Главная страница
Навигация по странице:

  • Эпизоотологические данные

  • Пагологоанатомические изменения

  • Лечение не разработано

  • Профилактика и меры борьбы

  • Диагностика.

  • 3. Профилактика пищевых заболеваний по линии службы ветеринарной медицины.

  • Возбудители

  • Саркоптоз Диагностика.

  • Заразные болезни (книга). Сибирская язва (Anthrax) остропротекающая инфекционная болезнь, характеризующаяся признаками септицемии и тяжелой интоксикации, а также образованием карбункулов


    Скачать 3.81 Mb.
    НазваниеСибирская язва (Anthrax) остропротекающая инфекционная болезнь, характеризующаяся признаками септицемии и тяжелой интоксикации, а также образованием карбункулов
    АнкорЗаразные болезни (книга).doc
    Дата11.01.2018
    Размер3.81 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаЗаразные болезни (книга).doc
    ТипДокументы
    #13872
    КатегорияБиология. Ветеринария. Сельское хозяйство
    страница20 из 44
    1   ...   16   17   18   19   20   21   22   23   ...   44

    Глава 15



    1.НЬЮКАСЛСКАЯ БОЛЕЗНЬ

    Ньюкаслская болезнь (Morbus newcastle, псевдочума) — высококон­тагиозная вирусная болезнь птиц из отряда куриных, характеризую­щаяся поражением органов дыхания, пищеварения и центральной нерв­ной системы.

    Историческая справка. Ньюкаслская болезнь была зарегистрирована на острове Ява Краневальдом в 1926 г. С 1927 г. ее стали регистрировать в различных странах Азии, Америки и Европы. Английский исследователь Дойль в 1927 г. Обнаружил эту болезнь вблизи г. Ньюкасл и дал соответствующее название болезни. В США забо­левание описано в 1935 г. как пневмоэнцефалит цыплят. В 1941 — 1945 гг. болезнь широко распространилась в европейских странах.

    Возбудитель болезни — РНК-содержащий вирус, размером 120—180 нм из рода парамиксовирусов семейства Paramyxoviridae. Он обладает гемагглютинирующими свойствами по отношению к эритроцитам голубей, кур, индеек, морских свинок. Отечественные и зарубежные штаммы вируса болезни иммунологически однородны. Вирулентность полевых штаммов возбудителя сильно варьирует, что влияет на степень клинического проявления болезни и ее эпизоотологические особенности. Вирус репро­дуцируется в 9 —12-дневных куриных эмбрионах, вызывая их гибель. Вирус развивается во многих первичных и перевиваемых культурах клеток с образованием цитопати-ческих изменений.

    Устойчивость вируса к действию физических и химических факторов зависит от наличия белков и рН среды. Он устойчив к рН в диапазоне 2,0—10,0. Сол­нечный свет инактивирует его за 2 сут, рассеянный свет — за 15 дней. Вирус не утрачивает активности в высушенных при температуре 17—18°С органах 2 года, в птичниках в зимнее время сохраняется 140 дней, летом — 7 дней. В гниющих трупах он инактивируется через 3 недели; в замороженных тушках кур жизнеспособен свыше 800 дней. При кипячении вирус в тушках птиц погибает лишь через 40 — 60 мин. Биологические процессы, развивающиеся при хранении помета, инактивируют вирус через 20 дней. Растворы формалина (1— 2%-ные), хлорной извести (3%-ный), едкого натра (2 %-ный), ксилонафта-5 (4 —5%-ный) убивают его за несколько минут.

    Эпизоотологические данные. В естественных условиях ньюкаслскую болезнь чаще регистрируют у птиц из отряда куриных (куры, индейки, цесарки, фазаны, павлины). Описаны случаи заболевания голубей, воробьев, сорок, попугаев, ястребов. Степень восприимчивости к вирусу у разных пород и возрастных групп птицы неодинаковая. Молодые индюшата более восприимчивы к заражению, чем взрослые индейки. Зарегистрированы вспышки болезни у цыплят при отсутствии заболе­вания взрослой птицы, находившейся в контакте с молодняком.

