Учебное пособие. Учебное пособие по дисциплине специализации Болезни птиц Федеральное агентство по образованию
 Скачать 0.84 Mb.
|
|
Тема: Диагностика, профилактика и ликвидация пуллороза птиц Цель занятия: изучить методы прижизненной и посмертной диагностики пуллороза и систему профилактических и оздоровительных мероприятий, научиться правильно ориентироваться в эпизоотической ситуации. Материалы и оборудование: живая птица, трупы цыплят, кюветы и инструменты для вскрытия, бактериологические петли, предметные стёкла, микроскопы, пуллорный эритроцитарный антиген, патологоанатомический атлас, инструкция о мероприятиях по профилактике и ликвидации пуллороза-тифа. Задание для самостоятельной работы:
Пример задачи. Птицефабрика. Промышленное стадо - 205 тыс. кур, родительское стадо - 35 тыс., молодняка разного возраста – 850 тыс. Основной вид содержания птиц – клеточный. Родительское стадо кур размещено на полу. Микроклимат регулируется принудительной вентиляцией и искусственным освещением. Очистка птичников от помёта проводится два раза в сутки. Птица заболела в птичнике №9, возраст её 35 дней. В птичнике поголовье составляет 59670 голов. Длина птичника 96 м, ширина – 12,5 м, высота – 2,5 м. Поение, кормление автоматизировано. Ранее хозяйство было благополучно по инфекционным болезням. Диагноз на пуллороз подтверждён результатами лабораторного анализа. Необходимо: 1) изучить эпизоотическую ситуацию в хозяйстве и составить план ликвидации заболевания; 2) произвести расчёт количества лечебных препаратов и дезинфицирующих средств. Для установления диагноза при подозрении на заболевание проводят немедленно эпизоотологическое обследование. План эпизоотологического обследования включает: - изучение ветеринарно-санитарного состояния хозяйства; - определение его эпизоотической ситуации в прошлом и настоящем; - анализ причин заболеваемости и гибели птицы; - анализ системы противоэпизоотических мероприятий. На основании проведённого исследования делают заключение и при подтверждении диагноза на пуллороз составляют план мероприятий по ликвидации и профилактике болезни. Акт эпизоотологического обследования является основанием для объявления хозяйства неблагополучным и введения ограничений. План составляется по определённой форме в виде таблицы, которая состоит из пяти граф: номер по порядку, мероприятия, срок исполнения, исполнитель, ответственный. При составлении плана следует руководствоваться инструкцией о мероприятиях по борьбе с заболеванием. Диагноз на пуллороз птиц ставят комплексно. Из эпизоотологических данных учитывают возрастной фактор, антисанитарное состояние инкубаторов и относительную резистентность у водоплавающих птиц. Клиническая картина у цыплят, заражённых в период эмбрионального развития, проявляется поносом в 1-3 день после вывода – выделение беловатого слизистого кала, который склеивает пушок и вызывает закупорку клоачного отверстия. Такие цыплята гибнут. У взрослых болезнь проявляется поносом, отвисанием живота. Птица может погибать от желткового перитонита. При вскрытии погибших цыплят при пуллорозе можно найти неиспользованный желток. Постоянный признак – поражение печени и желчного пузыря (он увеличен). Печень также увеличена, дряблая, серовато-жёлтого цвета. У взрослых кур при вскрытии – основные изменения в яичниках (деформация, перерождение), желточный перитонит. На основании перечисленных данных можно предположительно поставить диагноз на пуллороз. Другие болезни птиц можно исключить, выделив культуру S. Pullorum–gallinаrum. Также нужно учитывать, что при сальмонеллёзе поражаются чаще молодняк водоплавающей птицы, а при пастереллёзе поражается птица более старшего возраста. Окончательно диагноз на пуллороз можно подтвердить только на основании результатов бактериологического и серологического исследований. Согласно действующей инструкции оптимальный возраст птиц для выявления специфических антител у молодняка кур – 50-55 дней, у индеек – 45-50. В благополучных стадах серологически (с использованием ККРА) исследуют весь ремонтный молодняк и взрослую племенную птицу по достижении 45-50% яйцекладки и далее – 1 раз в квартал до 10% из каждого птичника. Методика серологического исследования птицы крове-капельной реакцией агглютинации (ККРА)
