1. Классификация микроорганизмов по морфологическим свойствам, и их расположение в мазке. Привести примеры. Шаровидныебактери и
 Скачать 265.13 Kb.
|
|
По спектру действия антибиотики делятся: Антибактериальные. Бывают узкого и широкого спектра. Противогрибковые Антипротозойные Антивирусные Противоопухолевые По типу действия различают: Микробоцидные, т.е. губительно действующие на микробы за счет необратимых повреждений Микробостатические, т.е ингибирующие рост и размножение микробов 3.Ингибиторы синтеза нуклеиновых кислот. Нарушение синтеза и ф-ий нуклеиновых к-т достигается 3-мя способами: 1) ингибирование синтеза предшественников пурин-пиримидиновых оснований(сульфаниламиды), 2)подавление репликаций и ф-ий ДНК и 3)ингибирование РНК-полимеразы. В большинстве своем в эту группу входят синтетические препараты, из антибиотиков подобным механизмом действия обладают только рифамицины, которые присоединяются к РНК-полимеразе и блокируют синтез мРНК. Сульфаниламиды- структурные аналоги парааминобензойной к-ты- могут конкурентно связываться и ингибировать фермент, который нужен для перевода парааминобензойной к-ты в фолиевую к-ту- предшественник пуриновых и пиримидиновых оснований. Эти основания необходимы для синтеза нуклеиновых к-т. 9.Принципы микрбиологического контроля лекарственных препаратов Обсеменение ЛС возможно на всех этапах его заготовки и при хранении. Размножившееся микроорганизмы вызывают изменение фармакологических свойств препаратов, полученных из лекарственных растений. ЛП, не требующие стерилизации, обычно содержат микроорганизмы. Поэтому их испытывают на микробиологическую чистоту: проводят количественное определение жизнеспособных бактерий и грибов, также выделяют организмы, которые должны присутствовать в нестерильных ЛС. Методы определения стерильности: • Мембранная фильтрация– наиболее предпочтительный метод, если испытуемый препарат фильтруется; Принцип метода: • Образец фильтруют через мембранный фильтр, который задерживает присутствующие микроорганизмы. • Помещают фильтр с задержанными на нем микроорганизмами в питательную среду и инкубируют. • Если все условия проведения анализа соблюдены, то есть правильно выбраны материал, структура и размер пор фильтра, условия проведения фильтрования, состав питательной среды, температура и время инкубирования, то микроорганизмы быстро размножаются и образуют визуально обнаруживаемый рост (помутнение среды). • Метод прямого посева. Методы определения микробиологической чистоты нестерильных ЛС: 1.Метод высева на чашки Петри с питательной средой: - метод глубинного посева - метод поверхностного посева 2. Метод мембранной фильтрации 3. Метод наиболее вероятного числа (наименее точный метод, используется для продуктов с очень низкой бионагрузкой). Принцип: методы основаны на посеве на/в питательные среды определенного количества образца препарата, инкубировании, подсчете выросших колоний и выявлении специфических микроорганизмов, интерпретации полученных результатов. По ТУ (техническое условие) в препаратах, применяемых через рот, допускается содержание в 1,0 г 1000 бактерий из них 100 клеток дрожжевых и плесневых грибов. В препаратах, предназначенных для введения в полость уха, носа, интравагинально, допускается содержание в 1,0 г 100 бактерий, в том числе и грибов. Кроме микробиологического контроля чистоты препаратов по микробному числу, не разрешено содержание в них ряда микроорганизмов, что контролируется высевами на специальные среды. - для обнаружения анаэробных микроорганизмов делают посев 1,0 мл разведенного препарата на тиогликолевую среду. - для выделения бактерий семейства Enterobacteriaceae (кишечная палочка, сальмонелла, протей) 10,0 мл препарата вносят в накопительные среды, затем делают высев на Эндо и Висмут-сульфитный агар. - для определения Pseudomonas aеruginosa (палочка синезеленого гноя). 10,0 мл вносят в МПБ с глицерином, инкубируют 48 часов и делают высев на МПА с глицерином или глюкозой. - для обнаружения Staph. aureus. 10,0 мл препарата засевают сначала в мясо-пептонный бульон (МПБ) с маннитом, затем делают высев на МПА с маннитом или ЖСА. 10.