Главная страница
Навигация по странице:

  • ГИБРИДОМНАЯ ТЕХНОЛОГИЯ ПОЛУЧЕНИЯ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ

  • Рис. 28. Получение моноклональных антител (по Милыптейну, 1982)

  • ЭМБРИОГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ

  • КЛОНИРОВАНИЕ ЭМБРИОНОВ МЛЕКОПИТАЮЩИХ

  • {КС 9

  • ХИМЕРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ

  • Среда ^ое без Са Мд Рис. 30. Два способа получения генетических химер: а— по Тарковскому-Минцу; б— по Гарднеру

  • ТРАНСГЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ

  • В. Н. Сайтаниди Рецензент членкорреспондент расхн в. Ф. Красота Петухов В. Л. и др. П31 Ветеринарная генетика В. Л. Петухов, А. И. Жигачев, Г. А. Назарова. 2е изд., перераб и доп. М. Колос, 1996. 384 с ил. Учебники


    Скачать 5.3 Mb.
    НазваниеВ. Н. Сайтаниди Рецензент членкорреспондент расхн в. Ф. Красота Петухов В. Л. и др. П31 Ветеринарная генетика В. Л. Петухов, А. И. Жигачев, Г. А. Назарова. 2е изд., перераб и доп. М. Колос, 1996. 384 с ил. Учебники
    Анкорpetuhov_vet_genetika.doc
    Дата17.05.2017
    Размер5.3 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаpetuhov_vet_genetika.doc
    ТипУчебники
    #7754
    страница10 из 45
    1   ...   6   7   8   9   10   11   12   13   ...   45

    Соматическая гибридизация. Одним из важных направлений клеточной инженерии является гибридизация соматических кле­ток. Сущность ее заключается в соединении клеток с хромосом­ными наборами систематически далеких форм.

    Впервые гибриды соматических клеток обнаружил в I960 г. французский биолог Ж. Барский. В культуре ткани клеток двух линий мышей он выявил третий тип клеток. Клетки эти оказа­лись гибридными. Они содержали хромосомы клеток обеих ис­ходных линий. Морфологические и биохимические признаки гибридных клеток были промежуточными между признаками ис­ходных. Однако спонтанное слияние клеток наблюдается редко. В связи с этим разработана техника гибридизации соматических клеток с использованием вируса Сендай. Вирус инактивируют ультрафиолетовыми лучами или алкилирующим мутагеном. Инактивированный вирус вносят в смешанную культуру двух типов клеток. Некоторые клетки при этом сливаются с образова­нием одной с двумя ядрами. После митотического деления из двухъядерной клетки формируются две одноядерные гибридные соматические клетки. В каждой гибридной клетке содержится по одному набору хромосом каждого типа родительских клеток.

    При помощи вируса Сендай к настоящему времени получены гибриды клеток многих далеких видов (мыши и курицы, мула и мыши, кролика и обезьяны, человека и курицы, коровы и норки и др.). Гибридные клетки могут размножаться в течение длитель­ного времени, но межвидовая несовместимость имеет место и при соматической гибридизации. Так, в культуре клеток с тече­нием времени образуются клоны, которые почти совсем или совсем утрачивают хромосомы второго вида. Это явление откры­вает возможности для изучения локализации и характера дейст­вия тех или иных генов.

    Можно изучить клеточный клон, в котором сохранилась толь­ко одна хромосома другого вида, и по наличию или отсутствию в клетке определенных соединений решить вопрос, имеется ли в той или иной хромосоме определенный ген. Можно установить, какой, например, фермент прекращает вырабатывать клетка при утрате той или иной хромосомы. На этом основании можно

    111









    Антиген
    7. 3



    Антигенная

    детерминанта

    (зпнтоп)

    Лимфоциты


    клешни мивламы ГГФГ


    Слияние д полиэтилен -гликоле


    -У Среда ГАТ ОтВор гибридных клеток


    *€>


    Антиген АнтисыЬаротка

    Клон!


    Анти-

    определить, что ген, кодирующий данный фермент, сцеплен с ушедшей хромосомой. Таким путем была определена локализа­ция многих генов в определенных хромосомах человека.

    Соматическая гибридизация может быть использована для картирования хромосом, а также для изучения регуляции дейст­вия генов, дифференцировки клеток в онтогенезе и механизма взаимодействия ядра и цитоплазмы.

