Задачами дисциплины формирование навыка Диагностика стоматологических заболеваний и патологических состояний пациентов
Скачать 5.62 Mb.
|
Информированное добровольное согласие на виды медицинских вмешательств, включенные в Перечень определенных видов медицинских вмешательств, на которые граждане дают информированное добровольное согласие при выборе врача и медицинской организации для получения первичноймедико-санитарной помощи (Приказ Министерства здравоохранения РФ «Об утверждении порядка дачи информированного добровольного согласия на медицинское вмешательство и отказа от медицинского вмешательства в отношении определенных видов медицинских вмешательств, форм информированного добровольного согласия на медицинское вмешательство и форм отказа от медицинского вмешательства» от 20 декабря 2012 г. N№1177н) Я, _____________________________________________________________________ (Ф.И.О. гражданина) "__________" ______________________________________________ г. рождения, зарегистрированный по адресу: __________________________________________ (адрес места жительства гражданина либо законного представителя) даю информированное добровольное согласие на виды медицинских вмешательств, включенные в Перечень определенных видов медицинских вмешательств, на которые граждане дают информированное добровольное согласие при выборе врача и медицинской организации для получения первичной медико-санитарной помощи, утвержденный приказомМинистерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации от 23 апреля 2012 г. N 390н (далее - Перечень), для получения первичной медико-санитарной помощи / получения первичной медико-санитарной помощи лицом, законным представителем которого я являюсь (ненужное зачеркнуть) в _______________________________________________________________________. (полное наименование медицинской организации) Медицинским работником _________________________________________________ (должность, Ф.И.О. медицинского работника) в доступной для меня форме мне разъяснены цели, методы оказания медицинской помощи, связанный с ними риск, возможные варианты медицинских вмешательств, их последствия, в том числе вероятность развития осложнений, а также предполагаемые результаты оказания медицинской помощи. Мне разъяснено, что я имею право отказаться от одного или нескольких видов медицинских вмешательств, включенных в Перечень, или потребовать его (их) прекращения, за исключением случаев, предусмотренных частью 9 статьи 20 Федерального закона от 21 ноября 2011 г. N 323-ФЗ "Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации". Сведения о выбранных мною лицах, которым в соответствии с пунктом 5части 5 статьи 19 Федерального закона "Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации" от 21 ноября 2011 г. N 323-ФЗ может быть передана информация о состоянии моего здоровья или состоянии лица, законным представителем которого я являюсь (ненужное зачеркнуть) ________________________________________________________________________ (Ф.И.О. гражданина, контактный телефон) __________ _____________________________________________________________ (подпись) (Ф.И.О. гражданина или законного представителя гражданина) __________ _____________________________________________________________ (подпись) (Ф.И.О. медицинского работника) "__" ________________________________________ г. (дата оформления) Практическое занятие № 2 Тема 2.Анатомические предпосылки стоматологической имплантации. Феномен остеоинтеграции, факторы влияющие на оптимизацию этого процесса. Морфологические особенности заживления костной раны. Морфологические особенности контактной зоны кость – имплантат. 1. Контрольные вопросы 1.Особенности дизайна поверхности имплантатов различных имплантационных систем. 2.Особенности конструкций имплантатов различных имплантационных систем 3.Морфологическая сущность феномена остеоинтеграции. 4.Методы оптимизации остеоинтеграции. 5.Морфологические особенности репаративной регенерации при дентальной имплантации. 6.Характеристика контактной зоны кость-имплантат. 2.План занятия и деятельность студента
Информационные и справочные материалы. Обоснование дентальной имплантации морфо-физиологическиеосновы дентальной имплантации анатомическое строение челюстей. Нижняя челюсть. Является единственной подвижной и одной из самых массивных костей лицевого скелета. Она имеет различные размеры и отличается оригинальной подковообразной формой. Челюсть состоит из двух симметричных половин, сросшихся по средней линии в области возвышения подбородка под углом 70-75°.Различают тело челюсти и две ветви. Нижняя челюсть относится к плоским костям. Поверхность челюсти состоит из плотного компактного вещества. Наиболее мощные слои его находятся в основании челюсти, подбородка и области прикрепления мышц на наружной и внутренней косых линиях. В губчатом веществе тела иветвичелюстиниже верхушеккорнейзубов проходит нижнечелюстной канал, в котором располагаются одноименныйсосудисто-нервный пучок и лимфатические сосуды. Нижнечелюстной канал открывается на внутренней стороне ветви и на наружной стороне тела - между ячейками первого и второго премоляров. Через это отверстие выходит подбородочный нерв, веточки которого иннервируют слизистую оболочку и кожу нижней губы и подбородка. На боковой поверхности тела проходит наружная косая линия, продолжение переднего краяветви челюсти. Навнутреннейповерхности нижней челюсти располагается внутренняякосая линия, к которойприкрепляетсячелюстно-подъязычная мышца,образующаядиафрагму дна полости рта. Внутренняя косая линияобразует выраженное поднутрение, которое особенно важно учитывать при планировании операции имплантации. Кровоснабжение нижней челюсти осуществляется сосудами из системы наружной сонной артерии, которые образуют связанную между собой внутрикостную и периостальную сеть. Главным источником является нижняя альвеолярная артерия. Вчелюстномканале онаотдаетмногочисленныеветочки ккорням зубов, периодонту, костному мозгу и к кортикальномуслоюкостиивыходитчерез подбородочное отверстие, разделяясь на мелкие веточки, анастомозируетс одноименнойартерией противоположной стороны. Кроме основной нижнеальвеолярной артерии, нижнюю челюстьснабжают множество периостальных сосудов,которыевходятвкостьвобласти прикрепления сухожилий мышц, прилегающих к кости сосудов. Венозные сосуды сопровождают артериальные. В основном отток венозной крови осуществляетсячерез нижнюю зубную вену, выходящуючерез нижнечелюстное отверстие. Нижняя челюсть и окружающие мягкие ткани иннервируются третьей ветвью тройничного нерва - нижнечелюстным нервом. Он является смешанным нервом, содержащим двигательные и чувствительные волокна. Особый интерес представляет нижний альвеолярный нерв, который входит через нижнечелюстное отверстие в нижнечелюстной канал, следуя в нем вместе с одноименнымиартериями и веной. В нижнечелюстном канале от нижнего альвеолярного нерва отходит ряд ветвей, образующих нижнее зубное сплетение, от которого отходят ветви к зубам, альвеолярному отросткунижней челюстии кдеснесвестибулярной стороны. Верхняя челюсть. Она имеет тело и четыре отростка: лобный, скуловой, альвеолярный и небный. Высота верхней челюсти колеблется от 49 до 81 мм. Ширина от 41 до 75 мм. Тело верхней челюсти