Главная страница
Навигация по странице:

  • 22. Виды уборки операционной и перевязочной, правила поведения медперсонала и студентов в операционной.

  • 23. Современные Способы обработки рук хирурга

  • 24. Способы обработки кожи операционного поля.

  • ПЕРЕЛИВАНИЕ КРОВИ И КРОВЕЗАМЕНИТЕЛЕЙ 25. Учение о изогемагглютинации и группы крови, методики определения групп крови.

  • 26. Выбор крови, совместимой в отношении групп крови АВО и резус-антигена D . (учебник) Система Резус (Rh-Hr).

  • 27. Определение группы крови стандартными изогемагглютинирующими сыворотками. 28. Определение группы крови по АВО цоликлонам.

  • 29. Резус – фактор и способы его определения.

  • 30. Определение резус-принадлежности при помощи стандартного универсального реагента. 31. Пробы на совместимость при переливании крови.

  • 32. Проба на совместимость по группам крови системы АВО.

  • 33. Определение совместимости крови по резус-фактору. Проба на совместимость с использованием 33 % раствора полиглюкина

  • 34. Биологическая проба при переливании крови, техника и контроль за переливанием крови, протокол переливания крови.

  • аа. Программа (лечебный факультет) асептика


    Скачать 1.31 Mb.
    НазваниеПрограмма (лечебный факультет) асептика
    Дата10.11.2022
    Размер1.31 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаkhirurgia_ekzamen_2016.doc
    ТипПрограмма
    #781043
    страница4 из 24
    1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   24

    21. Операционный блок, его устройство и оборудование.

    Операционный блок. В состав операционного блока входят операционная (рис. 10), предоперационная, наркозная, стерили-зационная и материальная комнаты. Они должны располагаться изолированно от палат. Одна­ко необходимо предусмотреть наличие чистой и гнойной опера­ционных Стены и потолок окрашивают масляной краской, пол вы­стилают керамической плиткой. В современных операционных стены облицовывают специальной плиткой, желательно не белой, а, например, салатового цвета, так как от белого цвета устают глаза хирурга.

    Отопление желательно паровое, с радиаторами, замуро­ванными в панель, чтобы на них не скапливалась пыль. Темпера­тура в операционной должна быть равномерной, в пределах 22—24°С.

    Освещение должно быть достаточно ярким и не должно искажать цвет. Окна не должны выходить на южную сторону. Прямые солнечные лучи затрудняют работу хирурга и перегре­вают помещение летом. Для освещения операционного поля применяют специальные бестеневые лампы, не дающие тени от головы и рук хирурга..

    Вентиляция. Операционная должна хорошо вентилиро­ваться. Для этого лучше применять приточно-вытяжную венти­ляцию с преобладанием притока.

    Уборка операционной. Различают: 1) текущую уборку — в процессе операции подбирают упавшие на пол шари­ки, вытирают запачканный кровью пол, после окончания опера­ции удаляют содержимое тазиков, испачканное кровью, загряз­ненное белье и т. д.; 2) заключительную уборку — после оконча­ния операционного дня тщательно моют пол и мебель, стены протирают на высоту человеческого роста; 3) генеральную убор­ку— один раз в неделю производят механическую и химическую обработку (дезинфекция) потолка, стен, пола, окон; 4) предва­рительную уборку — перед началом каждого операционного дня протирают горизонтальные поверхности, собирая влажной тряп­кой осевшую за ночь пыль.

    Предоперационная комната предназначена для под­готовки операционной медицинской сестры, хирурга и его помощ­ников к операции. Подготовка начинается с мытья рук. Для этой цели имеются специальные раковины со смесителями холодной и горячей воды, тазики, где производится мытье рук, песочные часы.

    Наркозная комната — это обычно специальное помеще­ние, где хранятся наркозная аппаратура, медикаментозные средства, применяемые анестезиологом, документация. Иногда в этой комнате проводят начальные этапы наркоза, а затем до­ставляют больного в операционную.

    22. Виды уборки операционной и перевязочной, правила поведения медперсонала и студентов в операционной.

    Предварительная (утренняя) уборка помещений заключается в удалении влажной чистой тряпкой пыли, осевшей за ночь на полу, подоконниках, оборудовании и других предметах; смачивании лизолом коврика для вытирания ног, лежащего у входа в операционную или перевязочную.
    Текущая уборка во время работы имеет особое значение для поддержания чистоты, поскольку возможно падение на пол загрязненного перевязочного материала.

    Заключительная уборка после работы занимает время не менее часа. Раскладывается по местам все то, что было приготовлено для работы. Разумеется, использованные инструменты и материалы подвергают предстерилизационной обработке с последующей стерилизацией. В резиновых перчатках убирают содержимое тазов и ведер, проверяют, не осталось ли где - либо использованные предметы. Ведра и тазы заливают 5% раствором лизола на 30 минут, затем споласкивают водопроводной водой и высушивают. Основная часть заключительной уборки приходится на влажную обработку потолка, стен, подоконников, пола, перевязочных и операционных столов, мебели и других предметов с использованием моющих и дезинфицирующих средств.

