|
|
Учебнометодическим объединением вузов Российской Федерации по педагогическому образованию в качестве учебного пособия для студентов педагогических вузов по специальности 032400 биология
* Иногда используют квадраты большей или меньшей (дом) площади.
50
Рис. 46. Стадии разборки почвенной пробы полотняные мешочки или металлические бюксы с почвой, взятой непосредственно из пробы. Хищники должны рассаживаться поодиночке. Мелких насекомых, мокриц, многоножек помещают в пробирки с фиксирующей жидкостью, крупных насекомых - в морилки. Всех найденных при раскопках животных сразу же определяют стой точностью, которая доступна, и записывают в полевой дневник. Весь материал тщательно этикетируют. В полевом дневнике подробно описывают биотоп и конкретное место взятия пробы. Для качественных сборов почвенных обитателей можно использовать прикопки: лопатой берется небольшая проба почвы, которая тут же просматривается, и все найденные животные собираются. Этим методом также пользуются, чтобы наметить участки для взятия количественных почвенных проб. Учет почвенных микроартропод Для количественного учета микрофауны применяют эклекторы см. выше. На сито помещают почвенную пробу определенного объема (например, 25 см) и обогревают ее сверху электрической лампочкой или спиралью. Мелкие беспозвоночные из подсыхающей почвы через сито проникают в воронку ив конечном счете попадают в фиксирующую жидкость. Через двое-трое суток, когда почва полностью высохнет, пробирки с зафиксированными животными снимают. При этом важно следить, чтобы почва не нагревалась выше Сине высыхала слишком быстро, иначе значительная часть членистоногих погибнет, не успев ее покинуть. Собранных животных монтируют в препараты с жидкостью Фора-Берлезе (см. ниже раздел Изготовление тотальных препаратов) и исследуют под микроскопом. Как правило, их определение доступно лишь квалифицированному специалисту, поэтому целесообразно ограничиться подсчетом основных групп. 51 ВОДНЫЕ БЕСПОЗВОНОЧНЫЕ Ручной сбор На экскурсиях по изучению водных беспозвоночных ручной сбор имеет ограниченное применение. Самый обычный метод - сбор с погруженных предметов коряг, веток, водных растений, камней. Он особенно эффективен в условиях небольших речек с быстрым течением. Поднимая предмет на поверхность, следует плавно поворачивать его так, чтобы он вышел на воздух нижней стороной, и не совершать резких движений. Снимать животных с него лучше на берегу в глубокой кювете с водой. В стоячих водоемах хороших результатов можно добиться, взмучивая грунту уреза воды или вытаптывая прибрежную растительность при этом на поверхность всплывают многие обитатели водоема, обычно остающиеся незамеченными. Вручную материал собирают ив очень мелких водоемах, где невозможно использовать сачок. Для отлова планктона в неглубоких местах и малоподвижных животных с поверхности воды можно использовать ванночки, которые под небольшим углом погружают вводу так, чтобы ток воды вместе с животными устремился внутрь. Ловля сачком Водных беспозвоночных добывают в основном с помощью сачка, которым можно собирать материал с глубины дом. Сачок опускают вводу на нужную глубину так, чтобы отверстие было перпендикулярно ее поверхности, и ведут в сторону, несколько Рис. 47. Ловля сачком крупных беспозвоночных / — ловля у поверхности воды 2 - ловля в глубине 52 отклонив обруч назад. Закончив проводку на заданной глубине, поворачивают сачок отверстием вверх (параллельно поверхности воды) и по возможности быстро вынимают. Необходимо дать воде стечь и после этого рассмотреть содержимое сачка или непосредственно в нем, положив на ровную поверхность, или поместив содержимое в ванночку с водой. Улов разбирают при помощи пинцета, пипетки и малого сачка. В реках сачок ведут против течения. Глубину погружения выбирают в зависимости от целей лова. Для сбора животных на поверхности воды сачок держат в полупогруженном состоянии. При лове бентоса ненужно погружать его глубоко в грунт, так как большое количество донных отложений, попавших в мешок, не позволит хорошо рассмотреть пойманных животных. Рассмотренные приемы часто не позволяют собирать крупных, активно плавающих животных (гладышей, плавунцов и т.