Доврачебная помощ. Учебник для студентов высших учебных заведений
 Скачать 8.79 Mb.
|
|
Пути распространения инфекции в организме. Бактерии находят ся в большом количестве на всех окружающих человека предметах, в воздухе, на поверхности тела, в содержимом кишечника и т. д. Ста филококковая инфекция, имевшая ведущее значение до середины 60 х годов, в настоящее время постепенно вытесняется граммотрицательны ми бактериями, грибами и вирусами. Источники, из которых патоген ные бактерии проникают в рану, бывают экзогенными и эндогенными. Экзогенной считается инфекция, попадающая в рану из внешней среды, окружающей больного: — из воздуха — воздушная инфекция; — с брызгами слюны и других жидкостей — капельная инфекция; — с предметов, соприкасающихся с раной, — контактная инфекция; — с предметов, оставляемых в ране (шовный материал, дренажи, металлические стержни и пластинки, искусственные клапаны сердца, синтетические протезы сосудов, электрокардиостимуляторы и т. д.). Воздух как путь передачи инфекции играет важную роль, особенно в операционных, реанимационных отделениях и отделениях интенсив ной терапии. Перенос патогенных микроорганизмов от больного к боль 35 ному обозначается как перекрестная инфекция. С увеличением дли тельности пребывания пациента в больнице эта опасность возрастает. Предупреждение воздушной инфекции в хирургических отделениях и операционных блоках зависит от их устройства и оборудования, орга низации работы в них и проведения мероприятий, направленных на уменьшение загрязнения воздуха микробами и на уничтожение уже имеющихся в нем бактерий. Для создания асептических условий в опе рационных или в изоляторах используют физиотерапию воздуха с це лью очищения его от бактерий. Контактная и имплантационная инфекция в большинстве случаев связана с гнилостным распадом тканей, развитием септицемии и сеп тического шока. Существенное значение имеет дезинфекция матрацев, подушек, одеял; необходимо для каждого вновь поступившего больно го иметь продезинфицированные постельные принадлежности. Профи лактика контактной и имплантационной инфекции достигается приме нением стерилизации. Стерилизация проводится с помощью физичес ких и химических методов. В лечебных учреждениях особый санитарный режим предусмотрен для операционных блоков, в которых воздушная и капельная инфекция играют важную роль в развитии послеоперационных осложнений. К зоне строгого режима (первая и вторая зоны) относятся операци онные залы и предоперационная. В третью зону входят помещения для хранения крови, медицинской аппаратуры, которая применяется во время проведения операций. Чистота и порядок в операционных блоках являются основой ан тисептики. Медицинские работники в операционных блоках должны одевать халаты, которые завязываются сзади, рукава закатывают выше локтя, голову прикрывают косынкой или шапочкой. Обувают тапочки, а на них бахилы. Рот и нос прикрывают марлевой маской, состоящей не менее чем из четырех слоев. Перед входом в операционный блок имеет ся яркая красная полоса, предупреждающая, что вход разрешается только тем сотрудникам, которые выполнили все указанные требования для режимных помещений. Для создания режима асептики в операцион ном блоке проводится озонирование помещений. Температура воздуха в операционной должна быть 22–25 °С при влажности 50 %. Для дезинфекции воздуха в операционной и перевя зочной применяют бактерицидные и кварцевые лампы, которые подве шивают над входом. Под дезинфекцией подразумевают обеззараживание предметов ухо да за больными и медицинского инструментария от патогенных микро организмов. 36 Профилактика контактной инфекции. Для предупреждения кон тактной инфекции в операционном блоке обязательно проводится обез зараживание рук, операционного поля и стерилизация медицинских инструментов, аппаратуры, перевязочного материала, операционного белья. Обеззараживание рук. Существуют различные способы обеззара живания. Дезинфекция рук медицинского персонала включает тщатель ную механическую очистку кожи, мытье в растворе антисептика. Пос ледний этап осуществляется спиртом, который препятствует самоин фицированию рук. Для обеззараживания рук хирурга и другого медицинского персо нала широко применяется метод Спасокукоцкого Кочергина. Кисти и предплечья рук тщательно моют мылом под струей проточной воды (рис. 2.1, 2.2) для удаления «бытовой» грязи. Затем обработку рук осу ществляют в двух эмалированных тазах 0,5% водным