Практикум Люта. В. Л. Люта о. В. Кононов в а. Люта о. В. Кононов

• Название: В. Л. Люта о. В. Кононов в а. Люта о. В. Кононов
• Дата: 06.09.2018
• Размер: 1.23 Mb.
• Имя файла: Практикум Люта.doc
• Тип: Документы; #49945
• страница: 2 из 14

Контрольні запитання

1. 
   При яких медичних закладах існують мікробіологічні лабораторії?
   
2. 
   Які існують медичні мікробіологічні лабораторії залеж­но від призначення?
   
3. 
   Які задачі стоять перед медичною мікробіологічною ла­бораторією?
   
4. 
   Яким вимогам має відповідати лабораторна кімната?
   
5. 
   Чим має бути обладнане робоче місце лаборанта?
   
6. 
   Яких правил слід дотримуватися під час роботи з патоло­гічним матеріалом?
   
7. 
   Від чого залежить режим роботи лабораторії?
   
8. 
   Яких правил слід дотримуватия під час взяття і тран­спортування матеріалу для дослідження?
   

9. Які методи використовують під час мікробіологічних до­сліджень?

Тести

Метод дослідження, нід час якого проводять посів патоло­гічного матеріалу на поживне середовище:

а) мікроскопічний;

б) бактеріологічний;

в) біологічний;

г) імунологічний.

На мікробіологічне дослідження відбирають матеріал:

а) у хворої людини;

б) у здорової людини;

в) із навколишнього середовища;

г) всі відповіді правильні.
Відбір матеріалу проводять:

а) до початку лікування антибактеріальними препаратами;

б) у процесі лікування;

в) не має значення.

Час, протягом якого матеріал транспортують до лаборато­рії:

а) 1 год;

б) 2 год;

в) 1 доба,

г) 3—5 год.

Імерсійну систему в мікроскопі використовують для:

а) збільшення зображення об'єкта;

б) посилення чіткості зображення;

в) всі відповіді правильні.
Експрес-методи діагностики є найбільш:
а) точними;

о) швидкими;

в) досконалими;

г) всі відповіді правильні.

Ситуаційні задачі

1. Під час мікроскопії препарату, виготовленого з культури бак­терій, використали об'єктив х40. Які були допущені помилки?

2. 
   Під час мікроскопії осаду спинномозкової рідини хворого на менінгіт виявили грампозитивпі кулясті бактерії, розміще­ні у вигляді грона винограду. Наявність яких бактерій можна підозрювати у патологічному матеріалі?
   
3. 
   Патологічний матеріал, забруднений споровою культу­рою, знезаражували в автоклаві за температури 110 °С протя­гом 20 хв. Дайте оцінку цим діям.
   
4. 
   При інфекційній хворобі клінічний діагноз підтверджу­ють мікробіологічним дослідженням патологічного матеріалу. Як слід упакувати матеріал і направлення до нього?
   
5. 
   Збудник менінгококової інфекції швидко гине за темпе­ратури, нижчої за температуру тіла людини. В яких умовах слід транспортувати патологічний матеріал хворого на менін­гококову інфекцію?
   

Домашнє завдання

Підготуйтесь до практичного заняття 2.

Рекомендації щодо самопідготовки до практичного

заняття 2

1. 
   Ознайомтеся з темою і метою заняття, запишіть у щоден­нику тему і план.
   
2. 
   Вивчіть теоретичний матеріал (див. підручник, с. 21—39; практикум, с. 26—38).
   

Практичне заняття 2

ПРОСТІ ТА СКЛАДНІ МЕТОДИ ФАРБУВАННЯ ПРЕПАРАТІВ


Мета заняття:

• 
  навчитися виготовляти мазки-препарати для мікроско­пічного дослідження;
  
• 
  навчитися фарбувати мазки-препарати простим і склад­ними методами;
  
• 
  навчитися мікросконіювати мазки-препарати;
  
• 
  навчитися трактувати результат мікроскопічного дослі­дження.
  

Оснащення: світловий мікроскоп, імерсійне масло, в'язкий матеріал (мокротиння або гній), кров, бульйонна культура ешерихій, агарова культура стафілокока, ізотонічний розчин натрію хлориду, предметні стекла, пінцет, бактеріологічна петля, спиртівка, сірники, маркер, банка з ватою, посудина для фарбування, вода для промивання препаратів, барвники (фуксин Пфейффера, метиленовий синій, папірці, пофарбовані за Синьовим, розчин Люголя), 96 % етиловий спирт, фільтру­вальний папір для висушування препаратів, пуста чашка Пе-трі, гумові рукавички.