п.). Обычно их выискивают среди зарослей прибрежной растительности и ловят тогда, когда насекомое всплывет для обновления запаса воздуха. Техника взмаха напоминает описанную выше для летающих насекомых, однако надо учитывать большую плотность водной среды. Для того чтобы сачок двигался вводе быстрее, его разворачивают ребром и лишь в непосредственной близости от объекта поворачивают в нормальное положение (рис. 47,7,2). Специальные методы К их числу относятся сборы драгой или планктонной сетью. Оба способа применяются в основном на крупных водоемах. Сеть спускают с борта лодки (длина шнура для планктонной сети составляет 3-4 м, для драги она должна быть в 2-3 раза больше глубины исследуемого участка водоема) и гребут с такой скоростью, чтобы он удерживался на нужной глубине (рис. 48,7). Рис. 48. Специальные способы сбора водных беспозвоночных 1 - применение планктонной сети, 2 - сбор драгой с лодки 3 - сбор драгой с берега 53 Особенно внимательно нужно следить за драгой переполнение грунтом или зацеп за крупные предметы, лежащие на дне, может вызвать повреждение или потерю инструмента. На небольших водоемах драгу можно забрасывать с берега и затем осторожно подтягивать к себе (рис. 48,2,3). Материал, собранный на экскурсиях, как правило, сразу не фиксируют, а доставляют в лабораторию в живом виде. Животных рассаживают по банкам с водой. Мелкие и особо ценные экземпляры лучше транспортировать в небольших сосудах или пробирках. Важно отдельно поместить таких активных хищников, как личинки плавунцов и стрекоз.
РАЗДЕЛ ОСНОВНЫЕ ПРИЕМЫ РАБОТЫ С БЕСПОЗВОНОЧНЫМИ В ЛАБОРАТОРИИ РАБОТА С ЖИВЫМИ ЖИВОТНЫМИ Сухопутные (наземные) беспозвоночные Разборка материала Обычно наземные беспозвоночные извлекаются и сортируются сразу входе экскурсии и доставляются в лабораторию в отдельных сосудах. Однако в ряде случаев это целесообразно делать лишь в помещении. Относительно крупных животных (не менее 3 мм) можно выбирать вручную. Для этого следует поместить исследуемый субстрат в кювету или чашку Петри и постепенно перебирать его препаровальной иглой, зажатой в левой руке. Беспозвоночных отлавливают пинцетом, прищепкой-пинцетом, эксгаустером или тонкой кисточкой. Использование пинцетов, даже очень хорошо заточенных, требует навыка, и на первых порах большинство животных оказываются повреждёнными. Прищепка-пинцет в значительной мере лишена этого недостатка, однако ею можно удержать только сравнительно мелкие формы. При использовании эксгаустера обязательно надо следить затем, чтобы на внутренних стенках пробирки и трубок не конденсировалась влага мелкие беспозвоночные прилипают к капелькам воды и довольно быстро погибают вследствие изменения осмотического давления гемолимфы. Не следует втягивать воздух слишком сильно, так как животные повреждаются в результате ударов о стенки трубок и сосуда. Сухая или смоченная водой кисточка применяется для переноса небольших и хрупких объектов, например мелких улиток, мокриц и др. Извлечение из пробы беспозвоночных с мягкими нежными покровами (слизни, различные черви) необходимо производить только пинцетом, так как контакт с сухой человеческой кожей чреват для них значительными травмами. Иногда для пересадки животных удобно использовать небольшой шпатель или ложечку. Однако при этом вместе сними обычно захватывается и значительное количество субстрата, поэтому данный способ не годится при отборе объектов для фиксации или заливки в препараты. Активных, быстро перемещающихся беспозвоночных часто не удается непосредственно выбрать из кюветы. В таком случае используется