имеет обширную воздухоносную полость, выстланную слизистой оболочкой. Она занимает от ¾ до 4/5 объема тела верхней челюсти. Наиболее актуальны форма и размеры альвеолярного отростка, напоминающего полу дугу, кривизна которой находится в области первого премоляра. Отросток имеет разную ширину в переднем и заднем отделах, увеличениеего в ширину начинается позади лунки клыка. Основным источником кровоснабжения верхней челюсти является челюстная артерия. Различают экстраоссальную и интраоссальнуюсосудистуюсетьверхней челюсти. Кэкстраоссальнойсетиотносятся сосуды, питающиенадкостницуиповерхностныеслои кости. Сосуды интраоссальной сети - это главным образом ветви альвеолярных артерий (задних и передних). Венозный отток осуществляется во внутреннюю яремную вену, через систему лицевой и позадичелюстной вен. Иннервация верхней челюсти в основном осуществляется верхнечелюстным нервом. ГИСТОЛОГИЧЕСКОЕ СТРОЕНИЕ ЧЕЛЮСТЕЙ. Скелет человека является не только опорным органом, но и самым значительным резервом минералов и важнейшим органом минерального обмена веществ. Благодаря этому кость представляет собой динамическую, тахитрофную живую ткань с высокой чувствительностью к различным регуляторным, контролирующим механизмам, а также к экзогенными эндогенным влияниям. КЛЕТКИ КОСТНОЙ ТКАНИ Проблема происхождения клетоккостной ткани очень актуальна и до настоящего времени окончательно не решена. Согласно классической теории модуляции [Bloometal., 1941; Young,1962] остеобласты и остеокласты происходят от одной материнской (мезенхимальной) клетки и развиваются в две раздельные клеточные линии. Все костные клетки являются взаимозаменяемыми через дифференцировку и последующую модуляцию. Согласно другим взглядам Qee и Kimmel, 1977] остеокласты происходят из моноцитов крови, а остеобласты - из мезенхимальных клеток костного мозга: клетки стромы костного мозга (остеогенные клетки-предшественницы)—>остеобласты—»остеоциты; моноциты —>одноядерные фагоциты (остеокластически еклетки-предшественницы)—»многоядерные остеокласты . ОСТЕОБЛАСТ. У остеобластов (ОБ), впервые описанных Pommer в 1885 г., различают активную и неактивную формы (покоящийся остеобласт, boneliningcells). Активные, синтезирующие кубические или цилиндрические клетки с отростками к соседним клеткам и в остеоид ·гладкую новообразованную некальцифицированную костную ткань [Aaron, 1977]. Они покрывают в норме 2-8% поверхности кости [Merz, Schenk, 1970]. Функция. Активные ОБ образуют остеоидные пластинки путем отложения коллагеновых волокон и основного вещества (протеогликанов), возникающих внутриклеточно. Ежедневно откладываются1-2мкм остеоида, после 89 дней конечная толщина достигает 12 мкм [Frost, 1963]. Это означает, что остеобласт стократно продуцирует свой клеточный объем. После10-дневногопериода созревания начинаетсяминерализациясо стороны, отдаленной от ОБ. Этот фронт минерализации продвигается в направлении ОБ. При этом роль ОБ в минерализации еще оспаривается. Vitalli (1970) и Schenk (1975) видятв начале первичной минерализации активную функцию клеток. Frost (1966) и Celling (1975) считаютдаже, что первичная минерализация на 70% регулируется ОБ, в то время как вторичная (заключительная) минерализация (30%) протекаетнезависимоот клеток. Б завершение каждый10-йОБ замуровываетсяв качестве остеоцита, другие остаются на поверхности как неактивные ОБ [Vitalli, 1970]. Однако все эти неактивные ОБ принимают участие в обмене веществ в костной ткани благодаря связи с остеоцитами. ОСТЕОКЛАСТ. В1873 г.Kolliker назвал остеокластами (ОК) многоядерные гигантские клетки, которые могут быть обнаружены чаще всего в костных пазухах, гаушиповых лакунах. ОК - самые большие клетки организма с поверхностью, равной 1200-4000мкм, с2-20ядрами и высокой активностью кислой фосфатазы. Ядра светлые, круглые или бобовидные. Клетки подвижные и окружают кость, которой предстоит рассосаться, как «отсасывающаябанка «;0,11% костной поверхности составляют лакуны, занятые ОК (активная резорбция), пустые лакуны занимают5-10%костной поверхности (неактивная резорбция) [Bordier, 1974]. Продолжительность жизни ОК составляет от2 дней до 3 недель. Bonucci(1981) показал, чтоОК живет столько, сколькодлитсяего стимуляция. Наряду с этим имеются также одноядерные OK [Vitalli, 1970; Jowsey, 1977], преостеокласты [Burkhardt, 1982], одноядерные макрофаги [Horn, 1979], расположенные в плоских резорбционных впадинах(2-3пластинки), цитоплазма которых хорошо очерчена, а ядро овальное, как у неактивных остеобластов [Vitalli,1970]. Гигантоклеточные ОК богаты клеточными органеллами, особенно митохондриями,иимеют хорошо развитый аппарат Гольджи как признак их высокой обменной функции. Функция. В области щеточной каемки, уплотненной краевой каемкой, происходит выделение лизосомальных ферментов (в том числе кислой фосфатазы, проколлагеназы) и продуцирование кислоты [Vaes,1969]. Разрыхленные благодаря этому кристаллы и органические остатки фагоцитируются клетками, накапливаются в цитоплазматических вакуолях и затем растворяются. Один ОК разрушает столько кости, сколько создают 100 ОБ за то же самое время [Dambacher, 1982]. ОСТЕОЦИТ. Остеоцит (ОЦ), происходящий из остеобласта - одноядерная плоская клетка, которая расположена в костной лакуне и контактирует с соседними клетками и неактивными ОБ поверхности с помощью сети мельчайших канальцев (canaliculi) числом до 400. Функция. Благодаря связи ОЦ между собой и с костной поверхностью они в состоянии обмениваться информацией и транспортировать внутри и внеклеточно питательные вещества и минералы [Aaron,1976;Scnenk,1976]. КОСТНАЯ ПЕРЕСТРОЙКА. Растущая кость характеризуется ростом в длину и ширину, формообразованием (modeling) и внутренней перестройкой (remodeling). Увзрослыхсохраняется только последняя. Каждая кость постоянно подвергается перестройке, начинающейся с резорбции старой кости и с заключительным образованием новой кости. Перестройка является локальной и вряд ли изменяет геометрию или размеры кости. Таким образом, ежегодно перестраиваются 2-4% скелета [Aviolli, 1976], а это означает, что за10-20летобновляется половина скелета. На периостальной поверхности в течение всей жизни имеется положительный баланс костной перестройки, т.