План

1. 
   Матеріал для мікроскопічного дослідження.
   
2. 
   Поняття про тинкторіальні властивості мікроорганізмів.
   

1. 
   Виготовлення мазків-нрепаратів із патологічного матері­алу.
   
2. 
   Виготовлення мазків-ирепаратів із культури мікроорга­нізмів.
   

3. 
   Фарбування препаратів простим методом і за Грамом.
   

3. 
   Ознайомлення з методикою фарбування препаратів для виявлення капсул, кислото-, спирто- та лугостійких бак­терій, спор, включень.
   

Хід заняття 1. Матеріал для мікроскопічного дослідження

Виявлення патогенних мікроорганізмів в патологічному ма­теріалі за допомогою мікроскопа називається мікроскопічним методом лабораторної діагностики. Для мікроскопії викорис­товують мокротиння, гній, кров, осад спинномозкової рідини і сечі, мазки зі слизових оболонок, зскрібок з уражених ділянок шкіри, уражене волосся, нігті, а також відбитки уражених ор­ганів.
2. Поняття про тинкторіальні властивості мікроорганізмів
Мікроорганізми мають настільки малі розміри, що ви­вчати їх у незабарвленому вигляді під світловим мікроско­пом неможливо, до того ж вони прозорі. Тому частіше їх вивчають у забарвленому стані. Вивчення мікроорганізмів у пофарбованому препараті дає змогу не тільки вивчити їх форму, розміщення, а й виявити деталі структури клітини (спору, капсулу), а також хімічний склад, через те, що різні хімічні речовини проявляють різну спорідненість до барвни­ків і після фарбування мають різний колір або різну інтен­сивність забарвлення.

Здатність мікроорганізмів сприймати барвники називають тинкторіальною (від лат. НпсШга — настоянка) властивістю.

3. Виготовлення мазків-препаратів із патологічного матеріалу

Для виявлення мікроорганізмів у патологічному матеріалі готують мазки на предметному склі. Предметні стекла готують заздалегідь. їх миють, знежирюють і зберігають в етиловому спирті або суміші Нікіфорова (суміш етилового спирту та діети­лового ефіру 1:1) у широкогорлій банці з притертою пробкою. Перед роботою їх витирають насухо. Тримати скло слід І і II пальцями лівої руки за ребра.

Завдання 1. Виготовте мазок із в'язкого матеріалу (мо­кротиння або гною).

Увага! Під час роботи з патологічним матеріалом дотри­муйтесь техніки безпеки.
Алгоритм "Виготовлення мазка із в'язкого матеріалу":

• 
  протріть насухо 2 знежирених предметних стекла;
  

• 
  поставте свій номер у верхньому лівому куті кожного скла;
  
• 
  нанесіть пастерівською піпеткою патологічний матеріал на середину скла;
  
• 
  накрийте його другим склом так, щоб 1/3 частина кож­ного скла була вільною, злегка притисніть (мал. 5);
  
• 
  розведіть стекла в різні сторони, взявши їх за вільні кінці І і II пальцями обох рук;
  

• 
  залиште мазки па столі для висихання.
  

Завдаїшя 2. Виготовте мазок із крові. Алгоритм "Виготовлення мазка із крові":

• 
  
  підготуйте 2 предметних стекла (одне з них повинно бути вужчим і мати шліфований вузький кінець);
  

• 
  поставте свій номер на ширшому склі;
  

• 
  нанесіть краплю крові пастерівською піпеткою на шир­ше скло ближче до правого кінця; поставте друге скло шліфованим кінцем у краплю крові, нахиліть його впра­во під кутом 45°;
  
• 
  проведіть ним по першому склу справа наліво на 3/4 скла (мал. 6);
  
• 
  опустіть вузьке скло в дезінфекційний розчин;
  
• 
  залиште мазок на столі для висихання.
  

Увага! Правильно виготовлений мазок повинен мати світло-рожеве забарвлення і бути рівномірним за товщиною.