ступенчатая разборка пробы сначала при помощи шпателя животное вместе с небольшим количеством субстрата отсаживается в чашку Петри, в которой оно легко может быть схвачено пинцетом. Источник света вовремя разборки должен располагаться так, чтобы тень от руки головы не закрывала рабочего поля (рис. 49,7). Помните, что слишком яркий свет повышает двигательную активность беспозвоночных, а в некоторых случаях может служить причиной их гибели. Выборку мелких животных проводят под бинокуляром (рис. 49,2). При этом порцию субстрата делят на небольшие участки, полностью помещающиеся в поле зрения (рис. 49,5). Рис. 49. Разборка субстрата с животными под бинокуляром: 7 - правильное расположение источника света, 2 - расположение пробы под бинокуляром, 3 - пример разделения порции субстрата на поля Для извлечения мелких и многочисленных объектов (например, нематоды, клещи) используется метод автоматической выборки выгонка на эклекторе (см. выше. Для микроскопических почвенных членистоногих (клещи, ногохвостки) используется эк
лектор, изображенный на рисунке 15. При его эксплуатации важно помнить, что чрезмерно быстрое высушивание или нагрев субстрата вызывает тепловой и осмотический шоку животных и они погибают, не успев добраться до сита. Поэтому для электрической сушки надо использовать лампу небольшой мощности (до
25 Вт, подвешенную на расстоянии не менее 25 см от поверхности субстрата. Хорошие результаты могут быть получены при установке эклектора в сухом проветриваемом помещении без дополнительного нагрева.
56
Физиологически водные беспозвоночные (нематоды, тихоходки и пр) собираются на своеобразных водных эклекторах» - воронках О'Коннора и Бермана. Наиболее общеупотребимы воронки Бермана рис. 50,7). В небольшую лабораторную воронку помещается мелкая сетка, на которую кладут кусочек субстрата. Воронку (или несколько воронок) устанавливают в сосуде с водой так, чтобы жидкость покрывала весь субстрат. Животные собираются в пробирку, находящуюся подносиком воронки. Для учета энхитреид, представляющих промежуточную группу между микро- и мезофауной, используются воронки О'Коннора, отличающиеся большими размерами и наличием подогрева субстрата (рис. 50,2). Для получения живого материала выгонку проводят вводу или физиологический раствор. В противном случаев пробирку-сборник помещают фиксирующую жидкость - 70%-ный раствор спирта (иногда с добавлением нескольких капель эфира и глицерина для уменьшения силы поверхностного натяжения и скорости испарения спирта. Как правило, в результате в сосуде-сборнике оказываются различные животные с примесью небольшого количества субстрата. Извлечение отдельных экземпляров производят под бинокуляром из чашки Петри при помощи кисточки, пинцета-прищепки, проволочной петельки. Сбор почвенных простейших требует и специальных методов, подробно описанных в литературе (Фасулати, 1971; Корганова, 1987). Рис. 50. Воронки Бермана (/) и О'Коннора (2) Содержание в лаборатории Для содержания и разведения беспозвоночных известны различные способы устройства садков (рис. 51). Наиболее простой садок - стеклянная банка емкостью 0,5-1,0 л, затянутая сеткой. Можно использовать аквариумы различных размеров, самодельные садки из оргстекла или из двух стеклянных пластинок, скрепленных пластилином (рис 51,3,4). Внутреннее устройство садка зависит от вида содержащегося в нем животного, однако есть несколько важных правил, за соблюдением которых надо следить всегда.
57
Рис. 51. Садки для содержания и разведения беспозвоночных 7 - садок из банки с крышкой 2 - стандартный аквариум 3 самодельный садок из оргстекла, 4- пластинчатый садок
Во-первых, нельзя оставлять садки (особенно с плотной крышкой) на прямом солнечном свету. Это приводит к перегреву ивы сыханию животных. Особенно чувствительны к повышению температуры почвенные обитатели, так как толща почвы редко прогревается выше С.