    Четвертым видом уборки является плановая или экстренная дезинфекция. Экстренная дезинфекция производится для ликвидации выявленного нарушения эпидемиологического режима, например, после перевязки больного с газовой гангреной. Плановая дезинфекция проводится раз в неделю. Для дезинфекции используют упомянутые растворы, но в более высоких концентрациях, увеличивается и время контакта растворов с дезинфицируемой поверхностью и предметами. Потолок и стены опрыскивают из гидропульта, после этого швабрами или тряпками, намотанными на длинную палку, протирают потолок и стены для удаления распыленного раствора.
    23. Современные Способы обработки рук хирурга

    Гигиенический уровень обработки рук включает два способа:

    1.

    Мытье рук мылом с водой – обеспечивает удаление загрязнений и

    снижение количества микроорганизмов. (скиния, велтосфер)

    2.

    Обработка рук кожным антисептиком – обеспечивает снижение

    количества микроорганизмов (Асептинол С, лижен, оллсепт ПРО)

    до безопасного

    уровня.

    Независимо от уровня обработки рук (гигиенический или хирургический)

    необходимо соблюдение следующих условий: коротко подстриженные ногти (до

    0,5 см), отсутствие искусственных ногтей и ювелирных изделий на руках

    Обработка рук хирургов производится в два этапа:

    I этап - мытье рук до верхней трети предплечий мылом с водой в течение двух

    6

    минут,

    затем высушивание стерильным полотенцем (салфеткой);

    II этап - обработка кожным антисептиком кистей рук, запястий и предплечий

    24. Способы обработки кожи операционного поля.

    Кожный антисептик при обработке

    неповрежденной кожи перед операцией следует наносить

    концентрическими кругами от центра к периферии, а при наличии

    гнойной раны - от периферии к центру

    После обработки области оперативного вмешательства кожным

    антисептиком проводиться изоляция операционного поля с помощью

    стерильных простыней, пеленок, полотенец, рекомендуется также

    использование комплектов однократного применения.

    Дополнительно возможна защита операционного поля с помощью

    инцизной пленки



    стерильное разрезаемое покрытие, наклеивается на операционное поле после антисептической обработки и отграничения

    стерильным бельем, предотвращает контаминацию раны кожной микрофлорой.

    Инцизная пленка наклеивается на операционное поле после полного высыхания

    кожного антисептика. Разрез кожи производиться непосредственно через

    пленку. При этом кожа остается закрытой в течение всего времени операции,

    что позволяет добиться полной стерильности операционного поля
    ПЕРЕЛИВАНИЕ КРОВИ И КРОВЕЗАМЕНИТЕЛЕЙ
    25. Учение о изогемагглютинации и группы крови, методики определения групп крови.

    К. Ландштейнер впервые обнаружил, что плазма, или сыво­ротка, одних людей способна агглютинировать (склеивать) эритро­циты других людей. Это явление получило наименование изогемагглютинации. В основе ее лежит наличие в эритроцитах антигенов, названных агглютиногенами и обозначаемых буквами А и В, а в плазме — природных антител, или агглютининов, именуемых α и β. Агглютинация эритроцитов наблюдается лишь в том случае, если встречаются одноименные агглютиноген и агглютинин: А и α, В и β.

    В крови одного и того же человека не может быть одноименных агглютиногенов и агглютининов, так как в противном случае про­исходило бы массовое склеивание эритроцитов, что несовместимо с жизнью. Возможны только четыре комбинации, при которых не встречаются одноименные агглютиногены и агглютинины, или че­тыре группы крови: I — αβ, II — Aβ, III — Вα, IV — АВ.

    Кроме агглютининов, в плазме, или сыворотке, крови содержатся гемолизины: их также два вида и они обозначаются, как и агглю­тинины, буквами α и β. При встрече одноименных агглютиногена и гемолизина наступает гемолиз эритроцитов.

    В плазме людей с II, III, IV группами крови имеются антиагглютиногены, покинувшие эритроцит и ткани. Обозначаются они, как и агглютиногены, буквами А и В

    Для решения вопроса о совместимости групп крови пользуются следующим правилом: среда реципиента должна быть пригодна для жизни эритроцитов донора (человек, который отдает кровь). Такой средой является плазма, следовательно, у реципиента должны учи­тываться агглютинины и гемолизины, находящиеся в плазме, а у донора — агглютиногены, содержащиеся в эритроцитах. Для реше­ния вопроса о совместимости групп крови смешивают исследуемую кровь с сывороткой, полученной от людей с различными группами крови

    Следовательно, кровь I группы совместима со всеми другими группами крови, поэтому человек, имеющий I группу крови, на­зывается универсальным донором. С другой стороны, эритроциты IV группы крови не должны давать реакции агглютинации при смешивании с плазмой (сывороткой) людей с любой группой крови, поэтому люди с IV группой крови называются универсальными реципиентами.