Источники микробной контоминации лекарственных препаратов При всем многообразии технологических схем получения лекарственных средств основными источниками попадания микроорганизмов в сферу производства являются: •Технологическое оборудование, коммуникации; •Сырье и вспомогательные материалы на всех стадиях производства, хранения и транспортировки; •Упаковочные материалы; •Вода, используемая в производстве; •Технологический и вентиляционный воздух; •Персонал, занятый в производстве; •Посевной материал, питательная среда, добавки, пеногасители и др. (для продуктов, получаемых с использованием процессов микробного синтеза и биотехнологических подходов) 11. Контроль микробиологической безопасности лекарственных средств и изделий медицинского назначения, изготовляемые в аптечных условиях 1. Объектами бактериологического контроля являются: 1) вода очищенная; 2) растворы для инъекций до и после стерилизации; 3) глазные капли после стерилизации и приготовленные в асептических условиях на стерильных основах; 4) сухие лекарственные вещества, используемые для приготовления растворов для инъекций и глазных капель; 5) аптечная посуда, пробки, прокладки, прочие вспомогательные материалы; 6) инвентарь, оборудование, руки и санитарная одежда персонала; 7) воздух. 2. Для отбора проб используется стерильная посуда бактериологической лаборатории, режим стерилизации которой регулярно контролируется (от двух до пяти единиц из каждой партии проверяется на стерильность). 3. Вода очищенная, используемая для приготовления лекарственных средств (кроме лекарственных форм для инъекций и глазных капель) отбирается в количестве не менее 500 мл (см3) в стерильную посуду. При наличии в аптеке трубопровода для воды очищенной, отбор проб осуществляют из бюретки над столом ассистента и провизора-технолога. При этом конец бюретки предварительно обжигают ватой (факелом), смоченной спиртом. При отсутствии трубопровода для воды очищенной, а также при неудовлетворительных результатах отбор проб воды очищенной проводят из приемника. Для оценки санитарного состояния трубопровода отбор проб воды очищенной можно производить непосредственно из трубопровода (в любом участке трубопровода). 4. Вода очищенная, используемая для приготовления растворов для инъекций и глазных капель, отбирается в количестве 15-20 см3 в стерильную посуду непосредственно из емкостей, в которые осуществлялась дистилляция. 5. Растворы для инъекций отбираются во время их приготовления или не позднее полутора часов изготовления в той же посуде, в которой они будут подвергнуты стерилизации и доставляются в лабораторию для бактериологического контроля. 6. Стерильные растворы для инъекций и глазные капли, а также глазные капли приготовленные асептическим способом, доставляют в аптечной упаковке. Глазные капли из торгового зала аптек доставляют непосредственно в аптечной упаковке, отпускаемой в медицинские организации и населению. Целесообразно отбирать глазные капли трех-четырех наименований, как со стола ассистента, так и с витрины. 7. Отбор сухих лекарственных веществ (по показаниям) проводят стерильными ложками в стерильную посуду в количестве тридцати-пятидесяти граммов; если вещество в таблетках – отбор производят фламбированным пинцетом также в количестве тридцати-пятидесяти граммов. 8. Аптечную посуду, приготовленную для розлива растворов для инъекций и глазных капель, отбирают в момент их приготовления, в количестве трех штук одинаковой емкости. Флаконы доставляют в лабораторию в укупоренном виде, используя при этом аптечные пробки и прокладки (для отпуска лекарственных средств). 9. Пробки (корковые, полиэтиленовые, резиновые) и прокладки отбирают в момент приготовления растворов для инъекций и глазных капель пинцетом после фламбирования и помещают по пять штук в широкогорлую стерильную посуду (колбы, банки) с последующим закрытием стерильными ватно-марлевыми пробками и бумажными колпачками. 10. Фильтровальные воронки, мерные колбы, цилиндры, используемые для приготовления растворов для инъекций, контролируют путем ополаскивания их 10 см3 стерильной водопроводной воды, пробирки со смывной жидкостью доставляют в лабораторию для исследования. 11. Используемые в аптеках пипетки прополаскивают несколько раз в пробирке, содержащей 10 см стерильной водопроводной воды, пробирки со смывной жидкостью доставляют в лабораторию для исследований. 