    ГИБРИДОМНАЯ ТЕХНОЛОГИЯ ПОЛУЧЕНИЯ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ

    Введение антигена (бактерий, вирусов и т. д.) вызывает обра­зование разнообразных антител против многих детерминант антигена. В 1975 г. Г. Кёлер и К. Мильштейн (лауреаты Нобе­левской премии) получили моноклональные антитела с помощью гибридомной технологии.

    Моноклональные антитела — это иммуноглобулины, синтези­руемый одним клоном клеток. Моноклональное антитело связы­вается только с одной антигенной детерминантой на молекуле антигена.

    Гибридомная технология — слияние с помощью полиэтиленгли-коля лимфоцитов селезенки предварительно иммунизированных организмов определенным антигеном с миеломными (раковыми) клетками, способными к бесконечной пролиферации (делению). Гибридные клетки селекционируют в среде ГАТ (среда, содержа­щая гипоксантин, аминоптерин и тимидин). Неслившиеся лим­фоциты погибают в любой тканевой культуре. Миеломные клетки на этой среде также погибают, так как они были дефектны по ГГФТ (гипоксантин-гуанозин-фосфорибозилтрансферазе). Отби­рают клоны клеток, синтезирующие необходимые антитела (рис. 28). Нужные клоны можно хранить в замороженном состоянии.

    Таким образом, гибридомы представляют собой бессмертные клоны клеток, синтезирующие моноклональные антитела.

    Получение и использование моноклональных антител — одно из существенных достижений современной иммунологии. С их помощью можно определить любое иммуногенное вещество. В медицине меченные изотопами или иным способом монокло­нальные антитела можно использовать для диагностики рака и определения локализации опухоли, для диагностики инфаркта миокарда. Получены моноклональные антитела к различным возбудителям: малярии, трипаносомозу, лейшманиозу, токсо-плазмозу и др. Ученые считают, что в самом ближайшем буду­щем моноклональные антитела займут доминирующее положе­ние в диагностике болезней. Для использования в терапии моно­клональные антитела можно соединять с лекарством (например, с токсическими веществами) благодаря специфичности антител они доносят это вещество непосредственно к раковым клеткам

    112

    Отбор Вариантов и размножение желательных* клинад(1,4)





    | Выращивание \ в массовой

    культуре

    Смешанные антитела

    Манокланалыные антитела

    Рис. 28. Получение моноклональных антител (по Милыптейну, 1982)

    или патогенным микроорганизмам, что позволяет значительно повысить эффективность лечения. Можно использовать моно­клональные антитела (против Н — Y-антигена) для определения пола у крупного рогатого скота на предимплантационной стадии развития, а также для стандартизации методов типирования тка-

    113

    ней при трансплантации органов, при изучении клеточных мем­бран (так были изучены антигены Т-лимфощггов), для постро­ения антигенных карт вирусов, возбудителей болезней.

    ЭМБРИОГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ

    Эмбриогенетическая инженерия — это активная перестройка генома животных путем вмешательства в их развитие на самых ранних стадиях онтогенеза. Перестройка генома — это рекон­струкция эмбрионов путем клонирования, слияния или непо­средственной инъекции в их ядра чужеродной ДНК. Однако получение эмбриональных клонов, химер или трансгенных жи­вотных возможно лишь в результате успешной трансплантации реконструированного эмбриона.

    Трансплантация — метод ускоренного воспроизводства высо­копродуктивных животных путем получения и переноса одного или нескольких эмбрионов от высокоценных животных (доно­ров) менее ценным животным (реципиентам). Использование трансплантации позволяет получать от одной генетически цен­ной самки в десятки раз больше потомства.

    Технология трансплантации опирается на крупные достиже­ния в области биологии размножения животных и включает следующие приемы: 1) гормональное вызывание суперовуляции; 2) осеменение доноров семенем производителей, оцененных по качеству потомства; 3) извлечение и оценку качества эмбрионов, сохранение и пересадку или криоконсервирование эмбрионов в жидком азоте, оттаивание и пересадку.

