Главная страница
Навигация по странице:

  • 3.3.3.5. Диагностика. Лечение, профилактика и меры борьбы.

  • Лечение

  • Контрольные вопросы по теме

  • 3.4. ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ СВИНЕЙ 3.4.1. КЛАССИЧЕСКАЯ ЧУМА СВИНЕЙ

  • 3.4.1.1. Определение болезни, историческая справка.

  • 3.3.1.2. Возбудитель и ее характеристика.

  • 3.4.1.3. Эпизоотологические данные, патогенез.

  • 3.4.1.4. Симптомы, патологоанатомические изменения.

  • Патологоанатомические изменения.

  • 3.4.1.5. Диагностика. Профилактика и меры борьбы.

  • Лекции к Разделу 3 Инфекционные болезни (1). 1. Определение болезни, историческая справка


    Скачать 0.82 Mb.
    Название1. Определение болезни, историческая справка
    Дата01.11.2021
    Размер0.82 Mb.
    Формат файлаpdf
    Имя файлаЛекции к Разделу 3 Инфекционные болезни (1).pdf
    ТипДокументы
    #260784
    страница10 из 13
    1   ...   5   6   7   8   9   10   11   12   13
    Патологанатомические измененияварьируют в зависимости от течения болезни.
    При остром и подостром течении отмечают выраженный геморрагический диатез, серозные и серозно-геморрагические инфильтраты в рыхлой соединительной ткани, бледность (с желтушным оттенком) слизистых и серозных оболочек. Селезенка увеличена, переполнена кровью, с кровоизлияниями под капсулой, пульпа дряблая.
    Печень увеличена, дряблая, мозаичного цвета. Сердце увеличено, миокард серо- глинистого цвета. Кровь водянистая, светло-красного цвета. В головном и спинном мозге отечность, полнокровие, кровоизлияния.
    При хроническом течении отмечают отсутствие выраженных септических явлений, исхудание, бледность и желтушность слизистых оболочек. Мелкие кровоизлияния, студневидные отеки клетчатки конечностей, подгрудка и брюшной стенки, увеличение селезенки и лимфоузлов с плотной консистенцией, печень увеличена, плотная с мускатным оттенком на разрезе.
    3.3.3.5. Диагностика. Лечение, профилактика и меры борьбы.
    Диагноз ставят с учетом эпизоотологических особенностей, результатов клинических, патологоанатомических и гистологических изменений и лабораторных исследований.
    В лаборатории проводят серологические исследования для обнаружения антител в
    РСК, РДП, РИФ, РТГА. Практическое применение нашло РДП, при помощи, которой выявляют лошадей с острым, хроническим и латентным течением болезни.
    Вирусологический метод. Вирус ИНАН репродуцируется в культурах клеток из костного мозга и лейкоцитов лошади с образованием ЦПД. В других клеточных системах накопление вируса происходит без нарушения монослоя.
    Гистологический метод. В печени и селезенке отмечают набухание клеток РЭС, диффузный пролиферат гистиоцитарно-лимфоидного типа. В клетках РЭС встречают обильное отложение гемосидерина.
    При гематологическом исследовании проводят подсчет количества эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, СОЭ, лейкоформулы, ретракцию кровяного сгустка.
    Биопроба проводится при сомнительтных случаях для проверки ценных лошадей.
    Для этого заражают жеребят сывороткой крови от подозреваемых лошадей. За ними наблюдают в течение 90 дней, через каждые 10-15 дней проводят гематологические и серологические (РДП) исследования. Положительный результат: наличие клинических признаков
    (лихорадка, слабость, желтушность слизистых), положительные гематологические и серологические исследования.