    26. Выбор крови, совместимой в отношении групп крови АВО и резус-антигена D.

    (учебник)

    Система Резус (Rh-Hr).

    Кроме антигенов системы АВО в эритроцитах людей имеется множество других антигенов, образующих различные групповые системы, независимые как от системы АВО, так и друг от друга.

    Наиболее важное значение при переливании крови, после групп крови АВО, имеют антигены системы резус D, C, E, с, е, Cw, особенно обладающий наибольшей активностью антиген D, называемый

    резус-фактором. Эти антигены, находясь в эритроцитах людей в различных

    сочетаниях, образуют 28 фенотипов (см. "Инструкцию по определению

    резус-принадлежности крови"). Так же, как и антиген D, любой другой фактор этой системы

    может вызвать образование изоиммунных антител у лиц, его не

    имеющих, однако значительно реже и, большей частью, лишь как

    сопутствующих антителам против антигена D.

    Главным отличием системы резус от системы АВО является то, чтов крови людей содержатся только агглютиногены этой системы, а антител по отношению к ним, подобных антителам альфа и бета системы АВО, обычно, в норме у людей не имеется. Однако у резус-отрицательных лиц при некоторых условиях (при переливании или при другом способе введения резус-положительной крови или во время беременности женщины резус-положительным

    плодом) может произойти сенсибилизация, т.е. могут образоваться

    изоиммунные антитела антирезус. Последствием этой сенсибилизации у беременной женщины является рождение детей с гемолитической болезнью или внутриутробная смерть плода. Поэтому наличие у женщин такого анамнеза, так же как сведения о трансфузионных реакциях как у женщин, так и у мужчин, уже указывают на возможное наличие у них резус-антител.

    Если больному, в крови которого имеются резус-антитела, ошибочно перелить резус-положительную кровь, то это приведет к явлению несовместимости. Лиц, в крови которых содержится резус-антиген D, т.е. резус-положительных (Rh+), около 85%.

    15% людей являются резус-отрицательными (rh-). (Вычислено

    среди лиц русской национальности).

    27. Определение группы крови стандартными изогемагглютинирующими сыворотками.
    28. Определение группы крови по АВО цоликлонам.

    Цоликлоны анти-А и анти-В являются продуктом гибридомных клеточных линий, полученных в результате слияния мышиных антителообразующих В-лимфоцитов с клетками мышиной миеломы. Индивидуальные гибридомные линии продуцируют гомогенные антитела только одного класса иммуноглобулинов, которые полностью идентичны по структуре и биологической активности. Антитела, продуцируемые клетками одного клона (потомство одной клетки), являются моноклональными.
    29. Резус – фактор и способы его определения.

    Резус-фактор, антиген, содержащийся в эритроцитах 85% людей, Учёт Р.-ф., как и группы крови, является обязательным при переливании крови. При парентеральном введении человеку любого отсутствующего у него агглютиногена системы Rh — Нr происходит выработка специфических антител;при повторном введении этого антигена происходит реакция "антиген — антитело", обусловливающая расстройства функций организма. Так, при переливании Rh — положительной крови Rh — отрицательному реципиенту, у которого уже имеются антитела к Rh, могут развиться гемотрансфузионные реакции: озноб, повышение температуры тела, кратковременные боли в пояснице, в тяжёлых случаях — массивный гемолиз с почечной недостаточностью. Отличительная особенность гемотрансфузионных Rh-рeaкций — позднее их проявление, через 1—2 ч после переливания крови. Лечение этих реакций — кровопускание с последующим введением Rh — отрицательной крови.

    При беременности Rh — отрицательной матери Rh — положительным плодом возможна её т. н. изоиммунизация, образующиеся антитела при повторной беременности могут привести к внутриутробной гибели плода с последующим самопроизвольным выкидышем или неразвивающейся беременностью, а в случае рождения живого ребёнка — к гемолитической болезни новорождённых.

    Rh-кoнфликт возникает не ранее 7—8-й недели беременности, когда начинается формирование кроветворения у зародыша. Профилактика Rh-кoнфликта — введение антирезус-гамма-глобулина.

    30. Определение резус-принадлежности при помощи стандартного универсального реагента.

    31. Пробы на совместимость при переливании крови.

    Целью проведения проб на индивидуальную совместимость является предотвращение трансфузий несовместимых компонентов крови. Под совместимостью понимается благоприятное сочетание крови донора и реципиента.