Завдання 3. Виготовте препарат "товста крапля". Алгоритм "Виготовлення препарату "товста крапля":

• 
  підготуйте 2 предметних стекла;
  
• 
  поставте свій номер на одному з них;
  
• 
  нанесіть пастерівською піпеткою краплю крові на сере­дину підписаного скла;
  
• 
  розмажте цю краплю кутом другого скла до величини мо­нети вартістю 1 копійка;
  
• 
  опустіть друге скло в дезінфекційний розчин;
  
• 
  залиште препарат на столі для висихання.
  

Завдання 4. Ознайомтеся з методикою виготовлення маз­ків із слизу, взятого ізротоглотки (зіва), мазків-відбитків з органів і тканин, сечі, спинномозкової рідини.

1. Виготовлення мазка із слизу, взятого з ротоглотки.

Мазок із ротоглотки беруть стерильним тампоном з мигда­ликів, роблять мазок на предметному склі, висушують на пові­трі, фіксують хімічним способом.

2. Виготовлення мазків-відбитків з органів і тканин секцій-
ного матеріалу.


Поверхню органа припалюють пагрітими бланшами пінцета або нагрітим скальпелем. Зрізають поверхневий шар. З глиби­ни вирізають невеликий шматочок тканини, беруть її пінцетом і прикладають поверхнею зрізу до предметного скла декілька разів. Отримують послідовиий ряд мазків-відбитків. Мазки фіксують хімічним способом.

3. Виготовлення мазків із сечі, ліквору (від лат. ^иог — спинномозкова рідина).

Маленьку краплю рідини (сечі чи ліквору) бактеріологіч­ною петлею наносять на предметне скло і розмазують до розмі­ру монети вартістю 1 копійка. Висушують на повітрі, фіксують хімічним методом.
Увага! Мазки, виготовлені з в'язкого матеріалу і крові, після перевірки викладачем опустіть у дезінфекційний роз­чин.
4. Виготовлення мазків із культури мікроорганізмів

Мазки з культури мікроорганізмів виготовляють для ви­вчення їх морфології та тинкторіальних властивостей.
Увага! Під час роботи з живими культурами ретельно до­тримуйтесь правил техніки безпеки.
Завдання 5. Виготовте мазок із бульйонної культури.
Алгоритм "Виготовлення мазка із бульйонної культури":

• 
  підготуйте предметне скло, нанесіть контури майбутньо­го мазка;
  

• 
  переверніть скло (нанесений контур знизу);
  
• 
  у лівому верхньому куті скла поставте свій номер;
  

• 
  зафламбуйте скло у полум'ї спиртівки (скло тримати пін­цетом);
  

• 
  покладіть скло у кришку чашки Петрі;
  

• 
  зафламбуйте бактеріологічну петлю, візьміть бульйонну культуру;
  

• 
  нанесіть краплю культури на предметне скло, розітріть;
  
• 
  зафламбуйте бактеріологічну петлю;
  
• 
  залишіть мазок для висихання.
  

Увага! Висушувати мазки слід на повітрі. Під впливом високої температури структура мікробної клітини порушу­ється.

Завдання 6. Виготовте мазок з агарової культури. Алгоритм "Виготовлення мазка з агарової культури":

• 
  підготуйте предметне скло, нанесіть контури майбутньо­го мазка;
  
• 
  переверніть скло (нанесений контур знизу);
  
• 
  у лівому верхньому куті скла поставте свій номер;
  
• 
  зафламбуйте скло у полум'ї спиртівки (скло тримати пін­цетом);
  
• 
  зафламбуйте бактеріологічну петлю;
  
• 
  нанесіть краплю стерильного ізотонічпого розчину на­трію хлориду на предметне скло;
  
• 
  зафламбуйте бактеріологічну петлю;
  
• 
  відкрийте лівою рукою чашку Нетрі з ростом культури мікроорганізмів;
  
• 
  притуліть бактеріологічну петлю до стійки чашки Петрі (охолодження петлі);
  
• 
  візьміть петлею матеріал з однієї колонії;
  

Увага! Слід брати колонію мікроорганізмів, а не агар!

• 
  закрийте чашку Петрі;
  
• 
  нанесіть матеріал на суху поверхню скла поряд із кра­плею ізотонічного розчину натрію хлориду, розітріть;
  
• 
  рівномірно розмішайте матеріал із краплею ізотонічного розчину натрію хлориду;
  
• 
  зафламбуйте бактеріологічну петлю;
  
• 
  залишіть мазок для висихання.
  