    Источник возбудителя инфекции — больные и переболевшие птицы, выделяющие вирус со всеми секретами, экскретами, яйцами и выды­хаемым воздухом. Вирус начинает выделяться в инкубационный период через 24 ч после заражения птицы. В организме переболевшей птицы его обнаруживают в течение 2 — 4 мес после клинического выздоровления.

    Факторами передачи вируса могут быть яйца, перо и пух, полу­ченные от больных птиц, тушки вынужденно убитой птицы, инвен­тарь, подстилка, корма. При инкубации инфицированных яиц вирус вызывает септицемию и гибель куриных эмбрионов. Погибший эмбрион гиперемирован, отечен, на голове и конечностях имеются массовые точечные кровоизлияния. При содержании больших партий больной птицы инфицированный воздух из помещений выбрасывается венти­ляторами наружу и потоками ветра разносится на расстояние до 3 — 5 км (Симпсон, 1963).

    Заражение птицы происходит алиментарным и аэрогенным спосо­бами через корм, воду, воздух, при совместном содержании здоровой и больной птицы. В благополучные хозяйства возбудителя чаще заносят с яйцами, поступающими для инкубации.

    Резервуаром вируса могут быть дикие виды птиц, а также до­машние утки и гуси. Ньюкаслская болезнь чаще проявляется в виде эпизоотии. Она имеет некоторую периодичность и относительную летне-осеннюю сезонность, связанную с увеличением поголовья в этот период и с усилением хозяйственной деятельности. В летнее время года болезнь чаще протекает с поражением нервной системы.

    В промышленных хозяйствах с поточной системой выращивания птицы нередко формируются стационарные эпизоотические очаги болезни.

    Это определяется длительным сохранением вируса во внешней среде, массовым вирусоносительством и непрерывной циркуляцией возбудителя между технологическими группами кур. Вирус в активном состоянии может сохраняться в организме клещей (Argus Persicus), обитающих в птичниках 213 дней. Установлена трансовариальная передача вируса нимфальным стадиям куриного клеща (Ю. Г. Аликперов, 1957). Заболеваемость высокая — до 100%, летальность — 60 —90%.

    Патогенез. Попав в восприимчивый организм птицы, вирус через 20 ч проникает в кровь, заносится в различные ткани и органы, вызывая поражения центральной нервной системы, органов дыхания и пищеварения; интоксикация приводит к массовым кровоизлияниям на серозных и слизистых оболочках. В зависимости от характера поражения внутренних органов и систем возникают различные клини­ческие признаки болезни.

    Течение и симптомы. При естественном заражении птицы инку­бационный период болезни 2—15 дней, что зависит от путей про­никновения и вирулентности вируса, возраста птицы и условий содержания. Различают острое, подострое и хроническое течение, ти­пичную и атипичную формы болезни. При типичной форме отмечают повышение температуры тела, слабость, птицы отказываются от корма, теряют ориентацию; у 40 — 70% заболевших наблюдают расширение зоба, истечение из ротовой полости дурно пахнущей жидкости, выде­ляется жидкий помет с примесью слизи, крови и желчи. Птица дышит с открытым клювом, слышны разнообразные звуки, вызванные заку­поркой экссудатом дыхательных путей, птица чихает, пытаясь освобо­диться от скопившегося экссудата; появляются признаки поражения нервной системы в виде парезов и параличей, что приводит к скру­чиванию шеи, отвисанию крыльев, хвоста, поражению ног, атаксии, тремору (рис. 43). Задерживаются рост и развитие птиц, резко снижается яйценоскость, возникают желточный перитонит и керато-конъюнктивит (через 3 — 5 дней после заражения).

