Исследование включает в себя определение концентрации гемоглобина, величины гематокрита, концентрации эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, а также расчёт эритроцитарных индексов (mcv, rdw, mch, mchc).
 Скачать 93.06 Kb.
|
|
23 Техника приготовления и окраска препаратов мокроты на БК..Возьмите новое, чистое предметное стекло без царапин и напишите у края шифр пациента. Перенесите необходимое количество исследуемого материала с помощью аппликатора (рекомендуется) или бактериологической петли. Дляприготовления препаратов используйте присутствующие в мокроте кровянистые, непрозрачные, сероватые или желтоватые творожистые массы.Распределите материал попредметному стеклу тонким слоем на площади примерно1,0 см на 2,0 см. Слой мокроты должен быть достаточно тонким, чтобы его можно было легко микроскопировать.На каждом предметном стекле делайте не больше одного препарата(для нанесения мокроты на предметное стекло используйте сломанный конец деревянной палочки). Оставьте препарат для высыхания на 15 минут.Не подсушивайте препараты нагреванием.Фиксируйте препараты, используя один из следующих методов:– Проведите стекло (мазком кверху) через пламя горелки 3–4 раза.Не перегревайте препарат. Перед окрашиванием, препараты охладите;– Фиксируйте препараты не менее 2 часов на электронагревателе для сушки предметных стекол (при температуре 65°С–75°С).Окраска: : 1. Фиксированный мазок, депарафинизированный срез, покрывают плоской фильтровальной бумагой и наливают на неё карболовый фуксин Циля. Мазок подогревают над пламенем горелки до появления паров, затем отводят для охлаждения и добавляют новую порцию красителя. Подогревание повторяют 2—3 раза. После охлаждения снимают фильтровальную бумагу и промывают препарат водой.2. Препарат обесцвечивают путём погружения или нанесения на него 25%-го раствора серной кислоты или 3 % солянокислого спирта в течение 30 секунд, и промывают несколько раз водой.3. Окрашивают препараты водно-спиртовым раствором метиленового синего 1 минуту, промывают водой и высушивают.При окраске по этому методу кислотоустойчивые бактерии приобретают интенсивно красный цвет, остальная микрофлора окрашивается в светло-синий цвет. Для сбора мокроты рекомендуется использовать контейнеры из прочного материала, не пропускающего жидкости (у нас – это одноразовые контейнера из материала который легко утилизировать). Контейнеры должны быть прозрачными с широким горлышком (35 мм в диаметре) с плотно закрывающейся крышкой. Сбор мокроты с диагностической целью должен быть выполнен трехкратно по регламентированным правилам, согласно специальной инструкции.Пациент необходимо объяснить, как правильно собирать мокроту: 1. Мокроту следует собирать в специальной комнате с вентиляцией или на открытом воздухе. 2. Мокроту собирает утром до приема пиши. 3. Предварительно ополоснуть рот кипяченой водой. 4. Откашлять(3-5 мл). 5. Держать контейнер у самых губ и осторожно выплюнуть в него. 6. Плотно закрыть контейнер крышкой и передать медсестре. Если мокрота отделяется в скудном количестве, необходимо накануне сбора материала принять отхаркивающие средства. Чтобы предотвратить примешивание к мокроте содержимого полости рта, перед откашливанием производится санация ротовой полости - необходимо почистить зубы, прополоскать рот и горло кипяченой водой. При плохо отделяемой мокроте, накануне принять отхаркивающие средства, теплое питье. Мокрота собирается пациентом самостоятельно посредством глубокого откашливания. Следует предупредить пациента, что необходимо собирать только мокроту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании! Устройство микроскопа: В микроскопе различают механическую и оптическую части.К механической части относится штатив (состоящий из основания и тубусодержателя) и укрепленные на нем тубус с револьвером для крепления и смены объективов, предметный столик для препарата, приспособления для крепления конденсора и светофильтров, встроенные в штатив механизмы для грубого (макромеханизм, макровинт) и тонкого (микромеханизм, микровинт) перемещения предметного столика или тубусодержателя.