Увага! Мазок має бути тонким, прозорим, рівномірним, невеликим.
Фіксування мазків. Мазки фіксують для: закріплення мате­ріалу на склі, знезараження, кращого фарбування (вбиті мікро­би краще поглинають барвник).

Для фіксації мазків використовують два способи: фізичний і хімічний.

Фізичний спосіб. Фіксацію проводять у полум'ї спиртівки протягом 6 с. Для цього скло беруть піпцетом або І і II пальця­ми правої руки і проводять тричі повільно через верхню части­ну полум'я мазком догори. Правильність фіксації перевіряють, торкаючись нижньою поверхнею скла тильної сторони лівої руки. Мазок повинен бути гарячим, але не обпікати руку.

Цим методом фіксують мазки, виготовлені з культури мі­кроорганізмів, за умови, що під час нагрівання не змінюється структура мікробної клітини.

Хімічний спосіб. Для фіксації використовують хімічні речо­вини: безводний метиловий спирт — фіксують протягом 5 хв, спирт етиловий 96 % — 10—15 хв, суміш Нікіфорова — 10— 15 хв, ацетон — 5 хв, суміш парів хлоридної кислоти і формалі­ну — декілька секунд.

Хімічним способом фіксують мазки, виготовлені із патоло­гічного матеріалу, а також з культури в тому разі, коли під час нагрівання може порушитися структура бактеріальної клітини (кансульні форми бактерій, спірохети).

Зафіксований мазок називається препаратом.
Завдання 7. Зафіксуйте мазки, виготовлені з агарової і бульйонної культури, фізичним способом.

Алгоритм "Фіксація мазка фізичним способом":

• 
  візьміть пінцетом предметне скло з висушеним мазком;
  
• 
  проведіть тричі через верхню частину полум'я спиртів­ки;
  
• 
  доторкніться нижньою поверхнею скла до тильної сторо­ни лівої руки (перевірка правильності фіксації).
  

Увага ! Забороняється залишати на відкритих місцях або в неопечатаних сховищах незафіксовані мазки після закін­чення роботи!

5. Фарбування препаратів простим методом і за Грамом

Під час простого методу фарбування використовують один барвник — частіше це фуксин Пфейффера або метиленовий си­ній. Цей метод ще називається орієнтовним, оскільки його ви­користовують тільки для виявлення мікробів у патологічному матеріалі, визначення їх кількості, форми, взаємного розташу­вання.

Завдання 8. Пофарбуйте препарат, виготовлений з буль­йонної культури, фуксином Пфейффера, та препарат, виго­товлений із агарової культури, метиленовим синім.

Увага! Принцип фарбування однаковий.
Алгоритм "Фарбування препарату простим методом":

• 
  помістіть препарат на підставку в посудину для фарбу­вання;
  
• 
  нанесіть барвник піпеткою так, щоб він закрив весь пре­парат;
  
• 
  проконтролюйте термін дії барвника (фуксин Пфейффе-ра — 1—2 хв, метиленовий синій — 3—5 хв);
  
• 
  промийте препарат водою;
  
• 
  висушіть препарат фільтрувальним папером.
  

Метод фарбування мазків-препаратів за Грамом належить до складних методів, тому що на мазок наносять два барвни­ки, один з яких є основним, а інший — додатковим. Ці методи називають ще диференціальними, оскільки вони дають змогу розрізнити окремі групи бактерій, а також виявити хімічний склад і структуру бактеріальної клітини.
Завдання 9. Виготовте два мазки: перший — з культури ешерихій, другий — з культури стафілокока. Зафіксуйте їх фізичним способом і пофарбуйте препарати за Грамом.

Під час фарбування за Грамом бактерії поділяють на 2 гру­пи: грампозитивні (забарвлюються в фіолетовий колір) та грам-негативні (забарвлюються в червоний колір). Різний колір за­барвлення пояснюється різною будовою їх клітинної стінки. Основну частину клітинної стінки грампозитивних бактерій складає пептидоглікан — понад 90 %. Він має форму сітки. У грампозитивних бактерій він утворює 5—6, інколи до 40 шарів. Коли бактерії фарбують генціановим фіолетовим, а потім розчи­ном Люголя, то утворюється нерозчинний у спирті і воді комп­лекс йоду з барвником. Цей комплекс не вимивається спиртом ;і водою через слабку проникність клітинної стінки (пеитидоглі-кану). Грампозитивні бактерії залишаються забарвленими у фі­олетовий колір. Дофарбовування препарату фуксином Пфейф-фера не змінює фіолетового кольору клітин мікрооганізмів.