    Атипичная форма болезни протекает без характерных приз­наков. Ее чаще регистрируют среди молодняка. Такие вспышки болезни с преимущественным поражением молодняка в некоторых странах получили название «цыплячья чума» и «пневмоэнцефалит цыплят». Ведущим клиническим признаком при данной форме болезни являются скручивание шеи, параличи ног и крыльев, судороги. Поражения нервной системы наблюдаются обычно у индюшат. При атипичной форме птицы могут легко переболевать, а в некоторых случаях болезнь даже протекает бессимптомно. Атипичные формы болезни часто возникают при циркуляции слабовирулентных штаммов вируса в стадах птиц с различной степенью напряженности иммунитета и широком применении антибиотиков. В настоящее время в ряде стран выделено несколько естественно ослабленных штаммов: BI (США), F (Англия), «Флоренс» (Италия), вызывающих при заболевании лишь иммуноло­гическую перестройку организма (наличие сывороточных антител) без клинического переболевания.

    Пагологоанатомические изменения широко варьируют в зависи­мости от тяжести болезни и поражения отдельных систем организма. При остром течении преобладают изменения, характерные для сеп­тицемии. Отмечают кровоизлияния в выводных протоках желез мышеч­ного отдела и на границе перехода мышечного отдела в железистый отдел желудка, в тонком отделе кишечника, прямой кишке (рис. VII). У основания слепых отростков кровоизлияния обнаруживают в 100%, в передней части прямой кишки — в 98,2 %, по выводным протокам желез желудка — в 60 %. Отмечаются кровоизлияния субэпикардиальные и в фолликулы яичника (В. А. Адуцкевич, 1954). При хроническом те­чении труп истощен, оперение вокруг клоаки запачкано пометом. В кишечнике находят плоские дифтероидные язвы с многочисленными петехиями. В результате атрофии слизистой оболочки стенка двенад­цатиперстной и тонких кишок истончена. При осложнениях находят воспаление воздухоносных мешков, некротический гепатит, серозно-фибринозный перитонит, овариосальпингит.

    Диагноз ставят на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований (выделения вируса, испытание его биохимических и вирулентных свойств, постановки реакции гемагглютинации, нейтрализации с заведомо позитивной сывороткой).

    Для выделения вируса готовят из тканей мозга, трахеи, печени и селезенки погибших птиц суспензию на фосфатно-буферном растворе (1 : 10) или мясо-пептонном бульоне (рН 7,2). К 1 мл суспензии добавляют по 3 — 5 тыс. БД пенициллина и стрептомицина, разводят физраствором 1 : 50 и вводят птице в дозе 0,5 мл внутри­мышечно или подкожно. Затем набирают надосадочную жидкость суспензии и заражают ею 10—12-дневные куриные эмбрионы в аллантоисную полость. При наличии вируса птица погибает через 3—10 дней, а куриные эмбрионы — в течение 48 — 96 ч с харак­терными для септицемии изменениями. От погибших куриных эмбрионов берут около­плодную жидкость и исследуют на наличие возбудителя в РГА и РН, РЗГА.

    Дифференциальный диагноз. Следует исключать грипп, инфекционный ларинготра-хеит, пастереллез, инфекционный бронхит, спирохетоз, отравления.

    Лечение не разработано. Больных лечить нецелесообразно ввиду опасности разноса возбудителя инфекции.

    Иммунитет. Переболевшие и вакцинированные птицы приобретают иммунитет. В сыворотке крови птиц накапливаются иммунтела, уровень которых зависит от возраста тицы, сроков, кратности и способа вакцинации. В большинстве крупных птицеводческих хозяйств применяют аэрозольный метод вакцинации, используя вирус вакцины из штамма BI, Ла-Сота, Н, Бор-74. С 1980 г. также применяют инактивированную вакцину против ньюкаслской болезни. Птице с 120-дневного возраста вводят внутримышечно 1 мл препарата. Иммунитет образуется через 10—14 дней после вакцинации и сохраняется 6 мес. В неблагополучных хозяйствах цыплят вакцинируют вакциной из штамма BI в 20—25, 45 — 60, 140—150-дневном возрасте и далее через каждые 6 мес или применяют вакцину из штамма Ла-Сота, которую вводят цыплятам в возрасте 10—15, 35 — 40, 120 —140 .дней и затем через каждые 6 мес. При отсутствии у выведенных цыплят антител первую вак­цинацию проводят в возрасте 5 — 6 дней вакциной из штамма BI.