    Дифференциальный диагноз. Следует исключить пироплазмоз, нутталлиоз, трипаносомозы, лептоспироз, грипп и ринопневмонию, глистные инвазии и др.
    Лечениене разработано, больных лошкадей уничтожают.
    Профилактика и меры борьбы.Основными мероприятиями по профилактике
    ИНАН являются: строгий ветеринарный контроль продажей, выводом и перемещением лошадей, своевременная информация о наличии подозрительных по болезни лошадей,
    профилактическое карантинирование вновь поступающих лошадей и серологическое исследование в РДП.
    При установлении диагноза на ИНАН хозяйство объявляется неблагополучным по этой болезни и в нем вводят ограничения. По условиям ограничений запрещается: ввод на территорию хозяйства и вывод за его пределы однокопытных животных; перегруппировка животных; реализация полученных от лошадей сывороточных препаратов без их обеззараживания от вируса.
    Все поголовье однокопытных подвергают клиническому осмотру и исследуют в
    РДП. Клинически больных животных убивают и направляют на техническую утилизацию.
    Животных, давших положительную или дважды сомнительную результаты с интервалом в 7-10 дней в РДП и не имеющих клинических признаков болезни, убивают на санитарной бойне. Мясо, признанное пригодным в пищу, направляют на проварку; шкуры дезинфицируют; голову, кости и внутренние органы утилизируют.
    Всех остальных животных исследуют методом РДП с интервалом в 30 дней до получения 2-кратного отрицательного результата по группе.
    Молодняк, полученный от положительно реагирующих маток, проверяют в 6- месячном возрасте в РДП 2-кратно с интервалом в 30 дней. При отрицательных результатах их считают здоровыми. Сомнительно реагирующих животных при первом или втором исследовании проверяют повторно через 7-10 дней. Положительно и дважды сомнительно реагировавшие животные подлежат убою на санитарной бойне.
    После выделения больных и затем каждые 15 дней до снятия ограничения помещения дезинфицируют 4%-ным горячим раствором едкого натра. Навоз обеззараживают биотермически в течение 3 месяцев. Для борьбы с гематофагами лошадей опрыскивают 3%-ным раствором креолина.
    Ограничения с неблагополучного по ИНАН пункта снимают после убоя больных и положительно реагирующих в РДП животных, получения 2-кратных с интервалом в 30 дней отрицательных результатов серологических исследований остального поголовья однокопытных в пункте. На предприятиях биопромышленности после 3-кратных отрицательных результатов в РДП и отрицательных результатов групповой биопробы, а также проведения заключительной дезинфекции.
    Контрольные вопросы по теме:
    1.Дайте характеристику болезни и возбудителя инфекционной анемии лошадей.
    2. Опишите эпизоотологические особенности и патогенез инфекционной анемии лошадей.
    3. Каковы основные клинические признаки и патологоанатомические изменения инфекционной анемии лошадей.
    3. Диагностика и дифференциальная диагностика инфекционной анемии лошадей.
    4. Профилактические и оздоровительные мероприятия при инфекционной анемии лошадей.
    Литература: 1. Инфекционные болезни животных / Под редакцией А.А.
    Сидорчука .- М.: КолосС, 2007 .- С. 411-415.
    2. Общая эпизоотология и инфекционные болезни животных /Под редакцией Ф.П.
    Петрянкина.- Чебоксары, 2005 .- С. 326-331.
    3.4. ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ СВИНЕЙ
    3.4.1. КЛАССИЧЕСКАЯ ЧУМА СВИНЕЙ
    Вопросы по теме:

    1. Определение болезни, историческая справка.
    2. Возбудитель и ее характеристика.
    3. Эпизоотологические данные, патогенез.
    4. Симптомы, патологоанатомические изменения.
    5. Диагностика. Лечение, профилактика и меры борьбы.
    3.4.1.1. Определение болезни, историческая справка.
    Чума свиней– инфекционная, контагиозная болезнь, вызываемая вирусом и характеризующаяся тяжелым септическим процессом с картиной геморрагического диатеза, а также поражениями легких и желудочно-кишечного тракта, возникающими чаще в результате осложнения секундарной микрофлорой.
    Историческая справка. Классическая чума свиней впервые описана в Северной
    Америке в 1833 г.(штат Огайо). В 60-х гг Х1Х века она значительно распространилась в странах Европы и до 50-х г ХХ века эпизоотии ее отмечали во многих странах мира. В
    Россию она занесена в 1893 г из Западной Европы.
    Вирусную природу болезни установили в 1903 г Е. Швейниц и Дорсет. В 1936 г
    Дорсет изготовил кристаллвиолетвакцину. Впоследствии кристаллвиолетвакцину изготовил И.И.Кулеско (1939). В нашей стране значительный вклад изучению КЧС внесли
    И.И. Кулеско, П.И. Притулин, А.А. Конопаткин, А.П. Уранов, П.Н. Андреев, П.С.
    Соломкин, Н.В. Лихачев, В.А. Сергеев, В.П. Попов, Н.К. Мишенко и др.
    Чума причиняет громадный ущерб, складывающийся из потерь в результате гибели животных (летальность до 100%) и убытков на проведение карантинных мероприятий.
    3.3.1.2. Возбудитель и ее характеристика.
    Возбудитель– РНК-содержащий вирус из семейства Flaviviridae рода Pestivirus.
    Вирионы представляют собой сферические частицы диаметром 40-60 нм. Они состоят из нуклеокапсида икосаэдрической симметрии и наружной липопротеидной оболочки. Вирус пантропен, находится в крови, тканях и всех органах больных свиней.
    Одной из особенностей пестивирусов является эффективная трансплацентарная передача вируса. В зависимости от возраста плода инфицирование может привести к гибели, нарушениям развития, пожизненному вирусоносительству или к специфическому иммунному ответу с элиминацией возбудителя.
    Эпизоотологические штаммы вируса имеют разную вирулентность:
    - высоковирулентные, вызывающие гибель почти всех свиней независимо от возраста;
    - умеренно вирулентные, встречающиеся в основном при подостром и хроническом течении болезни, приводящие к гибели или выздоровлению животных;
    - слабовирулентные, выделяются у поросят, зараженных в эмбриональный период, признаки болезни выражены слабо или отсутствуют, впоследствии они выздоравливают;
    - авирулентные, обычно это вакцинные штаммы, фактически непатогенные для взрослых животных и плодов.
    Устойчивость. Вирус обладает значительной устойчивостью: в охлаждѐнных мясных продуктах сохраняется 2-4 мес, в замороженных – несколько лет, в солонине – более 10 мес. Прямой солнечный свет убивает его на поверхности почвы через 3-5 дней. В разлагающихся трупах, навозе погибает через 3-5 дней, в почве – через 7-13 дней. В свинарниках не теряет вирулентность в течение года. ВКЧС считается сравнительно мало устойчивым к высоким температурам. В сыворотке крови от больных свиней при 37 0
    С активность вируса сохраняется в течение 11 дней и полная инактивация наступает через
    18-20 суток. При 60 0
    С вирус инактивируется через 10 мин, при кипячении – моментально.
    Лучшие дезинфицирующие средства: едкий натр (2-3%-ный), формальдегид (2%-ный), хлорная известь (15-20%-ная водная взвесь) и 3-6%-ное крезоловое молоко.
    3.4.1.3. Эпизоотологические данные, патогенез.