    Трансплантацию эмбрионов применяют для следующих целей:

    1. размножения генетически ценных особей; с помощью этого
      метода может быть решен вопрос быстрого создания высокопро­
      дуктивных линий и семейств, резистентных к болезням;

    2. получения идентичных животных путем разделения ранних
      эмбрионов. Это дает возможность изучить взаимодействие гено­
      тип — среда, выяснить влияние наследственности на хозяйствен­
      но полезные признаки. Технология разделения эмбрионов позво­
      ляет одну половину полученной бластоцисты подвергнуть глубо­
      кому охлаждению, а из другой вырастить животное. Если
      производитель (из одной половины бластоцисты) окажется гене­
      тически ценным, то имеется возможность воспроизвести его
      копию через определенный промежуток времени;

    3. сохранения мутантных генов, малых популяций и генофон­
      да пород;

    4. получения потомков от бесплодных, но генетически цен­
      ных по генотипу животных;

    5) выявления вредных рецессивных генов и хромосомных
    аномалий;

    114


    1. повышения устойчивости животных к болезням;

    2. борьбы с болезнями путем замены импорта и экспорта
      животных на импорт и экспорт криоконсервированных эмбрио­
      нов;

    3. акклиматизации импортных животных иностранных пород;

    4. определения пола эмбриона и получения животных опреде­
      ленного пола;




    1. межвидовых пересадок;

    2. получения химерных животных, которые развиваются из
      ранних эмбрионов, сконструированных из бластомеров разных
      животных.

    КЛОНИРОВАНИЕ ЭМБРИОНОВ МЛЕКОПИТАЮЩИХ

    Истинные клоны позвоночных животных — амфибий были получены путем пересадки ядер соматических клеток в энуклеи-рованные яйцеклетки. Получение эмбриональных клонов осно­вано на свойстве тотипотентности эмбриональных клеток.

    В 1952 г. Р. Бриггс и Т. Кинг разработали метод пересадки ядер соматических клеток зародышей в энуклеированные яйце­клетки лягушек. Дж. Гёрдон в 1962 г. усовершенствовал технику пересадки. Он разрушал ядра яйцеклеток лягушки ультрафиоле­товыми лучами, затем в каждое из яиц вводил ядро из диффе­ренцированной клетки кишечного эпителия плавающего голо­вастика (рис. 29). В ряде случаев такие ядра вызывали развитие генетически идентичных эмбрионов и взрослых лягушек. Впе­рвые были получены истинные клоны позвоночных животных. Затем был использован метод культивирования in vitro клеток кожи взрослых лягушек. Пересадка ядер из таких клеток привела к получению генетических клонов головастиков, но вероятность успеха при трансплантации ядер из клеток кожи взрослых лягу­шек очень мала. При использовании ядер соматических клеток взрослых животных развитие клонов ограничивалось стадией го­ловастиков. Ядра взрослых организмов и даже поздних эмбрио­нов по каким-то причинам утрачивают свои потенции. В послед­ние годы установлено, что в ядрах эритроцитов взрослых амфи­бий имеются гены, контролирующие развитие эмбриона до .стадии головастика, включение таких ядер в цитоплазму ооцитов ведет к реактивации репрессированных участков генома.

    В последние 10 лет разработан метод пересадки ядер, соче­тающий приемы микрохирургии и технику слияния клеточных фрагментов, начато проведение опытов по трансплантации ядер у овец и крупного рогатого скота.

    Несмотря на сложность проведения работ по трансплантации ядер соматических клеток в энуклеированную зиготу, проблема эта является актуальной, так как открывает возможности копи-

    115











    Гй ЯСК


    © © © яск

    \ \ \

    {КС 9

    Рис. 29. Серийные ядерные пересадки (по Дж. Гёрдову):

    © ©

    иксз

    ЯСК для ШКСЭ

    ЯР — яйцо-реципиент; ГД ЯСК — голо­вастик—донор ядер соматических кле­ток; ЭЯР — энуклеированное яйцо-реци­пиент; ЯСК — ядра соматических клеток; Бл — бластула; КСЭ — клон серийных эмбрионов

    рования выдающихся по продуктивности животных и создания стад с высоким генетическим потенциалом.

    Клоны можно получить путем разделения эмбрионов на ранней стадии развития. Установлено, что, если количество клеток эмбриона (бластомеров) не превышает 16, они еще не дифференцированы. Это позволяет разъединять эмбрио­ны (бластулы) на 2 и большее число и получать однояйцевых близнецов. К настоящему времени получены монозиготные близнецы телят, жеребят, ягнят и поросят. В перспективе пред­полагается, что обеспечение оптимальных условий для культиви-

    116

    рования ранних эмбрионов in vitro создаст возможность выращи­вать половинки эмбрионов с последующим неоднократным их разделением, что позволит в значительной степени увеличить число годных для трансплантации зародышей, происходящих от одного эмбриона, и получить более многочисленные клоны эмб­рионов у сельскохозяйственных животных, что будет способство­вать более успешной их селекции.

    ХИМЕРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ

    Одно из перспективных направлений биотехнологии — искус­ственное получение химер (аллофенных животных). Понятие хи­мера означает составное животное. Сущность метода получения химер заключается в искусственном объединении эмбриональ­ных клеток двух и более животных. Животные могут быть как одной породы, так и разных пород и даже разных видов. Совре­менная микрохирургия позволяет получать химер, имеющих 3—4 и более родителей. Химеры обладают признаками животных раз­ных генотипов.

    Существует два основных метода получения химер искусст­венным путем: 1) агрегационный — объединение двух и более морул или бластоцист в один эмбрион; 2) инъекцион­ный — микроинъекция клеток внутриклеточной массы (ВКМ) бластоцисты доноров в бластоцель эмбриона-реципиента. В обоих случаях получают особей, ткани и органы которых постро­ены из клонов клеток объединенных (двух или более) эмбрионов (рис. 30). Первыми созданы химеры лабораторных мышей между линиями агути (кремовые) и не агути (черные). Они выглядели крапчатыми. Их окраска сочетала признаки обоих родителей: полосы пигментированной шерсти чередовались со светлыми, каждая полоса представляла клон клетки-родоначальницы. Их использование помогает изучению фундаментальных проблем дифференцировки клеток в процессе онтогенеза, многих вопро­сов механизма клеточного развития и происхождения отдельных тканей, иммунологического взаимодействия в развитии и т. д.

    В настоящее время имеются внутривидовые и межвидовые химеры не только лабораторных животных (мышей, хомяков, крыс), но и сельскохозяйственных животных (коров, коз, овец).

    Изучение химер позволит понять процесс реализации генома в фенотипе животных. В Великобритании и ФРГ были получены межвидовые химеры между овцой (2п = 54) и козой (2п = 60), названные овцекозами. В крови химер обнаружены красные кро­вяные тельца и овцы, и козы. Их шерсть представляла собой рмесь волос того и другого вида. Экстерьер соответствовал одно­му из родителей. Интересным является факт рождения ягненка от козы и козленка от овцы. В США в 1987 г. были получены химеры овец и коз и химеры овцы между породами рамбулье и

    117








    Среда ^ое без

    Са Мд

    Рис. 30. Два способа получения генетических химер:

    а— по Тарковскому-Минцу; б— по Гарднеру

    финский ландрас. В нашей стране получен химерный бычок от животных черно-пестрой и красной пород. Он в фенотипе соче­тал черно-пеструю масть с красными пятнами (Л. К. Эрнст, 1987).

    Приведенные материалы свидетельствуют о возможности по­лучения химер (генетических мозаиков) в животноводстве. Одна­ко в потомстве химерных животных не сохраняется родитель­ский генотип, происходит расщепление и нарушаются ценные генетические комбинации.

    Несмотря на это, предполагается, что при усовершенствова­нии методов получения химер они могут представлять большой

    118

    интерес для практики животноводства. Таким путем можно по­лучить животных с более высокой резистентностью к ряду болез­ней и с признаками, которые обычно плохо сочетаются в одном организме.

    ТРАНСГЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ

    Трансгеноз — экспериментальный перенос генов, выделенных из определенного генома или искусственно синтезированных, в другой геном. Животные, в геном которых интегрируют чуже­родные гены, называют трансгенными. В ряде экспериментов было установлено, что мыши, развивающиеся из зиготы, в кото­рую была введена чужеродная ДНК, содержат в своем геноме фрагменты этой ДНК, а иногда у них происходит и экспрессия чужеродных генов. В 1980 г. Дж. Гордон с сотр. впервые показа­ли возможность трансформации мыши путем введения в пронук-леус оплодотворенной яйцеклетки мыши рекомбинантных моле­кул, содержащих ген тимидинкиназы (ген ТК) вируса герпеса. Лучшие результаты были получены при Микроинъекции реком-бинантной ДНК в мужской более крупный пронуклеус. Метод микроинъекции чужеродной ДНК в мужской пронуклеус зиготы используется в настоящее время у всех млекопитающих, включая сельскохозяйственных животных. Созданы линии трансгенных мышей, хоторые различались между собой структурой чужерод­ной ДНК. Мышам были введены гены: гемоглобина кролика, Р-глобина человека, лейкоцитарного интерферона человека, гор­мона роста крысы и человека.