е. диаметр костислегка увеличивается. На поверхности гаверсовыхканалов костная перестройка уравновешена. КОСТНЫЙ МАТРИКС. Внеклеточная ткань представляет собой двухфазный материал, который состоит примерно на 35% из органического матрикса и примерно на 65% из неорганического минерального вещества [Кгапе,1983]. Органический матрикс состоит преимущественно из коллагена (примерно 95%) и из неколлагеновых протеинов, включая протеогликаны . Коллаген I типа составляет примерно 90%,III,IV,V типов - примерно5%. Неколлагеновые протеины представлены костными протеинами, костными морфогенетическими протеинами, остеонектином , костными протеогликанамии др. Минерализация осуществляется вдоль фибрилл коллагена I типа, а не других его типов. При этом коллаген служит пассивной основой для минерального вещества , в товремя как неколлагеновые протеины регулируют процесс минерализациии ,соответственно , костный метаболизм. Установлено, что процесс минерализации начинается с появления низкомолекулярных белков, которые в протеиновом ядре содержат1-2цепигликозамингликанов (ГАГ). Низкомолекулярные протеогликаны могут вместе со специальным связывающим протеином благоприятно влиять на образование фибрилл коллагена I типа, повышая скорость их образования и увеличивая их толщину и длину. Костное минеральное вещество состоит главным образом из кальция(фосфата и карбоната). Наряду с ними содержатся натрий, калий, магний, свинец (хлориды и фториды), а также следы других ионов. Кальций и фосфат входят в состав гидроксилапатита или апатитоподобных структур. Причем гидроксильные и фосфатные ионы частично могут замещаться карбонатом. ПРОЦЕСС ОСТЕОИНТЕГРАЦИИ После нанесения травмы образуется первичный кровяной сгусток. Далее возникает асептическая воспалительная реакция, которая выражаетсяв пролиферации и дифференциации фагоцитов и недифференцированных мезенхимальных клеток из прилежащей надкостницы . Уровень и способность тканей к дифференциации зависит отстепени функционирования сосудов в зоне повреждения , которые обеспечивают достаточную оксигенацию вновь образованных костных структур . Ишимизированные участки, обедненные кислородом , способствуют пролиферации фиброзной и хрящевой тканей вместо минерализации костной матрицы . После формирования ложа имплантата в окружающих тканях образуется некротический слой (около 0,5 мм). Первоначальная губчатая кость образуется в связи с прорастанием сосудов со скоростью 0,5 ммв сутки. Таким образом, осуществляется первичный контакт кости с имплантатом. Следующая за этим процессом «фаза перестройки» приводит к образованию очагов резорбции. За ними следует зонас вновь дифференцированной кортикальной костной тканью, в которой образуются новые гаверсовы системы под влиянием дифференцированных остеобластов в зависимости от окружающих факторов (микродвижения на поверхности раздела имплантат/кость, местного кровоснабжения, системного и местного освобождения факторов роста). При созданных благоприятных условиях все пространство между костью и имплантатом замещается вновь образованной тканью, что обуславливает первичную стабильность имплантата. Термин «остеоинтеграция» введен шведским профессором П.-И.Бренемарком, который длительное время изучал микроциркуляцию в титановых оптических камерах. Под электронным микроскопом в месте контакта титановой камеры с окружающей костью наблюдалось формирование элементов соединительной ткани, происходящих из элементов крови. На этом растущем промежуточном слое можно было наблюдать образование плотного контакта между матрицей, созданной созревающими остеобластами, и поверхностью окисла титана. Данные исследователей показали, что между волокнами коллагена и титаном находились комплексы гликозамингликанов, которые, вероятно, способствуют минерализации и соединению кости с поверхностным окисным слоем титана. В то же время на поверхности титана происходят процессы растворения, и ионы металла находятся в окружающих тканях. Наблюдение ученых за имплантатом, находящимся в костной ткани в течение 6 лет, и изучение окисного слоя на его поверхности позволили сделать вывод о его утолщении по мере нахождения в костной ткани. Кроме того, в этом окисном слое были обнаружены ионы Са, Р и S. Это дало возможность предположить, что титан при взаимодействии с кровью и при последующем взаимодействии с костью реагирует на изменение внешней среды и является динамической системой. Был введен термин «прогрессирующая остеоинтеграция». Остеоинтеграция полноценна только тогда, когда соблюдаются многие условия или факторы: 1.Тщательное планирование лечения с использованием имплантатов. 2.Подбор адекватного материала, обладающего биоинертными, биотолерантными и по возможности остеоиндуктивными свойствами. 3.Поверхность имплантата должна быть химически чистой, разработанной, т.е. иметь определенный микрорельеф. 4.Для установки имплантата необходимо использовать соответствующее оборудование (специальную бормашину с системой охлаждения - физиодиспенсер, набор инструментов и фрез для формирования ложа имплантата). 5.Периоперационный контроль за состоянием пациента. 6.Рациональное протезирование. Морфологические особенности заживления костной раны Стадии заживления костной раны после постановки имплантатов соответствуют общим закономерностям остеоинтеграции кости челюстей при их переломах. Однако в ходе изучения морфогенеза на экспериментальных моделях и в организме больного было установлено, что приживление зубных имплантатов может иметь определенные особенности под влиянием свойств их материала, качеств кости, объема и специфики хирургических манипуляций, особенно с костью, а также под влиянием других факторов. Процесс заживления костной раны при зубной имплантации проходит три основные стадии: воспаления, пролиферации и заживления. Эти стадии могут сочетаться друг с другом, но в каждый период одна из них доминирует. Стадия воспаления начинается как ответ на оперативное вмешательство и нахождение в тканях чужеродного тела — имплантата. Обычно стадия воспаления продолжается до 10 дней, но иногда бывает более длительной. Развитие затяжной воспалительной реакции у отдельных пациентов может быть отражением индивидуального ответа тканей на имплантат как на инородное тело. На стадии воспаления в своем единстве проявляются основные феномены защитных реакций организма — альтерация, экссудация и пролиферация. Еще в 1985 г. P.-I. Branemark установил, что введенный в костное ложе имплантат вступает в контакт с клетками и внеклеточной жидкостью и в ответ на повреждение тканей развивается альтерация. Ее всегда следует рассматривать как диалектическое единство изменений, вызванных повреждением клеточных структур, и защитных ответных реакций клеток и организма в целом. Для альтерации в зоне постановки имплантата наиболее характерны разнообразные биохимические и морфологические изменения, протекающие главным образом в виде местных сосудистых реакций, некроза тканей в очаге поражения, а также реакции интегральных регуляторных систем всего организма. Главную роль в таких реакциях играют вазоактивные и хемотаксические вещества. Они обусловливают выраженность воспаления, зависящую от концентрации бактериальных гематтрактантов, попадающих во внутреннюю среду организма вместе с имплантатом. Развивающаяся в ответ клеточная кооперация и доминирующая в этом процессе роль макрофагов, активизация системы комплемента влияют на степень дистрофии клеток, зону некроза и высвобождение из погибших тканей биологически активных веществ. В силу этого во время альтерации наступают дистрофические изменения клеток и межклеточного вещества, которые ведут к быстрой адсорбции протеинов на поверхности имплантата. На фоне адсорбции протеинов плазмы крови происходит активизация и агрегация тромбоцитов, усиление коагуляции каскадного характера, выделение цитокинов, неспецифические и специфические клеточные реакции и реакции макрофагов. Однако установить ранние проявления процессов экссудации и альтерации трудно, так как уже в первые 5—7 дней могут доминировать репаративные процессы. Быстрая адсорбция протеинов на поверхности имплантата ведет к освобождению лизосомальны хпротео-, глико и липолитических ферментов. Они в свою очередь разрушают мембраны клеток на поверхности кости и межклеточные