Тец руководство. Руководство к практаческим занятиям по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии под редакцией
Скачать 2.14 Mb.
|
Тема 21.1. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ВИРУСНЫХ ПОРАЖЕНИЙ КОЖИ, СЛИЗИСТЫХ ОБОЛОЧЕК, ЛИМФОИДНОЙ И ЖЕЛЕЗИСТЫХ ТКАНЕЙ План Программа Биологические свойства возбудителей вирусных инфекций кожных покровов и желез, их патогенность, экология, особенность инфекций и эпидемиология вызываемых заболеваний. Микробиологическая диагностика. Диагностические и лечебно-профилактические препараты. Демонстрация Культура фибробластов человека, зараженных вирусом простого герпеса (окраска по методу Романовского— Гимзы). Вирус простого герпеса 2-го типа в клетках цилиндрического эпителия мочеиспускательного канала (окраска по методу Романовского—Гимзы). Диагностические и лечебно-профилактические препараты. А Задания студентам Указать материал для исследования при подозрении на вирусную инфекцию кожных покровов и желез. Ознакомиться с бланками-направлениями на исследование материала в вирусологическую лабораторию. Ознакомиться с диагностическими и лечебно-профилактическими препаратами, указать механизм действия. Методические указания • Микробиологическая диагностика эпидемического паротита МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: смывы из носоглотки (первые дни болезни), слюна, отделяемое из области околоушного (стенонова) протока, кровь, моча, спинномозговая жидкость (при менингите), биоптат пораженных органов. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Вирусоскопическое исследование. Вирусы в исследуемом материале (слюне, отделяемом околоушного протока, моче, спинномозговой жидкости) могут быть обнаружены методом электронной микроскопии. Необходимо помнить, что метод обладает сравнительно низкой чувствительностью и не позволяет дифференцировать между собой разных представителей семейства Paramyxoviridae. Вирусологическое исследование. Выделение чистой культуры вируса из исследуемого материала является ведущим методом диагностики эпидемического паротита. Вирус паротита легко удается культивировать в клеточных культурах приматов, а также в куриных эмбрионах. Наиболее часто для выделения вируса используют первичные культуры клеток почки макаки-резус. Индикацию вируса производят по характерному ЦПД (появление гигантских многоядерных клеток), которое обычно развивается в течение 1-й недели, а также на основании реакции гемадсорбции, которая становится положительной в более ранние сроки — до появления ЦПД. Для идентификации используют методы ИФ, РТГА, РСК, РН и др., позволяющие обнаружить вирусные антигены в клетках зараженной культуры. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках носоглоточных смывов, секрета околоушного протока, осадка мочи, спинномозговой жидкости может быть выявлено методом ИФ. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные НК в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Обнаружение специфических противовирусных антител в крови используется для подтверждения диагноза эпидемического паротита. Наличие антител в крови определяют с помощью различных серологических реакций, включая РТГА, РСК, ИФА, непрямой ИФ и др. Серодиагностику осуществляют методом парных сывороток (диагностическое значение имеет нарастание титра антител в поздней сыворотке не менее чем в 4 раза) или на основании выявления методом ИФА специфических противовирусных иммуноглобулинов класса М (IgM), свидетельствующих об активной инфекции. В различные периоды заболевания в крови пациентов появляются антитела к разным антигенам вируса паротита. В начале болезни присутствуют преимущественно антитела к S-антигену нуклеопротеида, которые можно выявить в РСК. Титр этих антител постепенно снижается к концу заболевания. Через 2—3 нед появляются антитела к V-антигену (гемагглю-тинин суперкапсида), которые выявляют в РТГА. Вируснейт-рализующие антитела, определяемые в РН, присутствуют в период реконвалесценции, а также в крови вакцинированных лиц. • Микробиологическая диагностика кори МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь, отделяемое, смывы из носоглотки, конъюнктивы, моча; спинномозговая жидкость, биоптат тканей ЦНС (при поражении ЦНС). МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование. Исследуемый материал (смывы из носоглотки, конъюнктивы, мочу, спинномозговую жидкость) центрифугируют, из осадка, содержащего слущенные клетки, готовят мазки и окрашивают по методу Романовского— Гимзы. В положительном случае удается обнаружить признаки ЦПД — гигантские многоядерные клетки, часто содержащие внутрицитоплазматические включения. На поздних стадиях заболевания типично появление внутриядерных включений. Метод обладает низкой чувствительностью и специфичностью. Вирусологическое исследование. Вирус кори с трудом удается культивировать in vitro, поэтому выделение чистой культуры возбудителя из исследуемого материала редко применяют с диагностической целью. Для заражения используют первичные культуры эмбриональных клеток почки человека или обезьян. Признаки ЦПД (см. выше) появляются не ранее чем через 2 нед. Ведущим методом идентификации выделенного вируса является реакция ИФ с противокоревыми флюоресцирующими антителами, позволяющая обнаружить вирусные антигены в клетках зараженной культуры. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках исследуемого материала (носоглоточных смывах, осадке мочи, спинномозговой жидкости) выявляют методом ИФ. В положительном случае в цитоплазме зараженных клеток, обработанных противокоревыми флюоресцирующими антителами, наблюдается специфическое свечение в виде мелкой зернистости или крупных флюоресцирующих телец. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные НК в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Наличие противокоревых антител в крови и спинномозговой жидкости определяют с помощью различных серологических реакций, включая РТГА, РСК, ИФА, непрямой ИФ и др. Последние 2 являются наиболее чувствительными. Серодиагностику осуществляют методом парных сывороток. Нарастание титра антител в поздней сыворотке не менее чем в 4 раза позволяет подтвердить диагноз. В первые дни болезни в крови определяют наличие специфических противовирусных иммуноглобулинов класса М (IgM) с помощью ИФА. Присутствие последних свидетельствует об активной инфекции. Серодиагностику применяют также для оценки эффективности иммунизации. • Микробиологическая диагностика краснухи МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь; мазки, отделяемое, смывы из носоглотки и конъюнктивы, моча, испражнения, синовиальная жидкость, грудное молоко, отделяемое матки, спинномозговая жидкость (при поражении ЦНС). МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Вирусологическое исследование. Вирус краснухи плохо репродуцируется in vitro и не оказывает видимого ЦПД, поэтому выделение чистой культуры возбудителя из исследуемого материала редко применяют с диагностической целью. Основным показанием является внутриутробная инфекция плода. Для заражения используют первичные культуры клеток почки африканской зеленой мартышки. О присутствии вируса судят по его способности подавлять ЦПД вируса ЕСНО-11 вследствие интерференции. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках исследуемого материала (мазках из носоглотки, осадке мочи и др.) выявляют методом ИФ. В положительном случае в цитоплазме зараженных клеток, обработанных противокраснушными флюоресцирующими антителами, наблюдается специфическое свечение. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные нуклеиновые кислоты в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Является оптимальным методом лабораторной диагностики краснухи. Диагноз ставят на основании выявления (методом ИФА) специфических противовирусных иммуноглобулинов класса М (IgM), свидетельствующих об активной инфекции. Присутствие последних в крови новорожденных является показателем внутриутробного заражения. Четырехкратное нарастание титра специфических антител, выявляемое методом парных сывороток, позволяет подтвердить недавно перенесенное заболевание. Наличие противокраснуш-ных антител в крови и спинномозговой жидкости определяют с помощью различных серологических реакций, включая РТГА, РСК, ИФА, непрямой ИФ и др. Серодиагностику применяют также для оценки активности специфического иммунитета при беременности. • Микробиологическая диагностика ящура МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: отделяемое из высыпных элементов (афт), мазки, соскобы с пораженных участков кожи и слизистых оболочек. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Биопроба. Материал вводят морским свинкам. Серодиагностика. Для подтверждения клинического диагноза применяют метод парных сывороток. Антитела выявляют в РСК, РТГА. • Микробиологическая диагностика натуральной оспы МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: отделяемое из высыпных элементов (везикул, пустул), мазки, соскобы, биоптаты из пораженных участков кожи и слизистых оболочек полости рта, кровь. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование. В препаратах из исследуемого материала (мазки, соскобы, биоптаты) в положительном случае удается обнаружить признаки ЦПД вируса: наличие базофиль-ных включений (телец Гварниери), имеющих округлую или серповидную форму и располагающихся в околоядерной зоне цитоплазмы. Вирусоскопическое исследование. Вирусы в исследуемом материале (отделяемом высыпных элементов, мазках, соскобах, биоптатах) могут быть обнаружены методом электронной микроскопии. Методом негативного контрастирования в препаратах выявляют крупные (до 300 нм) вирионы овальной или прямоугольной формы, покрытые внешней оболочкой. На поверхности вирусной частицы отчетливо видны непараллельно расположенные микротубулы. Необходимо помнить, что метод не позволяет дифференцировать вирус натуральной оспы от других представителей рода (вирус коровьей оспы, оспы обезьян и др.). Вирусологическое исследование. Для выделения чистой культуры вируса натуральной оспы из исследуемого материала применяют различные типы однослойных клеточных культур приматов (Vero, эмбриональные диплоидные клетки человека, первичные культуры клеток почки обезьян и др.), а также куриные эмбрионы. Индикацию вируса производят по ЦПД, которое обычно развивается на 2—3-й день. Характерно появление очагов избыточного роста клеток, приводящего к образованию бляшек диаметром 1—3 мм, изменение формы (округление) клеток с последующей дегенерацией и слущиванием монослоя. В зараженных клетках выявляются характерные включения (см. выше). Для индикации применяют также реакцию гемад-сорбции. При заражении куриных эмбрионов материал наносят на поверхность хорион-аллантоисной оболочки. В положительном случае через 72 ч наблюдается появление характерных беловатых непрозрачных выпуклых бляшек (оспин), имеющих диаметр 1 мм, правильную округлую форму, ровные края и гладкую поверхность, без кровоизлияний. Для идентификации используют методы ИФ, РТГА, ИФА, РИА, РН и др., позволяющие обнаружить вирусные антигены в зараженной культуре. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках мазков, соскобов, биоптатов может быть выявлено методом ИФ. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные НК в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Обнаружение специфических противовирусных антител в крови используется для подтверждения диагноза натуральной оспы. Наличие антител в крови определяют с помощью различных серологических реакций, включая РТГА, РН, ИФА, РИА и др. Необходимо иметь в виду, что методы серодиагностики не позволяют дифференцировать вирус натуральной оспы от других представителей рода (вирус коровьей оспы, оспы обезьян и др.) по причине их антигенного сходства. • Микробиологическая диагностика оспы обезьян МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: отделяемое из высыпных элементов (везикул, пустул), мазки, соскобы, биоптаты из пораженных участков кожи и слизистых оболочек полости рта, кровь. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Лабораторная диагностика оспы обезьян проводится аналогично диагностике натуральной оспы (см. выше). Главным методом, позволяющим дифференцировать возбудителей, является вирусологическое исследование. Основой является характер ЦПД: типично образование бляшек более крупных размеров (2—6 мм), наличие цитоплазматических мостиков между зараженными клетками, присутствие особых эозинофильных включений в цитоплазме, представляющих собой скопления вирусных белков, быстрая дегенерация клеточного пласта. МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: биоптаты из пораженных участков кожи. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Гистологическое исследование. В гистологических препаратах из исследуемого материала в положительном случае удается обнаружить признаки ЦПД вируса: наличие характерных эозинофильных включений (телец моллюска) в цитоплазме эпителиальных клеток. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Вирусные НК в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. • Микробиологическая диагностика инфекций, вызванных вирусами простого герпеса 1-го и 2-го типов (HSV-l, HSV-2) МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: материал из высыпных элементов (соскоб со дна везикулы или язвы, отделяемое), мазки, смывы, отделяемое с пораженных слизистых оболочек, конъюнктивы; спинномозговая жидкость (при поражениях ЦНС); кровь, моча (при висцеральной и генерализованной формах). МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование. Мазки из исследуемого материала окрашивают по методу Романовского—Гимзы. В положительном случае удается обнаружить признаки ЦПД в эпителиальных клетках — наличие гигантских многоядерных клеток, вакуолизация цитоплазмы, изменения ядра — увеличение и слияние ядер между собой, фрагментация и агрегация хроматина, уплотнение кариолеммы, часто присутствуют внутриядерные включения (тельца Каудри). Метод обладает сравнительно низкой специфичностью и используется как ориентировочный. Вирусологическое исследование. Выделение