раствором наша тырного спирта. В каждый таз на 2 литра воды добавляют 10 мл наша тырного спирта. Руки моют с помощью марлевых салфеток. Продол жительность обработки рук в каждом тазу по 3 мин. Затем руки выти рают стерильным полотенцем или салфеткой. Сухие руки (кисть и область лучезапястных суставов) дважды по 2,5 мин обрабатывают 96% этиловым спиртом. Хирургические перчатки в значительной мере повышают надеж ность дезинфекции, но они не заменяют обязательной обработки рук в больничных условиях. Рис. 2.1. Подготовка рук хирурга Рис. 2.2. Обработка рук хирурга 37 Медицинский персонал после дезинфекции рук надевает стериль ные халаты. Манжеты костюма должны быть эластичными и не сдавли вать запястья и кисти. Маска должна плотно закрывать рот и нос (рис. 2.3). Проводится подготовка операционного поля (рис. 2.4). Эндогенной считается инфекция, находящаяся внутри организма или на его покровах. Эндогенная инфекция попадает в рану либо непос редственно, либо по лимфатическим или кровеносным сосудам. Ос новными очагами эндогенной инфекции являются: Рис. 2.3. Схема надевания хирургического халата Рис. 2.4. Обработка операционного поля 38 — воспалительные процессы покровного эпителия (фурункулы, кар бункулы, пиодермии, экземы и т. д.); — очаговая инфекция желудочно кишечного тракта (кариес зубов, гингивиты, холециститы, холангиты, панкреатиты и т. д.); — инфекция дыхательных путей (гаймориты, фронтиты, трахеиты, бронхиты, пневмонии, бронхоэктазы, абсцессы легких); — воспаления урогенитального тракта (пиелиты и циститы, проста титы, уретриты, сальпингоофориты). Существуют физические и химические методы антисептики. К физическим методам относятся термическая и лучевая стерили зации (стерилизация паром под давлением, сухожаровая стерилиза ция, γ облучение). Химические методы включают в себя стерилизацию перекисью водорода, окисью этилена, химиотерапевтическую обработку. 2.2.1. Стерилизация инструментария и подручных средств Предстерилизационная подготовка включает следующие этапы: 1. Предварительное мытье инструментов в проточной воде. 2. Замачивание в моющем растворе (раствор «Биолот» или пере кись водорода с моющими средствами «Прогресс», «Астра», «Лотос» при температуре 50 °С на 15 мин). 3. Мытье инструментов в моющем растворе при помощи «ерша» или ватно марлевого тампона. 4. Ополаскивание в проточной воде. 5. Ополаскивание в дистиллированной воде. 6. Сушка горячим воздухом при темпера туре 85 °С, до полного исчезновения влаги. Стерилизация. В лечебных учреждениях проводится стерилизация хирургического инструментария, операционного белья и ма териала. Методом автоклавирования с ис пользованием биксов (рис. 2.5) при давлении 2 атмосферы и температуре 132 °С в течение 20 мин (рис. 2.6) или при давлении 1,1 атмос феры и температуре 120 °С в течение 45 мин проводится cтерилизация изделий из рези ны, латекса и отдельных полимерных матери алов (полиэтилена высокой плотности). Рис. 2.5. Виды биксов 39 Материалы из стекла стерилизуют воздушным методом в сухожа ровых шкафах (рис. 2.7) при 180 °С в течение 60 мин и при 160 °С в течение 150 мин. Холодную стерилизацию для приборов, которые не могут подвер гаться тепловой обработке, проводят ультразвуком или с помощью хи мических веществ: 1. Стерилизатор наполняют слабым антисептиком (0,05% водным раствором хлоргексидина биглюконата или других препаратов), в ко тором под воздействием ультразвуковых волн стерилизуют хирурги ческий инструментарий. 2. Химическую стерилизацию проводят окисью этилена, 6% раство ром перекиси водорода, 0,2% раствором надуксусной кислоты и др. Контроль качества предстерилизационной подготовки выполняют следующими методами: 1. Бензидиновая проба. Смешивают 0,0025 г основного бензидина с 0,1 г перекиси бария или 3% раствором перекиси водорода и перед использованием добавляют 5 мл раствора уксусной кислоты, взбалты вают до полного растворения. Указанным раствором смачивают там пон и протирают инструменты, шприцы и части аппарата. Появление синего окрашивания указывает на наличие остатков крови, а также на некачественную обработку. 2. Амидопириновая проба. Смешивают равные количества 3% спир тового раствора амидопирина и 5% раствора перекиси водорода, затем добавляется несколько капель 30% уксусной кислоты. Методика про ведения пробы аналогична приведенной выше. Появление сине фиоле тового окрашивания свидетельствует о присутствии крови. 