    Эпизоотологические данные. Основными эпизоотологическими особенностями чумы свиней являются: восприимчивость свиней всех возрастов и пород; появление заболевания в любое время года; быстрое распространение болезни с охватом большого поголовья, особенно при тесном контакте между животными или при наличии одного общего источника инфекции.
    В естественных условиях к вирусу чумы восприимчивы домашние свиньи всех пород и возрастных групп, а также дикие кабаны.
    Источник возбудителя – клинически больные и переболевшие животные- вирусоносители. Вирусовыделение начинается в инкубационный период и продолжается до прекращения лихорадки. Особую опасность представляют скрытые вирусоносители, остающиеся невыявленными в общем стаде. Вирусоносительство может продолжаться 3-
    10 мес.
    Здоровые свиньи заражаются алиментарным, респираторным, генитальным и другими путями при совместном содержании с больными или скрытыми вирусоносителями.
    Резервуаром вируса являются зараженные свиньи в инкубационном периоде, свинина и продукты свиноводства, хранящиеся в перерабатывающих предприятиях в охлажденном состоянии, а также свиноматки и поросята-вирусоносители. Персистенция вируса – это важнейший механизм его сохранения.
    При первичном заносе вируса в благополучное хозяйство болезнь протекает в виде эпизоотической вспышки, охватывая через 2-3 дня большую часть свинопоголовья. В стационарно неблагополучных хозяйствах эпизоотический процесс менее интенсивен, преобладают случаи хронического течения болезни. Чума может возникать в любое время года.
    Патогенез. Патогенез на уровне организма представляется так: инфект → ворота инфекции (миндалины и носоглотка) → первичная виремия (16-24 ч после заражения) → максимальное накопление вируса в органах иммунной системы (лимфоузлы, селезенка, костный мозг, пейеровы бляшки) → вторичная инфекция (на 4-6 сут) → вирусовыделение с секретами и экскретами.
    В процессе размножение вируса в лимфоцитах лимфоузлов, селезенки, костного мозга и эндотелии кровеносных сосудов вызывает дистрофические и некротические изменения, сильно повышается проницаемость стенок сосудов, что приводит к возникновению кровоизлияний, отеков, некродистрофических и воспалительных процессов в различных тканях и органах, образованию инфарктов в селезѐнке.
    Разрушение клеток иммунной системы сильно снижает защитные (иммунные) свойства организма. Развиваются лейкопения и анемия, что способствует активации вторичной инфекции (пастерелл, сальмонелл) и отягощению основного процесса. При затяжном течении болезни эти микроорганизмы вызывают характерные поражения лѐгких
    (крупозная пневмония) и кишечника (крупозно-дифтеритический колит).
    Вторым важным действием вируса является трансплацентарное заражение плодов свиноматки. В результате наблюдают гибель эмбрионов или плодов с последующим их рассасыванием или мумификацией (при инфицировании 40-65 дней супоросности).
    Заражение в более поздние сроки приводит к персистенции вируса у новорожденных поросят. Такие поросята остаются заморышами, болеют диареей и виремией.
    3.4.1.4. Симптомы, патологоанатомические изменения.
    Клинические признаки болезни достаточно выражены в начале эпизоотии среди невакцинированных свиней. Болезнь протекает сверхостро, остро, подостро и хронически.
    Сверхострое течение наблюдается у поросят. При остром течении животные отказываются от корма, рвота, температура тела повышается до 42 0
    С и держится почти до гибели животного. Наблюдается ринит, конъюнктивит, понос, аборты у супоросных свиноматок. На коже темно-красные пятна, небледнеющиеся при надавливании.
    Развивается лейкопения. При подостром течении с развитием вторичных инфекций
    появляются признаки крупозно-некротического энтероколита и поражение органов дыхания. При хроническом течении отмечают затягивание болезни до 2 мес. Отмечают периодические поносы, поражение органов дыхания, анемия и исхудание.
    Патологоанатомические изменения. В зависимости от степени поражения и продолжительности болезни при вскрытии трупов, можно наблюдать разнообразные патологоанатомические изменения, заключаются в следующем: лимфоузлы увеличены, геморрагически воспалены, на разрезе их выступает мраморный рисунок. Селезенка нормальная или слегка припухшая, по краям отмечают ограниченные геморрагические инфаркты, имеющие клиновидные формы. Почки анемичны, под капсулой и в почечной лоханке множественные кровоизлияния. Слизистая желудка, тонкого отдела кишечника катарально-геморрагически воспалены.
    3.4.1.5. Диагностика. Профилактика и меры борьбы.
    Диагностика чумы свиней основывается на эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.
    Для лабораторной диагностики направляют свежий или замороженный материал, взятые от вынужденно убитых в агональном состоянии животных, у которых в течение 4-
    5 дней температура была повышена. Патматериал от павших животных исследованию пригодны в первые два часа после гибели.
    Лабораторная диагностика чумы свиней осуществляется методами РИФ, РСК, РН, биопробы.
    Иммунофлуоресцентный метод используется для обнаружения вируса чумы свиней в мазках-отпечатках, замороженных срезах или в культуре клеток путем прямого и непрямого методами окрашивания. РСК используется для обнаружения в патологическом материале антигена. Реакция нейтрализации (РН) применяется для обнаружения в сыворотке крови специфических антител.
    Гематологический метод – используется для ранней диагностики болезни путем подсчета лейкоцитов периферической крови у 3-5 больных животных с высокой температурой тела.
    Биопроба – ставится в сомнительных случаях с целью подтверждения диагноза.
    Для этого заражают 3-х неиммунных и 3-х иммунизированных против чумы подсвинков.
    Биопробу считают положительной, если все неиммунные подсвинки заболели и пали, а иммунные остались здоровыми.
    Мероприятия по профилактике и ликвидации чумы свиней
    Основным и главным в системе мероприятий по предупреждению заболевания свиней чумой остается охрана благополучных хозяйств от заноса возбудителя извне.
    С учетом изложенного в данной ситуации возможны два направления защиты свиноферм от заноса болезни: а) строгий ветеринарный контроль путей и факторов распространения возбудителя.
    Профилактическое карантирование вновь приобретенных на стороне свиней и поросят.
    Боенские отходы мясокомбинатов, столовых и др. должны скармливаться только после термической обработки в течение часа; б) постоянное поддержание невосприимчивости свинопоголовья за счет иммунизации.
    Для активной иммунизации применяют живые вакцины из штамма К: сухую культуральную вирус-вакцину ЛК-ВНИИВВиМ; сухую культуральную вирус-вакцмну КС
    (НПО НАРВАК); сухую лапинизированную вирус-вакцину СИНЛАК (ВНИИЗЖ); сухую культуральную вирус-вакцину
    ВГНКИ,
    Разработана инактивированная сухая культуральная вирус-вакцина из штамма ЛК-К для перорального, внутримышечного и аэрозольного применения. Схему вакцинации разрабатывать с учетом эпизоотической ситуации и иммунного статуса свиней последующим контролем напряженности иммунитета.