чистой культуры вируса из исследуемого материала является ведущим методом диагностики герпетической инфекции. Вирусы простого герпеса легко удается культивировать в клеточных культурах приматов (HeLa, эмбриональные фибробласты человека, клетки почек кролика и др.), а также в куриных эмбрионах. Индикацию вируса производят по характерному ЦПД (см. выше), которое обычно развивается на 1—3-й день и впоследствии приводит к дегенерации и слущиванию монослоя. Для идентификации используют реакции ИФ, ИФА и др., позволяющие обнаружить вирусные антигены в клетках зараженной культуры. Основным методом, дающим возможность дифференцировать вирусы простого герпеса 1-го и 2-го типа между собой, является рестрикционный анализ ДНК-фрагментов генома, а также ПЦР и метод ДНК-зондов. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические и биохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках мазков, соскобов, биоптатов может быть выявлено методом ИФ. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Присутствие вирусспецифических ферментов (тимидин-кина-зы и др.) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью соответствующих биохимических реакций. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные НК в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Является информативной только при первичной герпетической инфекции, поскольку даже существенное нарастание титра антител в крови не всегда сопровождается развитием рецидива заболевания. Метод применяют преимущественно для эпидемиологического анализа. Исключение составляют случаи герпетического энцефалита, когда высокие титры противовирусных антител в спинномозговой жидкости являются косвенным признаком инфекции ЦНС. Наличие антител в крови и спинномозговой жидкости (при поражениях ЦНС) определяют с помощью различных серологических реакций, включая РСК, РН, ИФА, РИА, непрямой ИФ и др. • Микробиологическая диагностика ветряной оспы и опоясывающего лишая МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: материал из высыпных элементов (соскоб со дна везикулы или язвы, отделяемое), мазки, смывы из носоглотки; спинномозговая жидкость (при поражениях ЦНС). МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование. Мазки из исследуемого материала окрашивают по методу Романовского—Гимзы. В положительном случае удается обнаружить признаки ЦПД в эпителиальных клетках, аналогичные ЦПД вирусов простого герпеса (см. выше). Метод обладает сравнительно низкой специфичностью и используется как ориентировочный. Вирусологическое исследование. Выделение чистой культуры вируса из исследуемого материала применяется редко, что определяется его нестабильностью (легко инактивируется при транспортировке) и низкой скоростью репродукции in vitro. Вирус удается культивировать в культурах эмбриональных фиб-робластов человека. Признаки ЦПД появляются не ранее чем через 10 дней и сходны с ЦПД вирусов простого герпеса (см. выше). Для идентификации используют реакции ИФ, ИФА и др., позволяющие обнаружить вирусные антигены в зараженной культуре, а также ПЦР и метод ДНК-зондов. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках мазков, соскобов, биоптатов может быть выявлено методом ИФ. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные нуклеиновые кислоты в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Антитела в крови обычно присутствуют в низком титре. Для их выявления применяют чувствительные серологические реакции, в первую очередь ИФА. Диагноз ставят на основании выявления специфических противовирусных иммуноглобулинов класса М (IgM), свидетельствующих об активной инфекции. Присутствие последних в крови новорожденных является показателем внутриутробного заражения. Четырехкратное нарастание титра специфических антител, выявляемое методом парных сывороток, свидетельствует о рецидиве (опоясывающем лишае). • Микробиологическая диагностика цитомегаловирусной инфекции МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь, моча, слюна и другие секреты, испражнения, мокрота, биоптат пораженного органа; спинномозговая жидкость (при поражениях ЦНС). МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование. Мазки из исследуемого материала окрашивают по методу Романовского—Гимзы, Папани-колау или гематоксилин-эозином. В положительном случае удается обнаружить признаки ЦПД — присутствие увеличенных "цитомегалических клеток", имеющих гигантские размеры (до 30 мм), содержащих плотное базофильное внутриядерное включение ("совиный глаз"). Вирусологическое исследование. Выделение чистой культуры 330 вируса из исследуемого материала является ведущим методом диагностики цитомегаловирусной инфекции. Вирус удается культивировать в культурах диплоидных эмбриональных фиб-робластов человека. При низком содержании возбудителя в материале признаки ЦПД (см. выше) могут появляться только через 4—6 нед. Поэтому для заражения обычно применяют метод "амплификации в культуре": исследуемый материал центрифугируют совместно с клетками культуры. При этом вирусные частицы оседают на поверхность клеточных мембран, и заражение происходит более эффективно. На 3-й день после заражения в клетках культуры определяют присутствие сверхранних и ранних вирусных антигенов методом ИФ. Для идентификации используют также ПЦР и метод ДНК-зондов. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках исследуемого материала может быть выявлено методом ИФ. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные нуклеиновые кислоты в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Является информативной только при первичной цитомегаловирусной инфекции, поскольку даже существенное нарастание титра антител в крови не всегда сопровождается развитием рецидива заболевания. • Микробиологическая диагностика внезапной экзантемы МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь, слюна. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие белков (антигенов) вирусов-возбудителей (HHV-6, HHV-1) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные нуклеиновые кислоты в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Наличие специфических противовирусных IgM, выявляемых методом ИФА, свидетельствует об активной инфекции. • Микробиологическая диагностика инфекционного мононуклеоза МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь, слюна. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование. В мазках крови при инфекционном мононуклеозе обнаруживают атипичные лимфоциты (не менее 10 %), которые являются наиболее ранними маркерами этой инфекции. Атипичные лимфоциты могут присутствовать в крови и при других заболеваниях, но в значительно меньшем количестве. Вирусологическое исследование. Применяют редко в связи со сложностью культивирования. Чистую культуру вируса Эпш-тейна—Барр выделяют из исследуемого материала путем заражения первичных культур В-лимфоцитов, полученных из пупочного канатика. С целью идентификации в клетках культуры определяют присутствие вирусспецифических антигенов методом ИФ. Для идентификации используют также рестрикцион-ный анализ, ПЦР и метод ДНК-зондов. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса Эпштейна— Барр в клетках крови может быть выявлено методом ИФ. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные нуклеиновые кислоты в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Для инфекционного мононуклеоза характерно появление "гетерофильных" антител. Наиболее часто с диагностической целью определяют наличие антител к антигенам бычьих и бараньих эритроцитов (диагностический титр в РА 1:64). Для выявления противовирусных антител к антигенам капсида (УСА) и неструктурным раннему (ЕЛ) и ядерному (EBNA) антигенам применяют чувствительные серологические реакции, в первую очередь ИФА. Для острой инфекции характерно наличие антител к VCA (IgM). Антитела к EBNA свидетельствуют о перенесенной и хронической латентной инфекции. В период реактивации вируса в крови присутствуют антитела всех трех типов. • Микробиологическая диагностика аденовирусной инфекции МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь, моча, мазки или смывы с конъюнктивы, носоглотки, мокрота, желчь, био-птат пораженного органа. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование (см. главу 18). Вирусологическое исследование. Для выделения чистой культуры вируса из исследуемого материала применяют клеточные культуры эпителиального происхождения (первичные культуры эмбриональных клеток почки человека, перевиваемые линии HeLa, НЕр-2 и др.). Индикацию вируса производят по ЦПД, которое развивается в среднем через 6 дней и проявляется образованием внутриядерных включений и дегенерацией зараженных клеток. Для идентификации и типирования используют реакции ИФ, ИФА и др., позволяющие обнаружить вирусные антигены в зараженной культуре, а также ПЦР и метод ДНК-зондов. Необходимо помнить, что аденовирусы способны к бессимптомной персистенции в организме, поэтому диагностическое значение имеет присутствие вируса только в материале из пораженного органа. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вируса в клетках исследуемого материала может быть выявлено методом ИФ. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные нуклеиновые кислоты в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Наличие типоспецифических противоаде-новирусных антител в крови определяют с помощью различных серологических реакций, включая РСК, РТГА, РН, ИФА и др. Серодиагностику осуществляют методом парных сывороток и применяют преимущественно для ретроспективного подтверждения диагноза. Диагностическое значение имеет нарастание титра специфических противовирусных антител в поздней сыворотке не менее чем в 4 раза. • Микробиологическая диагностика парвовирусной инфекции МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь, носоглоточные смывы. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования. Иммунохимические исследования. Присутствие антигенов вирусных частиц в исследуемом материале может быть выявлено методом ИЭМ (см. главу 11). Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусную ДНК в исследуемом материале обнаруживают с помощью ПЦР или метода ДНК-зондов. Серодиагностика. Наличие специфических противовирусных IgM, выявляемых методом ИФА, свидетельствует об активной инфекции. • Микробиологическая диагностика инфекции, вызванной ви русом ВК МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: кровь, моча. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ: Цитологическое исследование. В осадке мочи присутствуют измененные клетки с признаками ЦПД (увеличение клеток, наличие одиночных базофильных внутриядерных включений). Вирусоскопическое исследование. Зрелые вирусные частицы в моче и в зараженных клетках могут быть обнаружены методом электронной микроскопии. Вирусологическое исследование. Выделение BKV из крови и мочи осуществляют путем заражения клеточных культур человеческого и животного происхождения. Экспресс-методы диагностики: иммунохимические и молеку-лярно-биологические исследования .Иммунохимические исследования. Присутствие вирусных белков (антигенов) в исследуемом материале может быть выявлено с помощью чувствительных серологических реакций: ИФА, РИА и др. Молекулярно-биологические исследования. Вирусные ДНК в зараженных клетках обнаруживают методом ДНК-зондов (ДНК-гибридизации in situ), ПЦР. Серодиагностика. Обнаружение антител к вирусным белкам является малоинформативным, поскольку антитела присутствуют также у здоровых вирусоносителей. • Диагностические, профилактические и лечебные препараты Живая ослабленная паротитная вакцина. Содержит аттенуи-рованный штамм вируса паротита. Применяют для специфической профилактики эпидемического паротита. Вводят парентерально детям в возрасте 12—15 мес. Живая ослабленная коревая вакцина. Содержит аттенуиро-ванный штамм вируса кори. Применяют для специфической профилактики кори. Вводят парентерально детям в возрасте 12—15 мес. Иммуноглобулин человеческий противокоревой. Получают из крови серопозитивных здоровых доноров. Применяют для создания пассивного иммунитета с целью экстренной профилактики кори при контакте. Живая ослабленная краснушная вакцина. Содержит аттенуи-рованный штамм вируса краснухи. Применяют для специфической профилактики краснухи. Вводят парентерально детям в возрасте 12—15 мес. Иммуноглобулин нормальный человеческий. Получают путем фракционирования крови здоровых доноров. Неспецифический препарат, содержащий антитела различной специфичности. Применяют для создания пассивного иммунитета с целью экстренной профилактики паротита, кори, краснухи при контакте. Вакцина ящура. Применяют для специфической профилактики ящура у сельскохозяйственных животных. Осповакцина. Содержит вирус осповакцины. Применяют для специфической профилактики натуральной оспы. С 1980 г. обязательная вакцинация отменена. Живая ослабленная пероральная аденовирусная вакцина. Содержит аттенуированные штаммы аденовирусов серотипов 4 и 7. Применяют в ряде стран для специфической профилактики аденовирусной пневмонии у новобранцев. Инактивированная культуральная вакцина против вирусов простого герпеса. Применяют для специфической профилактики рецидивов простого герпеса. Живая ослабленная вакцина против ветряной оспы. Содержит аттенуированный штамм вируса ветряной оспы/опоясывающего лишая. Применяют в ряде стран для специфической профилактики ветряной оспы. Иммуноглобулин человеческий против ветряной оспы. Получают из крови серопозитивных здоровых доноров. Применяют для создания пассивного иммунитета с целью экстренной профилактики ветряной оспы при контакте. Противовирусные препараты. Интерферон человеческий лейкоцитарный; интерферон рекомбинантный; неовир и другие индукторы интерферона. Применяют для создания пассивного иммунитета с целью экстренной профилактики рецидивов и лечения герпесвирусных инфекций. Ацикловир и его производные, цидофовир, аденозин-ара-бинозид, трифлюридин, ганцикловир, тромантадин, фоскар-нет. Применяют для профилактики рецидивов и лечения герпесвирусных инфекций. Глава 22 ОНКОГЕННЫЕ ВИРУСЫ И ВИРУСЫ ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА (ВИЧ) Онкогенные вирусы представляют собой группу неродственных вирусов (табл. 22.1), способных вызывать персистирующую инфекцию в клетках организма человека, приводящую к их трансформации (иммортализации). Трансформированные клетки приобретают новые свойства — высокую скорость размножения, способность к бесконтрольному неограниченному делению, утрачивают чувствительность к сигналам, ингибирующим размножение, включая контактное ингибирование. Происходит изменение их морфологии и метаболизма. Появление трансформиро-
