6. Определять пригодность крови для переливания.
1) Проверить правильность паспортизации: наличие этикетки с номером, датой заготовки и сроком годности, обозначением группы и резус- принадлежности, фамилии и инициалов донора (или номера), наименованием учреждения-заготовителя, подписью врача, результатом исследования на вирусные гепатиты, ВИЧ инфекцию, RW, краткой инструкции по порядку действий при переливании.
2) Проверить срок годности, который обозначается на этикетке рядом с датой заготовки.
3) Проверить герметичность упаковки. Недопустимо малейшее нарушение ее целостности, в том числе следов прокалывания крышки флакона иглой и подтекания.
4) Оценить макроскопические характеристики среды. Кровь должна быть разделена на 3 слоя: внизу красные эритроциты, выше - узкая серая полоска лейкоцитов и тромбоцитов; над ними - желтая прозрачная плазма. Трёхслойность характерна только для цельной крови, хранящейся в стеклянных флаконах. Эритроцитарная масса не должна иметь «лаковой» окраски, характерной для гемолиза. Плазма должна быть прозрачной, не должна содержать пленок, хлопьев (признаки инфицирования), а также сгустков или красного оттенка (признак гемолиза).
5) Плазма может быть непрозрачна при хилёзной крови (высокое содержание нейтральных жиров). При наличии белой пленки на плазме - подогреть до 37°С (под контролем термометра!). Если после этого плазма становится прозрачной, то хилёз подтверждается и она пригодна к переливанию; если остается мутной - не пригодна.
Если при оценке хотя бы одно из представленных требований (паспортизация, герметичность, макроскопические характеристики) не выдержано, такой компонент крови не пригоден к переливанию.
7. Определить группу крови по системе АВО и Rh.
При плановом исследовании врач стационара определяет группу крови по стандартным изогемагглютинирующим сывороткам или с помощью цоликлонов, после чего посылает кровь в серологическую лабораторию для проверки группы перекрестным методом.
Группа крови считается определенной только тогда, когда лаборатория подтвердила данные, полученные врачом стационара. Если результаты исследований расходятся между собой, оба исследования нужно повторить.
В экстренном порядке (при кровотечении необходимо срочное переливание крови), врач стационара определяет группу сам (в лаборатории перепроверка производится, но постфактум).
Определение группы крови и резус-фактора цоликлонами анти-А, анти-В и Анти-D по системе AB0 и системе Резус
Определение группы крови и резус-фактора цоликлонами анти-А, анти-В и Анти-D суперявляется наиболее современным и относительно простым методом. Для определения группы крови используются цоликлоны, т.е. моноклональные антитела.
Что требуется для определения группы крови и резус-фактора?
– цоликлон анти-А;
– цоликлон анти-В;
– цоликлон анти-D;
– раствор натрия хлорида 0,9 %; специальный планшет; стерильные палочки.
Алгоритм и порядок определения группы крови
Нанести цоликлоны анти-А, анти-В на специальный планшет по одной большой капле (0,1 мл), под соответствующими надписями.
Рядом с ними капнуть исследуемую кровь (0,01–0,03 мл) по одной маленькой капле. Перемешать их и наблюдать за наступлением или отсутствием реакции агглютинации в течение 3 мин. При сомнительном результате добавить 1 каплю 0,9% физиологического раствора.
Расшифровка результатов определения группы крови
если реакция агглютинации наступила с анти-А цоликлоном, то исследуемая кровь относится к группе А (II);
если реакция агглютинации наступила с анти-B цоликлоном, то исследуемая кровь относится к группе B (III);
если реакция агглютинации не наступила с анти-А и с анти-B цоликлонами, то исследуемая кровь относится к группе 0 (I);
если реакция агглютинации наступила с анти-А и с анти-B цоликлонами, то исследуемая кровь относится к группе AB (IV)
Определение резус-фактора цоликлоном Анти-D
На планшете смешивают большую каплю (0,1 мл) анти-D цоликлона и маленькую каплю (0,01 мл) исследуемой крови пациента. За наступлением реакции агглютинации или её отсутствием наблюдают в течение 3 мин.