3. Орто толуидиновая проба. К 1% раствору орто толуидина на дистиллированной воде добавляют равное количество 3% раствора пе рекиси водорода; при наличии кровяных загрязнений появляется сине зеленое окрашивание. Рис. 2.6. Схема работы автоклава Рис. 2.7. Сушильный шкаф 40 При положительной бензидиновой, амидопириновой и орто толу идиновой пробе инструменты обрабатывают повторно. Контроль качества стерилизации выполняют при помощи термо индикатора ТИК № 6, гидрохинона. Нанесенная на бумагу термоинди каторная краска марки ТИК № 6 светло салатового цвета при темпера туре 175–180 °С становится темно коричневой. Гидрохинон в количе стве 0,3 г помещается в стеклянный флакон. При температуре 170–175 °С серо коричневый порошок гидрохинона превращается в расплавлен ную массу черного цвета. Работу парового стерилизатора ежедневно контролируют тест ин дикатором мочевины или бензойной кислоты с фуксином. При режи ме стерилизации 132 °С и давлении 2 атмосферы белый порошок мо чевины плавится, превращаясь в аморфную массу того же цвета (в бик сы помещается флакончик с мочевиной в количестве 0,3 г). При режи ме стерилизации 120 °С и давлении 1,1 атмосферы в качестве индикатора применяют бензойную кислоту с фуксином, который вы полняет роль красителя. При температуре близкой к парообразованию (120 °С) бензойная кислота с кислым фуксином расплавляются, пре вращаясь в аморфную массу красного цвета, а с основным фуксином — синего. Контроль за качеством стерилизации окисью этилена проводят с использованием индикатора в виде раствора глицерола с этиленом (раствор 1) и бромида лития, бромкрезолового пурпурного с этанолом (раствор 2). Помимо обязательного ежедневного контроля эффективности сте рилизации в стерилизаторе, проба на достижение точки плавления про водится раз в неделю (выборочно) или через 10 дней (бактериологи ческий контроль материала, который является самым надежным мето дом контроля стерильности). Его недостатком является продолжитель ность и трудоемкость исследования. В связи с этим в клинической практике широко используются перечисленные экспресс методы. Индикаторы стерилизации предназначены для контроля темпера туры и времени стерилизации. В лечебных учреждениях стерилизация медицинского инструментария проводится в паровых или воздушных стерилизаторах. Существуют определенные режимы стерилизации: — в паровых стерилизаторах (автоклавах) при 132 °C и давлении 2 атм — в течениие 20 мин, при 120 °C и давлении 1,1 атм — в течение 45 мин; — в воздушных стерилизаторах при 180 °C — 60 мин, 160 °C — 150 мин. 41 В соответствии с этими режимами стерилизации применяют раз личные виды индикаторов: ИС 120, ИС 132, ИС 180, ИС 160. Индикаторы «Винар» представляют собой бумажную ленту, на ко торую нанесен индикаторный слой, изменяющий окраску в ходе стери лизации. Предлагаемые индикаторы — термовременные, т. е. они по зволяют проконтролировать и температуру, и время стерилизацион ной выдержки (экспозицию), т. к. индикатор изменяет свою окраску постепенно в процессе стерилизации. Индикаторная лента разрезается на небольшие кусочки (1,5–2 см) и закладывается в различные отделы стерилизатора. По окончании сте рилизации окраска этих полосок сравнивается с эталоном. Если окрас ка соответствует эталону, то стерилизация прошла эффективно. 42 Глава III УХОД ЗА БОЛЬНЫМИ И ЛЕЧЕБНЫЕ ПРОЦЕДУРЫ 3.1. Определение и задачи общего ухода за больными В течение многих веков медицина накапливала бесценный опыт по уходу за больными. Еще древними врачами был сделан важный вывод о том, что правильный уход за больными является неотъемлемой час тью лечения любого заболевания. Уход за больными — это комплекс мероприятий, направленных на облегчение страданий больного человека и успешное лечение. Общий уход включает мероприятия, которые проводятся независимо от вида заболевания. Специальный уход включает мероприятия, проводимые только при определенных заболеваниях — хирургических, гинекологических и др. Общий уход за больными осуществляет медицинская сестра, кото рая привлекает к выполнению манипуляций младший медицинский персонал, а иногда — родственников больного. Объем мероприятий по уходу определяется тяжестью течения за болевания, возрастом и полом пациента. Больные, находящиеся в тя желом состоянии, особенно пациенты младенческого и пожилого воз раста, нуждаются в большем числе таких мероприятий. Общий уход — одна из составных частей лечебного процесса, в значительной степени определяющая его эффективность. Можно