зистых оболочек, преимущественно респираторного и гени-тального тракта. HPVявляются возбудителями доброкачественных разрастаний — папиллом (бородавок) ладоней и ступней (чаще HPVтипов 1, 2, 3, 4), ротовой полости и гортани (чаще HPV6 и 11-го типов), наружных половых органов — candyloma acuminatum (HPV 6, 11, 42—44-го типов). С ЯРК-инфекцией также связывают развитие ряда злокачественных новообразований: плоскоклеточного рака кожи, кератокарциномы, мела-номы — в клетках этих опухолей в некоторых случаях удается обнаружить HPV типов 37, 38, 41 и 48, интраэпителиальные неоплазии генитального тракта (шейки матки, вульвы, полового члена) ассоциированы преимущественно с HPV типов 6, 11, 16 и 18. Наиболее высоко онкогенными являются HPV типов 16 и 18. Эти вирусы в 90—100 % случаев обнаруживаются в опухолевых клетках при карциноме шейки матки и выявляются при раке прямой кишки и карциноме носоглотки и гортани. Полиомавирусы вызывают опухоли у лабораторных животных. У человека представители этого рода — вирусы ВК (BKV) и JC (JCV) — вызывают пожизненную бессимптомную латентную персистирующую инфекцию. Заболевания развиваются только на фоне иммунодефицита. BKV является возбудителем геморрагического цистита (см. главу 21). JCV вызывает развитие медленной инфекции — мультифокальной лейкоэнцефало-патии (см. главу 19). Вирус Эпштейна—Барр является возбудителем инфекционного мононуклеоза (см. главу 21) и вызывает пожизненную бессимптомную латентную инфекцию, персистируя в незрелых В-лимфоцитах. Латентная инфекция сопровождается трансформацией В-лимфоцитов. При недостаточном защитном клеточном иммунитете бесконтрольная пролиферация трансформированных В-лимфоцитов может привести к развитию злокачественной опухоли — лимфомы. Специальная лабораторная диагностика не проводится. Герпесвирус человека 8-го типа (HHV-8) вызывает пожизненную бессимптомную латентную инфекцию. С его реактивацией на фоне иммунодефицита (СПИД, возраст старше 60 лет) связывают развитие сосудистой опухоли — ангиосар-комы Капоши. Специальная лабораторная диагностика не проводится. Вирус гепатита В является возбудителем вирусного гепатита В (см. главу 20). В случае хронической активной формы заболевания через 10—35 лет может развиться первичный рак печени. Более чем в 80 % случаев в опухолевых клетках обнаруживают дефектные провирусы. Специальная лабораторная диагностика не проводится. Среди онкогенных ретровирусов связь с опухолями человека установлена только для Т-лимфотропного вируса человека 1-го типа — HTL V-1. Вирус вызывает пожизненную бессимптомную латентную инфекцию, персистируя в Т-лимфоцитах хелперах (CD4+). Заболевания — острый Т-клеточный лимфоцитарный лейкоз/лимфома или тропический спастический паралич — развивается менее чем в 5 % случаев и имеет длительный инкубационный период. Вирусы иммунодефицита человека 1-го и 2-го типа (ВИЧ-1 и ВИЧ-2) являются возбудителями медленной инфекции с длительным инкубационным (латентным) периодом от 3 до 10 лет и более. Первичная инфекция может протекать бессимптомно или с неспецифическими гриппоподобными проявлениями. После длительного латентного периода у ВИЧ-инфицированных лиц развивается синдром приобретенного иммунодефицита (СПИД), который характеризуется снижением содержания в крови CD4+ Т-лимфоцитов (менее 500/мм3) и разнообразными клиническими проявлениями, включая СПИД-ассоциированные оппортунистические инфекции и опухоли. Для предотвращения распространения и своевременного начала лечения первостепенное значение имеет ранняя диагностика ВИЧ-инфекции. В общей стратегии лабораторного обследования с целью выявления ВИЧ/СПИД существуют следующие направления: обследование больных с клинической картиной СПИД или СПИД-ассоциированных заболеваний (оппортунистических инфекций и опухолей); обследование здоровых лиц, контактировавших с больными (половые контакты, мать—ребенок и др.); обследование беременных, рожениц и лиц при плановой госпитализации; анонимное обследование всех желающих. Строго обязательным является обследование доноров крови, спермы, костного мозга и других с целью выявления потенциальных источников инфекции и предотвращения ят-рогенного заражения. |