У грамнегативних бактерій пептидоглікан утворює пере­важно один шар, зрідка — два. Тому комплекс генціанового фіолетового з йодом легко вимивається спиртом і водою, вна­

слідок чого бактерії знебарвлюються. Знебарвлені бактерії за­барвлюються фуксином Пфсйффера у червоний колір.
Алгоритм "Фарбування за Грамом":

• 
  покладіть на мазок папірець, пофарбований за Сітьовим, змочіть його водою — 2—3 краплі, витримайте 2 хв;
  
• 
  зніміть папірець пінцетом, нанесіть розчин Люголя — 1 хв (до почорніння);
  

• 
  нанесіть 96 % етиловий спирт — 20—ЗО с;
  
• 
  промийте водою;
  
• 
  нанесіть фуксин Пфсйффера на 1—2 хв;
  
• 
  промийте водою;
  
• 
  висушіть препарат фільтрувальним папером.
  

Завдання 10. Підготуйте мікроскоп, розгляньте препа­рат, визначте форму, розміщення та колір бактеріальних клітин.
6. Ознайомлення з методикою фарбування препаратів для виявлення капсул, кислото-, спирто- та лугостійких бактерій, спор, включень
Для виявлення капсул, кислото-, спирто- та лугостійких бактерій, спор і включень використовують складні методи фар­бування.

Для виявлення капсул препарат фарбують за Буррі—Гінсом. Для цього на предметному склі культуру змішують із краплею чорної туші, потім роблять мазок іншим предметним склом (як мазок із крові), висушують на повітрі, фіксують хімічним спо­собом і, після промивання водою, наносять фуксин Пфейффера. Потім знову промивають водою і висушують на повітрі. Капсу­ли містять понад 98 % води, тому погано утримують барвник. На темному фоні препарату капсули залишаються безбарвни­ми, клітини бактерій набувають червоного кольору.

Для виявлення кислотостійких мікобактерій туберкульозу, лепри, а також деяких актиноміцетів застосовують фарбування препарату за Цілем—Нільсеном. У цих мікроорганізмів у клі­тинній стінці міститься багато (понад 40 %) ліпідів, воску, окси­кислот, що зумовлює їх стійкість до кислот, лугів, спиртів. Вона також малоироникна для розведених барвників, тому для фарбу­ваїшя використовують концентрований барвник (фуксии Ціля), що містить протраву (5 % фенолу). Фарбування проводять при нагріванні (в кии'ячому шарі). За таких умов всі елементи пре­парату (клітини макроорганізму, стороння мікрофлора і кисло­тостійкі мікобактерії) набувають червоного кольору. Після обро­блення препарату сульфатною кислотою і водою кислотостійкі мікобактерії залишаються червоного кольору, всі інші елементи препарату знебарвлюються. Другим барвником, розведеним ме­тиленовим синім, фарбують без підігрівання, тому він всереди­ну клітини кислотостійких мікобактерій не проникає і вони не змінюють червоного забарвлення. Всі інші знебарвлені елементи препарату набувають синього кольору. При мікроскопії' па синьо­му фоні видно кислотостійкі мікобактерії червоного кольору.

Для виявлення спор препарат фарбують за Ожешко. Щоб барвник проник всередину спори, перед фарбуванням мазок обробляють кислотою для розпушування оболонки спори. Піс­ля промивання водою його фіксують і фарбують за Цілем— Нільсеном. Вегетативні клітини набувають синього кольору, спора — червоного.

Для виявлення включень препарат фарбують за Нейссером. Для цього на препарат наносять синьку Нейссера, потім розчин Люголя, після промивання водою па препарат наносять барв­ник везувін і знову промивають водою. Вегетативна клітина на­буває жовтого кольору, зерна волютину —- темно-коричневого. Цей метод фарбування використовують для виявлення зерен волютину (у коринебактерій дифтерії).

Завдання 11. Оформіть щоденник. Замалюйте в щоден­нику кольоровими олівцями вигляд мікроорганізмів під мі­кроскопом.