Агглютинация считается специфической, если наступает в течение 4-30 секунд и не позднее 1 минуты. Реакция, наступившая позднее считается неспецифической и учёту не подлежит. Ликвидация и профилактика пуллороза Профилактикапуллороза включает в себя строгое выполнение мероприятий, предусмотренных «Ветеринарно-санитарными правилами для птицеводческих предприятий»: 1. Ввоз инкубационных яиц только из благополучных хозяйств, а инкубация их в отдельном инкубаторе, в условиях надежной изоляции от инкубируемых яиц, получаемых в данном хозяйстве. 2. Выращивание ремонтного молодняка изолировано от взрослой птицы. 3. Соблюдение сроков межцикловых профилактических перерывов перед посадкой птицы, качественная подготовка помещений к приему птицы, высокая санитарная культура в птичниках, цехе инкубации и др. производственных помещениях. Соблюдение сроков бак. и серологических исследований. 4. Обязательная дезинфекция яиц перед инкубацией парами формальдегида, и проверка их на содержание витаминов А, В, каратиноидов. 5. Сбор инкубационных яиц каждые два часа и дезинфекция их сразу после сбора, затем после сортировки, через 6 часов после начала инкубации и перед переносом на вывод. 6. Эмбрионы переносятся в выводной шкаф до наклева, на пол которого ставят кювету размером 20 на 30 см и наливают в нее формалин с 20 - 30 % содержанием формальдегида слоем 8 - 10 см и оставляют до конца вывода. 7. Выборку цыплят необходимо проводить один раз, через 496 - 500 часов для яичных и 500 - 505 часов для мясных пород цыплят. Отходы инкубации, оставшиеся после выборки, немедленно собирают в герметично закрывающуюся металлическую или пластмассовую тару, и удаляют из цеха инкубации. 8. При невозможности получения стерильной мясо-костной муки, отходы инкубации уничтожают путем сжигания. Транспорт дезинфицируют после вывозки отходов. 9. Инкубационные шкафы дезинфицируют сначала влажным, а затем аэрозольным методом; выводные инкубаторы, залы, инвентарь дезинфицируют трижды: первый раз - влажным методом "по грязному", второй - влажным методом "по чистому", а затем через 24 часа - аэрозольным методом. 10. Перерыв в выводных залах должен составлять не менее 3-х дней. 11. Каждая партия кормов, полученная или завезенная в хозяйство, подлежит бактериологическому контролю на наличие сальмонелл. В неблагополучном хозяйстве по пуллорозу птиц при подтверждении диагноза вводят ветеринарные ограничения. По условиям ограничений запрещается: вывоз инкубационных яиц и птиц в другие хозяйства; вывоз яиц от положительно реагирующих птиц в торговую сеть; инкубация яиц от птиц неблагополучных птичников. Разрешается: ввоз в хозяйство инкубационных яиц и молодняка однодневного возраста из заведомо благополучных по пуллорозу и др. заразным болезням птиц хозяйств; инкубация для внутрихозяйственных целей яиц, полученных от птиц благополучных птичников; реализация в торговую сеть яиц, полученных от отрицательно реагирующих на пуллорный антиген птиц. Яйца, полученные от больных и положительно реагирующих на пуллорный антиген птиц, направляют на пищевые предприятия для приготовления кондитерских и хлебобулочных изделий, обрабатываемых при высокой температуре. Яйца, полученные от птиц неблагополучных птичников, с момента первого выявления реагирующих и до получения результатов бактериологического или повторного исследования, используют только для товарных целей. Контрольные исследования птицы в птичниках проводят ежемесячно, до получения 2-х кратного отрицательного результата. Помет и подстилку подвергают биотермическому обеззараживанию. Гнезда в птичниках не менее одного раза в неделю очищают от грязной подстилки, дезинфицируют и помещают