Оптическая часть микроскопа представлена объективами, окулярами и осветительной системой, которая в свою очередь состоит из расположенных под предметным столиком конденсора Аббе, зеркала, имеющего плоскую и вогнутую сторону, а также отдельного или встроенного осветителя с низковольтной лампой накаливания и трансформатором. Объективы ввинчиваются в револьвер, а соответствующий окуляр, через который наблюдают изображение, устанавливают с противоположной стороны тубуса. Медицинские отходы в зависимости от степени их эпидемиологической, токсикологической и радиационной опасности, а также негативного воздействия на среду обитания подразделяются на пять классов опасности:Класс А – эпидемиологически безопасные отходы, приближенные по составу к твердым бытовым отходам (далее – ТБО).Класс Б – эпидемиологически опасные отходы.Класс В – чрезвычайно эпидемиологически опасные отходы.Класс Г – токсикологически опасные отходы 1-4 классов опасности.Класс Д – радиоактивные отходы.Класс А-Отходы, не имеющие контакта с биологическими жидкостями пациентов, инфекционными больными.Канцелярские принадлежности, упаковка, мебель, инвентарь, потерявшие потребительские свойства. Смет от уборки территории и так далее.Пищевые отходы центральных пищеблоков, а также всех подразделений организации, осуществляющей медицинскую и/или фармацевтическую деятельность, кроме инфекционных, в том числе фтизиатрических.Класс Б-Инфицированные и потенциально инфицированные отходы. Материалы и инструменты, предметы загрязненные кровью и/или другими биологическими жидкостями. Патологоанатомические отходы. Органические операционные отходы (органы, ткани и так далее).Пищевые отходы из инфекционных отделений.Отходы из микробиологических, клинико-диагностических лабораторий, фармацевтических, иммунобиологических производств, работающих с микроорганизмами 3-4 групп патогенности. Биологические отходы вивариев.Живые вакцины, непригодные к использованию.Класс В-Материалы, контактировавшие с больными инфекционными болезнями, которые могут привести к возникновению чрезвычайных ситуаций в области санитарно-эпидемиологического благополучия населения и требуют проведения мероприятий по санитарной охране территории.Отходы лабораторий, фармацевтических и иммунобиологических производств, работающих с микроорганизмами 1-2 групп патогенности.Отходы лечебно-диагностических подразделений фтизиатрических стационаров (диспансеров), загрязненные мокротой пациентов, отходы микробиологических лабораторий, осуществляющих работы с возбудителями туберкулеза.Класс Г-Лекарственные (в том числе цитостатики), диагностические, дезинфицирующие средства, не подлежащие использованию.Ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование. Отходы сырья и продукции фармацевтических производств.Отходы от эксплуатации оборудования, транспорта, систем освещения и другие.Класс Д-Все виды отходов, в любом агрегатном состоянии, в которых содержание радионуклидов превышает допустимые уровни, установленные нормами радиационной безопасности. Упаковка обеззараженных медицинских отходов классов Б и В должна иметь маркировку, свидетельствующую о проведенном обеззараживании отходов. 24 Мокрота. Исследование мокроты,микроскопия..Мокрота- это патологический секрет легких и дыхательных путей (бронхов, трахеи, гортани), который отделяется при откашливании. Мокрота представляет собой секрет в виде слизи, образующейся в клетках эпителия (слизистой оболочки) бронхов. При клиническом исследовании мокроты анализируются такие показатели, как количество мокроты, ее цвет, запах, характер, консистенция, наличие примесей, клеточный состав, количество волокон, определяется присутствие микроорганизмов (бактерий, грибов), а также паразитов. Количество мокроты при разных патологических процессах может составлять от нескольких миллилитров до двух литров в сутки.Незначительное количество мокроты отделяется при:острых бронхитах,пневмониях,застойных явлениях в легких, в начале приступа бронхиальной астмы.Большое количество мокроты может выделяться при:отеке легких,нагноительных процессах в легких (при абсцессе, бронхоэктатической болезни, гангрене легкого, при туберкулезном процессе, сопровождающемся распадом ткани).По изменению количества мокроты иногда можно оценить динамику воспалительного процесса.Цвет мокротыЧаще мокрота бесцветная.