    За 3 — 5 дней до начала и в течение 5 — 7 дней после вакцинации исключают применение сульфаниламидных препаратов и антибиотиков. Иммунитет у аэрозольно привитой птицы наступает через 7 — 8 дней и сохраняется 6 мес. Можно одновременно прививать птиц против ньюкаслской болезни и оспы. Напряженность и длительность иммуни­тета зависят от факторов кормления и содержания. Поэтому за 5 — 7 дней до и после вакцинации необходимо увеличить содержание в рационе наиболее важных витаминов (А, С, D, Е, группы В).

    Профилактика и меры борьбы. Предупреждают занос возбудителя в благополучные хозяйства с инкубационными яйцами, птицей, обслу­живающим персоналом, инфицированным инвентарем, кормом, подстил­кой. Территория птицеферм должна быть ограждена, доступ посторонних лиц в птицеводческие помещения запрещают. Всю возвращаемую тару после вывоза мяса и птиц нужно промывать горячим 3 %-ным содовым раствором, дезинфицировать парами формальдегида путем распыления 40 %-ного формалина из расчета 15 — 20 мл на 1 м3 воздуха при 30-минутной экспозиции. Температура внутри дезинфекционной камеры должна быть не ниже 12—15°С. Окна и вентиляционные отверстия в птичниках должны быть закрыты сеткой, препятствующей залету дикой птицы. В крупных хозяйствах необходимо содержать одновоз-растную птицу на одной площадке и соблюдать оптимальные разрывы между новыми партиями птиц.

    При появлении подозрения на ньюкаслскую болезнь проводят лабораторные исследования. В случае положительного результата хозяйство объявляют неблагополучным и на него накладывают карантин. Больную птицу неблагополучного птичника убивают и сжигают; птицу, находившуюся в контакте с больной, убивают и подвергают терми­ческой обработке. В угрожаемом птичнике кур прививают вакциной. Запрещают вывоз птиц, яиц и мяса до ликвидации болезни. Мало­ценные предметы сжигают, а помещение и оставшийся инвентарь дезинфицируют растворами едкого натра (1,5 %-ный), хлорной извести (3 %-ный), креолина (5 %-ный). Одновременно проводят аэрозольную дезинфекцию. Помет больной птицы сжигают, а условно здоровой — складируют для биотермического обезвреживания.

    Прививают весь подрастающий молодняк хозяйства, птицу личного пользования в населенных пунктах. Пух и перо после вынужденного убоя подозрительной по заболеванию птицы дезинфицируют 3 %-ным р-ром формальдегида в течение 30 мин.

    Если при поточной системе выращивания птицы не удается лик­видировать вспышку болезни, то в воспроизводстве цыплят необходимо сделать профилактический перерыв на 2 мес с полной санацией помещений и заменой птицы. В хозяйствах, находящихся в угрожаемой зоне, всю восприимчивую птицу прививают согласно наставлению.

    Карантин снимают с хозяйства через 30 дней после ликвидации больной птицы и проведения надежной санации помещений, территории согласно инструкции.
    2.Вольфартиоз
    Вызывается личинками вольфартовой мухи Wohlfahrtia magnifica семейства Sar cophagidae (серые мясные мухи), которые паразитируют в ранах, язвах, слизистых оболочках естественных отверстий животных Болеют в основном овцы, реже дру|гие животные

    Вольфартова муха — крупное насекомое светло-серого цвета, длиной до 15 мм (рис 177) Голова крупная, хоботок лижущего типа На дорсальной стороне груди имеется три продольные полосы черного цвета Брюшко яйцевидное, с шашечным рисунком, крылья широкие, прозрачные Мухи — нектарофаги, но иногда подлизы­вают экссудат из ран и фекалий животного

