Главная страница

Биофизика курс лекций


Скачать 1.18 Mb.
НазваниеБиофизика курс лекций
АнкорBiofizika_Prisny
Дата23.04.2022
Размер1.18 Mb.
Формат файлаpdf
Имя файлаBiofizika_Prisny.pdf
ТипКурс лекций
#491792
страница7 из 17
1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   ...   17

с =
d
S


0


, где ε
0
– электрическая постоянная = 8,85∙10
12
Ф/м, d – рас- стояние между пластинами конденсатора, S – площадь пластины.
Удельная емкость (на единицу площади) –
с
уд
=
d
0



Отсюда можно найти расстояние между пластинами конденсатора, со- ответствующее толщине липидной части мембраны –
d =






 2 12 0
10 5
,
0 2
10 85
,
8
уд
С


3,5 нм.
Важную роль в выяснении морфологии мембран сыграли два метода: дифракция рентгеновских лучей и электронная микроскопия.
Дифракция рентгеновских лучей
. При исследовании высокоупорядо- ченных кристаллических образцов с помощью метода дифракции рентгенов- ских лучей удаётся получить информацию о структуре с высоким разреше-

51 нием. В случае же малоупорядоченных препаратов возможности этого мето- да ограничены. Некоторые специализированные мембранные системы уже имеют регулярную структуру, и поэтому их можно изучать рентгенострук- турными методами. Примером такого рода служит миелиновая оболочка пе- риферических нервных волокон; она представляет собой мембрану, которая, многократно оборачиваясь вокруг аксона, формирует регулярную систему из концентрических мембранных структур. Исследования дифракции рентге- новских лучей на миелине подтверждают адекватность бислойной модели мембран. Полученные данные показывают, что структура всех мембран сходна: они имеют гидрофобную внутреннюю область с низкой электронной плотностью и два слоя полярных группировок с высокой электронной плот- ностью.
Электронная микроскопия
. Информацию о расположении мембранных белков дают методы замораживания-скалывания и замораживания- травления. Последовательность действий такова. 1. Замораживание образца.
2. Скалывание с помощью ножа при низкой (- 100 0
С) температуре в глубоком вакууме. Возникающие при скалывании усилия приводят к образованию сре- за, проходящего через образец. Когда плоскость среза проходит через мем- брану, она раскалывается преимущественно по своей срединной области и расщепляется на две половинки. В результате на образовавшихся плоскостях скола обнажается внутренняя область мембраны. 3. При необходимости об- разец подвергают травлению – проводят обычную возгонку льда в вакууме.
Это позволяет лучше визуализировать поверхностные структуры клеточных мембран. 4. После этого получают так называемую реплику с обнаженной поверхности. Именно эту реплику и изучают под электронным микроскопом.
Результаты показали, что не все липиды в мембране расположены по принципу бислоя. Физические методы исследования показывают, что липид- ная фаза мембран содержит участки, где липидные молекулы не образуют двойной слой.
Основная область приложения биофизики – структурная основа мем- браны, а именно двойной слой фосфолипидных молекул.
Динамика мембран
Режим функционирования мембраны в значительной степени зависит от микровязкости липидного бислоя и подвижности фосфолипидных моле- кул в мембране, фазового состояния мембранных липидов. Отклонения био- физических характеристик липидного бислоя от нормы связано с разного ро- да патологиями. Важную роль в физиологии клетки играют фазовые перехо- ды в биологических мембранах.
Липидная фаза биологических мембран при физиологических условиях
(температуре, давлении, химическом составе окружающей среды) находится в жидком агрегатном состоянии. Это доказано тремя биофизическими мето- дами.
Флуоресцентный анализ
. В нормальном состоянии мембрана не флуо- ресцирует. Чтобы провести исследования мембраны флуоресцентным мето- дом, надо вводить в мембрану молекулы или молекулярные группы, способ-

52 ные к флуоресценции. В качестве флуоресцентных зондов используются:
ДМХ – диметиламинохалкон; МБА – 3-метоксибензантрон; АНС – 1-анилин- нафталин-сульфонат. Флуоресцентный анализ дает возможность исследовать подвижность фосфолипидных молекул в мембране, оценить вязкость липид- ной фазы (т.н. микровязкость мембран). Это можно оценить по изменениям спектров флуоресценции, а также по степени поляризации флуоресцентного излучения при освещении мембраны поляризованным светом. Степень связи поляризации и микровязкости мембраны выражается формулой Перрена-
Яблонского –
)
1
)(
3 1
1
(
3 1
1 0