Зеленый оттенок может свидетельствовать о присоединении гнойного воспаления.Различные оттенки красного указывают на примесь свежей крови, а ржавый – на следы распада эритроцитов.Ярко-желтая мокрота наблюдается при скоплении большого количества эозинофилов (например, при бронхиальной астме).Черноватая или сероватая мокрота содержит угольную пыль и наблюдается при пневмокониозах и у курильщиков.Мокроту могут окрашивать и некоторые лекарственные средства (например, рифампицин).ЗапахМокрота обычно не имеет запаха.Гнилостный запах отмечается в результате присоединения гнилостной инфекции (например, при абсцессе, гангрене легкого, при гнилостном бронхите, бронхоэктатической болезни, раке легкого, осложнившемся некрозом).Своеобразный "фруктовый" запах мокроты характерен для вскрывшейся эхинококковой кисты.Характер мокроты Слизистая мокрота наблюдается при катаральном воспалении в дыхательных путях, например, на фоне острого и хронического бронхита, трахеита.Серозная мокрота определяется при отеке легких вследствие выхода плазмы в просвет альвеол.Слизисто-гнойная мокрота наблюдается при бронхите, пневмонии, бронхоэктатической болезни, туберкулезе.Гнойная мокрота возможна при гнойном бронхите, абсцессе, актиномикозе легких, гангрене.Кровянистая мокрота выделяется при инфаркте легких, новообразованиях, травме легкого, актиномикозе и других факторах кровотечения в органах дыхания.Консистенция мокроты зависит от количества слизи и форменных элементов и может быть жидкой, густой или вязкой.Плоский эпителий в количестве более 25 клеток указывает на загрязнение материала слюной.Клетки цилиндрического мерцательного эпителия – клетки слизистой оболочки гортани, трахеи и бронхов; их обнаруживают при бронхитах, трахеитах, бронхиальной астме, злокачественных новообразованиях.Альвеолярные макрофаги в повышенном количестве в мокроте выявляются при хронических процессах и на стадии разрешения острых процессов в бронхолегочной системе.Лейкоциты в большом количестве выявляются при выраженном воспалении, в составе слизисто-гнойной и гнойной мокроты.Эозинофилы обнаруживаются при бронхиальной астме, эозинофильной пневмонии, глистных поражениях легких, инфаркте легкого.Эритроциты. Обнаружение в мокроте единичных эритроцитов диагностического значения не имеет. При наличии свежей крови в мокроте выявляются неизмененные эритроциты.Клетки с признаками атипии присутствуют при злокачественных новообразованиях.Эластические волокна появляются при распаде ткани легкого, которое сопровождается разрушением эпителиального слоя и освобождением эластических волокон; их обнаруживают при туберкулезе, абсцессе, эхинококкозе, новообразованиях в легких.Коралловидные волокна выявляют при хронических заболеваниях (например, при кавернозном туберкулезе).Обызвествленные эластические волокна – эластические волокна, пропитанные солями кальция. Их обнаружение в мокроте характерно для туберкулеза.Спирали Куршмана образуются при спастическом состоянии бронхов и наличии в них слизи; характерны для бронхиальной астмы, бронхитов, опухолей легких.Кристаллы Шарко – Лейдена – продукты распада эозинофилов. Характерны для бронхиальной астмы, эозинофильных инфильтратов в легких, легочной двуустки.Мицелий грибов появляется при грибковых поражениях бронхолегочной системы (например, при аспергиллезе легких).Прочая флора. Обнаружение бактерий (кокков, бацилл), особенно в больших количествах, указывает на наличие бактериальной инфекции.Микроскопия мокроты: Полученную мокроту выливают в чашки Петри.Специальной препаровальной иглой извлекают гнойные комочки, переносим на предметное стекло и делаем мазки, растирая материал между двумя предметными стеклами. Мазки высушиваем на воздухе, фиксируем над пламенем горелки, окрашиваем по методу Циля-Нильсена и микроскопируем с иммерсионной системой. Окрашенные в красный цвет микобактерии располагаются отдельно или группами. Метод Циля-Нильсена: 1. Фиксированный мазок, депарафинизированный срез, покрывают плоской фильтровальной бумагой и наливают на неё карболовый фуксин Циля. Мазок подогревают над пламенем горелки до появления паров, затем отводят для охлаждения и добавляют новую порцию красителя. Подогревание повторяют 2—3 раза. После охлаждения снимают фильтровальную бумагу и промывают препарат водой.2. Препарат обесцвечивают путём погружения или нанесения на него 25%-го раствора серной кислоты или 3 % солянокислого спирта в течение 30 секунд, и промывают несколько раз водой.3. Окрашивают препараты водно-спиртовым раствором метиленового синего 1 минуту, промывают водой и высушивают.