    Биология развития. Самки живородящие Через 10—12 сут после спаривания у самки созревает до 200 личинок, которые она откладывает по 10—35 шт в раны, цара­пины, на слизистые оболочки и мацерированные участки кожи животного Личинки 1-й стадии имеют червеобразную форму, белый цвет, длину 1,5 мм Они вооружены тремя приротовыми крючьями, грудные и брюшные сегменты имеют шипики, интен­сивно питаются клетками тканей и элементами крови, за 3—8 сут, совершив две линь­ки, завершают развитие Личинки 3-й стадии сигарообразной формы, желтоватого цвета, длиной до 15 мм Они выходят из раны, падают на землю, зарываются в нее на глубину 1—18 мм и окукливаются Фаза куколки длится 9—24 сут Личинки, выпавшие осенью, зимуют в фазе куколки и заканчивают свое развитие весной следующего года В центральных районах вольфартовы мухи дают 2—3, а в южных — 5—6 генераций в год

    Вольфартова муха обитает в центральных и южных районах, а также на юге Сибири Заболевание вольфартиозом регистрируют в южных районах с апреля по ноябрь, а в центральных — с мая по сентябрь Причинами, предрасполагающими к заболеванию вольфартиозом, являются запоздалая стрижка овец, порезы кожи при стрижке, поение овец из водоисточников с топкими подходами, где шерсть постоянно смачивается и развивается мацерация кожи, а также запоздалая кастрация и обрезка хвостов

    Патогенез. Вольфартиоз сопровождается снижением общего белка в сыворотке крови, повышением активности аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы и других ферментов Гистоморфологические изменения развиваются на фоне циркуляторных расстройств, полнокровия, периваскулярных кровоизлияний пораженного органа и характеризуются формированием грануляционного вала, а также гидротической дис­трофией клеточных элементов, некрозом прилегающих тканей

    Симптомы болезни. Клинически болезнь проявляется беспокойством животных, угнетением, повышением температуры тела, исхуданием Паразитирующие в ранах личинки разрушают ткани, вызывают зуд, боль. Овцы грызут раны зубами, плохо пасутся, отстают от стада. Личинками поражаются самые различные участки.

    Диагностика. Диагноз ставят на основании клинических признаков и обнаружении личинок в ранах и других пораженных участках тела.

    Лечение. Для выявления больных вольфартиозом животных через каждые 2-3 сут в течение всего сезона паразитирования личинок провопят клинический осмотр овец. Больных животных обрабатывают вольфартолом, вольфазолем-Д, эстрозолем, гиподермин-хлорофосом, хлорофосом, ДДВФ, трихлорметафосом-3, циодрином, неоцидолом, стомозаном, бутоксом, миатрином-Ц и др.

    Препараты в аэрозольных и беспропеллентных баллонах для обработки ран при меняют однократно или двукратно с интервалом 5—8 сут. Струю препарата напран ляют на рану и распыляют в течение 1—5 с с расстояния 15—20 см. Гиподермин-хлоро фос или диоксафос-К наносят на рану из шприца или тампоном с нормой расхода 0,2 мл/см2 однократно или 2 раза с интервалом 6 сут. Хлорофос применяют в ви де 4%-ного раствора, циодрин и неоцидол — в виде 0,25%-ных водных эмульсий ДДВФ — в виде 10%-ной водной эмульсии. Миатрин-Ц наносят на рану в неразведен ном виде. Обработку повторяют через каждые 2—3 сут до заживления ран.

    Профилактика. Чтобы снизить численность вольфартовых мух при выходе их и i зимовки и предупредить заражение овец личинками, весной с наступлением теплых дней проводят профилактические опрыскивания отар овец 1%-ным раствором хлоро­фоса один раз в день с нормой расхода 0,5—1,0 л на животное. Эффективны также 0,2%-ные эмульсии перметрина, 0,01%-ная эмульсия К-отрина и 0,003%-ная эмульсия бутокса. Опрыскивание проводят из дезинфекционных машин ДУК, ВДМ, ЛСД ни спецплощадках или в расколах.