в них свежий подстилочный материал - мелкую древесную стружку. Проводят дератизацию, борьбу с эктопаразитами, мухами, не допускают залета диких птиц. Во избежание распространения возбудителя инфекции, больную птицу убивают, остальное поголовье подвергают медикаментозному лечению. Лечение Специфических средств лечения при пуллорозе не разработано. Используют антибактериальные препараты: биомицин, дибиомицин, биовит, витабиомицин, террамицин, полимиксин-М, фуразолидон, фурагин. Сульфадимезин добавляют в корм 0,05 - 0,1 % - дают в течении 14 дней, затем 2 - 3 дня препарат исключают из рациона птиц, затем курс лечения повторяют. По такой же схеме, но 0,1 - 0,2 % сульфадимезин можно применять с питьевой водой. Террамицинрекомендован для выведенных цыплят в дозе 2 - 4 г на 1 кг корма в течение 10 дней, затем перерыв 3 - 5 дней, и вновь повторение курса лечения. Наиболее эффективно комбинированное применение окситетрациклина в дозе 100 г и неомицина в дозе 500 г на 1 тонну корма, в течении 10 дней, с интервалом 3 - 5 дней и повторным курсом лечения. Эти препараты эффективны и для молодняка и для взрослых кур. В промышленном птицеводстве широко применяют фуразолидон с кормом в дозе 3 г на 1000 цыплят, в течение 15 дней, с последующим перерывом в 3 - 5 дней и повторным курсом лечения. Лучшие результаты получают при сочетанном применении антибиотиков и препаратов нитрофуранового ряда, так как при этом не отмечают привыкания возбудителя в течение 2-3 лет. Можно использовать менее токсичный препарат фуридин, в дозе 200 мг на 1 кг массы кур, в течениие10 дней (с кормом), а также полимиксин-М, в дозе 100 мг на 1000 цыплят (с кормом), курс лечения 7 дней. Цыплятам в первые дни жизни полезно использовать препараты, содержащие молочнокислую микрофлору: ПАБК – 1 раз в сутки с кормом в течение 5-6 дней подряд в дозе до 1 мл на голову, простоквашу, творог – из расчёта 1,5 % к корму. Эти препараты способствуют подавлению гнилостных процессов в кишечнике. Хорошие результаты даёт применение пропиовита (содержит пропионовокислые бактерии и витамин В 12 ) из расчёта 100 г на 1 т корма цыплятам с суточного до 30-дневного возраста 2 раза в день. Эффективен химиотерапевтический препарат ниграс, повышающий неспецифическую резистентность организма птиц. Его применяют в виде аэрозольных обработок 3-х кратно в два этапа: в течение первых трёх дней жизни и с 17-дневного возраста три раза с 10-дневным перерывом из расчёта 2,5 мг на 1 кг живой массы. Контрольные вопросы:
Лабораторное занятие Тема: Диагностика, профилактика и ликвидация пастереллёза птиц Цель занятия: изучить методы прижизненной и посмертной диагностики пуллороза и систему профилактических и оздоровительных мероприятий. Материалы и оборудование: трупы птиц, инструменты для вскрытия, предметные стёкла, бактериологические стёкла, микроскоп, наборы для окраски по Граму и Романовскому-Гимзе, патологоанатомический атлас, инструкция о мероприятиях по борьбе с пастереллёзом птиц. Задание для самостоятельной работы:
Пример задачи. Уткофабрика. Поголовье промышленного стада птиц составляет 56 тыс., родительского стада – 15 тыс., молодняк разного возраста – 120 тыс. содержание птицы напольное. Промышленное стадо размещено в удалении от родительского и молодняка на расстоянии 2000 м. Заболевание установлено в одном из птичников промышленного стада уток. В птичнике заболело и пало 560 уток. Диагноз на пастереллёз установлен комплексно, подтвержден лабораторным методом. Общее поголовье в птичнике – 2550 уток. Птичник кирпичный, полы реечные. Плошадь его составляет 628 м2. В аптеке хозяйства имеются лечебные средства: террамицин, тетрациклин; из дезосредств – триэтиленгликоль, молочная кислота. Необходимо:
Пастереллёз (холера, геморрагическая септицемия) – инфекционное заболевание птиц всех видов и возрастов, вызываемое бактерией Pasteurellamultocida. Характеризуется явлениями септицемии и воспалительно-геморрагическими процессами во внутренних органах. Диагноз на пастереллёз может быть поставлен комплексно с учётом эпизоотологических, клинических данных, результатов патологоанатомического вскрытия и лабораторной диагностики. Из эпизоотологических данных необходимо принять во внимание, что острые вспышки пастереллёза в благополучных хозяйствах протекают быстро, с охватом значительной части птицы, смертность достигает у взрослых до 95-100 %. Восприимчивы птицы всех видов и возрастов. Источником инфекции является больная птица, а также – переболевшая. Распространять инфекцию могут дикие птицы, насекомые (клещи у кур), обслуживающий персонал, возможен завоз с кормами. Возбудитель Pasteurellamultocida является условно-патогенным микроорганизмом. Переболевшая птица остаётся источником инфекции длительное время – у неё отмечают устойчивое пастереллоносительство, которое не устраняется ни лечением, ни вакцинацией. Для возникновения пастереллёза необходимо два условия: источник инфекции и предрасполагающие факторы, снижающие резистентность организма птиц-бактерионосителей. Часто причиной перехода скрыто протекающего процесса в активный является переуплотнённая посадка птицы, ухудшение микроклимата. Заболевание может возникать внезапно, смертность быстро нарастает. Клиническими осмотрами устанавливают вялость птицы, слабую реакцию на внешние раздражители, уединение, тусклость оперения, бледность гребешка, отсутствие яйценоскости. Синюшное окрашивание гребня и бородок птицы указывает на сердечную недостаточность и скорую гибель. В хронической форме пастереллёз протекает в виде воспаления суставов ног, крыльев. Больную птицу выбраковывают. Характерны патологоанатомические изменения у птиц, павших в острой форме – поражаются все органы грудной т брюшной полостей, геморрагии в глубинных слоях кожи, брюшине, брыжейке, кишечнике, эпикард, перикард как будто забрызганы кровью. При сверхострой форме пастереллёза изменений в трупах не наблюдается. Для подтверждения диагноза необходимо выделить возбудителя посевом на питательные среды или биопробой и идентифицировать его по морфологическим, культуральным, патогенным и антигенным свойствам. Дифференцируют пастереллёз от Нькаслской болезни, пуллороза, респираторного микоплазмоза. Идентификация пастерелл по морфологическим признакам От трупов птиц, павших при острой форме, или убитых в агональный период, берут поражённые внутренние органы грудной и брюшной полости и готовят мазки-отпечатки для микроскопирования. Для этого вырезается кусочек органа, фиксируется пинцетом и фламбируется над пламенем спиртовки. После фламбирования часть органа подрезается стерильными ножницами и открытая поверхность прикладывается к чистому обезжиренному предметному стеклу. Затем препарат высушивают при комнатной температуре на воздухе. После высушивания его фиксируют над пламенем спиртовки, держа предметное стекло мазком вверх. Пастереллы в мазказ-отпечатках из патологического материала имеют вид коротких палочек 0,5×2,5 мкм с закруглёнными концами (овальные палочки, овоиды), располагающиеся поодиночке, парами и короткими цепочками. В культурах обнаруживают полиморфные палочки и кокковидные формы. Они не подвижны и не образуют спор. Многие вирулентные свежевыделенные пастереллы образуют капсулу. По Граму окрашиваются в красный цвет. При окраске синькой Леффлера (или по методу Романовского-Гимзы) с последующей обработкой 1%-ным раствором уксусной кислоты в течение нескольких секунд пастереллы красятся в синий цвет биполярно (концы интенсивнее), а средняя часть – очень слабо. Биполярная окрашиваемость и овоидная форма является характерным диагностическим признакомдля пастерелл. Профилактика и ликвидация пастереллёза Профилактикапастереллёза складывается из комплекса мероприятий, предупреждающих занос инфекции в хозяйство, основными из которых являются: - завоз птицы и инкубационного яйца только из благополучных по пастереллёзу хозяйств; - вновь завезённая птица и полученный молодняк из