структуры (коллаген, протеогликаны и гликозаминогликаны). Ферментативная деградация протеинов вызывает структурные изменения, нарушение окислительно-восстановительных процессов. В результате этого накапливаются кислые продукты и жирные кислоты. Органические кислоты подвергаются окислению. Ферментативные процессы, ведущие к разрушению клеток и межуточного вещества, инициируют медиаторы воспаления. Одновременно возникает тканевый ацидоз и повышается осмотическое давление. Продукты, накапливающиеся в контактной зоне имплантат — кость, ведут к нарушениям гомеостаза, изменению проницаемости сосудов. Именно эти изменения свидетельствуют о переходе от одного феномена защитной реакции — альтерации к другому, который характеризуется экссудацией и клеточной инфильтрацией. Под воздействием медиаторов воспаления, тканевого ацидоза и повышения осмотического давления в зоне повреждения происходит раздражение чувствительных нервов. Это вызывает расширение артериол и развитие воспалительной артериальной гиперемии. Ускоряется кровоток, увеличивается артериальное давление в сосудах. Как феномен защитной реакции экссудация выражается в нарушении гемодинамики. Воспалительная артериальная гиперемия увеличивается. Нарушается отток крови и лимфы. Определенное влияние на этот процесс оказывают серотонин и гистамин. Замедление кровотока, усиление экссудации и увеличение внутритканевого давления способствуют активизации и агрегации тромбоцитов, что ведет к локальному тромбозу. Контакт элементов крови с инородным телом — имплантатом вызывает коагуляционные и цитокинетические изменения в тканях, что отчетливо наблюдалось при сканирующей электронной микроскопии. Коагуляция крови наиболее выражена в тех местах, где остаются пустые пространства между костью и имплантатом. Там отмечается скопление застойного кинина как результат нейромедиаторной вазодилатации и расширения сосудов, а также их повышенной проницаемости. Вследствие набухания эндотелиальных клеток нарушается их сократительный аппарат и они принимают круглую форму. Ацидоз ведет к повышению гидрофильности тканевых коллоидов, главным образом коллагеновых волокон, отчего стенки мелких сосудов ослабляются и кровоток в них замедляется. Это в свою очередь обусловливает развитие престаза и затем стаза; важную роль в этих процессах играют как тромбообразование, так и компрессия сосудов. Замедленный кровоток и стаз вызывают нарушения свертывания крови, что, с одной стороны, усиливает фибринолиз, а с другой — активизирует систему комплемента, вследствие чего плазменные медиаторы воспаления регулируют защитные функции организма. На воспалительной стадии приживления имплантата проявляется активация комплемента, в основном фракций С3 и С5, из которых последняя является сильнодействующим хемотаксическим фактором, опосредованно стимулирующим секрецию протеолитических ферментов нейтрофильных лейкоцитов. Фракции комплемента С3 и С5 и значительная активизация их при имплантации отражают физиологическую ответную реакцию системы комплемента на присутствие имплантата, которая может быть как положительной, так и отрицательной. Многие исследователи видят в данной реакции в одних случаях быстрое проявление неадекватной костной адаптации, в других — возникновение адекватной реакции через какое-то время, связывая это с последовательностью включения медиаторов в процесс воспаления. Экссудация и усиление отека в зоне повреждения, как правило, развиваются вследствие повышения проницаемости сосудов. Отек играет защитную роль, но прогрессивно увеличивает кровяное давление в венулах и осмотическое давление в околососудистых тканях. Это влияет на адгезию лейкоцитов к эндотелию и последующую миграцию их в очаг повреждения. Миграция лейкоцитов происходит как через межэндотелиальные щели, так и через цитоплазму самой эндотелиальной клетки. Чем сильнее выражено воспаление в области костного ложа и имплантата, тем выше скорость миграции и число лейкоцитов. Одновременно процесс миграции лейкоцитов в очаг воспаления и их активная работа ведут к сокращению срока их жизни и быстрой замене новыми. Движение лейкоцитов при воспалении всегда имеет четкую направленность в зону наиболее поврежденных тканей. При имплантации они сосредоточиваются в костно-мозговых пространствах, а также между костью и поверхностью имплантата. Степень воспалительной реакции при имплантации в значительной мере зависит от содержимого нейтрофильных лейкоцитов — азурофильных и специфических гранул. При благоприятном течении раневого процесса уже на 3-й день после постановки имплантата восстанавливается кровообращение в зоне хирургического повреждения тканей. Клетки костного мозга и иммунные клетки, обнаруженные на поверхности имплантатов, дают адекватную воспалительную реакцию. Метаболические изменения клеток (фибробластов, остеобластов и др.) приводят к относительной гипоксии. Усиленное кислородное голодание создается у краев раны. Состояние гипоксии в ране в комбинации с определенными биологически активными веществами, такими как фактор роста фибробластов и тромбоцитарный фактор роста, стимулируют процесс ан-гиогенеза. При этих процессах активизируется гидролиз ферментов — коллагенов и плазминогенов, что в свою очередь способствует растворению ба-зальных мембран сосудов. Последнее стимулирует развитие кровеносных сосудов, которые прогрессивно увеличиваются. Вначале воспалительные изменения клеток носят неспецифический характер и проявляются в виде миграции нейтрофильных лейкоцитов в зону поврежденной кости. Они активно фагоцитируют и переваривают остатки биологических веществ и клеток пораженных тканей. Уменьшается количество эозинофилов, которые также фагоцитируют, но уже вступая в контакт с комплексами антиген—антитело. Направленная миграция нейтрофильных лейкоцитов — хемотаксис — создает миграцию из внутрисосудистого пространства во внесосудистое, и их фагоцитарная деятельность стимулирует лимфообращение. Благодаря движению лимфы продукты нейтрофилов и эозинофилов эвакуируются из очага воспаления. Хемотаксис стимулирует миграцию лейкоцитов, ведет к концентрации их в зоне воспаления, создавая клеточный инфильтрат. Демаркационная зона воспаления проявляется формированием клеточного вала. Определенное влияние на этот процесс оказывает ряд компонентов плазмы крови (калликреин, активатор плазминогена, фибринпептид В, фракции комплемента) и клетки очага воспаления, прежде всего макрофаги. Если в очаге повреждения нет чужеродных антигенов, то возможно развитие асептического воспаления. На смену скоплениям лейкоцитов приходят измененные антигены и макрофаги, которые заполняют зону повреждения и активно ограничивают зону воспаления. На 3—4-й день после операции приходится пик миграции нейтрофильных лейкоцитов. Их фагоцитарное действие сопровождается выбросом в ткани лизосомальных гранул как медиаторов воспаления, а также выходом последних во внешнюю среду при разрушении фагоцитов. Нейтрофильные лейкоциты функционируют во взаимодействии с другими клетками — эозинофилами, лимфоцитами, моноцитами, лаброцитами. В стадии воспаления первая, барьерная, функция клеток сменяется специфическими реакциями, в которых главную роль играют лимфоциты и моноциты. Их действие начинается на 6— 7-й день после постановки