мин., затем прополаскивание под проточной водой и высушивание.
   
2. 
   б) погружение в 6% р-р перекиси водорода на 60 мин., прополаскивание в проточной воде и высушивание.
   
3. 
   в) погружение в 0,5% р-р CMC с 6% р-ром перекиси водорода на 60 мин., прополаскивание в проточной воде и высушивание.
   
4. 
   г) погружение в 0,03% р-р нейтрального анолита на 60 минут, прополаскивание в проточной воде и высушивание.
   

2. 
   Стерилизация перчаток.
   

Перед стерилизацией перчатки подвергают предстерилизационной очистке по ОСТу 42-21-2-85. Стерилизацию проводят одним из способов:

1. 
   Паровой метод стерилизации водяным насыщенным паром под повышенным давлением в паровом стерилизаторе автоклаве. Для этого перчатки внутри и снаружи пересыпают тальком (предварительно тщательно высушив), каждую перчатку перекладывают бязевой салфеткой, затем каждую пару заворачивают отдельно в пеленку или бязевый мешочек и в таком виде закладывают в стерилизационные коробки (биксы). Стерилизуют при 1-м режиме t 20°C, 1,1 атм. в течение 45 минут. Химконтроль: бензойная кислота, ИС на 120° С.
   

Приказ МЗ СССР № 720 от 31.07.78 г

Приказ МЗ СССР№ 408 от 12.07.89 г

МЗ РФ МУ 287-113 от 30.12.98 г

 

15. 7. Дезинфекция помещений, предметов обстановки

2-кратное протирание ветошью, смоченной в р-ре:

1. 
   хлорамин Б - 1% р-р;
   
2. 
   перекись водорода 3% р-р с моющим средством;
   
3. 
   лизоформин 3000, лизоформин-специаль, амоцид.
   

 

Обработка ветоши.

1. 
   Погружение в один из р-ров на 60 мин. перед использованием.
   

1. 
   хлорамин Б 1 % р-р;
   
2. 
   гипохлорид Са 0,5% р-р.
   

2. 
   Кипячение в 2% содовом р-ре - 15 мин.
   
3. 
   Кипячение в дистиллированной воде - 30 мин.
   
4. 
   Лизоформин-специаль 2% - 4 часа.
   

Приказ МЗ СССР № 408 от 12.07.89 г..

 

15. 8. Порядок проведения текущей уборки

1. 
   Влажная уборка процедурного кабинета проводится не менее 2 раз в сутки, при необходимости чаще: утром перед началом рабочего дня и в конце рабочей смены. Влажную уборку всегда необходимо сочетать с дезинфекцией и бактерицидным облучением помещения. Для дезинфекции могут быть использованы 1 % р-р хлорамина с добавлением 0,5% р-р моющего средства, 1,5% р-р лизоформина-специаль, 1,5% р-р амоцида, р-р нейтрального анолита согласно методических указаний к раствору.
   
2. 
   Медсестра или санитарка для уборки одевает халат и перчатки. В специальную емкость наливается дезраствор и закладывается чистая ветошь для обработки поверхностей. Протираются все поверхности двукратно с интервалом 15 мин. в строгой последовательности — стол для стерильного материала, шкафы для стерильных растворов, оборудования, манипуляционные столы, стулья, кушетки для больных.
   
3. 
   Для уборки используется специально выделенный уборочный инвентарь, имеющий четкую маркировку с указанием помещения, вида уборочных работ и специальное место хранения.
   
4. 
   После влажной уборки включаются бактерицидные потолочные или настенные облучатели на 60 минут, после чего проветривается помещение.
   
5. 
   Уборочный инвентарь после использования подвергается дезинфекции.
   

 

15. 9. Порядок проведения генеральной уборки

Генеральная уборка проводится один раз в неделю. В помещениях предварительно проводят уборку с применением растворов моющих средств для удаления механических и других загрязнений с целью более эффективного воздействия на обрабатываемые поверхности дезинфицирующего средства. Затем помещение (пол, стены), оборудование протирают ветошью, обильно смоченной одним из дезрастворов: 6% раствором перекиси водорода с 0,5% моющего средства, 5% раствором хлорамина, 1% активированным раствором хлорамина, 0,75% раствором Лизоформина-3000, 3% раствором Амоцида, 0,5% раствором Бионола из расчета 200 мл. кв.м обрабатываемой поверхности. При применении растворов перекиси водорода и хлорамина возможно использование для орошения поверхностей распыливающей аппаратуры

Время дезинфекционной выдержки 60 минут. После экспозиции поверхность протирают стерильной ветошью. После дезинфекции, помещение облучают ультрафиолетовым светом (прямым или отраженным), включая настенные и потолочные бактерицидные облучатели ОБН-200 или ОБН-350 один облучатель на 30 куб.м помещения, ОБН-150 или ОБН-300 на 60 куб. м на 2 часа с последующим проветриванием. Персонал при проведении генеральной уборки использует чистый халат, обувь, ватно-марлевую маску, клеенчатый фартук, перчатки.