При окраске по этому методу кислотоустойчивые бактерии приобретают интенсивно красный цвет, остальная микрофлора окрашивается в светло-синий цвет. 25)правила работы в кдл Лаборант должен: лаборант должен быть обеспечен средствами защиты(далее – СИЗ); выполнять только порученную работу, соблюдать правила безопасности при работе с реактивами и медицинскими препаратами; содержать в чистоте закрепленное оборудование и СИЗ, ПЕРЕД НАЧАЛОМ РАБОТЫ. Проверить готовность к работе оборудования, приборов, аппаратов, местного освещения, газовой горелки, вытяжного шкафа, средств малой механизации, других приспособлений, посуды, вспомогательных материалов и иных предметов оснащения рабочего места, уточнить наличие и достаточность реактивов и убедиться в их исправности. В случае обнаружения дефектов немедленно сообщить об этом заведующему лабораторией. Не приступать к работе без устранения обнаруженных дефектов, сделав соответствующие отметки в журнале технического обслуживания медицинского и лабораторного оборудования. Спецодежду лаборант не должен снимать в течение всего времени нахождения в санитарной зоне медицинской лаборатории и клиники. Выходить на улицу в санитарной одежде запрещено! При попадании крови или других биологических жидкостей пациента На кожные покровы: обработать 70% спиртом, промыть водой с мылом и повторно обработать спиртом. На слизистую глаз: обильно промыть их проточной (питьевой) водой, НЕ ТЕРЕТЬ. На халат (одежду): снять рабочую одежду и погрузить в дезинфицирующий раствор или в бак для автоклавирования. Все емкости (колбы, пробирки, чашки) после проведения исследования необходимо поместить в специальное ведро с крышкой или бикс, после чего произвести обеззараживание с использованием автоклавирования на протяжении не менее одного часа при температуре +125 градусов или 20 минут при температуре +135. До обезжиривания освобождать обезжириваемые емкости категорически запрещается. После этого емкости обрабатываются щетками или ершами, промываются под проточной водой, высушиваются в сушильных шкафах или при комнатной температуре. 26Лейкоциты (белые кровяные клетки) играют важную роль в защите организма от микробов, вирусов, патогенных простейших, т. е. они обеспечивают иммунитет. У человека в норме кровь содержит 4–9 109/л лейкоцитов (в 500–1000 раз меньше, чем эритроцитов). Увеличение их количества называют лейкоцитозом, а уменьшение – лейкопенией. Лейкоциты, в отличие от эритроцитов, содержат ядро. Лейкоциты неоднородны, включают гранулоциты (зернистые) и агранулоциты (незернистые). В группу гранулоцитов входят нейтрофилы (50–75 %), эозинофилы (1–5 %) и базофилы(0–1 %). Названия гранулоцитов связаны с различными красителями (нейтральными, кислыми и щелочными), способными окрашивать гранулы лейкоцитов. Агранулоциты включают лимфоциты (20–40 %) и моноциты (2–10 %).. Подсчет лейкоцитов (Л) производят в камере Горяева в 25 больших квадратах (400 маленьких). После освобождения первых трех капель крови из смесителя для лейкоцитов последующую каплю наносят на среднюю площадку камеры Горяева у края покровного стекла. Благодаря капиллярным силам капля втягивается под покровное стекло и заполняет камеру. Равномерное распределение лейкоцитов свидетельствует о хорошем перемешивании крови.Подсчет лейкоцитов производят в 25 больших квадратах (400 малых квадратов).Итоговая формула для подсчета лейкоцитов в 1 мм3 с учетом разбавления в 20 раз следующая: где В – сумма лейкоцитов в 25 больших (400 маленьких) квадратах.В*4000*20/400=в*200 27.