    В случае возникновения чумы свиней накладывают карантин на неблагоприятный пункт и разрабатывают план мероприятий по ликвидации заболевания. По условиям карантина запрещается: ввоз в неблагополучный пункт и вывоз из нее свиней; убой и перегруппировка свиней в хозяйстве; вывоз свиней и продуктов убоя и свинины; выезд транспорта без дезобработки, вход посторонних лиц в свиноводческие помещения.
    Организуют охранно-карантинные посты вокруг карантинируемой территории, оборудуют их соответствующим инвентарем и средствами для обработки лиц и транспорта.
    При ликвидации заболевания необходимо учитывать размеры хозяйств и производственное направление хозяйства: а) откормочных, подсобных и прикуханных хозяйствах и малых свинофермах целесообразно подвергать убою все свинопоголовье неблагополучных свинарников; б) в репродукторных хозяйствах, а также в хозяйствах, в которых убой всего поголовья неблагополучной фермы нецелесообразен, проводят клинический осмотр и термометрию животных, подвергают убою всех больных, отстающих в росте, страдающих легочными и желудочно-кишечн6ыми заболеваниями. Всех остальных клинически здоровых свиней хозяйства вакцинируют 10-кратной дозой вакцины.
    Одновременно с другими мероприятиями в свинарниках проводят текущую дезинфекцию через каждые 5 дней до снятия карантина. Для дезинфекции помещений применяют горячий раствор едкого натра; осветленный раствор хлорной извести с содержанием 2% активного хлора; 2%-ный раствор формальдегида и др.
    Трупы свиней, павших от чумы, уничтожают путем сжигания или утилизируют на заводе мясокостной муки под контролем главного ветеринарного врача района.
    Карантин с неблагополучного хозяйства снимают через 30 дней после ликвидации болезни.
    В неблагополучном пункте в течение не менее 3 лет проводят вакцинацию против
    КЧС всего свинопоголовья.
    1   ...   5   6   7   8   9   10   11   12   13


    написать администратору сайта