    32. Проба на совместимость по группам крови системы АВО.

    Пробу производят на планшете со смачиваемой поверхностью.

    1. Планшет маркируют, для чего указывают Ф.И.О. и группу крови реципиента, Ф.И.О. и группу крови донора и номер контейнера с кровью.

    2. Из пробирки с исследуемой кровью реципиента берут осторожно пипеткой сыворотку и наносят на планшет 1 большую каплю (100 мкл).

    3. Из сегмента трубки пластикового мешка с трансфузионной средой, которая приготовлена для трансфузии именно этому больному, берут маленькую каплю (10 мкл) донорских эритроцитов и наносят рядом с сывороткой реципиента (соотношение сыворотки и эритроцитов 10:1).

    4. Капли перемешивают стеклянной палочкой.

    5. Наблюдают за реакцией 5 минут, при постоянном покачивании планшета. По истечении этого времени добавляют 1-2 капли (50-100 мкл) раствора натрия хлорида, 0,9%.

    Трактовка результатов реакции:

    реакция в капле может быть положительной или отрицательной.

    а) положительный результат (+) выражается в агглютинации эритроцитов, агглютинаты видны невооруженным глазом в виде мелких или крупных красных агрегатов. Кровь несовместима, переливать нельз

    б) при отрицательном результате (-) капля остаётся гомогенно окрашенной в красный цвет, агглютинаты в ней не обнаруживаются. Кровь донора совместима с кровью реципиента

    33. Определение совместимости крови по резус-фактору.

    Проба на совместимость с использованием 33 % раствора полиглюкина

    Порядок проведения исследования:

    1. Для исследования берут пробирку (центрифужную или любую другую, вместимостью не менее 10 мл). Пробирку маркируют, для чего указывают Ф.И.О. и группу крови реципиента, и Ф.И.О донора, номер контейнера с кровью.

    2. Из пробирки с исследуемой кровью реципиента осторожно берут пипеткой сыворотку и вносят 2 капли (100 мкл) на дно пробирки.

    3. Из сегмента трубки пластикового мешка с трансфузионной средой, которая приготовлена для трансфузии именно этому больному, берут одну каплю (50 мкл) донорских эритроцитов вносят в эту же пробирку, добавляют  1 каплю (50 мкл) 33% раствора полиглюкина.

    4. Содержимое пробирки перемешивают путём встряхивания и затем медленно поворачивают по оси, наклоняя почти до горизонтального положения так, чтобы содержимое растекалось по ее стенкам. Эту процедуру выполняют в течение пяти минут.

    5. Через пять минут в пробирку добавляют по 3-5 мл физ. раствора. Содержимое пробирок перемешивают 2-3-кратным перевертыванием пробирок (не встряхивая!)

    Трактовка результатов реакции:

    результат учитывают, просматривая пробирки на свет невооружённым глазом или через лупу.

    Если в пробирке наблюдается  агглютинация в виде взвеси мелких или крупных красных комочков на фоне просветлённой или полностью обесцвеченной жидкости, значит, кровь донора не совместима с кровью реципиента. Переливать нельзя!

    Если в пробирке равномерно окрашенная, слегка опалесцирующая жидкость без признаков агглютинации эритроцитов — это значит, что кровь донора совместима с кровью реципиента в отношении антигенов системы Резус и другими клинически значимыми системами
    34. Биологическая проба при переливании крови, техника и контроль за переливанием крови, протокол переливания крови.

    днократно переливают 10 мл гемотрансфузионной среды со скоростью 2-3 мл (40-60 капель) в минуту, затем переливание прекращают и в течение 3 мин наблюдают за реципиентом, контролируя у него пульс, частоту дыхания, артериальное давление, общее состояние, цвет кожи, измеряют температуру тела. Такую процедуру повторяют еще дважды. Появление в этот период даже одного из таких клинических симптомов, как озноб, боли в пояснице, чувство жара и стеснения в груди, головной боли, тошноты или рвоты, требует немедленного прекращения трансфузии и отказа от переливания данной трансфузионной среды. Образец крови направляют в специализированную лабораторию службы крови для проведения индивидуального подбора эритроцитной массы.

    Экстренность трансфузии компонентов крови не освобождает от выполнения биологической пробы. Во время ее проведения возможно продолжение переливания солевых растворов.

    После окончания переливания донорский контейнер с небольшим количеством оставшейся гемотрансфузионной среды, использованной для проведения проб на индивидуальную совместимость, подлежит обязательному сохранению в течение 48 часов при температуре +20С…+80С.

    Реципиент после переливания соблюдает в течение двух часов постельный режим и наблюдается лечащим или дежурным врачом. Ежечасно ему измеряют температуру тела, артериальное давление, фиксируя эти показатели в медицинской карте больного.
    1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   24


    написать администратору сайта