Эритроциты - без ядерные клетки 7-8 мкм форм двояковогнутого диска. Анизацитоз- изм-е формы зритроцитов, покилоцитоз- изм-е размера эритроцитов. Размеры эритроцитов - нормоциты 7-7.5 мкм, микроциты 6,5 мкм, макроциты- диам-р 8 мкм, мегалоциты – диам-р < 12 мкм. Акантоциты – эритроциты с зазубренной поверхностью; овалоциты- эритроциты овальной формы , сферациты- эритроциты в форме шара, Стоматоциты – односторонне вогнутые эритроциты; подсчет эритроцитов в камере Горяева. Считаем эритроциты в строго определенном объеме камеры при постоянном разведении крови. Считаем эритроциты в малом увеличении, используются 5 больших или 80 малых квадратов сетки, расположенных по диагонали. Таким образом, получаем следующую формулу: N=m*4000*200/(5*16)=m*10000, 400*10000=4. Т.е ч-ло эрит-в в 1 мкл крови сосчитанных в 80 малых кв *10000.Повышение уровня эритроцитов: дегидратация (обезвоживание) из-за сгущения крови – гемоконцентрации; хроническая обструктивная болезнь легких; хроническая сердечная недостаточность; талассемия – генетическое заболевание, приводящее к нарушению синтеза гемоглобина; гипоксия, снижение эритроцитов- железо-, B12- или фолиево дефицитная анемия; острое или хроническое кровотечение; хронические болезни почек, цирроз печени, микседема, беременность, физ нагрузки, курение, онкологические заболевания костного мозга или метастазы других опухолей в костный мозг, апластическая анемия, различные кровотечения, хронические инфекции. 28. Понятие о схеме кровет. Хр лейкозы. Диагностика. Кроветворением, или гемопоэзом, называется непрерывный процесс образования клеток крови. Все клетки крови – эритроциты, лейкоциты и тромбоциты Основной кроветворный орган человека – костный мозг. Однако в созревании и «обучении» таких клеток, как лимфоциты, принимают участие и другие органы – тимус, лимфоузлы, селезенка, лимфоидные образования кишечной стенки и т.д Схему открыли ученые Черков, Воробьев. .Делятся на 6 классов 1-стволовые клетки, 2- полипотентные они могутразвив от 2 до неск направ. 3 унипотентные развив 1 направ. 1,2,3 классы морф не распозноваемые и не отличимые друг от друга. 4- бластные клетки,5- Созревающие,6 зрелые клетки. Сущ 5рядов: Лимфоцитарный, Моноцитарный, Гранулоцитарный, Эритроцитарный, Мегакариоцитарный ряд. Лейкоз-это опухолевое заб кроветворной сист. Хр.Лейкоз- субстрат опухоли состав. Саозревающие и зрелые клетки, т.е. класс 5 и 6 схемы кроветворения. Группаи хр лейкозов: Хр миелолейкоз- субстрат опухоли сост. Нейтрофилы. Лейкоц. Увелич в 5-10раз(кост мозг), в периф крови до 200*10/9л, в начале гемог,тромб, эрит в норме, при осложнении анемия, тромбоцитопения, СОЭ 30-70мм/ч. Хр Лимфолейкоз- субс опух яв зрелые лифоциты, протекает лейкоцитоз до100*10/9. В пунктате кост мозга лифоцит 80-90%. Хр. Моноцитарный лейкоз периф: увел.моноцитов, моноцитоподобных клеток.Лейкоцитоз 15-20*10/9л.Тромб и эрит в норме.Моноцит 30-40%, незнач увел.СОЭ. С мочой выд. Фермент лизоцин. Эритремия-опух. Кроветворной формы, субс опух зрел эрит. Увел до 6-8*10/9л, Лейкоц 10-15*10/9л иногда до 50, тромбоцитоз до 1000*10/9л. Сдвиг лейк форм влево, токсиг зернист нейтрофилов, СОЭ не оседает,кровь вязкая, в терминальной фазе анемия и тромб сниж. Миелофиброз- хар-ся опух-м поражением кост мозга и разрастается фиброзной тканью, угнетается. Лейк 10-40*10/9л, эритроцитоз, тромбоцитоз, сдвиг влево, незнач увел. СОЭ. Миеломная болезнь- опух заб. Кроветворной сист. С разрастания злакач. Плазматич клеток, в биох. Повыш. Белок и появл в моче белок Бенс-Джонса. При обострения нормохромная анемия . В кост мозге появ миеломные клетки. Крупные клетки с выраж-й базофилией, вакуолизации цитоплазмыс 1 или неск. ядрами. 29)Должностные обязанности лаборанта. Спид. Меры профилактики ВИЧЛаборант выполняет следующие должностные обязанности:. Выполняет лабораторные анализы.. Принимает участие в сборе и обработке материалов в процессе исследований в соответствии с утвержденной программой работы. Следит за исправным состоянием лабораторного оборудования, осуществляет его наладку. Подготавливает оборудование (приборы, аппаратуру) к проведению экспериментов, осуществляет его проверку и простую регулировку согласно разработанным инструкциям и другой документации. Минимальный набор средств индивидуальной защиты при работе с биологическим материалом включает медицинский халат, шапочку и резиновые перчатки. При угрозе разбрызгивания биологического материала дополнительно используют маски, очки, клеенчатый фартук.