завезённых инкубационных яиц должны содержаться в карантине 30 дней. В стационарно неблагополучных по пастереллёзу хозяйствах с целью специфической профилактики всё поголовье вакцинируют инактивированной сорбированной вакциной, водоплавающих птиц – живыми вакцинами из штаммов «АВ» и «К». При появлении заболевания с признаками пастереллёза принимают неотложные мероприятия по ликвидации заболевания: - уточняется диагноз, для чего проводят эпизоотологическое обследование и отбор и отправка патологического материала в ветеринарную лабораторию; - изолируется неблагополучный птичник; - в хозяйстве устанавливаются ограничения и действуют в соответствие с действующей инструкцией о мероприятиях по борьбе с пастереллёзом птиц. В неблагополучном птичнике всю больную птицу убивают бескровным методом и утилизируют (согласно действующей инструкции можно произвести убой всей птицы, не дожидаясь срока её эксплуатации). Клинически здоровую птицу подвергают лечебно-профилактическим обработкам. Антибиотики при пастереллёзе более эффективны, чем сульфаниламиды. С положительным результатом используют сульфидимезин и норсульфазол натрия из расчёта 0,1 г/кг и 1,0 г/кг живой массы соответственно с увлажнённым кормом. Из антибиотиков применяют - террамицин: с кормом - в дозе 60 мг/кг живой массы 2 раза в день 5 дней подряд, внутримышекчно; эффективнее применять его внутримышечно в дозе 10-40 мг/кг живой массы однократно в сутки 3 дня – сохраняет до 100 % птицы.; - тетрациклин 1 раз в 3-4 дня в дозе 20 мг/кг живой массы внутримышечно; - биовит-40 по 50-100 мг с кормом – 2 раза в день 3-5 дней. В неблагополучных птичниках проводят ежедневно до окончания выделения больных аэрозольную дезинфекцию воздушной среды в присутствии птицы аэрозолями молочной кислоты, 20% водным раствором резорцина, триэтиленгликоля из расчёта 25 мг/ м3 воздуха помещения. Контрольные вопросы:
Инфекционные заболевания эмбрионов птиц могут быть не только причиной гибели зародышей. Некоторые возбудители инфекционных болезней, не вызывают значительной эмбриональной смертности; передаваясь через яйцо, они обуславливают развитие болезни на той или иной постэмбриональной стадии, т.е. – у ремонтного молодняка или взрослой птицы родительского стада. Инфекция в яйцо может проникать как до его снесения (во время сбора, хранения и инкубации), так и в любой период образования яйца. Обычно возбудитель попадает в желток и белок гематогенным путем в результате активного кровоснабжения органов яйцеобразования. Инфекции, передающиеся с яйцом, могут быть трансовариальными(т.е. когда возбудитель проникает в желток в яичнике на той или иной стадии овогенеза), или более позднего происхождения. В последнем случае возбудители локализуются главным образом на яйцевых оболочках – на поверхности скорлупы и в ее порах. Количество бактерий на скорлупе сносимых яиц резко увеличивается при заболеваниях нижнего участка яйцевода. Часто в птицехозяйствах практикуют смыв с поверхности скорлупы с целью изучения состава микрофлоры. В зависимости от состояния организма несушек и условий хранения яиц на их скорлупе может находиться различное количество микробов от нескольких штук до 6 млн. На первом месте обнаруживаются разнообразные серогруппы эшерихий, протея, сальмонелл, стафилококков, энтерококков, патогенные и апатогенные грибки. Эти же виды микробов, как правило, выделяются из воздуха инкубаториев при выводе молодняка. При исследовании желтка и белка яиц обнаруживают бактерии сальмонеллеза, другие виды – гораздо реже. Механизмы неспецифической защиты. Хотя яйца и эмбрионы являются хорошей питательной средой для развития микрофлоры, внутрияйцовая среда обладает определенным механизмами неспецифической защиты, позволяющими лизировать микроорганизмы. К ним относят уровень клеточного и гуморального неспецифического иммунитета – содержание лизоцима, бактериолизинов и гемолизинов. Яичный белок (особенно белок куриных яиц) благодаря ферменту лизоциму подавляет рост и развитие различных микроорганизмов, растворяя их оболочки. Желточная оболочка - служит барьером, препятствующим проникновению микробов из белка в желток, и наоборот. Поэтому пуллороз, колибактериоз, респираторный микоплазмоз чаще всего наблюдаются у эмбрионов перед выводом, т.