Главная страница
Навигация по странице:

  • Фиксированный

  • Микробиология. практикум микробиология ворд. Практикум министерство науки и высшего образования российской федерации


    Скачать 3.98 Mb.
    НазваниеПрактикум министерство науки и высшего образования российской федерации
    АнкорМикробиология
    Дата03.02.2022
    Размер3.98 Mb.
    Формат файлаdocx
    Имя файлапрактикум микробиология ворд.docx
    ТипПрактикум
    #350290
    страница6 из 23
    1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   23

    Лабораторная работа 2

    Окрашенные и фиксированные препараты микроорганизмов

    Основные теоретические положения


    Большинство клеток микроорганизмов в естественных усло- виях не окрашены и поэтому плохо видны в световой микроскоп, с трудом поддаются изучению. В связи с этим Р. Кох первым стал пробовать окрашивать микроорганизмы для их изучения. В настоя- щее время можно выделить следующие виды окраски:

    • Окраска прижизненная (витальная). Для нее используют только витальные красители, не вызывающие гибель клеток. Та- ковыми являются, например, водные растворы в концентрации 0,2–0,001 % метиленового синего, конго красного.

    • Окраскафиксированныхпрепаратов. В отличие от «живых» препаратов, фиксированные нет смысла изучать без окраски. Фик- сация включает в себя и «убийство» клеток, поэтому возможности для применения различных окрасок не ограничены. Приготовле- ние фиксированного препарата проходит в несколько стадий: при- готовление мазка, высушивание мазка, фиксация мазка в пламени горелки либо в специальных фиксирующих жидкостях, окраска.

    Фиксация препаратов имеет несколько целей: во-первых, как уже говорилось выше, это «убийство» микроорганизмов, во-вторых, обеспечение лучшего прилипания клеток к стеклу, а в-третьих, уве- личение восприимчивости клеток к окраске за счет (опять же) их

    «убийства», так как мертвые клетки окрашиваются лучше живых. Также для рассмотрения фиксированных препаратов можно ис- пользовать иммерсию и иммерсионный объектив.

    Кроме этого, окраску подразделяют на следующие виды:

    • Простая, проходящая в одну стадию с использованием одно- го красителя; в качестве красителей обычно используют метиле- новый синий, водный раствор фуксина, водный раствор сафранина.

    • Сложная, когда окраска производится минимум двумя кра- сителями с этапом отмывки между ними. Классический пример сложной окраски окраска по Граму использованием трех краси-

    телей), другой пример, использующийся в медицинской практике, окраска по Цилю – Нельсону.

    • Дифференцированная, при которой прокрашиваются опре- деленные части микроорганизмов капсула, нуклеоид, включения, жгутики и т. д.

    В рамках данной лабораторной работы необходимо ознако- миться с методом окраски живых препаратов дрожжей раствором Люголя для выявления включений, окраской методом негативного контрастирования живых препаратов клеток, содержащих капсулу, а также со способом приготовления фиксированного окрашенного препарата.

    Включения довольно обширное понятие, под которым объеди- няются все везикулы, существующие в бактериальных клетках. Они могут содержать в себе питательные вещества – полисахари- ды, полифосфаты, липиды, серу. Помимо запасающей функции, включения могут регулировать осмотическое давление клетки. Кро- ме того, везикулы могут содержать фотосинтетические пигменты зеленых бактерий (хлоросомы) и цианобактерий (фикобилисомы). Некоторые водные микроорганизмы имеют газовые вакуоли. Окра- шиваются включения опять-таки в зависимости от их содержи- мого – это раствор Люголя для полисахаридов, судан III либо су- дан черный для липидных гранул, метиленовый синий для поли- фосфатов (волютин).