имплантата. Вначале специфические иммунологические реакции идут параллельно с неспецифическими. Это выражается в том, что в раневом очаге увеличивается число Т- и В-клеток, Ts- и Тх-клеток, а также макрофагов. Все клеточные популяции реагируют на специфические антигенные субстанции, такие как материал зубной бляшки, представленный бактериями, и на резидентную микрофлору, попавшую в очаг воспаления в момент операции. Вступая в реакции с микробными агентами, иммунокомпетентные клетки и макрофаги выполняют регулирующую, воспалительную, цитотоксическую функции. Важную роль в воспалительных клеточных реакциях тканей на введенный имплантат играют макрофаги. Они появляются на 5—6-й день после операции, образуясь из циркулирующих в крови моноцитов. На отдельных участках поверхности имплантата, особенно в местах неплотного контакта с костью, располагается небольшое количество макрофагов. Вместе с тем иногда на этих участках сохраняется большое количество гигантских клеток. Сохранение таких клеток, как клетки инородных тел, может считаться отрицательным прогностическим признаком и свидетельствует о неудачной имплантации. Макрофаги в большинстве своем проявляют фагоцитарную активность, поглощая и переваривая различные биологические частицы. В экспериментах на животных обнаружены фагоцитированные фрагменты титана, хрома, молибдена, которые не вызвали атипичных изменений клеток, тогда как фагоцитированные частицы кобальта, никеля и сплав кобальта с хромом способствовали значительным изменениям клеток. Эти материалы также вызывали воспалительный ответ иммунной системы и других медиаторов воспаления: лизосомальных ферментов, простагландинов, системы комплемента, лимфокинеза. В конечном счете, реакцию макрофагов на имплантат можно считать основной функцией ткани. В завершающей стадии воспаления (стадии регенерации) может образоваться ткань, мало отличающаяся от исходной, или образоваться соединительная ткань более плотной структуры. Этот процесс наиболее выражен в кости, где происходит ее резорбция и реконструкция как ответ на введение имплантата и костная рецессия. Происходящие при этом неспецифические и специфические клеточные реакции всегда связаны как между собой, так и с лимфообращением и развитием лимфокинезов. Это обусловливает особенности иммунологической реакции в процессе приживления имплантата. Реконструкция кости и приживление имплантата зависят от реакции тромбоцитов, эндотелиальных клеток, макрофагов и остеобластов. В процессе заживления раны и формирования кости основное значение имеют плазма крови (инсулиноподобный фактор роста), остеобласты надкостницы. Состояние последних во многом зависит от содержания костных протеинов, определяющих костную индукцию и непосредственно реакцию костных клеток и клеток костного мозга, что обусловливает те или иные особенности реконструкции кости. Клетки костного мозга через гемопоэз регулируют воспалительные неспецифические и иммунные реакции, оказывая таким образом влияние на костную индукцию. Отдельные металлы могут нарушать этот процесс, приводя к металлодеструкции. Стадия пролиферации. Дифференцировка клеток и восстановление трофики ткани свидетельствует о начале заживления костной раны. Стадия пролиферации может продолжаться до 6 нед, а первые изменения могут появиться уже на 3—4-й день после операции. На стадии пролиферации происходят репаративные регенерационные процессы, которые выражаются в следующих клеточных реакциях: в новообразовании сосудов, дифференци-ровке и пролиферации клеток, производстве экстрацеллюлярного матрикса. Эти изменения обнаруживаются в большей степени на участке соединительной ткани, прилегающем к инородному телу (имплантату). В этой зоне продолжаются разнообразные клеточные изменения, проявляющиеся в виде как неспецифических, так и специфических реакций. Среди последних различают регулирование процессов адгезии, клеточную пролиферацию, образование новых сосудов, усиление синтеза коллагена, регулирование костного метаболизма и миграцию клеток в разных районах очага воспаления. В разнообразных тканевых процессах при приживлении имплантата велика роль региональных, в основном поднижнечелюстных, лимфатических узлов. Они обусловливают дифференцировку клеток вообще и эпителизацию раны в частности, в том числе рост эпителия и его ороговение (эпидермальный фактор роста). Большое значение имеет также реакция кроветворной системы, от которой зависит активизация гомеостаза. Развитие и анастомозирование сосудов ведет к восстановлению локальной микроциркуляции и улучшению кислородного обеспечения тканей. Затем происходит последующее прогрессирование кровеносных сосудов, т.е. доставка тканям питательных веществ и кислорода, что необходимо для репаративной регенерации соединительной ткани. Одновременно эти процессы ведут к снижению секреции факторов роста и развитию кровеносных сосудов. Из репаративных процессов на стадии пролиферации наблюдается реконструкция незрелых элементов соединительной ткани. Формирование молодой соединительной ткани проходит несколько этапов: новообразование молодой грануляционной ткани, формирование и перестройку рубцовой ткани. Отмечается последовательная реорганизация тканей: образование специфических клеточных популяций, органического матрикса и его минерализация. В процессе остеоинтеграции главную роль в формировании костной ткани играют остеобласты. Стадия регенерации. Динамика развития в контактной зоне кость — имплантат сосудистых реакций, за которыми следует образование костного вещества, доказана многими экспериментальными исследованиями с прижизненным наблюдением за приживлением имплантатов. Этот процесс, наблюдаемый уже в первую неделю после имплантации, достает пика на 3—4-й нед. Стабилизация длится 6—8 нед. В последующие недели и месяцы вокруг ненагруженных имплантатов медленно происходит некоторая конденсация кости и стабилизация ее кровеносной системы. В результате реорганизации тканей образуется костная мозоль, состоящая из волокнисто-хрящевой и костной ткани. По мнению Т. Alberkts-son, этот процесс подобен эндохрящевому окостенению. Центры образования кости располагаются в секреторных матричных везикулах, освобождающихся от остеобластов. Параллельно поверхности титанового имплантата формируются матрицы, богатые ионами фосфата и кальция, ферментами щелочной фосфатазы и фосфолипазы. Вблизи и непосредственно на поверхности имплантата отмечаются остеоциты. Кроме того, в этой же зоне находятся участки неминерализованной кости. Улучшение трофики и доставка кислорода стимулируют местную гемодинамику и циркуляцию крови, что способствует дальнейшей реконструкции кости. Новообразованная кость, как правило, не дифференцирована, но постепенно она реконструируется. На завершающем этапе происходит минерализация новообразованной костной ткани. Минерализации кости вокруг остеоинтегрированного имплантата всегда предшествует активизация энергетических процессов, которая связана как с васкуляризацией, так и с повышенным содержанием кислорода в тканях. Минерализация кости проявляется образованием основного вещества с хондроитинсульфатом и синтезом коллагена при помощи гликозаминогликанов, с накоплением кальция. Высвобождение неорганического фосфата и выпадение фосфата калия дает