    Во время стрижки раны овец обрабатывают пленкообразующими препаратами коллодием, креолом, клеем БФ-Б или кубатолом, а также препаратом миазоль. Рану обрабатывают через 15—20 мин после остановки кровотечения. Норма расхода препа­рата 0,2 мл на 1 см2 поверхности раны.

    Меры борьбы с мухами. Профилактические меры — ликвидация мест выплода мух, а также предупреждение залета их в животноводческие помещения и распространения на жилые, производственные, пищевые и другие объекты. Через каждые 7—К) сут устраняют неисправности в системе навозоудаления и кормора i-дачи, очищают полы, кормушки, емкости для хранения кормой, белят станки и стены. Регулярно очищают сточные каналы: при механической системе навозоудаления ежедневно, при гидросплан-ной с шиберами не реже 1 раза в 2 нед. Выгульные площадки асфальтируют и очищают от остатков корма и навоза каждые 3—5 сут. Навоз помещают в оборудованные навозохранилища для био­термического обеззараживания. Чтобы не допустить развития мяс­ных мух, своевременно убирают в плотно закрывающиеся металли­ческие контейнеры трупы животных, грызунов, последы для от­правки на утильзавод. Летом, чтобы не залетали мухи в помещения, на окна и двери навешивают мелкую сетку.

    Для деларвации биотопов мух личинок истрсб ляют в местах их обнаружения с помощью инсектицидов: 0,1 — 0,2%-ной водной эмульсии трихлорметафоса-3; 0,1%-ной водной эмульсии ДДВФ; 0,2—0,5%-ных водных эмульсий тролена, карбо­фоса, дифоса, пропоксура (байгона), циодрина, метатиона, щелоч­ного раствора хлорофоса; 0,5%-ной аммиачной воды, а также микробных препаратов (битоксибациллина и турингина-1). Нормы расхода ларвицидов 1—5 л/м2 в зависимости от консистенции суб­страта. В жижесборниках и выгребных ямах эффективна сухая хлорная известь (1 кг/м2).

    В мае, сентябре и октябре обработки проводят 1 раз в 2 нед, в июле—августе — каждые 5—7 сут. Особенно тщательно обрабаты­вают места выплода мух осенью, чтобы они не остались на зимовку, и весной для предотвращения раннего выплода мух.

    Для истребления имаго проводят влажную дезинсек­цию помещений следующими препаратами: смесью 1%-ного рас­твора хлорофоса с 0,1%-ной водной эмульсией ДДВФ; смесью 0,5%-ного раствора хлорофоса с 0,5%-ным раствором кальцинированной соды; 0,5%-ными водными эмульсиями карбофоса и неоцидола (диа-зинона); 0,1%-ной эмульсией перметрина (стомозана); 0,003%-ной эмульсией бутокса или 0,005%-ной эмульсией циперметрина. Пре­параты наносят на основные места локализации мух — окна, тита­ны, опорные столбы в количестве 50—100 мл/м2, не допуская их попадания на животных и в корм.

    Для дезинсекции помещений в присутствии свиней, птицы и кро­ликов применяют аэрозоли ДДВФ, получаемые безаппаратным спо­собом путем химической реакции хлорофоса со щелочью и водой в соотношении 1:1:1. Норма расхода хлорофоса, щелочи и воды по 1 кг на 1000 м3 помещения. Экспозиция 30 мин.

    В отсутствие животных хороший эффект дает применение пре­парата аэрол-2 в форме аэрозолей из расчета 1 мл/м3 при экспо­зиции 1 ч.