    Капсулы структура, вырабатываемая бактериями на поверх-

    ности клеток. Она служит еще одним защитным слоем как от фи- зических, так и от иммунологических воздействий. По природе своей гидрофильна, состоит из большого количества воды, связан- ной с полисахаридами и полипептидами. Капсула вследствие сво- их свойств практически не окрашивается. Окраску капсул можно провести методами негативного окрашивания с помощью туши – методами окраски мазка по Хиссу, Бурри Гинсу или Дюгиду. Также существуют методы окраски по Романовскому – Гимзе и Михину с использованием красящих веществ.

    Цель работы: изучить методы окраски микроорганизмов и спо- собы приготовления фиксированного окрашенного препарата.

    Оборудование и реактивы


    1. Микроскоп, иммерсионное масло.

    2. Предметные стекла, штатив к ним.

    3. Спиртовки и зажигалки.

    4. Микробиологические петли.

    5. Фильтровальная бумага, вата, хозяйственное мыло.

    6. Чистые культуры микроорганизмов, в том числе образующих капсулу.

    7. Суспензия пекарских дрожжей.

    8. Красители: водный раствор сафранина, метиленовый синий, тушь, раствор Люголя.

    З а д а н и е 1 Окраска включений


    В асептических условиях внести на покровное стекло каплю культуры дрожжей.

    Внести в суспензию клеток каплю раствора Люголя. Накрыть препарат покровным стеклом и микроскопировать.

    Покровным стеклом нужно накрывать аккуратно, не допуская по- явления воздушных пузырей.

    Отметить окрашивание гликогеновых включений дрожжей, внести в рабочую тетрадь процесс приготовления препарата и по- лучившийся результат.

    З а д а н и е 2 Окраска капсул


    Нанести на предметное стекло каплю туши; промыть и про- жечь петлю.

    В асептических условиях внести в тушь каплю исследуемых микроорганизмов, имеющих капсулы. Распределить полученную смесь по стеклу петлей.

    Накрыть покровным стеклом.

    На темном фоне должны быть видны клетки, окруженные не- прокрашенной капсулой.

    Внести в рабочую тетрадь процесс приготовления препарата и получившийся результат.

    З а д а н и е 3


    Фиксированный окрашенный препарат

    Обезжирить чистое предметное стекло мылом.

    В асептических условиях нанести на него каплю воды, в кото- рую петлей (также в асептических условиях) внести культуру бак- терий (аналогично препарату «раздавленная капля»).

    Этой же петлей распределить полученную суспензию макси- мально тонким слоем по поверхности стекла.

    Высушить мазок, желательно при комнатной температуре. Если все было сделано правильно на этапе приготовления мазка (то есть было нанесено небольшое количество воды и распределено тон- ким слоем), то высушивание происходит быстро.

    Зафиксировать мазок. Взять предметное стекло двумя пальца- ми и, держа предметное стекло мазком вверх, провести его через верхнюю часть пламени спиртовки (наиболее горячую) три раза.

    Важно! Проводить предметное стекло через пламя необходи- мо и не слишком быстро (в этом случае не произойдет фикса- ция), и не слишком медленно этом случае велик шанс дефор- мировать клетки).

    Поместить препарат в штатив для окрашивания и нанести на него краситель. Выдержать 1 мин. (время может варьироваться в зависимости от красителя).

    По истечению времени промывать препарат водой до тех пор, пока стекающая вода не обесцветится.

    Микроскопировать с объективом 100 с использованием им-

    мерсионного масла. Отметить морфологию исследуемых клеток, сравнить окрашенный фиксированный и препарат с прижизненной окраской (рис. 4).

    Внести в рабочую тетрадь процесс приготовления фиксиро- ванного окрашенного препарата. Подобная методика является ба- зовой для приготовления наиболее распространенных сложных окрасок.

    Рис. 4. Приготовление фиксированного окрашенного препарата

    Вопросы для самоподготовки


    1. Какие процессы входят в понятие фиксации препарата?

    2. Какие преимущества и недостатки есть у фиксированных препаратов?

    3. Назовите основные функции капсул у бактерий.


    1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   23


    написать администратору сайта