V
RT
P
P




, где P
0
– степень поляризации света на неподвижных молекулах; R – универсальная газовая постоянная = 8,31
Дж/(К·моль); Т [K] – температура; V – молярный объем флуоресцирующих молекул; η – микровязкость мембраны; τ – время жизни возбужденного со- стояния.
Электронный парамагнитный резонанс (ЭПР)
. Это явление резкого воз- растания поглощения энергии электромагнитной волны системой парамаг- нитных частиц (электронов с некомпенсированными спинами), помещенных во внешнее магнитное поле при резонансной частоте волны ν
рез
:
ν
рез
=
h
B
g



, где В – индукция магнитного поля, h – постоянная Планка (6,626176·10
-34
Дж·с), g – гидромагнитное отношение, или g-фактор, зависящий от природы парамагнитных частиц (для свободного электрона g ≈ 2), β – магнетон Бора
(0,927 · 10 23
Дж/Тл). Практически удобнее оставлять частоту электромагнит- ной волны постоянной, а медленно менять индукцию магнитного поля. Резо- нансное поглощение энергии будет наблюдаться при В
рез
=




g
h
. В ЭПР ис- пользуются частоты электромагнитного поля ν

10 10
Гц и индукция В0,3 Тл.
Спектром ЭПР называется зависимость мощности поглощения электромаг- нитной волны от величины магнитной индукции. Чем сильнее взаимодейст- вие между атомами и молекулами образца, тем шире спектры ЭПР. Соответ- ственно, чем слабее взаимодействие между частицами (т.е. подвижность мо- лекул выше), тем спектры ЭПР уже. Так как молекулы фосфолипидов диа- магнитны, для ЭПР-исследований биомембран используются спин-зонды и спин-метки – молекулы или молекулярные группы с неспаренными электро- нами. Парамагнитные спин-зонды вводятся в липидную мембрану, спектры поглощения спин-зондами электромагнитной волны дают информацию о свойствах липидного окружения, в частности о подвижности липидных мо- лекул в мембране. Недостаток метода – внесение в биологический объект чужеродных молекул-зондов может изменять структуру объекта.
Ядерный магнитный резонанс (ЯМР)
. Это явление резкого возрастания поглощения энергии электромагнитной волны системой атомных ядер, обла- дающих магнитным моментом, помещенных во внешнее магнитное поле, при резонансной частоте волны – ν
рез
= g
я
·
h
В
я


, где g
я
– ядерный множи- тель Ландье, имеющий разные значения для разных парамагнитных ядер (для

53 протона = 5,58); μ
я
– ядерный магнетон (составляет 1/1836 часть магнетона
Бора).
Магнитным моментом обладают, например, такие ядра, как
Н
1 1
,
С
13 6
,
Р
31 15
. Не обладают магнитным моментом
Не
4 2
,
О
16 8
,
С
12 6
. В биологических объ- ектах содержится много протонов (
Н
1 1
), что дает возможность применять для их исследования ЯМР. В ЯМР используются более сильные магнитные поля
(В ≈ 1 Тл), а частоты переменного электромагнитного поля меньше (5·10 7
Гц) чем в ЭПР.
Биофизические исследования показали, что подвижность фосфолипид- ных молекул в мембране сравнительно велика, а вязкость мала. В нормаль- ных физиологических условиях липидная часть мембраны находится в жид- ком агрегатном состоянии.
Изменение микровязкости липидного окружения мембранных белков- ферментов резко сказывается на их функционировании. Некоторые экспери- ментальные данные свидетельствуют о том, что значительное снижение вяз- кости липидной фазы мембраны обусловливает канцерогенез. При старении вязкость увеличивается.
Высокая подвижность липидных молекул обусловливает латеральную
(боковую) диффузию. Это хаотическое перемещение молекул липидов и бел- ков в плоскости мембраны. При латеральной диффузии рядом расположен- ные молекулы липидов скачком меняются местами и т.о. молекула переме- щается вдоль поверхности мембраны. Среднее квадратическое перемещение молекул при диффузии за время t можно оценить по формуле Эйнштейна
S
кв
=2
t
D
, где D – коэффициент латеральной диффузии.
Перемещение молекул по поверхности мембраны клетки за время t оп- ределено экспериментальным методом флуоресцентных меток. Оказалось, что среднее квадратичное перемещение за секунду фосфолипидной молеку- лы по поверхности мембраны эритроцита составило около 5 мкм, что срав- нимо с размерами клеток, т.е. за секунду молекула может обежать всю по- верхность небольшой клетки. Для белковых молекул S
кв
составляет около 0,2 мкм/с.
Рассчитанные по формуле Эйнштейна коэффициенты латеральной диффузии D
лип
= 6 · 10
-12
м
2
/с, D
б
= 10
-14
м
2
/с.
Частота перескоков молекулы вследствие латеральной диффузии мо- жет быть найдена по формуле ν = 2
f
D