12. Смывы с инвентаря, оборудования, рук и санитарной одежды персонала аптеки производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки с пяти миллилитрами стерильной однопроцентной пептонной водой. Тампон увлажняют питательной средой, делают смыв с объекта и помещают в ту же пробирку, погружая в пептонную воду. 13.Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью приборов для бактериологического анализа воздуха. Скорость протягивания воздуха должна составлять двадцать пять литров в минуту, количество пропущенного воздуха сто литров для определения общего количества бактерий, двести пятьдесят литров для определения золотистого стафилококка и двести пятьдесят литров для определения плесневых и дрожжевых грибов. 14.Для определения общего количества бактерий, отбор проб производят на двухпроцентный питательный агар, для определения золотистого стафилококка на желточно-солевой агар, для определения плесневых и дрожжевых грибов на среду Сабуро; питательные среды для отбора проб воздуха аспирационным методом разливают в чашки по двенадцать-пятнадцать миллилитров. В исключительных случаях отбор проб воздуха производственных помещений аптеки проводится седиментационным методом. При этом чашки Петри с мясопептонным агаром устанавливают в открытом виде на десять минут, желточно-солевым агаром, средой Сабуро на двадцать пять минут. 15. Критерии оценки микробной обсемененности воздуха помещений объектов фармацевтической деятельности. Таблица 16. В смывах не допускаются бактерии группы кишечных палочек, золотистый стафилококк, синегнойная палочка. 17. Во всех исследуемых пробах из аптеки не допускается наличие синегнойной палочки. 18. Бактерии рода Протеус не допускаются в исследуемых объемах анализируемых проб. 19. Нормативы предельно допустимого содержания непатогенных микроорганизмов в лекарственных формах, изготовляемых в аптеках: 12. Механизмы действия антибиотиков По механизму действия различают : Ингибиторы синтеза клеточной стенки: Синтез предшественников пептидоглиана начинается в цитоплазме. Затем они транспортируются через ЦПМ, где происходит объединение в гликопептидные цепи. Этот этап совершается при участии белков-ферментов пенициллинсвязывающие белки. Ингибирование пенициллинсвязывающих белков приводит к накоплению предшественников пиптидоглиана в бактериальной клетке. Затем большое количество предшественников запускает аутолические ферменты в бактериальной клетке и происходит лизис бактериальной клетки. Ингибиторы синтеза белка: Аминогликозиды и тетрациклины связываются с 30S-субъединицей, блокируя процесс еще до начала синтеза белка. Макролиды, хлорамфеникол, линкозамиды связываются с 50S-субъединицей. Это обрывает удлинение пептидных цепей. Ингибиторы синтеза нуклеиновых кислот: 3 способа: ингибирование синтеза предшественников пурин-пиримидиновых оснований, подавление репликации и ф-ии ДНК, ингибирование РНК-полимеразы. Ингибиторы функций ЦПМ: Полипептиды лизируют клетки, повреждая фосфолипиды клеточных мембран (в настоящее время не используются). Противогрибковые повреждают эргостеролы и ингибируют один из ключевых ферментов биосинтеза эргостеролов (имидазолы). Антибиотики связываются с рибосомой и ингибируют, т.е. замедляют или предотвращают отдельные реакции, которые катализируются рибосомой. Они могут конкурировать с сайтом связывания для естественного лиганда или блокировать определенную конформацию рибосомы. Отдельные структурные элементы рибосомы обладают конформационной подвижностью, которая позволяет ей взаимодействовать с нативными субстратами и обеспечивать сложный процесс биосинтеза белка. Но отдельные антибиотики могут ингибировать те или иные реакции. За счет этого синтез белка останавливается или начинает происходить с ошибками. В результате продуцируются неправильные белки, и это ведет к гибели бактериальной клетки. 13. Методы выявления антибиотикочувствительности Методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам делятся на 2 группы: диффузионные и методы разведения. Определение чувствительности бактерий к антибиотикам: 1.диффузионные методы: -с использованием дисков с антибиотиками -с помощью Е-тестов 2.