Главная страница
Навигация по странице:

  • Исследуемый материал и реактивы

  • Построение калибровочного графика

  • Указания к оформлению лабораторной работы

  • Контрольные вопросы

  • Лаб. практикум. Практикум по биологической химии методические указания к проведению лабораторных работ по биологической химии для студентов второго курса


    Скачать 1.02 Mb.
    НазваниеПрактикум по биологической химии методические указания к проведению лабораторных работ по биологической химии для студентов второго курса
    Дата13.01.2019
    Размер1.02 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаЛаб. практикум.doc
    ТипПрактикум
    #63483
    страница14 из 27
    1   ...   10   11   12   13   14   15   16   17   ...   27

    Лабораторная работа №22

    Определение активности аспартатаминотрансферазы( аланинаминотрансферазы) по методу Райтмана-Френкеля(набором реагентов)


    Аминотрансферазы (трансаминазы) – ферменты, осуществляющие трансаминирование аминокислот, содержащие в качестве кофермента фосфопиридоксаль. Аминотрансферазы относятся к индикаторным ферментам, так как трансаминазы обладают высокой активностью внутри клеток различных тканей и органов человека и сравнительно низкой активностью в крови (в тысячу раз ниже). Содержание этих ферментов в тканях неодинакова, так, аспартатаминотрансфераза (АсАТ) в наибольших количествах содержится в печени и сердечной мышце; содержание аланинаминотрансферазы (АлАТ) в печени во много раз выше, чем в сердце. Поэтому определение их активности широко применяется в диагностике заболеваний сердца и печени. Нормальные концентрации АсАТ (или АлАТ) – 0,14-0,68 ммоль/л*ч (0,028-0,19 ммкат/л).

    В клинике трансаминазный тест используется не только для постановки диагноза заболевания, но и для прогноза и проверки эффективности методов лечения.

    Принцип метода. В результате переаминирования, происходящего под действием аминотрансфераз, образуются щавелевоуксусная (ЩУК) и пировиноградная (ПВК) кислоты, которые в щелочной среде образуют с 2,4-динитрофенилгидразином окрашенные гидразоны. Интенсивность окраски пропорциональна активности ферментов и измеряется фотометрически.
    Исследуемый материал и реактивы

    1. Сыворотка крови. 2. Субстратный раствор для определения АСТ – 100 мл (D.L.-аспарагиновая кислота – 0,2 моль/л; α-кетоглутаровая кислота – 2,0 ммоль/л; фосфатный буфер рН=7,4). 3. Субстратный раствор для определения АЛТ – 100 мл (D.L.-аланин – 0,2 моль/л; α-кетоглутаровая кислота – 2,0 ммоль/л; фосфатный буфер рН=7,4). 3. Раствор 2,4-динитрофенилгидразина (ДНФГ) – 1 ммоль/л – 100 мл. 4. Стандартный раствор пирувата натрия – 2 ммоль/л – 3 мл. 5. Натрий едкий – 16г (0,4 моль). 6. Физиологический раствор.
    Ход работы

    Реактивы 2,3,4 содержат готовые к использованию реагенты. Хранить при t – 2-80С.

    Содержимое пакета с натрием едким количественно перенести в колбу вместимостью 1л, растворить и довести до метки дистиллированной водой, свободной от карбонатов. Хранить при комнатной температуре.

    А. Приготовление опытной пробы. В пробирку вносят 0,25 мл субстратного раствора для определения АсАТ (или АлАТ), нагревают при 370С в течение 5 минут, добавляют 0,05 мл сыворотки крови, инкубируют при 370С 60 минут. Затем добавляют 0,25 мл 2,4-ДНФГ и выдерживают 20 минут при комнатной температуре. Добавляют 2,5 мл 0,4М раствора натрия едкого, перемешивают и через 10 минут фотометрируют при длине волны 500-560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 10мм против холостой пробы.

    Б. Приготовление холостой пробы. Эту пробу ставят так же, как и опытную, но вместо сыворотки крови добавляют 0,05 мл физиологического раствора.

    Расчет активности ферментов в сыворотке крови производят по калибровочному графику.

    Построение калибровочного графика

    В пробирки вносят растворы в соответствии с таблицей, затем в каждую пробирку добавляют по 0,5 мл 2,4-ДНФГ, тщательно перемешивают и через 20 минут (18-250С) вносят по 0,5 мл 0,4н NaOH.


    № п/п

    Стандартный

    р-р пирувата натрия

    Физиологич. раствор

    Субстратный раствор АлАТ/АсАТ

    Активность фермента (АсАТ, АлАТ)

    мл

    мл

    мл

    ммоль/(ч*л)

    мккат/л

    1

    0,05

    0,1

    0,45

    1,0

    0,28

    2

    0,1

    0,1

    0,40

    2,0

    0,56

    3

    0,15

    0,1

    0,35

    3,0

    0,83

    4

    0,2

    0,1

    0,30

    4,0

    1,11

    5

    0,25

    0,1

    0,25

    5,0

    1,39

    контроль



    0,1

    0,50








    Инкубирую при комнатной температуре 10 минут и затем фотометрируют при длине волны 500-560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 10мм против контроля. На оси координат откладывают найденную величину оптической плотности, на оси абсцисс – активность фермента в ммоль/ч*л или в мккат/л («ммоль/ч*л» соответствует 0,278 «мккат/л»).

    Калибровочная кривая до величины оптической плотности 0,3. При более высоких значениях оптической плотности сыворотку крови необходимо развести и повторить анализ. При расчете активности учесть степень разведения сыворотки (пропорциональность между степенью разведения и активностью фермента в разведенной сыворотке наблюдается не всегда).
    Указания к оформлению лабораторной работы

    В тетради для лабораторных работ запишите ход работы, полученные результаты (активность фермента, моль/ч*л) и сделайте выводы о возможных причинах отклонения полученных результатов от нормальных величин.
    Контрольные вопросы

    1. Какие реакции катализируют и к какому классу ферментов относятся АлАТ и АсАТ?

    2. Почему АлАТ и АсАТ называют индикаторными ферментами?

    3. Назовите нормальные величины активности исследованных Вами ферментов?



    1   ...   10   11   12   13   14   15   16   17   ...   27


    написать администратору сайта