Во-вторых, следует размещать садки так, чтобы на их стенках не происходило конденсации влаги. Мелкие беспозвоночные могут просто утонуть в капле, а крупные - пострадать из-за диффузии воды и солей через покровы. Сконденсировавшуюся влагу необходимо регулярно удалять ватным или марлевым тампоном рис. 52,7).
В-третьих, садки надо регулярно (не реже двух разв сутки) проветривать. Это уменьшает риск конденсации воды и препятствует развитию плесневых грибов.
В-четвертых, необходимо следить за влажностью почвы всосу де. Поверхностный полив водой крайне нежелателен, так как нарушает структуру почвы и вызывает локальные переувлажнения, часто приводящие к гибели организмов. Полив следует производить
58
Рис. 52. Уход за садками в лаборатории / - удаление водного конденсата, 2 - полив поверхности 3 - внутреннее увлажнение почвы, 4 - пробирки для поддержания влажности воздуха пипеткой путем нанесения небольших капель по всей поверхности или через специальные трубочки, погруженные в почву (рис.
52,2,3). В ряде случаев в садке необходимо поддерживать постоянно высокую влажность воздуха. Для этой цели используются небольшие пробирки, наполненные водой и плотно закупоренные ватой (рис 52,4).
В-пятых, все животные загрязняют почву продуктами жизнедеятельности, которые зачастую ингибируют их развитие. Поэтому необходимо регулярно менять субстрат и чистить сосуды. Для. большинства видов такую уборку можно производить один разв дня, однако садки с брюхоногими моллюсками, личинками бабочек и пилильщиков, тлями следует чистить не реже одного раза в сутки. Для внутреннего устройства садков желательно использовать субстрат, собранный вместе с животными. Хищные почвенные членистоногие (жужелицы пауки, костянки) содержатся в садках с относительно большой площадью дна рис. 51,2,5). Слой почвы может быть небольшой - 2-4 см, но обязательно наличие укрытий - кусочков коры, камешков и т. д. Водном садке может находиться 2-3 жужелицы, а пауков и костянок содержат по одной особи. Другие почвенные хищники (землянки, личинки жужелиц нуждаются в толстом слое рыхлой, хорошо структурированной почвы, входах которой они проводят основное время. Кормом для большинства этих животных могут служить дождевые черви (или кусочки дождевых червей. Некоторые жужелицы охотно поедают моллюсков, а пауки питаются почти исключительно членистоногими. Почвенных фито- и сапрофагов (мокрицы, двупарноногие многоножки) можно содержать большими группами - по 5-10 особей на 1 дм в садках с небольшим слоем почвы и лиственного опада. Хвойная подстилка, даже сильно разложившаяся, него дится для содержания данных беспозвоночных. Хотя эти животные в значительной степени питаются опавшей листвой, их обязательно надо подкармливать свежей зеленью и овощами, особенно кусочками моркови. Наземные брюхоногие моллюски (слизни янтарка, кустарниковая улитка могут жить в аналогичных садках. Однако кормить их следует только живыми частями растений. Специфический способ движения моллюсков рассчитан на контакт с увлажненным субстратом, поэтому желательно в вечернее время опрыскивать садок водой из пульверизатора. : Мелкие почвенные членистоногие содержатся в различных микробоксах (см. рис. 24). Непременное условие их жизни - поддержание достаточно высокой (близкой к 100%) влажности воздуха. Это способствует конденсации влаги на стенках сосудов, поэтому надо особенно тщательно выбирать месторасположения садков они должны находиться в затененном, относительно прохладном (С) помещении с минимальными суточными колебаниями температуры. Сапрофаги (панцирные и тироглифоид- ные клещи, коллемболы) питаются в основном грибами. Для их кормления можно использовать капельки кефира, рисового грибка и т. д. Хищные формы (часть простигматических и мезостигма-