возможность формирования кости. В других случаях костная минерализация может выражаться в кальцификации хряща и образовании незрелой кости или минерализации пластинчатой кости. Кальцификация хряща и образование крупнопетлистой кости происходит через матричные везикулы, а в пластинчатой кости отложение кристаллов выявляется в коллагеновых волокнах и межуточном веществе. В кристаллизации принимают участие коллагены, фосфолипиды и их фосфатная группа, в минерализации — такие хилаты, как хондроитинсульфат, кальцийсвязывающие белки — остеокальцин и костный протеин 2, карбонат кальция. Начавшийся еще в стадии пролиферации процесс замены некротизированной в результате остеотомии новой костной тканью завершается на стадии реконструкции. На этом этапе судьба новообразованной кости во многом зависит от нагрузки на имплантат. В многочисленных исследованиях раскрываются особенности патоморфоза тканей при имплантации в зависимости от разных нагрузок, хотя плотный контакт кости с имплантатом имеет место как при нагрузке, так и в ее отсутствие и гистологически в том и другом случае кость по своей структуре однотипна. Находящаяся в контакте с имплантатом без нагрузки кость отличается большим числом костномозговых пространств и питательных каналов губчатого вещества. Нагруженные же имплантаты окружены более плотно сформированной костью. Только на отдельных участках вблизи питательных каналов кости обнаруживаются бескостные зоны. Это подтверждено гистологически и морфометрически в экспериментах на обезьянах. Однако и у человека на удаленном винтовом имплантате, подвергавшемся нагрузке в течение 7 лет, также отмечено наличие компактной ламеллярной кости с большим количеством костных канальцев и остеонов. При морфометрическом анализе удаленного имплантата установлено, что 86,69 % его поверхности находилось в прямом контакте с костью. Наиболее утолщенные участки новообразованной компактной кости располагались на вершинах витков резьбы. Минерализованную кость от поверхности имплантата отделял очень тонкий слой неминерализованного материала. Такой же материал выявлен на границах остеоидной ткани. В отличие от таких результатов наблюдения при экспериментальном изучении костного морфогенеза с имплантатами "IMZ" в период от 2 до 24 нед обнаружено не зависящее от нагрузки постоянное увеличение плотного соединения кости с поверхностью имплантата. По мнению многих авторов, последний факт соответствует общим положениям о реконструкции кости при заживлении переломов челюсти. В результате дифференцировки мезенхимальных клеток в фибробласты и остеобласты и цитогенеза из тромбоцитов, макрофагов и других клеток образуются внеклеточные матрицы, состоящие из коллагена, гликопротеинов, гликолипидов, гликозаминогликанов и других ферментов. Незрелые матрицы кости подвергаются реконструкции, что вызвано резорбцией и депонированием кости. Реконструкция незрелых матриц кости, связанных с резорбцией и депонированием кости, происходит в ответ на наличие в тканях имплантата и на нагрузку, которую он несет, а также на физиологическую костную рецессию. Такую резорбцию кости ряд исследователей расценивают как показатель приживления имплантата. Другие же в этом такого признака не видят. Тем не менее при хорошей адаптации имплантата в стадии регенерации костного ложа мезенхимальные клетки на его поверхности дифференцируются и заполняют участки поврежденной или неповрежденной кости. Одновременность процессов резорбции и оссификации во вновь образованной композиционной ткани выявил в эксперименте на животных G. Wahl. При сцинтиграфии было установлено непрерывное снижение костного метаболизма, а через 12 нед после имплантации отмечено развитие равновесия между резорбцией и построением кости в контактной зоне имплантат — кость. В результате этих изменений происходило полное костное ремоделирование и зона новой незрелой кости интимно связывалась с окружающей губчатой костью. На завершающем этапе новообразованная костная ткань минерализовалась. Процесс минерализации кости протекал со скоростью около 1 мм в сутки. Морфологические особенности контактной зоны кость—имплантат Остеоинтеграция металлических имплантатов включает формирование ацеллюлярного аморфного контактного слоя между имплантатом и живой костью, т.е. между аллопластической поверхностью имплантата и минерализованной костной матрицей. Гетерогенность этого слоя может отражать многоступенчатые стадии непрерывного процесса ремоделирования ткани. В экспериментах на крысах К. Murai и соавт., S. Hollister и соавт. показали, что у молодых особей образуется больше костной ткани, соединение имплантата с костью представляет собой толстый аморфный слой; у взрослых особей на поверхности имплантата отмечалась хорошо развитая соединительная ткань. Варианты образованного контактного слоя, помимо отражения его возраста, могут нести на себе отпечаток возраста всего организма. На ультраструктурном уровне контактный слой отличается от минерализованной костной матрицы или остеоидной ткани. Хотя биохимически данный слой детально не изучен, гистологические наблюдения invivo и invitro показывают, что он богат протеогликанами и гликопротеинами. Это подтвердили результаты иммунологических проб. Наличие остеопротеина и α2НS-гликопротеина стало свидетельством участия протеинов остеобластной матрицы в образовании контактного слоя. Считается, что это зона, богатая гликопротеином бесколлагенной клеточной матрицы, напоминающей линии костного цемента. Поскольку некальцифицированный район в контактной зоне связывают с процессами деминерализации или со сравнительной незрелостью контактного слоя, есть основание предположить, что между формирующейся костью и титаном, а также гидроксиапатитным покрытием имплантата имеется органический контактный слой, частично образованный из экстрацеллюлярного матрикса, созданного остеобластами. Такой контактный слой у имплантатов с гидроксиапатитным покрытием может иметь одинаковую аморфную зону толщиной от 200 до 1000 нм, отделяющую поверхность имплантата от коллагеновой матрицы. Структурные различия в композиции контактного слоя титана и гидроксиапатитного покрытия можно объяснить наличием у последнего сравнительно высокой реактивности. К одним из главных феноменов образования контактного слоя кость — имплантат относится процесс неоваскуляризации, который является важнейшей детерминантой полного формирования кости после хирургических манипуляций. Формирование новых сосудов происходит от границ хирургического вмешательства к телу имплантата внутри неплотной соединительной ткани, образующейся вначале в микропромежутках его поверхности. Новые сосуды сохраняются и не резорбируются в процессе костной регенерации. В то же время, если условий для неоваскуляризации нет, формирование кости может значительно задержаться. Важным вопросом остеоинтеграции является быстрое формирование сетчатой кости после постановки имплантата. Процесс минерализации требует достаточного количества клеток и высокого уровня биосинтетической активности для формирования протеиновой матрицы. В результате исследований invitro и invivo установлено, что грубые поверхности имплантатов способствуют созданию остеобластной матрицы, клеточному делению и в некоторой степени изменению фенотипа. Определенную