если реакция агглютинации наступила с цоликлоном анти-D , то исследуемая кровь относится к резус-положительной (Rh+)
если реакция агглютинации не наступила с цоликлоном анти-D, то исследуемая кровь относится к резус-отрицательной (Rh—)
Другими словами, при смешивании цоликлона Анти-D с резус-положительными эритроцитами наступает реакция агглютинации, а если кровь резус-отрицательная — агглютинация отсутствует
Стандартные изогемагглютинирующие сыворотки групп О (I), А (II), В (III) и АВ (IV) двух различных серий. Сыворотка должна быть прозрачной, без признаков гниения. Для удобства стандартные гемагглютинирующие сыворотки различных групп подкрашивают в определенный цвет: О (I) — бесцветная (серая), А (II) — синяя, В (III) — красная, АВ (IV) — ярко-желтая.
Техника проведения реакции с помощью стандартных изогемагглютинирующих сывороткок.
1. На тарелку (пластинку) наносят стандартные изогемагглютииирующие сыворотки I, II, Ш групп в объеме 0,1 мл (одна большая капля около 1 см в диаметре). Во избежание ошибок наносят две серии сывороток каждой из групп. Всего получается 6 капель.
2. Шесть капель исследуемой крови величиной приблизительно с булавочную головку 0,01 мл (маленькая капля) последовательно переносят сухой стеклянной палочкой на пластину в 6 точек, каждую рядом с каплей стандартной сыворотки (количество испытуемой крови должно быть приблизительно в 10 раз меньше количества стандартной сыворотки), потом их осторожно с помощью стеклянных палочек с закругленными краями перемешивают.
3. После смешивания тарелку периодически покачивают.
Агглютинация начинается в течение первых 10-30 секунд.
4. В те капли, где произошла агглютинация, добавляют по одной капле изотонического раствора хлорида натрия, после чего оценивают результат реакции.
При положительной реакции обычно в течение первых 10-30 секунд в смеси появляются видимые невооруженным взглядом мелкие красные зернышки (агглютинаты), состоящие из склеенных эритроцитов.
Если сыворотки всех трех групп дали положительную реакцию, это указывает на то, что испытуемая кровь содержит оба агглютиногена — А и В и принадлежит к группе AB(IV). Однако в таких случаях для исключения неспецифической реакции агглютинации (холодовая агглютинация, пангглютинация, аллергия) необходимо провести дополнительное контрольное исследование испытуемой крови со стандартной изогемагглютинирующей сывороткой группы AB(IV), не содержащей агглютининов. Лишь отсутствие агглютинации в этой капле при наличии агглютинации в каплях, содержащих стандартные сыворотки групп 0(1), A(II) и B(III), позволяет считать реакцию специфической и отнести исследуемую кровь к группе АВ0 (IV).
8. Подготовить систему для внутривенной инфузии.
1) Тщательно вымыть руки тёплой водой с мылом, обработать их спиртом.
2) Обработать металлическую крышку флакона стерильным ватным шариком, смоченным в спирте, и снять её стерильным пинцетом; резиновую пробку обработать стерильным шариком, смоченным 70% раствором спирта.
3) Вскрыть упаковочный пакет и распаковать систему.
4) Ввести иглу воздуховода до упора в пробку флакона, свободный конец короткой трубки воздуховода расположить вдоль флакона таким образом, чтобы её конец был на уровне дна флакона, и закрепить аптечной резинкой или медицинским пластырем.
5) Ввести иглу для прокалывания пробки во флакон до упора; флакон перевернуть и закрепить на специальном штативе.
6) Повернуть капельницу в горизонтальное положение (параллельно полу), открыть зажим и заполнить капельницу до половины объёма.