    Особого внимания заслуживает опыт Пальмитера и сотр., в котором осуществлена пересадка мышам гена гормона роста крысы. В этом случае промотор бактерий был непригоден. Для микроинъекции была создана рекомбинантная ДНК, состоящая из соединенных фрагментов различных генов: промоторной части гена — металлотионеина МТ-1 мыши и структурной части — гена гормона роста крысы, в котором собственные про­мотор и инициатор были удалены. В зиготы мыши инъецировали по 600 копий рекомбинантной ДНК. Получен 21 потомок. У семи мышей был обнаружен чужеродный ген — ген гормона роста крысы. Живая масса трансгенных мышат была в 1,8 раза больше, чем контрольных. Таких трансгенных животных назвали супермышами. В среднем у трансгенных мышей интегрируется 25—30 % копий введенной ДНК.

    Успешные опыты с мышами способствовали проведению работ по получению трансгенных кроликов и сельскохозяйствен­ных животных. Схема получения трансгенных животных в ос­новном такая же, как и при работе с мышами. Она состоит из следующих этапов: 1) выбор, получение и клонирование чуже­родного гена; 2) получение зигот и выявление пронуклеусов; 3)

    119

    микроинъекция определенного числа копий генов в видимый пронуклеус; 4) трансплантация зиготы в половые пути гормо­нально подготовленной самки; 5) оценка родившихся животных по генотипу и фенотипу: интеграция чужеродной ДНК, экспрес­сия ДНК, влияние на признак (например, высокая интенсив­ность роста), установление наследования гена.

    Наиболее трудной проблемой в опытах по переносу генов в ткани или организмы животных оказалась экспрессия внесенных генов. Выяснилось, что только четыре промотора (генов метал-лотионеина, трансферрина, иммуноглобулина, эластазы) из мно­гих исследованных способны активировать присоединенные к ним гены.

    Трансгенные кролики были получены Р. Хаммером и Г. Бре-мом с сотр. Они производили микроинъекцию в пронуклеусы кроликов гена гормона роста человека. В нашей стране в отделе биотехнологии ВИЖа получена трансгенная крольчиха с интег­рацией и экспрессией гена гормона роста крупного рогатого скота (Ц. К. Эрнст и др., 1990).

    В Австралии получили первых в мире трансгенных овец. В возрасте 2—4 лет трансгенные овцы в 1,5 раза превосходили по массе сверстников той же породы. Австралийские ученые пред­полагают ввести овцам и другие гены, которые должны привести к ускорению роста шерсти, усилению резистентности к болез­ням.

    Трансгенные свиньи впервые были получены в лабораториях Р. Хаммера (1985) и Г. Брема (1986) на основе инъекции гормо­на роста человека. У некоторых таких свиней в плазме крови отмечался высокий уровень гормона роста человека. В нашей стране получены трансгенные свиньи на основе инъекции в зиготы гена гормона роста крупного рогатого скота.

    При работе с крупным рогатым скотом, для того чтобы обна­ружить пронуклеусы, применяют ДНК-специфические флуорес­центные окраски и центрифугирование зигот. В 1987 г. родился первый трансгенный теленок молочно-мясного типа.

    В порядке совершенствования процесса трансгеноза разраба­тывается метод оплодотворения яйцеклеток in vitro с помощью микроинъекции одного сперматозоида с включенной в него чу­жеродной ДНК.

    В перспективе предполагается получение трансгенных живот­ных для производства новых продуктов, которые можно будет производить в промышленном масштабе, если они будут полез­ны с медицинской точки зрения. С этой целью будет использо­ваться рекомбинантная ДНК, с помощью которой от трансген­ных животных будут получать, например, из коровьего молока, крови или печени такие белки, как инсулин человека, интерфе­рон и гормоны. Разрабатывается биотехнология производства фактора свертывания крови из молока трансгенных овец. Пред-

    120

    •полагается, что фактор свертываемости, необходимый для лече­ния гемофилии, будет синтезироваться в клетках молочной желе­зы овец и переходить в молоко.

    Внедрение современных биотехнологий — гибридизации со­матических клеток, клеточной и генной инженерии в сочетании с эмбриогенетической инженерией — определяет новые подходы в деле создания более устойчивых к болезням высокопродуктив­ных пород животных с признаками, которых не было у исходных пород или они были слабовыражены. Открываются новые пер­спективы для получения лекарственных веществ: гормонов, вак­цин, аминокислот, витаминов и т. д. Синтез генов и совершен­ствование методов их введения позволяют ввести в клетку на место поврежденных генов нормальные гомологи, что обеспечит лечение наследственных болезней. Широкое распространение получат способы нейтрализации действия вредных генов с помо­щью введения репрессоров.
    1   ...   6   7   8   9   10   11   12   13   ...   45


    написать администратору сайта