    Обработки повторяют по мере восстановления численности мух на ферме. В молокоприемниках, кормоцехах и других помещениях, где распыление инсектицидов нежелательно, используют отравля­ющие приманки, которые состоят из 0,5 % хлорофоса, 0,5 % карбо­ната аммония, воды и привлекающих веществ — мелассы, патоки, мясных и рыбных отходов. Приманки расставляют в помещении из расчета 0,2—0,4 м2 поверхности приманок на 100 м2 пола и обнов­ляют через 10—15 сут. Эффективны хлопчатобумажные шнуры, пропитанные 10%-ным раствором хлорофоса, 10— 12%-ной эмуль­сией тролена или диазинона с добавлением 20—25 % мелассы, сахара или молока. Шнуры вывешивают из расчета 1—1,5 м на 10 м2 пола так, чтобы их не задевали люди, животные и они не оказыва­лись над емкостями с молоком, кормами, водой. Мухи садятся на них и погибают.

    В настоящее время широко используют экологически безопас­ные феромонные приманки-ловушки в виде ленты пергаментной бумаги или полиэтиленовой пленки, обработанной энтомологичес­кими клеями пестификс или ГИПК-222. Лента длиной 15—30 см содержит трикозен в дозе 5 мг. За 24—48 ч ловушка отлавливает и уничтожает до 1000 мух.

    Для защиты животных от мух на пастбищах при лагерном, отгонном, стойлово-пастбищном содержании животных, а также на откормочных площадках открытого тип; животных опрыскивают инсектицидами и репеллентами. Коров и лошадей обрабатывают методом малообъемного опрыскивания (50 мл на животное) 1—2%-ными эмульсиями диброма, циодрина, пропоксура, ДДВФ; 2%-ным раствором хлорофоса; 0,5%-ной эмульсией перметрина и др. Препараты наносят на волосяной покров из ручного опрыскивателя «Автомакс» и другой техники, обеспечивающей мелкокапельное разбрызгивание при давлении 0,3—0,4 МПа (3-4 атм).

    Для среднеобъемного опрыскивания (до 500 мл на животное) применяют 0,5%-ную водную эмульсию ДДВФ, диброма; 0,5%-ный раствор хлорофоса; 0,1%-ную водную эмульсию перметрина; 0,0025%-ную водную эмульсию бутокса и др.

    Метод крупнообъемного опрыскивания (до 1 л на животное) пре­дусматривает применение 0,15%-ной водной эмульсии диброма, ДДВФ, пропоксура и др.

    Животных начинают обрабатывать вскоре после их перевода в летние лагеря и выгона на пастбища. Опрыскивания проводят в загонах и при выходе из них, нанося эмульсии с наветренной сторо­ны. Кратность обработок зависит от численности популяции мух: первые 2—3 делают с интервалом 3—5 сут, последующие — через 5—6 сут и реже. Показателем очередного опрыскивания служит нападение на каждое животное 5—10 осенних жигалок или гемато-бий, 20—25 липерозий или 10—15 полевых мух.

    Для индивидуальной защиты используют 3—5%-ные дусты цио­дрина, пропоксура, хлорофоса и диброма или 2,5%-ные мази хлоро­фоса, тролена, диброма, неоцидола в дозе до 50 г. Мази эффек­тивны против мух-коровниц, а дусты — против мух-жигалок. Мази наносят на места около глаз, ноздрей, а дусты — на голову, шею, холку,спину и бока.
    3. Профилактика пищевых заболеваний по линии службы ветеринарной медицины.
    Профилактика заключается в предупреждении заболевания людей антропозоонозами и другими болезнями при потреблении пищевых продуктов, а также профилактики болезней среди скота и птици, распространяющейся через корма животного происхождения:

    Выпуск доброкачественной продукции и сырья дляч промышленности и потребителей,

    Недопущение заражения зооантропонозами через продукты и сырье,

    Профилактика заболеваний животных и птицы которые распространяются через корма животного происхождения.