7) Закрыть зажим и возвратить капельницу в исходное (вертикальное) положение; при этом фильтр капельницы должен быть полностью закрыт жидкостью для переливания.
8) Чтобы заполнить раствором всю систему, открыть зажим и медленно заполнить всю систему до полного вытеснения воздуха в трубке и появления капель из иглы для инъекции; зажим закрыть.
9) Чтобы вытеснить из системы оставшиеся в ней пузырьки воздуха, конец трубки с канюлей для иглы подержать выше перевёрнутого флакона, слегка постукивая по стенке трубки, пока пузырьки не отделятся от стенки и не выйдут через наружное отверстие трубки.
9. Применять препараты с гемостатическим действием.
Гемостатические средства — лекарственные средства, способствующие остановке кровотечений.
С целью предупреждения и остановки кровотечений применяются препараты, повышающие свёртываемость крови (гемостатики). Гемостатические средства представлены препаратами разных групп и различаются по механизму действия.
Местно для остановки капиллярных и паренхиматозных кровотечений применяют тромбин (препарат естественного тромбина) и другие местные гемостатики (гемостатическая губка с амбеном, гемостатическая коллагеновая губка), оказывающие не только гемостатическое, но и антисептическое действие, способствующие регенерации тканей и заживлению ран.
К гемостатикам общего (системного) действия относится витамин K и его гомологи (менадиона натрия бисульфит). Витамин K называют противогеморрагическим или коагуляционным витамином, так как он участвует в биосинтезе протромбинового комплекса (протромбина и факторов Ⅶ, Ⅸ и Ⅹ) и способствует нормальному свёртыванию крови. При дефиците в организме витамина K развиваются геморрагические явления.
С целью нормализации свёртывания крови у больных гемофилией, или при нарушениях гемостаза, вызванных циркулирующими ингибиторами факторов свёртывания крови, применяют специальные препараты, содержащие различные факторы свёртывания крови (антигемофильный фактор Ⅷ). В некоторых случаях для уменьшения кровотечения применяют также экстракты и настои из растительного сырья (листья крапивы, трава тысячелистника, пастушьей сумки, перца водяного).
Специфическим антагонистом гепарина, способствующим нормализации свёртываемости крови при его передозировке, является протамина сульфат. Механизм его действия связан с образованием комплексов с гепарином
10. Правильно выбирать кровезаменители и препараты с дезинтоксикационным действием.
Кровезамещающие жидкости делятся:
гемодинамические (противошоковые): полиглюкин быстро увеличивает объем циркулирующей крови или же предупреждает его снижение; реополиглюкин нормализует нарушение микроциркуляции; желатиноль применяют при шоке, гнойно-септических осложнениях;
дезинтоксикационные. Показания к применению детоксикационных кровезаменителей:лечение токсических форм желудочно-кишечных заболеваний (дизентерия, диспепсия, сальмонеллезы), интоксикации различного происхождения (послеоперационная, раковая, алкогольная), лечение ожоговой болезни в фазе интоксикации и т.д
препараты белкового парентерального питания (белковые гидролизаты и аминокислотные смеси). Показания к применению препаратов для парентерального питания:оперативные вмешательства, тяжелые травмы, ожоги, массивная кровопотеря, гнойно-септические состояния, лучевая болезнь и т.д.
регуляторы водно-солевого и кислотно-щелочного равновесия. Показания к применению регуляторов водно-солевого баланса: лечение травматического, ожогового шока, гнойно-септических заболеваний, а также для профилактики нарушений водно-солевого баланса и кислотно-основного состояния при больших операциях и в послеоперационном периоде.
Кровезаменители с функцией переноса кислорода. Показания: лечение кровопотерь, инфаркта миокарда, черепно-мозговых травм, различных видов шока, постреанимационной болезни и др.