роль в клеточных взаимодействиях на поверхности имплантатов играют макрофаги. Они прикрепляются к имплантатам из титана как с покрытием из гидроксиапатита, так и без такового. В контексте остеоинтеграции вопросу контроля одноядерных клеток при формировании и ремоделировании кости должного внимания еще не уделялось, возможно, потому, что в основном исследователей интересует та роль, которую играют макрофаги в качестве промежуточного звена при образовании фиброзной ткани. Вопрос о завершении остеоинтеграции сложный, точных и конкретных критериев еще не выработано. Обязательным условием приживления имплантата является прикрепление к его поверхности остеобластов или прародительских костных клеток. Процесс остеоинтеграции развивается быстрее всего в первые 12 нед после постановки имплантата. Именно в этот период вместо "плетеной" кости может образоваться соединительная ткань. На этом этапе процесс остеоинтеграции идет быстрее у имплантатов с гидроксиапатитным покрытием, чем без такого покрытия. Как показали эксперименты, приживление имплантата и его закрепление в кости продолжаются 1 год, а у людей — по крайней мере 3 года. Формирование и реконструкция кости служат как развитию, так и сохранению остеоинтеграции. О возможном состоянии контактного слоя через 7 лет функционирования имплантата из титана может свидетельствовать гистологический анализ, проведенный после его удаления. Близко к его поверхности обнаружена компактная ламинарная кость со множеством костных канальцев и остеонов. Она оказалась особенно утолщенной вокруг ребер резьбы. При сильном увеличении между костью и титаном наблюдался небольшой полый промежуток. С помощью гистохимической реакции удалось обнаружить, что минерализованная кость отделена от поверхности металла очень тонким слоем неминерализованного, окрашенного в красный цвет материала. Окраска была такой же, как и у остеоидной ткани: тонких пограничных слоев остеоидной ткани и костных клеток (остеоциты). Даже при удалении скомпрометированного имплантата вследствие перелома опорной головки обнаружено плотное соединение конструкции с костью. Последняя относилась к спонгиозному типу, а также в отдельных биоптатах отмечались дистрофические явления в костных структурах. Значительно расходятся мнения о том, каким может быть процент прямого контакта кости с площадью имплантата при завершении остеоинтеграции, поскольку сведения о максимальных размерах контакта противоречивы. В одних случаях при гидроксиапатитном покрытии сообщалось о 100 % контакте, в других экспериментах этот показатель не превышал 65-85 %. Морфологические особенности заживления слизистой оболочки и надкостницы Одновременно с процессами, происходящими при зубной имплантации в кости, возникают изменения в слизистой оболочке и надкостнице в зоне, прилегающей к имплантату и создающей механический барьер между ним и полостью рта. Даже при ранней нагрузке под мукопериостом образуется замыкательная пластинка. Адаптация мягкой ткани неразрывно связана с образованием новой кости. Морфологическими исследованиями установлено, что чем больше площадь прикрепления новой костной ткани к имплантату и ее минерализация, тем адекватнее мягкотканное соединение имплантата. Напротив, недостаточность слизисто-надкостничного замка отрицательно влияет на плотное соединение имплантата с костью и может даже отразиться на качестве новообразованной кости и ее минерализации. Процессы и факторы заживления мягких тканей. Сосудистые и клеточные peaкции. При зубной имплантации на участках мягких тканей, как и в кости, можно наблюдать выраженное воспаление, увеличение количества и концентрации сосудов. При экспериментах отмечено увеличение количества капилляров с 33,5 до 1637,7 на 1 мм2 слизистой оболочки лоскута соответственно участку остеотомии. Первоначальная сосудистая реакция сменяется тромбоцитарной, а также агрегацией, активизацией и каскадом свертывания крови. Одновременно начинают развиваться неспецифические клеточные реакции, преимущественно за счет нейтрофильных лейкоцитов. Возникают также специфические реакции в виде увеличения числа лимфоцитов и макрофагов. Наблюдается цитокинез, играющий важную роль в фазе заживления мягких тканей — периоста и слизистой оболочки соответственно костному сегменту, в который погружен имплантат. Воспалительные изменения в мягких тканях наблюдаются примерно 10 дней, затем наступает фаза пролиферации. По сути она однотипна с теми изменениями, которые отмечались при заживлении кости после постановки имплантата. Наблюдаются процессы неоваскуляризации, дифференцировки, пролиферации и активизации клеток с последующим образованием незрелого коллагена, эластина и базовой субстанции. В фазе активной пролиферации эпителиальных и соединительных клеток начинается заживление операционной раны. Процесс выражается в миграции и пролиферации эпителиальных клеток в течение первых 24—48 ч после операции. Стимулом к миграции клеток служит торможение и снижение локального уровня ингибиторов роста кейлонов. Уже в первые 23 ч после операции начинаются закрытие раны и отграничение внутренних отделов от полости рта. Эпителиальное соединение по периметру имплантата образуется гемодесмосомами подобно ткани периодонта. На стадии пролиферации слизистой оболочки и надкостницы главную роль играют фибробласты. Их пролиферация и дифференциация возникают под влиянием гипоксии и выделения цитокинов после изменений тромбоцитов и макрофагов в предыдущей фазе воспаления. Неоваскуляризация стимулирует пролиферацию фибробластов. В результате этого образуются фибробласты базовой субстанции, коллаген и эластичные волокна. Базовая субстанция состоит из протеогликанов и гликопротеинов. Последние, являясь адгезивными микромолекулами, взаимодействуют с клеточными элементами, внеклеточными матрицами и стимулируют адгезивность, миграцию, пролиферацию клеток, а также генное регулирование. Протеогликаны, удерживая воду, образуют громоздкие гели, заполняющие внеклеточное пространство. Концентрация одной из составных частей полигликанов, гиалуроновой кислоты, понижается к 5-му дню после операции, а содержание других компонентов, наоборот, увеличиваются. Это ведет к определенной кооперативной работе всех элементов базовой субстанции, что обусловливает развитие коллагеновых структур и поддержание клеточной функции. Среди них коллаген и эластические волокна наблюдаются уже на 4—6-й день, тогда как первые свидетельства образования проколлагена обнаруживаются еще раньше — на 2—4-й день после операции. Последующие его преобразования ведут к формированию коллагеновых фибрилл, которые, соединяясь, образуют волокна. Одновременно из фибробластов формируются эластичные волокна, обладающие значительной упругостью и растяжимостью. Фибробласты, эпителиальные клетки, нейтрофилы и макрофаги секретируют коллагеназы, расщепляющие коллаген. В фазе заживления раны эти процессы достигают пика на 16—17-й лень. Это обусловливает прочность тканей. В тех же временных рамках происходит эпителизация раны, которая обеспечивается ростом сосудов и агрегацией протеинов. Высказывается мнение, что последующие процессы в прилегающей к имплантату слизистой оболочке зависят от того, на сколько хирургических этапов делится зубная имплантация. При