    Продукты животноводства подлежет ветеринарно-санитарному контролю при производстве, на всех этапах технологии переработки, при транспортировке, хранении и реализации на рынках. Согласно с законом Украины Про ветеринарную медицину ВСЕ продуктов животноводства и сырья животного и растительного происхождения осуществляется, как обязательный государственный ветеринарный контроль в менстах, где организована торговля животными, продуктами, и сырьем животного ирастительного происхождения. Юридические и физические особы, деятельность которых связана с производством, переработкой, хранением, транспортировкой, торговлей животными, сырьем ипродуктами животного и растительного происхождения обязаны иметь лицензию органов госветмедицены на заготовку, убой животных и переработку туш, изготовление пищевой продукции, и сырья животного происхождения, и их реализацию. Решенитя, которые может принимать ветсанэксперт:

    Выпуск без ограничений,

    Выпуск с ограничением (она выпускается только после обезвреживания),

    Уничтожение продукции (сжегание, техническая утилизация – переработка на мясокостную муку)

    Ситуационное задание

    В зимне-стойловый период содержания в гурте телок заметили беспокойство животных, увеличивающийся зуд. Насекомых-эктопаразитов обнаружить не удалось. При микроскопическом исследовании соскобов выявили монолитных членистоногих 0,6-0,8 мм и 0,2-0,5 мм величиной, шаровидной и овально-удлиненной формы, с конусовидными и подковообразными хоботками.

    Назовите возбудителей, поставьте диагноз, разработайте комплекс лечебно-профилактических мероприятий.
    Возбудители - Псороптоз, саркоптоз.

    Псороптоз

    Диагностика. При постановке диагноза учитывают эпизоотоло-гические данные, клинический симптомокомплекс и результаты акарологического исследования соскобов кожи. Последние берут на границе между пораженной и здоровой кожей.

    При постановке диагноза необходимо исключить другие заболе­вания кожи, клиническое проявление которых на различных этапах развития напоминает псороптоз (гематопинидоз, триходектоз, стри­гущий лишай, экзему и крапивницу, демодекоз, саркоптоз и хориоптоз).

    Лечение. Для лечебной и профилактической обработки круп­ного рогатого скота предложено много препаратов (см. приложе­ние). Их применяют при массовых обработках методом крупно­капельного опрыскивания под давлением 0,4—0,5 МПа (4—5 атм) в форме эмульсий, суспензий и растворов. Расход жидкости 2—4 л на животное, для молодняка 1—1,5 л.

    В холодное время года применяют дустирование. На обработку одного животного расходуют до 300 г дуста. В силу особенностей кожно-шерстного покрова крупного рогатого скота (редкая шерсть, малое количество жиропота) дусты не могут долгое время фиксиро­ваться на коже и поэтому их используют лишь для терапии. В это же время, но с большей эффективностью для лечения применяют системные акарициды — путем индивидуальной дозированной обра­ботки или как временную меру проводят локальную обработку оча­гов поражения акарицидными жидкостями, мазями, линиментами.

    Лечение больных животных необходимо проводить после пред­варительной подготовки. Она необходима при всех саркоптоидоз-ных заболеваниях и у всех видов животных со «старыми» очагами поражения, при наличии складчатости кожи, толстых струпьев и твердых корок. Она обеспечивает контактное воздействие на кле­щей акарицидов при их накожном применении. С этой целью за 2— 3 сут до лечения пораженные места обрабатывают мыльной водой, рыбьим жиром, маслами, зольным щелоком и после размягчения патологических наложений удаляют их, осторожно соскабливая тупым ножом.

    Для обработки дойного скота неприемлемы препараты, облада­ющие резким неприятным запахом, или препараты, медленно гид-ролизующиеся в организме, так как они длительно выделяются с молоком.

    Стадо крупного рогатого скота считают здоровым, если в тече­ние следующей зимы не будет зарегистрировано ни одного случая псороптоза.
    Саркоптоз

    Диагностика. Диагноз устанавливается, как и при других саркоп-тоидозных заболеваниях.

    Лечение. Для дезакаризации кожного покрова используют сред­ства и методы, рекомендуемые при псороптозах крупного рогатого скота и овец.

    1   ...   16   17   18   19   20   21   22   23   ...   44


    написать администратору сайта