е. в период активного использования веществ желтка. Инфекционные болезни эмбрионов по этиологии можно подразделить на вирусные, бактериальные и микозные. Вирусные болезни. Вредное влияние вирусов на эмбриональное развитие проявляется, как правило, в период между 10 и 15 днем развития эмбриона. Показателем заражения эмбриона вирусом может служить его гибель в характерные для данного вируса сроки или патологоанатомические изменения, появляющиеся в различных структурах эмбриона. Кроме того, встречаются вирусы (например, штамм В1 вируса ньюкаслской болезни), которые, размножаясь в куриных эмбрионах, не вызывают ни их гибели, ни патологоанатомических изменений. Обнаружить такой вирус можно лишь в том случае, если он обладает способностью агглютинировать эритроциты, т.е., с помощью реакции гемагглютинации (РГА). Наиболее изучены патологические изменения у эмбрионов при Ньюкаслской болезни, вирусном гепатите утят, инфекционном бронхите, оспе, гриппе. Вирус гепатита утят. Инфицированные яйца сносят утки, не имеющие клинических признаков болезни (латентная инфекция). При этом снижается выводимость эмбрионов до 50%. Количество инфицированных яиц достигает 10-60%. При вскрытии эмбрионов на 10-15 день инкубации обнаруживают массовые точечные кровоизлияния и отечность на голове, конечностях, в перьевых сосочках, инъекцию сосудов желточного мешка. У эмбрионов после 15 дней инкубации – недоразвитость, аллантоисная жидкость тягучая, густая, прозрачная и зеленоватого цвета. Печень, как правило, увеличена, цвет её от слабо-коричневого до темно-зеленого, окрашена неравномерно – мозаичный вид. Желток темно-зеленого цвета. Сосуды хорионаллантоисной оболочки (ХАО) и желточного мешка гиперемированы. При гистологических исследованиях печени – дегенерация клеток, пролиферативные процессы. Возбудитель находится в желтке яиц после снесения, его можно обнаружить методикой накопления вируса с применением хлороформа. Грипп птиц типа А – вызывает гибель эмбрионов уток и кур во время инкубации. У погибших эмбрионов обнаруживают обширные зоны кровоизлияния на теле, во внутренние органы и эмбриональные оболочки. Отмечают также задержку в развитии, аномалии, связанные с неправильной закладкой внутренних органов, наиболее характерно недоразвитие головы и костей скелета. Обнаружить вирус гриппа можно в РЗГА с типоспецифической сывороткой в аллантоисной жидкости КЭ. Выделить вирус из КЭ трудно из-за наличия пассивных иммунных тел желтка. Ньюкаслская болезнь. Вирус Ньюкаслской болезни может длительное время присутствовать в желтке яиц, полученных от кур, которые находились в латентной стадии заболевания. Эмбрион гибнет через 3-4 дня после начала инкубации. Патологоанатомические изменения характеризуются сплошными кровоизлияниями по всему телу эмбриона, эмбрион гиперемирован, отечен. Гистологические исследования указывают на некротическое поражение нервной ткани, хрусталика глаза, почечного эпителия. В последние годы в связи с проведением в неблагополучных по болезни Ньюкасла хозяйствах многократных прививок родительского стада кур гибель эмбрионов может не наблюдаться. Но выведенные цыплята представляют опасность как разносчики инфекции. Инфекционный бронхит. Возбудитель инфекционного бронхита – вирус, находится в желтке яиц от инфицированных кур. Яйцо от таких птиц может иметь неправильную форму, с известковыми наростами. Вирус вызывает гибель эмбрионов, при вскрытии обнаруживают довольно патогномоничный признак - замедление роста, зародыши мумифицированы, с перекручиванием шеи («эффект карликовости»), также задержка роста легких, сердца. Селезенка увеличена. Вирус диагностируют в РН с типоспецифической сывороткой и