3
, где f – площадь, занимаемая одной молекулой в мембране.
Для молекул фосфолипидов f ≈ 7 · 10
-19
м
2
, ν = 3 · 10 7
с
-1
. Каждая моле- кула, т.о., в среднем претерпевает десятки миллионов перестановок в плос- кости мембраны за секунду, т.е. характерное время одного перескока τ =10
-7
-
10
-8
с.
Флип-флоп
– диффузия молекул мембранных фосфолипидов поперек мембраны. Скорость перескоков молекул с одной поверхности мембраны на другую определена методом спиновых меток на модельных липидных мем-

54 бранах – липосомах. Установлено, что половина меченых молекул претерпе- вает флип-флоп примерно за 6,5 часов. Таким образом, флип-флоп соверша- ется значительно медленнее, чем перескоки при латеральной диффузии. Бла- годаря затрудненному переходу поперек мембраны поддерживается упоря- доченность в молекулярной структуре мембраны, а также асимметрия распо- ложения липидных и белковых молекул и определенная ориентация белков- ферментов поперек мембраны.
Физическое состояние и фазовые переходы липидов в мембранах
Липидные бислойные мембраны при физиологических условиях – жидкие, время оседлой жизни фосфолипидных молекул в мембране мало –
10
-7
-10
-8
с. Вместе с тем, молекулы в мембране размещены не беспорядочно, в их расположении наблюдается дальний порядок. Фосфолипидные молеку- лы находятся в двойном слое, а их гидрофобные хвосты приблизительно па- раллельны друг другу. Есть порядок и в ориентации полярных гидрофильных голов.
Физическое состояние, при котором есть дальний порядок во взаимной ориентации и расположении молекул, но агрегатное состояние жидкое, назы- вается жидкокристаллическим состоянием. Жидкие кристаллы могут образо- вываться не во всех веществах, а в веществах из длинных молекул (попереч- ные размеры которых меньше продольных). Жидкокристаллические струк- туры могут быть:
1) Нематическая (нитевидная) – длинные молекулы ориентированы па- раллельно друг другу;
2) Смектическая (мылообразная) – молекулы параллельны друг другу и располагаются слоями;
3) Холестерическая – молекулы располагаются параллельно друг другу в одной плоскости, но в разных плоскостях ориентации молекул разные.
Бислойная липидная фаза биологических мембран соответствует смек- тическому жидкокристаллическому состоянию.
Жидкокристаллические структуры очень чувствительны к изменению температуры, давления, химического состава, электрическому полю. Это оп- ределяет изменение структуры липидных бислойных мембран при различ- ных изменениях внешних условий или химического состава. При определен- ных температурах происходит фазовый переход первого рода. В частности, при понижении температуры в фосфолипидной мембране происходит пере- ход из жидкокристаллического в гель-состояние, которое условно иногда на- зывают твердокристаллическим. В гель-состоянии молекулы расположены еще более упорядочено. Все гидрофобные хвосты фосфолипидных молекул в гель-фазе полностью вытянуты строго параллельно друг другу. Поэтому толщина мембраны в гель-фазе больше, чем в жидком кристалле.
Однако при переходе из твердого в жидкокристаллическое состояние несколько увеличивается объем, так как возрастает площадь мембраны, при- ходящаяся на одну молекулу. Поскольку в твердокристаллическом состоянии больше порядок, чем в жидком кристалле, ему соответствует меньшая энтро- пия.