кровезаменители комплексного действия(полифер, реоглюман)
Проведение биологической пробы. При переливании некоторых кровезаменителей необходимо проводить биологическую пробу (полиглюкин, белковые гидролизаты, жировые эмульсии и. т. д.). Биологическая проба проводится путем прерывистого введения 5, 10,15 мл препарата с интервалом 3 мин. Отсутствие реакции (беспокойство, тахикардия, затрудненное дыхание, гиперемия лица, зуд кожи, появление сыпи, падение артериального давления) свидетельствует о возможности трансфузии. Для некоторых растворов биологическая проба проводится по другим схемам. Так при переливании полиглюкина после вливания первых 10 и последующих 30 капель делают перерыв на 3 мин и наблюдают за реакцией. Растянутая биологическая проба проводится при переливании жировых эмульсий. Первые 10 минут вводят препарат со скоростью 10 - 20 капель в 1 минуту, в случае отсутствия реакции препарат вводят 20 - 30 капель в минуту.
11. Определить стерильность белья, материалов в биксе, инструментов.
Способы оценки стерильности материала в биксах делятся на прямые и непрямые (косвенные).
Прямой (бактериологический) способ основан на выращивании микроорганизмов с посевов, взятых с перевязочного материала, белья, или на применении бактериологических тестов для контроля стерильности.
Методика посева: в операционной вскрывают бикс маленькими кусочками марли, смоченными в физиологическом растворе, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию.
Методика бактериологических тестов: в глубину стерилизуемого материала операционная сестра помещает приготовленные в бактериологической лаборатории пробирки с тестами спороносных (непатогенных) бактерий (сенная палочка, картофельная палочка), по окончании стерилизации сестра возвращает эти пробирки в бактериологическую лабораторию для исследования.
Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала. Недостаток этих способов состоит в том, что ответ получают поздно - через 2-3 дня. Бактериологических способ является самым надежным, он должен применяться систематически - не реже одного раза в 10 дней. Результаты исследования заносят в специальный журнал.
Непрямые способы контроля стерильности материала применяют при каждой стерилизации. Для этого в середину материала, уложенного в бикс, помещают ампулу, флакон или пробирку с порошкообразными веществами с известной точкой плавления (А). Например, бензойная кислота плавится при температуре 120·С, резорцин - 119·С, антипирин - 11 о·с. Флакон и пробирку закрывают марлевой пробкой. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу свидетельствует о том, что в биксе в процессе стерилизации была достигнута или превышена температура, при которой плавится использованное вещество.
Более удобным следует считать применение полосок индикаторов, меняющих свой цвет при достижении определенной температуры.
Термометрический контроль состоит в закладывании внутрь стерилизуемого материала 2-3 термометров. Биксы располагают в разных местах с:терилизатора. Правильность показаний термометров проверяют погружая их на 6-7 мин в кипящую воду, не касаясь стенок сосуда. Если термометры показывают 100°С (с отклонением не более 1°С), то их считают исправными. Однако следует помнить, что термометры отражают максимальную температуру, но не указывают время экспозиции. Поэтому термометрический контроль не заменяет бактериологические тесты.
12. Обработать руки перед операцией различными антисептическими растворами.
Для хирургической обработки рук используются различные препараты, разрешенные фармакологическим комитетом Министерства здравоохранения и медицинской промышленности РФ.
Средства для обработки рук:
0,5% раствор хлоргексидина биглюконата
2,4% раствор первомура (надмуравьиной кислоты)
5% раствор новосепта
1% дегмицид
церигель
Обработка рук по методу Спасокукоцкого-Кочергина
Этот метод основан на растворении щелочным раствором аммиака жиров на поверхности кожи, в порах кожи и удалении вместе с раствором бактерий.
Показания: обеззараживание рук медицинского персонала, участвующего в проведении операции.
Оснащение:
2 эмалированных таза
подставки для биксов и тазов
флакон с 0,5% раствором нашатырного спирта;
флакон с 95% этиловым спиртом
биксы с перевязочным материалом и операционным бельем, установленные на подставки
мыло одноразовое
песочные часы (3 мин.)