успешно выполнить слож ную операцию, но затем потерять больного из за осложнений, возник ших вследствие плохого ухода. Общий уход за больными строится по принципу охранительного режима, оберегающего и щадящего психику больного. Устранение разнообразных раздражителей, создание обстановки доброжелатель ности, покоя, тишины благоприятно воздействуют на психику боль ного. Общий уход за больным направлен на решение следующих задач: — соблюдение санитарно гигиенического режима и распорядка дня; — гигиеническое содержание больного (оказание помощи при про ведении туалета, приеме пищи, смене постельного и нательного белья); 43 — создание условий быта (удобная и чистая постель, прикроватная тумбочка, осветительная лампа, сигнализация, прикроватное судно, стул и т. д.); — наблюдение за состоянием больного и оказание своевременной помощи; — выполнение врачебных назначений по лечению и обследованию больного; — создание обстановки внимательного и чуткого отношения к боль ному, поддержание у него хорошего настроения; — проведение мероприятий, предупреждающих развитие осложнений. Задачи и тактика лечения больного определяются врачом в зависи мости от условий наблюдения (амбулаторное, стационарное, санатор но курортное), от профиля работы лечебного учреждения (хирурги ческое, кардиологическое, акушерское отделения и др.). Уже при пер вом осмотре больного в поликлинике или на дому врач решает вопрос о госпитализации или продолжении лечения амбулаторно. Если необ ходима госпитализация, врач определяет способ транспортировки боль ного в стационар. При его поступлении в стационар дежурный врач пос ле осмотра, в зависимости от тяжести состояния, определяет характер и объем санитарной обработки, способ транспортировки в отделение, рациональный режим пребывания (постельный, полупостельный, стро гий постельный) и питания (характер диеты и др.), программу обследо вания и лечения, в реализации которых участвует медицинская сестра. 3.2. Транспортировка больных В настоящее время на догоспитальном этапе с транспортной целью для переноски больных используются носилки (рис. 3.1, 3.2) и другие подручные средства (рис. 3.3, 3.4). Рис. 3.1. Транспортировка больного на носилках вверх по ступенькам Рис. 3.2. Транспортировка больного на носилках вниз по ступенькам 44 В лечебных учреждениях для транспортировки боль ных средней тяжести исполь зуются коляски (рис. 3.4), а для тяжелых больных — ка талки (рис. 3.5). Перекладывание боль ного с каталки на кровать проводят двумя способами. Перекладывание могут осу ществлять два или три меди цинских работника, в зави симости от возраста, массы тела больного и тяжести его состояния (рис. 3.6, 3.7, 3.8, 3.9). Для тяжелобольных дол жны быть предусмотрены функциональные кровати, позволяющие пациенту изме нять положение своего тела. В домашних условиях такие приспособления можно из готовить самостоятельно (рис. 3.10, 3.11). Рис. 3.3. Перенос больного на руках Рис. 3.4. Передвижение пациента с помощью коляски Рис. 3.5. Транспортировка больного в больницу Рис. 3.6. Перекладывание больного двумя медицинскими работниками Рис. 3.7. Перекладывание больного тремя медицинскими работниками 45 Рис. 3.8. Приемы для перемещения лежачего больного Рис. 3.9. Приемы для перемещения больного в сидячем положении 46 Рис. 3.10. Приспособления для поддержания больного в сидячем положении Рис. 3.11. Приспособления для изменения положения пациента в кровати 47 3.3. Смена постельного и нательного белья При смене постельного белья необходимо последовательно заме нить его в ножном и головном концах, а затем белье расправить. Тяже лобольным при перестилании проводят смену постельного и нательно го белья (рис. 3.12, 3.13). 3.4. Техника промывания желудка Для промывания же лудка используют резино вые зонды двух видов — толстые и тонкие. Толстый резиновый зонд представ ляет собой резиновую труб ку диаметром 1 см и длиной 70 см. Нижний конец за круглен, на его боковых стенках имеются одно под другим отверстия. На рас стоянии 40 см от верхнего конца нанесена метка. Дли на тонкого резинового зон да 1 м, диаметр 0,4–0,5 см. На нижнем конце имеется два боковых отверстия. Толстый резиновый зонд применяют для про мывания желудка и взятия желудочного содержимо го. Тонкий желудочный зонд используют для ис следования функциональ ной деятельности желудка (рис. 3.14). Отбор желудочного со держимого для анализа производится толстым Рис. 3.13. Смена постельного белья |