55
Для нормального функционирования мембрана должна быть в жидкок- ристаллическом состоянии. Поэтому в живых системах при продолжитель- ном понижении температуры окружающей среды наблюдается адаптацион- ное изменение химического состава мембран, обеспечивающее понижение температуры фазового перехода. Температура фазового перехода понижается при увеличении числа ненасыщенных связей в жирнокислотных хвостах. В хвосте молекулы может быть до четырех ненасыщенных связей. В зависимо- сти от химического состава липидных мембран температура фазового пере- хода гель – жидкий кристалл меняться от -20 (для мембран из ненасыщенных липидов) до +60 0
С (для насыщенных липидов).
Модельные липидные мембраны
Липосомы
(фосфолипидные везикулы) получают обычно при набуха- нии сухих фосфолипидов в воде или при впрыскивании раствора липидов в воду. При этом происходит самосборка бимолекулярной липидной мембра- ны. При этом все неполярные гидрофобные хвосты находятся внутри мем- браны, и ни один из них не соприкасается с полярными молекулами воды.
Чаще получаются несферические липосомы, состоящие из нескольких бимо- лекулярных слоёв – многослойные липосомы. Отдельные бимолекулярные слои многослойной липосомы отделены водной средой. Однослойные липо- сомы можно получить из суспензии многослойных липосом, если обработать их ультразвуком. Липосомы представляют собой в некотором роде прообраз клетки. Они служат моделью для исследований различных свойств клеточ- ных мембран и используются в медицине.
Плоские бислойные липидные мембраны
– другой тип модельных мембран. Такие мембраны получают на маленьких отверстиях диаметром около 1 мм в пластине из фторопласта, погруженной в водную среду. На от- верстие наносят каплю раствора липидов (в спирте, хлороформе, гептане).
Растворитель диффундирует из раствора в воду, и на отверстии остается пленка липида. Эта пленка спонтанно утончается до тех пор, пока не образу- ется бимолекулярный слой толщиной около 6 нм. Лишний липид собирается в виде ободка у краев отверстия.

56
Лекция 7. ТРАНСПОРТ ВЕЩЕСТВ ЧЕРЕЗ БИОЛОГИЧЕСКИЕ
МЕМБРАНЫ
Живые системы на всех уровнях организации – открытые системы. По- этому транспорт веществ через биологические мембраны – необходимое ус- ловие жизни. С переносом веществ через мембраны связаны процессы мета- болизма клетки, биоэнергетические процессы, образование биопотенциалов, генерация нервного импульса и др.
Большое значение для описания транспорта веществ имеет понятие электрохимического потенциала.
Химическим потенциалом данного вещест- ва называется величина, численно равная энергии Гиббса, приходящаяся на один моль этого вещества. Для разбавленного раствора с концентрацией ве- щества С:
μ = μ
0
+ RTlnC, где μ
0
– стандартный химический потенциал, численно равный химиче- скому потенциалу данного вещества при его концентрации 1 моль/л в рас- творе.
Электрохимический потенциал

– величина, численно равная энергии
Гиббса на один моль данного вещества, помещенного в электрическом поле.
Для разбавленных растворов:

= μ
0
+ RTlnC + ZFφ, где F = 96500 Кл/моль – число Фарадея, Z – заряд иона электролита (в элементарных единицах заряда), φ – потенциал электрического поля, Т [К] – температура.
Пассивный перенос веществ через мембрану
Пассивный транспорт
– это перенос вещества из мест с большим зна- чением электрохимического потенциала к местам с его меньшим значением.
Пассивный транспорт идет с уменьшением энергии Гиббса, и поэтому этот процесс может идти самопроизвольно без затраты энергии. Плотность потока вещества при пассивном транспорте подчиняется уравнению Теорелла:
j
m
= - UC
dx
d

, где U – подвижность частиц, С – концентрация, частное – градиент электрохимического потенциала. Знак минус показывает, что перенос проис- ходит в сторону убывания

Плотность потока вещества – это величина, численно равная количест- ву вещества, перенесенного за единицу времени через единицу площади по- верхности, перпендикулярной направлению переноса:
j
m
=
t
S
m

(моль/м
2
∙с)
Подставив в уравнение Теорелла выражение для электрохимического потенциала, получим для разбавленных растворов при μ
0
= const уравнение
Нернста-Планка:
j
m
= - URT
dx
dC
-UCZF
dx
d


57
В целом, могут быть две причины переноса вещества при пассивном транспорте: градиент концентрации
dx
dC
и градиент электрического потен- циала
dx
d

Знаки минусов перед градиентами показывают, что градиент концен- трации вызывает перенос вещества от мест с большей концентрацией к мес- там с его меньшей концентрацией; а градиент электрического потенциала вызывает перенос положительных зарядов от мест с большим к местам с меньшим потенциалом.
В отдельных случаях вследствие сопряжения этих двух причин может происходить пассивный перенос вещества от мест с меньшей концентрацией к местам с большей концентрацией, если второй член уравнения Нернста-
Планка по модулю больше первого, и может происходить перенос вещества от мест с меньшим потенциалом к местам с большим потенциалом, если пер- вый член уравнения по модулю больше второго.
В случае неэлектролитов (
1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   ...   17


написать администратору сайта