Последовательность действий
1. Подготовить тазы.
2. Налить в таз 5 литров дистиллированной воды и добавить 25 мл 0,5% нашатырного спирта.
Раствор подогреть до 37-38
3. Поставить песочные часы (3 мин.)
4. Приготовить бикс с перевязочным материалом.
5. Вымыть руки под проточной водой с мылом (одноразовым) в течение 1 минуты от ногтевых фалангов к локтевому сгибу. Ополоснуть руки от ногтевых фалангов до локтевого сгиба.
6. Вымыть руки стерильными салфетками в первом тазу в течение 3 минут. Вымыть тщательно
подногтевые пространства, околоногтевые валики, межпальцевые промежутки, пальцы кисти,
ладонную и тыльную поверхности левой кисти, затем правой кисти.
7. Вымыть тщательно левое и правое запястье, левое и правое предплечье до локтевого сгиба.
8. Вымыть руки стерилъными салфетками во втором тазу в течение 3 минут в той же последова-
тельности до средней трети предплечья.
9. Просушить руки стерильным полотенцем.
10. Обработать руки стерильными салфетками, смоченными 960 этиловым СПИРТО
1 в течение 3
минут.
Примечанне. Нельзя при менять этот способ обработки при индивидуальной непереносимости антисептических средств.
Обработка рук 0,5% раствором хлоргексидина биглюконата (гибитан)
Гибитан выпускается 20% водным раствором в стеклянных бутылях емкостью по 500 мл.
Для обработки рук используют 0,5% спиртовой раствор препарата. для получение концентрации 0,5% необходимо развести в пропорции 1: 40 (1 часть 20% водного раствора хлоргексидина биглюконата и 40 частей 700 спирта).
Показание: обеззараживание рук медицинского персонала, участвующего в проведении операции.
Оснащение:
флакон с 0,5% раствором хлоргексидина биглюконата
флакон с 700 этиловым спиртом
биксы с перевязочным материалом и операционным бельем, установленные на подставки;
мыло (одноразовое)
песочные часы (1-3 мин)
Последовательность действий:
1. Приготовить флакон с 0,5% раствором хпоргексндина биглюконата.
2. Установить на подставку бикс с перевязочным материалом и операционным бельем.
3. Поставить песочные часы (1 мин.), приготовить мыло.
4. Ополоснуть руки водой с мылом в течение 1 минуты. Мыть руки в следуюшей последовательности: подногтевые пространства, околоногтевые валики, межпальцевые промежутки, пальцы кисти, ладонную и тыльную поверхности левой кисти, затем правой кисти, левое и правое запястье, левое и правое предплечье до локтевого сгиба.
5. Вымыть руки под проточной водой для удаления мыльной пены от ногтевых фалангов до лок-
тевого сгиба.
6. Высушить руки стерильным полотенцем, наброшенным на левую руку, в следующей последовательности:
пальцы правой руки от ногтевых фаланг до основания пальцев;
ладонную поверхность правой кист от основания пальцев к лучезапястному суставу;
тыл кисти (в той же последовательности);
внутреннюю поверхность правого предплечья (до средней трети), затем — наружную поверхность предплечья;
внутреннюю поверхность правого предплечья от средней трети до локтевого сгиба, затем — наружную поверхность предплечья от средней трети с захватом локтевого сустава.
7. Переложить нижнюю часть полотенца на высушенную правую кисть и сушить левую кисть в
той же последовательности"
8. Обработать руки малыми стерильными салфетками, смоченными 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина биглюконата, от ногтевых фаланг до локтевого сгиба (В той же последовательности, как и мытье рук под проточной водой С мылом) в течение 2 минут
9. Обработать руки малыми стерильными салфетками, смоченными 0,5% спиртовым раствором
хлоргексидина биглюконата (в той же последовательности), до средней трети предплечья в течение 1 минуты. |
Скачать 1.19 Mb.