одноэтапной процедуре после фазы заживления наблюдается хорошо выраженная зона соединительной ткани между надальвеолярной частью и маргинальным отделом. У погружных имплантатов Branemark соединительная ткань образуется после второго хирургического этапа и отличается большим количеством коллагеновых волокон во внутренней зоне и более рыхлым, богатым сосудами наружным слоем. Сам же процесс адаптации мягкой ткани и остеоинтеграции у погружных и непогружных имплантатов протекает, как показали эксперименты, практически одинаково. Однако при гистологическом исследовании, проведенном через 6 мес после постановки имплантатов, обнаружены ограниченная аккумуляция воспалительных клеток у погружных и постоянный инфильтрат воспалительных клеток у непогружных имплантатов. Исследования такого инфильтрата показали, что от гребня кости его отделяла зона нормальной соединительной ткани шириной 0,8 мм. Потеря гребня кости при эксперименте, отмеченная гистологически и рентгенографически, составила около 2,4 мм. Высота слизистой оболочки вокруг имплантатов колебалась от 3,5 до 3,9 мм. Сам костный гребень располагался на 1,1 — 1,5 мм внутрь от места присоединения опорной головки и апикальной границы стыкового эпителия, причем 2,1 — 2,4 мм последнего были обращены к имплантату. В третьей фазе, фазе окончательного заживления раны, в течение 3—9 нед после операции происходит дифференциация депонированного коллагена. При этом фибробласты заменяют коллаген, повышая прочность ткани. Образование эпителиального соединения. В морфогенезе мягких тканей при зубной имплантации решающим является заживление той части слизистой оболочки и надкостницы, которая имеет непосредственный контакт с имплантатом. Самым важным считается образование замка из соединительной ткани, отделяющего внутреннюю среду раны от полости рта. Высказывается мнение, что образующаяся таким путем эпителиальная и соединительная ткань аналогична тканям десны и периоста у природных зубов. Как показали ультраструктурные исследования контактирующих с имплантатом мягких тканей, переходный эпителий прикрепляется к поверхности имплантата в виде тонкой пластинки, состоящей из цепочек фибронектина. Ранее в этой зоне уже было отмечено наличие базальной пластины гемодесмосомы, подобной той, которую имеют естественные зубы. Аналогично участкам аморфного вещества между имплантатом и костью у мягких тканей имеется аморфный слой, толщина которого составляет 20 мкм. В то же время в ходе наблюдений за приживлением имплантатов "Branemark" лишь у 67 % из них отмечено вестибулярно и у 51 % — орально образование соединительнотканного замка, но нигде не выявлено гемодесмальное соединение. Последнее считается возможным только при использовании керамических имплантатов в связи с наличием на их поверхности тонкого слоя аморфного гликопротеина. Развитие соединительной ткани происходит по периметру имплантата. Обнаружена разница в направлении коллагеновых волокон у имплантатов дляодно- и двухэтапного применения. Если у первых, в том числе плоских, имплантатов волокна идут горизонтально, создавая подобие круговой связки, то у погружных имплантатов в форме корня зуба коллагеновые волокна имеют продольное направление, располагаясь вдоль их тела. Однако во всех случаях строение и расположение волокон вокруг имплантатов отличаются от ориентации волокон периодонта у здоровых природных зубов, амелобласты и эпителиальные клетки которых имеют прикрепление к зубной эмали и цементу толщиной 40 нм. Внутрикостные имплантаты такого соединения не имеют. У шейки имплантата ряд исследователей наблюдали барьер в виде фиброзной ткани, причем часть волокон отмечалась в зоне контакта имплантата и кости. В других случаях при постановке имплантатов с гидроксиапатитным покрытием обнаружено образование коллагеновых волокон перпендикулярно поверхности имплантатов с последующим образованием остеоидной ткани. Этому может способствовать изменение поверхности имплантата. Так, у хорошо отполированной шейки образуется плотное соединение, особенно в случае напыления титана. Обычно толщина соединения имплантата и мягкой ткани составляет 1 мм, что соизмеримо с природными зубами. В то же время характер соединения с костями челюстей у имплантатов и природных зубов принципиально разные, поэтому глубина карманов не может быть ориентиром соединения. По ней можно устанавливать лишь толщину слизистой оболочки. Тем не менее возникшее соединение играет роль замка и препятствует прорастанию эпителия внутрь кости, предохраняя таким образом десну от рецессии. Ряд исследователей придерживаются мнения, что характер тканого соединения зависит от типа имплантата. Однако исследования слизистого замка, образованного вокруг тела имплантатов "Branemark", "Astra" и "ITI" дляодно- и двухэтапного лечения, показали, что он состоял из компонентов эпителиальной и соединительной ткани, его размеры и композиция у всех систем имплантатов были идентичными. Количество кортикальной кости в контактной зоне тоже было почти идентичным. При изучении реакции мягких тканей на различные материалы имплантатов проведены тщательные сравнительные гистологические исследования здоровой слизистой оболочки, прилегавшей к титановым имплантатам Branemark и монокристаллическим сапфировым имплантатам. Для биопсии брали участки кератинизированного внешнего эпителия у имплантатов и внутреннего, некератинизированного. Оба вида эпителия иммунореактивны к цитокератину, который использовался как иммуногистохимический маркер вместе с протеином S-100, фактором VIII и KPI. Внутренний эпителий имплантатов заканчивался на стыковом эпителии и апикально имел толщину всего в несколько клеточных слоев. Клетки, прилегавшие к имплантатам, имели уплотненную цитоплазму, напоминавшую гемидесмосому. В подлежащей соединительной ткани, богатой фибробластами и кровеносными сосудами, иммунореактивными к фактору VIII, пучки коллагена располагались в разных направлениях. Структуры нервов, иммунореактивные к S-100, чаще отмечались под внешним, чем под внутренним, эпителием имплантата. Инфильтраты воспалительных клеток (некоторые из них KPI-позитивные) наблюдались в апикальных частях внутреннего эпителия имплантатов. Позитивные клетки Лангерганса S-100 отмечались главным образом внутри наружного эпителия имплантатов. Качественных структурных различий мягкой ткани, прилегавшей ко всем исследованным имплантатам, не обнаружено. Большое значение соединения мягкой ткани с имплантатом для успеха имплантации требует повышенного внимания к адекватности хирургических манипуляций на мягкой ткани, уходу за раной, нагрузке на имплантат и гигиене полости рта. Разрушение тканевого замка может привести к образованию зубной бляшки и воспалительным явлениям, способным вызвать осложнение — периимплантит, который развивается как заболевание пародонта. По этой причине рекомендуется увеличивать количество мягкой ткани у шейки имплантата, ставить имплантаты на участки плотной слизистой оболочки, использовать заменители кости. Бесклеточный дермальный матрикс ("Alloderm") стимулирует рост коллагена, эластических волокон и прорастание эпителия от материнской почвы. При необходимости рекомендуется использовать направленную регенерацию с помощью рассасывающихся и нерассасывающихся мембран. |