Генеральная уборка проводится по графику, утвержденному зав. отделением. Ответственным лицом за проведение генеральной уборки является старшая медицинская сестра отделения.

 

15.10. Перечень инструктивно-методических документов, отражающих вопросы дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации изделий медицинского назначения

1. 
   ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы».
   
2. 
   Приказ Минздрава СССР от 12 июля 1989 г. № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране».
   
3. 
   Приказ Минздрава России от 16 июня 1997 г. № 184 «Об утверждении методических указаний по очистке, дезинфекции и стерилизации эндоскопов и инструментов к ним, используемых в лечебно-профилактических учреждениях»
   
4. 
   Методические указания по классификации очагов туберкулезной инфекции, проведению и контролю качества дезинфекционных мероприятий при туберкулезе МЗ СССР (JV» 10-8/39 от 04.05.79 г.)
   
5. 
   Методические рекомендации по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации медицинских инструментов к гибким эндоскопам МЗ СССР(№ 28-6/3 от 09.02.88 г.).
   
6. 
   Методические рекомендации по очистке, дезинфекции и стерилизации эндоскопов (МЗ СССР № 15-6/33 от 17.07.90 г.).
   
7. 
   Методические рекомендации по стерилизации лигатурного шовного материала в лечебно-профилактических учреждениях (МЗ СССР № 15-6/34 от 19.07.90 г.).
   
8. 
   Методические указания по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов МЗ СССР (№ 15/6-5 от 28.02.91 г.).
   
9. 
   Методические указания по применению озона, вырабатываемого в стерилизаторе озоновом СО-01-СП6, для стерилизации медицинских инструментов МЗ РФ(№МУ-135-113 от 31.07.97 г.).
   
10. 
    Методические рекомендации по стерилизации аппаратов искусственного кровообращения газообразной окисью этилена МЗ СССР (№ 1013-73 от 26.03.72 г.).
    
11. 
    Методические указания по применению медицинских упаковочных материалов корпорации «Рексам» (Великобритания) МЗ РФ (№ МУ-204-113 от 29.12.97 г.).
    
12. 
    Методические указания по применению медицинских упаковочных материалов «Стерикинг» фирмы «Випак Медикал» (Финляндия) МЗ РФ (№ МУ-157-ПЗ от 10.08.98 г.).
    
13. 
    Инструкция по применению индикаторов стерилизации одноразового применения ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180 МЗ РФ (№ 154,004.98 ИП от 18.02.98 г.).
    
14. 
    Методические указания по дезинфекции, ПСО и стерилизации изделий медицинского назначения МЗ РФ (МУ-287-113 от 30.12.98 г.).
    

 

16. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

1. 
   Качество предстерилизационной очистки (ПСО) проверяют путем постановки азопирамовой или амидопириновой проб на наличие остаточных количеств крови и путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. Контроль качества ПСО проводят ЦГСЭН и дезинфекционные станции - ежеквартально.
   

Самоконтроль в ЛПУ проводят:

• 
  в центральных стерилизациоиных отделениях (ЦСО) - ежедневно;
  
• 
  в отделениях - не реже 1 раза в неделю (организует и контролирует его старшая медсестра, акушерка).
  

2. 
   Контролю подлежат: в ЦСО -1 % от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях -1 % одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3-5 единиц.
   
3. 
   В случае положительной пробы на кровь или остаточные количества щелочных компонентов моющих средств всю партию контролируемых изделий, из которых отбирали на контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов. Результаты контроля отмечаются в журнале учета качества ПСО изделий медицинскою назначения по форме № 366/у.
   

 

16.1. Технология постановки амидопириновой пробы

Смешивают равные количества спиртового раствора амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода (по 2-3 мл).