методы разведения -разведение в жидкой питательной среде (бульоне) -разведение в агаре При определении чувствительности диско-диффузионным методом на поверхность агара в чашке Петри наносят бактериальную суспензию определенной плотности и затем помещают диски, содержащие определенное количество антибиотика. Диффузия антибиотика в агар приводит к формированию зоны подавления роста микроорганизмов вокруг дисков. После инкубации чашек в термостате в течение 12ч учитывают результат путем измерения диаметра зоны вокруг диска в миллиметрах. Определение чувствительности микроорганизма с помощью Е-теста проводится аналогично тестированию диско-диффузионным методом. Отличие- вместо диска с антибиотиком используют полоску Е-теста, содержащую градиент концентраций антибиотика от максимальной к минимальной. В месте пересечения эллипсовидной зоны подавления роста с полоской Е-теста получают значение минимальной подавляющей концентрации. Методы разведения- использование двойных последовательных разведений концентраций антибиотика от максимальной к минимальной. При этом антибиотик в различных концентрациях вносят в жидкую питательную среду или в агар. Затем бактериальную суспензию определенной плотности, помещают в бульон с антибиотиком или на поверхность агара в чашке. После инкубации в течение ночи проводят учет полученных результатов. Наличие роста микроорганизма в бульоне или на поверхности агара свидетельствует о том, что данная концентрация антибиотика недостаточна, чтобы подавить его жизнеспособность. По мере увеличения концентрации антибиотика рост микроорганизма ухудшается. Первую наименьшую концентрацию антибиотика, где визуально не определяется бактериальный рост принято считать минимальной подавляющей концентрацией. 14.Микрофлора производственных и медицинских объектов Микроорганизмы различных производств (текстильные, биотехнологические, пищевые, металлообрабаотывающие, хим предприятия) составляют многочисленные микробиоценозы, обнаруживаемые в сырье, полуфабрикатах, на изделиях, оборудовании и тд. Микрофлора мб представлена микроорганизмами почвы, растений, выделений человека и животных. В формировании микрофлоры может принимать участие патогенная и условно-патогенная микрофлора. Основными источниками патогенных микроорганизмов являются выделения человека. Некоторые возбудители (легионеллы, аэромонады, псевдомонады, клебсиеллы, протеи) размножаются в увлажненных участках (душевые, ванные, раковины). Возбудители кори, коклюша могут сохраняться в течение нескольких минут, возбудители туберкулеза - месяцами, а споры палочки сибирской язвы - годами. При санитарно-микробиологических исследованиях определяют бактериологическую загрязненность рук работающего персонала и предметов окружающей обстановки путем исследования микрофлоры смывов. В смывах определяют: общее микробное число, наличие БГКП, протея, энтерококка, синегнойной палочки, стафилококка и других патогенных бактерий. 15.Микробиологический контроль лекарственных средств в соответствии Государственной фармакопей РК.(4 категории) Ответ. Государственная фармакопея РК, т.1 статья 5.1.4. стр. 479 5.1.4. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ЧИСТОТА ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ При производстве, упаковке, хранении и распространении готовых лекарственных средств должны быть приняты соответствующие меры для обеспечения их микробиологической чистоты. К готовым лекарственным средствам рекомендуется предъявлять требования, приведенные ниже. КАТЕГОРИЯ 1 Готовые лекарственные средства, к которым предъявляются требования по стерильности в соответствующих общих статьях на лекарственные формы, и другие готовые лекарственные средства, маркированные как стерильные - Должны выдерживать испытание на стерильность. КАТЕГОРИЯ 2 Готовые лекарственные средства для местного применения и применения в респираторном тракте, за исключением тех, к которым предъявляются требования по стерильности, и трансдермальные пластыри. - Общее число жизнеспособных аэробных микроорганизмов: не более 102 микроорганизмов (аэробных бактерий и грибов суммарно) в грамме, в миллилитре или на один пластырь (включая клейкий слой и основу). - Трансдермальные пластыри: отсутствие энтеробактерий и некоторых других грамотрицательных бактерий на одном пластыре (включая клейкий слой и основу). Другие готовые лекарственные средства: не более 101энтеробактерий и некоторых других грамотрицательных бактерий в г или мл. - Отсутствие Pseudomonasaeruginosa в 1 г, 1 мл или на одном пластыре (включая клейкий слой и основу) - Отсутствие Staphylococcusaureus в 1 г, 1мл или на одном пластыре (включая клейкий слой и основу). |