РИФ. Вирус оспы птиц также может передаваться эмбриону трансовариально, задерживает его развитие, формирует на аллантоисе беловатые очаги некроза по ходу кровеносных сосудов. Узелки могут сливаться в обширные очаги некроза. Вирус может проникать в тело эмбриона, обладает гемагглютинирующими свойствами. Наибольшей патогенностью обладают штаммы вируса оспы кур, менее патогенны – штаммы вируса оспы индеек, канареек, голубей. В хозяйствах, стационарно неблагополучных по оспе, куры в течение 16 месяцев выделяют вирус с яйцом. Бактериальные инфекции Пуллороз причиняет значительный экономический ущерб, от гибели эмбрионов в том числе. Заражение эмбриона может происходить на любой стадии образования яйца, а также через загрязненный воздух в инкубатории. У эмбрионов, погибших от пуллороза перед выводом, желток имеет зеленый цвет, инъецирован сетью кровеносных сосудов. Желток плотный. Печень, желчный пузырь увеличены в объеме. Желчь густая, темно-зеленого цвета. В мочеточниках и почках вследствие интоксикации внутренних органов – отложение мочекислых солей. В прямой кишке – масса белого цвета (скопление мочекислых солей). Диагностируют пуллороз путем посева из различных органов эмбриона на элективные питательные среды (агар Эндо, Плоскирева). Чистую культуру возбудителя S. pullorum выделяют из желчного пузыря, печени, желтка. (желчь задерживает развитие посторонней микрофлоры и консервирует возбудителя пуллороза). Сальмонеллез водоплавающих птиц. Инфицирование яиц происходит экзогенно, т.к. сальмонеллы находятся в содержимом кишечника уток. Инфицированы в основном скорлупа и желток. Смертность зародышей может быть очень высокой до 85- 90%. При вскрытии наблюдают отечность аллантоиса, множественные кровоизлияния во внутренних органах. Печень и селезенка увеличены в объеме. Желток густой, нерассосавшийся, зеленого цвета. Для диагностики сальмонеллеза у эмбрионов необходимо так же, как и при пуллорозе-тифе, сделать посевы на элективные среды. Туберкулез. Возбудитель туберкулеза птиц может поражать значительный процент яиц, полученных от больных кур, уток, гусей. Заражение яиц происходит, предположительно, гематогенным путем при их формировании, так как при исследовании яичников специфических для туберкулеза изменений не обнаруживалось. Диагностика туберкулеза у погибших эмбрионов проводится путем исследования содержимого яйца методом накопления возбудителя на средах Петраньяни, Павловского и микроскопирования. Респираторный микоплазмоз. В распространении респираторного микоплазмоза вертикальный путь передачи имеет ведущее значение. Из яиц кур, инфицированных патогенными микоплазмами, погибает 10-30% эмбрионов чаще в конце инкубации. При вскрытии погибших эмбрионов обнаруживают задержку в росте, артриты коленного и плюсневого суставов ног. Незадолго до конца инкубации 18-19 дневных эмбрионов и у почти сформировавшихся цыплят наблюдают поражения воздухоносных мешков, легких. Стенки воздухоносных мешков могут утолщаться и уплотняться, в полости их скапливается серозный и фибринозный экссудат. У суточных цыплят, больных микоплазмозом, отмечались признаки расстройства функций органов дыхания: одышка, хрипы. Диагноз устанавливают выделением культуры возбудителя из внутренних органов, головного мозга, желточного мешка на среде Эдварда. Микозы эмбрионов При инкубации зараженных яиц происходит бурное развитие различных видов микроскопических грибов, споры которых обнаруживаются как в подстилочном материале, так и в воздухе птичника, инкубатория, загрязняя скорлупу. Аспергиллез. Заражение грибами рода Aspergillus происходит, как правило, экзогенным путем: при хранении инкубационных яиц в упаковочном материале, загрязненном спорами гриба, в инкубатории и т.