На нестерильную вату наносят вышеуказанный реактив. Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на вате, этой ватой протирают поршень шприца, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю внутри. Затем заливают реактивы в цилиндр шприца, пропускают их через шприц на другую ватку (проверяется цилиндр шприца).

После чего на шприце закрепляют иглу, вновь наливают в цилиндр реактив и пропускают через шприц и иглу (проверяется игла):

1. 
   при наличии кровяных загрязнений на вате появляется сине-зеленое окрашивание. Окрашивание может наблюдаться при наличии на шприце остатков лекарственных средств, тройного раствора и хлорамина;
   
2. 
   при положительных пробах повторный контроль инструментов проводят ежедневно до получения 3-х кратного отрицательного результата.
   

Методические рекомендации по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения МЗ СССР № 28-6/13 от 08.06.82г.

 

16.2. Технология постановки азопирамовой пробы

Готовят 1,0-1,5 % раствор солянокислого анилина в 95% этиловом спирта.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4°С (в холодильнике) 2 месяца; в комнате при комнатной температуре +18 - +23°С не долее месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3% перекиси водорода. Рабочий раствор может быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном хранении может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25°С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30-40 минут. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты; а также держать раствор на ярком свете или вблизи нагревательных приборов.

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют в случае необходимости: 2-3 капли наносят на кровяное пятно. Если не позже чем, через 1 мин. появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет - реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 мин. не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

Выписка из инструктивно-методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам МЗ СССР № 28-6/13 от 26.05.88 г.

 

16.3. Технология постановки фенолфталеиновой пробы

Готовят 1 % спиртовой раствор фенолфталеина. Наносят на вымытое изделие 1-2 капли раствора. При наличии остаточных количеств моющего средства появляется розовое окрашивание. Изделия, дающие положительную пробу на кровь или моющее средство, обрабатывают повторно до получения отрицательного результата.

Выписка из методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения МЗ СССР № 28-6/13 от 08.06.82 г.

 

15. 
    4. Методические рекомендации по контролю стерилизации с использованием индикаторов стерилизации ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180 научно-производственной фирмы «Винар».
    

1. 
   ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ
   

1. 
   Настоящие методические рекомендации предназначены для всех медицинских работников здравоохранения, выполняющих работу, связанную с обеззараживанием и стерилизацией медицинского инструментария и изделий медицинского назначения.
   
2. 
   Индикаторы стерилизации производства НПФ «Винар» являются средством контроля режимов стерилизации, исключающих возможности использования при обследовании и лечении больных инструментов и материалов простерилизованных в неисправных или неправильно эксплуатируемых аппаратах. Индикаторы позволяют определять не только температуру, которая достигалась в процессе стерилизации, но и время её воздействия на стерилизуемые объекты.
   
3. 
   Индикаторы ИС-120 и ИС-132 предназначены для одновременного контроля в паровых стерилизаторах по ГОСТ 19569-80 температуры и времени стерилизации изделий медицинской техники, а также наличие пара при стерилизации. Индикатор ИС-120 применяется для режима стерилизации: температура 120+2°С (давление пара 0,11+0,02 МПа) за время 45+3 мин., индикатор ИС-132-температура 132±2°С (давление пара 0,20+0,02 МПа) за время 20+2 мин.
   
4. 
   Индикаторы ИС-160 и ИС-180 предназначены для одновременного контроля в воздушных стерилизаторах по ГОСТ 22649-83 температуры и времени стерилизации изделий медицинской техники. Индикатор ИС-160 применяется для режима стерилизации, температура 160±3°С за время 150+5 мин., индикатор ИС-180 -температура 18О±3°С за время 60+5 мин.
   
5. 
   Индикатор представляет собой полоску бумаги, на одной стороне которой нанесён индикаторный слой, изменяющий свой цвет до цвета эталона при соблюдении режима стерилизации. НПФ «Винар» изготавливает также индикаторы стерилизации, на второй стороне которых нанесён адгезионный слой. Эталон представляет собой полоску бумаги, одна сторона которой окрашена в цвет, с которым должен совпадать цвет индикатора при соблюдении режима стерилизации.
   
6. 
   Индикаторы изготавливаются в соответствии с ТУ 480-153-001 (согласовано с Министерством здравоохранения Российской Федерации 10 июня 1993 г.)
   