Смена спецодежды в обычных КДЛ осуществляется не реже 2 раз в неделю, а при возникновении аварийных ситуаций — немедленно. В случае попадания на одежду биологического материала, перед тем как снять ее, загрязненное место обрабатывают дезинфицирующим раствором. Стирка одежды на дому категорически запрещена.Резиновые перчатки обязательны для использования при работе не только с кровью, но и с любым биологическим материалом. Необходимо избегать уколов и порезов. Все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем.В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2 минут тампоном, обильно смоченным 70%-ным спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным тампоном. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3%-ным раствором хлорамина, 6%-ным раствором перекиси водорода.При подозрении на попадание крови на слизистые оболочки их немедленно обрабатывают струей воды, 1%-ным раствором борной кислоты или вводят несколько капель нитрата серебра; нос обрабатывают 1 %-ным раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 70%-ным спиртом или 1%-ным раствором перманганата калия.Запрещается пипетирование крови ртом; следует использовать автоматические пипетки, а при их отсутствии — резиновые груши.Важный этап в предупреждении внутрилабораторного заражения — грамотная транспортировка биологического материала в лабораторию. Материал должен быть помещен в надежно закрывающуюся посуду, сопроводительная документация должна прикладываться в отдельном целлофановом пакете. Для доставки материала в центральную диагностическую лабораторию из отделений больницы используют специальные металлические или пластмассовые закрывающиеся ящики. После разгрузки они обязательно обрабатываются дезинфицирующими растворами.Распаковка материала, доставленного в лабораторию, проводится в специально отведенном для этого месте. Персонал работает в перчатках, а емкости с материалом помещают на эмалированные или металлические подносы. Для оценки качества обработки медицинских изделий применяют следующие пробы:1. Азопирамовая проба используется для наличия остаточных загрязнений кровью.2. Исходный раствор азопирама готовят путем смешивания 100 г амидопирина и 1 г солянокислого анилина и доведением до объема 1 л 95% этилового спирта. Смесь перемешивают до растворения составных компонентов. Приготовленный раствор азопирама хранится в плотно закрытом флаконе в темноте. Срок хранения при комнатной температуре - не более 1 месяца, при содержании раствора в холодильнике - 2 месяца.3. Постановку пробы проводят реактивом азопирам, который готовят путем смешивания равных количеств исходного раствора азопирама и 3% раствора перикиси водорода. Реактив азопирам хранится не более 2 часов. Реактив не следует размещать вблизи нагревательных приборов и на ярком свету. Постановку пробы необходимо проводить на холодных инструментах.4. Нанесении 2 капель реактива на медицинское изделие или при протирании его марлевой салфеткой на загрязненных кровьюизделиях появляется фиолетовое, затем быстро переходящее в розово-сиреневое окрашивание реактива. Проба выявляет кроме кровяных загрязнений наличие на изделиях пероксидаз растительного происхождения, окислителей и компонентов коррозии (солей железа и окислов). При выявлении наличия коррозии отмечается бурое окрашивание реактива. В остальных случаях выявляется розовато-сиреневое окрашивание.5. Амидопириновая проба также применяется для выявления наличия остаточных количеств крови.6. Для проведения пробы смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. 2 капли приготовленной смеси наносят на сухую поверхность медицинского изделия. Остаточное количество крови на поверхности инструментов проявляется сине-фиолетовым окрашиванием. Не следует проводить пробу на горячих инструментах.7. Фенолфталеиновая проба применяется для определения наличия остаточных количеств моющих средств. 8. Пробу осуществляют путем нанесения на сухую, негорячую поверхность 2 капель 1 % раствора фенолфталеина. При наличии на поверхности изделий остатков моющих средств отмечается розовое окрашивание.При выявлении положительной пробы на кровь или моющее средство на поверхности медицинских изделий, изделия обрабатываются повторно до получения отрицательной пробы. Результаты контроля фиксируются в журнале учета качества предстерилизационной обработки. |