1 тические клещи) в неволе могут питаться ногохвостками или нематодами. При работе с этой группой животных необходимо ; помнить, что они не переносят яркого света и мощный сфокусированный пучок от лабораторного осветителя может повредить >
i
60
J
животное или вызвать его гибель. В качестве источника света лучше использовать электрическую лампу мощностью 40-75 Вт, установленную на расстоянии не менее 45 см от объекта. Других мелких членистоногих можно содержать в почвенных стаканчиках (бюксах) и чашках Петри с субстратом или влажной фильтровальной бумагой на дне. Например, сеноеды могут долго жить в чашках Петри с влажной фильтровальной бумагой, на которую положены 1-2 кусочка коры с налетом одноклеточных водорослей. Почвенные малощетинковые черви содержатся в небольших садках с толстым слоем почвы или специального компоста например 1 часть навоза, 1 часть земли и 1 часть сфагнума. Желательно, чтобы стенки и дно садка имели вентиляционные отверстия диаметром 4-6 мм - это предотвратит развитие анаэробной грибной флоры, губительной для олигохет. Для дождевых червей садки должны иметь размеры примерно 30x40x15 см, для энхит- реид - меньше, например 20x25x5 см (лабораторные кюветы. При длительном содержании червей надо подкармливать, помещая кусочки овощей (для дождевых червей) или толокно (для энхитреид) в небольшие ямки, сделанные в компосте. Специальные плоские садки, заполненные рыхлой почвой (рис. 53,7), применяются для наблюдения за способом движения и питания дождевых червей. Рис. 53. Садки для наблюдения за дождевыми червями (7) и насекомыми-подкорниками (2) Своеобразные методы используются для наблюдения в лаборатории за жизнью насекомых - ксилобионтов. Иногда бывает достаточно поместить в обычный садок (рис 51,3) кусочки той древесины, с которой было собрано животное, и лишь контролировать ее влажность. Виды, повреждающие еще живые или недавно погибшие растения (например, личинки златок, короеды могут развиваться только в древесине определенного качества. Для их содержания необходимо вырезать кусок стебля растения (выпилить чурбачки из ствола) и замазать срезы смолой или масляной
61
Рис. 54. Устройство садков для содержания фитофагов 7 - открытое содержание, 2 - садок с кормовым растением краской. В таком виде образцы помещают в садок с крышкой (для поддержания влажности) и хранят в затемненном месте. Наблюдения за короедами и личинками некоторых других насекомых (усач-рагий, пестряк, стволоедка и др) удобно проводить, зажав населенный ими кусок коры между двух стекол, склеенных пластилином или стянутых резинками (рис. 53,2). Наконец, многие насекомые образуют специфические повреждения зеленых тканей растений - погрызы, галлы, мины. Они сохраняются в виде букетов, помещенных в открытые садки (рис. 54,7). Животные, активно поедающие ткани растений (листоеды гусеницы бабочек, содержатся аналогичным способом. Так как большинство из них малоподвижны, то внутреннее устройство садка может быть ограничено сосудом с водой и веточками кормового растения. Надо лишь вовремя добавлять свежие и убирать старые растения и экскременты. При содержании гусениц некоторых бабочек (совок, медведицы перед их окукливанием в садки необходимо поместить поддон со слоем почвы толщиной 2-4 см. Сложнее содержать в лаборатории тлей, так как они питаются, высасывая сок растений. Для этого приходится выкапывать кормовые растения вместе с корневой системой и пересаживать в цветочный горшок, который помещается в сетчатый садок и регулярно поливается. Для содержания хищных членистоногих, обитающих на поверхности травянистых растений или стьях деревьев, используются садки из сетки или хотя бы с сетчатой стенкой (см. рис. 22). Многие виды этой группы (божьи коровки личинки златоглазок, мух-сирфид) Рис. 55. Садок для содержания относительно малоподвижны и хищных членистоногих травяного почти все время проводят на рас-
|
|
|
Скачать 3.19 Mb.