д. (грибы выделяют из воздуха инкубатория, с лотков, с оборудования, приборов). Попадающие на скорлупу яиц споры гриба способны прорастать, образуя гифы, проникать через поры и вызывать гибель эмбриона. При овоскопировании зараженных яиц под скорлупой видны темные пятна - это колонии разросшихся грибов. При вскрытии зараженных аспергиллезом эмбрионов изменения очень характерны и их интенсивность зависит от влажности, температуры окружающей среды, возраста эмбрионов. В воздушной камере возникают пленчатые или пушистые грибницы от темно-зеленого до черного цвета. При микроскопировании мицелия видны характерные конидиеносцы, стеригмы и споры. У эмбриона отмечают отечность эмбриональных оболочек, иногда с кровоизлияниями, серозные узелки на внутренних органах. Эмбрион и эмбриональные оболочки мацерированы с некротическими очагами; часто носовые отверстия, ушные каналы закупорены разросшейся массой гриба. Заражение аспергиллезом может произойти так же при выводе молодняка в инкубаторе спорами гриба воздушно-капельным путем. Диагностика аспергиллеза не представляет трудностей: делают посев на агар Сабуро, Чапека, микроскопируют мицелий. В неокрашенных мазках хорошо заметен мицелий гриба, конидиеносцы, стеригмы и споры черного цвета. Мазки можно делать также из органов погибших эмбрионов и окрашивать лактофуксином (хорошо видны вегетативные формы гриба). Грибы рода Aspergillus часто поражают корма, которые потребляет птица. Токсины грибов, вызывают заболевания у несушек – микоксикозы, передаются так же трансовариально эмбрионам, и вызывают их гибель. Наибольшее значение из токсинов имеет афлотоксин, выделяемый из грибов родов Aspergillus, Peniccilium, Fusarium. Известно 14 его фракций. Также имеет значение охратоксин, нидулотоксин. Токсины вызывают у эмбрионов гибель, а так же различные поражения печени, кровоизлияния, отечность, большинство токсинов вызывают уродства конечностей, крыльев, ослабления пальцев, ороговение кожного покрова, неправильное строение глаза, черепа. Профилактика инфекционных болезней эмбрионов заключается в создании условий, повышающих резистентность несушек к различным заболеваниям, и использовании комплекса мероприятий, способствующих получению неинфицированных яиц. Для предупреждения заноса инфекции в хозяйство необходимо использовать яйца для инкубации, завезённые только из благополучных по инфекционным болезням хозяйствах. Перед закладкой на инкубацию проверять биологическую полноценность яиц - содержание в них витаминов А, В2, каратиноидов, плотность белка, скорлупы. Отбирать яйцо для инкубации в соответствии с рекомендациями по инкубации яиц. Все яйцо, предназначенное для инкубации, подвергается профилактической дезинфекции (газовая дезинфекция парами формальдегида, УФЛ). Перед началом и после инкубации помещение инкубатория, весь инвентарь, оборудование тщательно дезинфицируется, после предварительного мытья. Эффективна обработка инкубатора парами формальдегида - газовая дезинфекция. Для этого в эмалированную посуду наливают 40% формалин с добавлением марганцевого калия из расчёта 45 мл/м³ помещения и ставят на пол инкубатора. Экспозиция составляет 7 часов при температуре не ниже 30 и влажности до 80% , двери инкубатора закрывают. После вывода отходы инкубации должны быть немедленно удалены из цеха инкубатория; они перерабатываются на белковый корм, но только после тщательной термической обработки при температуре 105ºС, 24 часа и затем высушивания при 100ºС – 10-12 часов. Для дезинфекции яиц, кроме газовой дезинфекции, используют ультрафиолетовое облучение бактерицидными лампами ПРК-2, ПРК-7, БУВ-30. Чаще УФЛ-облучение используют в хозяйствах, благополучных по инфекции. Обработка яиц озоном, аэрозолями (5%-й раствор гексахлорофена, йодистый аммоний) препятствует росту грибов, плесени на скорлупе. Для обработки яиц применяют также метод влажной дезинфекции с применением различные химических и моющих средств: хлорной извести, марганцевокислого калия, растворов йода, пергидроль. Предложен также метод глубинной дезинфекции – введение в воздушную камеру инкубационного яйца раствора тилана, или погружение яиц в раствор тилана холодный раствор эритромицина. Лабораторное занятие |