2. 
   ПРИМЕНЕНИЕ ИНДИКАТОРОВ
   

Для контроля режимов стерилизации с различными температурными параметрами следует применять соответствующий индикатор стерилизации.

 

Метод стерилизации	Параметры режима стерилизации		Тип индикатора
	Температура стерилизации	Стернлизацнонная выдержка
Воздушный метод	160	150	ИС-160
Воздушный метод	180	60	ИС-180
Паровой метод	120	45	ИС-120
Паровой метод	132	20	ИС-132

 

Стерилизация считается эффективной, если цвет всех индикаторов, заложенных в камеру стерилизатора, соответствует цвету эталона или темнее эталона.

Цвет индикатора светлее эталона в какой-либо точке стерилизатора указывает на неэффективную стерилизацию. При этом использование всей партии изделий запрещается.

3. 
   МЕТОДИКА КОНТРОЛЯ РАБОТЫ СТЕРИЛИЗАТОРОВ ИНДИКАТОРАМИ ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180.
   

Контролю подлежат все паровые и воздушные стерилизаторы, используемые для стерилизации медицинских инструментов и изделий медицинского назначения, При этом контролируется каждый цикл стерилизации. Количество полосок индикатора, которые закладываются для контроля одного цикла стерилизации, зависит от размеров камеры стерилизатора.

 

Емкость камеры воздушного стерилизатора а литрах	Количество зон, в которые закладываются индикаторы
до 80 80-250 250-500 500-1000	5 15 15 30
Емкость камеры парового стерилизатора в литраж	Количество зон, в которые закладываются индикаторы
до 100 100-750 свыше 750	5 11 13

 

За зонами контроля закрепляются номера. В каждую зону помещается не менее одной контрольной упаковки с индикаторной полоской. В качестве контрольной упаковки используются пакеты, свертки, стерилизационные коробки с инструментами, материалами. Более удобны индикаторы с адгезионным слоем, которые наклеиваются на поверхность упаковок.

По окончании цикла стерилизации индикаторы из контрольных упаковок извлекаются для сравнения с эталоном. Если цвет полосок в одной или нескольких контрольных упаковках светлее эталона, вся партия считается не стерильной.

Отработанные индикаторы подклеиваются в журнал учёта стерилизации, в выделенные для этого дополнительные колонки. Документирование индикаторов позволяет предоставить накопленную информацию контролирующим органам и использовать для ретроспективного анализа при неудовлетворительном бактериологическом контроле.

Индикаторы, заложенные в упаковки с инструментами, материалами, проверяет медицинский персонал перед проведением процедуры. Изделия запрещается использовать, если цвет индикатора светлее эталона.

Заказы направлять по адресу: 105094, г. Москва, а/я 26,

тел.: [phone], факс: [phone]., НПФ «Винар».

 

16.5. Санитарно-гигиенический режим при анаэробной инфекции

Источник инфекции - больные газовой гангреной в любой форме: эмфизематозной, отечно-токсичной, смешанной, газово-гнойной. Основной путь передачи контактный.

Обработку помещений, предметов, изделий проводят 6% раствором перекиси водорода с 0,5% CMC.

Загрязненное белье перед стиркой обрабатывают кипячением в 2% растворе питьевой соды в течение 120 минут.

Уборку помещений проводят не реже 2 раз в день 6% перекисью водорода с 0,5% CMC в защитных средствах и облучают бактерицидными лампами 1,5-2 часа.

Уборочный инвентарь после использования автоклавируют при температуре 132 гр. в течение 20 минут, хранят отдельно. Операционная, перевязочная оборудуются бактерицидными облучателями. Во время операции хирург и операционная медсестра надевают клеенчатые фартуки, которые потом обрабатываются 6% перекисью водорода с 0,5% CMC.

Перевязочный материал используется однократно, после операции перед уничтожением автоклавируется в специальном биксе 20 мин. при температуре 132 гр. Категорически запрещается выбрасывать материал без обеззараживания.

После операции весь инструментарий погружают в 6% раствор перекиси водорода с 0,5 CMC на 60 мин. или кипятят в течение 90 мин. Затем проводят предстерилизационную очистку и стерилизацию по ОСТУ 42-21-2-85.

Кроме этого можно использовать для дезинфекации следующие растворы: Сайдекс, Лизоформин-3000, Бионол, Гигасепт по режиму стерилизации.

Приказ МЗ СССР № 720 (пункт И) от 31 07.1978 г, Методические рекомендации по дезсредствам.