Главная страница
Навигация по странице:

  • Рост с равномерным (диффузным) помутнением жидкой среды

  • Второй этап выделения чистой культуры

  • Задания к лабораторному занятию

  • Тема

  • Вопросы для самоподготовки

  • Сахаролитические ферменты микробов

  • Протеолитические ферменты микробов

  • Определение индола в культуре микроорганизмов

  • Определение сероводорода

  • Третий этап выделения чистой культуры.

  • Общая микробиология. Виды микроскопии назначение и принципы применения


    Скачать 1.57 Mb.
    НазваниеВиды микроскопии назначение и принципы применения
    АнкорОбщая микробиология.doc
    Дата12.12.2017
    Размер1.57 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаОбщая микробиология.doc
    ТипЛитература
    #11046
    страница15 из 40
    1   ...   11   12   13   14   15   16   17   18   ...   40

    Характер роста микроорганизмов на жидких питательных средах


    Характер роста микроорганизмов в жидких питательных средах менее разнообразен, чем на плотных. Различают:

      1. Рост с равномерным (диффузным) помутнением жидкой среды - характерен для факультативных анаэробов, обладающих подвижностью.

      2. Придонный рост с образованием осадка на дне пробирки дают анаэробные микроорганизмы. Осадок отличается по консистенции. Он может быть вязким, слизистым, хрупким. Питательная среда над осадком может быть прозрачной или мутной. Цвет осадка и среды определяется наличием пигмента, продуцируемого культурой микробов. Если культура пигмента не образует, цвет среды не изменяется, а осадок, как правило, бывает белого или желтого цвета.

      3. Пристеночный рост бактерий проявляется в том, что питательная среда, нахо­дящаяся в пробирке, остается совершенно прозрачной. Бактерии растут, образуя круглые или компактные зерна, прикрепленные к внутренней поверхности стенок сосуда, с которых в зависимости от вида бактерий снимаются легко или с трудом.

      4. Поверхностным ростом отличаются аэробные микроорганизмы. Они образуют пленку различной плотности и консистенции на поверхности жидкой питатель­ной среды. Цвет пленки, как и питательной среды, зависит от пигмента, выраба­тываемого растущей культурой микробов.



    Второй этап выделения чистой культуры


    1. Просматривают чашки Петри с посевом и изучают изолированные колонии, обращают внимание на их форму, величину, консистенцию и другие признаки.

    2. Для определения морфологии клеток и их тинкториальных свойств из части исследуемой колонии готовят мазок, окрашивают его по Граму или другим методом и микроскопируют.

    3. Для выделения и накопления чистой культуры одну изолированную колонию или несколько различных колоний пересевают в отдельные пробирки со скошенным агаром или какой-либо другой питательной средой.

    4. Производят вскрытие зараженных лабораторных животных. Исследуют мазки-отпечатки различных органов. Производят посев крови животных на питательные среды.


    Задания к лабораторному занятию

    1. Изучите характер роста Е.сoli на жидкой питательной среде (мясо-пептонном бульоне)

    Отметьте:

    А) диффузное помутнение среды

    Б) осадочный рост

    В) образование пленки

    Г) пристеночный рост

    1. Характеристика выросших колоний визуальным методом и с помощью микроскопа.

    Чашку поверните дном к себе и рассмотрите колонии в проходщем свете. Найдите три разных типа колоний, пронумеруйте их и опишите. Обратите внимани на следующие свойства:

    А) величину колоний

    Б) цвет колоний (наличие пигмента)

    В) форму колоний

    Г) поверхность

    Д) характер кра колонии

    Е) консистенцию

    Таблица

    Номер

    Колония

    Морфология окраски по

    Граму

    Величина

    Форма

    Цвет
    Поверхность

    Край

    Прозрачность

    1.






















    2.






















    3.

























    1. Приготовление мазков из разных колоний, окрашивание по Граму, микроскопия.

    Обратите внимание на размер, форму бактерий и их окраску.

    Сделайте зарисовки в альбом.

    1. Пересев изученной колонии на скошенный агар для накопления чистой культуры.

    При пересеве колонии на скошенный агар нужно бактериологической петлей брать культуру только из отмеченной, изученной ранее колонии, не задевая ближайших.

    Засенную пробирку подпишите и поставьте в термостат на 18-24 ч.

    Оформите протокол.

    Тема: Ферменты бактерий. Методы изучения ферментативной активности бак­терий и их использование для идентификации бактерий.

    Цель: Охарактеризовать ферментативную.
    Вопросы для самоподготовки

    1. Классификация ферментов.

    2. Конститутивные и адаптивные ферменты. Ферменты патогенности.

    3. Биологическая роль ферментов в микробных клетках.

    4. Идентификация бактерий по ферментативным признакам.

    5. Применение ферментов в биотехнологии и медицине.

    6. Выделение чистых культур аэробных бактерий (3 этап).



    Литература


    1. Дикий И.Л., Холупяк И.Ю., Шевелева Н.Е., Стегний М.Ю. Микробио­ло­гия. – Х.: Прапор, Издательство УкрФА, 1999. – С. 56-57.

    2. Н.П.Елинов, Н.А.Заикина, И.П.Соколова. Руково­дство к лабораторным занятиям по микробиологии. – М.: Медицина, 1988. – С. 40-42, 48-50.

    В жизнедеятельности микробов ферменты играют большую роль. Они являются обязательными участниками разнообразных биохимических реакций, лежащих в основе функций дыхания, питания, размножения.

    Микроорганизмы обладают большим разнообразием ферментов. Они или просто связаны с клеточными структурами бактерий, или растворимы и легко извлекаются из клетки. Основной составной частью ферментов является белок.

    Являясь биологическими катализаторами, ферменты обеспечивают течение в бактериальных клетках биохимических реакции, без которых невозможно их развитие. Кроме того, выделяясь во внешнюю среду, ферменты разлагают сложные органические вещества на более простые компоненты, удобные для усвоения бактериальной клеткой.

    Выделяемые бактериями во внешнюю среду ферменты обусловливают биохимическую активность бактерий, причем качественная сторона биохимической активности бактерий всегда строго специфична для данного вида бактерий.

    Биохимическая активность микробов установилась под влиянием внешних условий в процессе их эволюционного развития. В связи с этим большей биохимической активностью обладают сапрофитные бактерии, приспособившиеся жить за счет мертвых органических субстратов внешней среды, для расщепления которых необходимы все группы ферментов.

    Патогенные бактерии обладают меньшей биохимической активностью, имея в своем составе лишь строго определенные ферменты.

    Каждый вид микроорганизмов продуцирует постоянный для него набор ферментов, одни из которых расщепляют в разной степени белки и углеводы, а другие вызывают окисление и восстановление различных субстратов.

    Относительная стабильность ферментных систем бактерий позволяет использовать биохимические свойства бактерий в сочетании с их морфологическими, культуральными и другими постоянньми признаками для определения видов и типов бактерий, выделяемых из организма больного при инфекционных заболеваниях.

    В микробиологической практике для обнаружения ферментов исследуемую культуру микробов засевают на специальные диагностические среды (см. стр. ).

    В условиях практической микробиологической лаборатории наиболее часто производят изучение сахаролитических и протеолитических ферментов.
    Сахаролитические ферменты микробов

    Способность расщеплять различные углеводы с образованием кислот, альдегидов и газообразных продуктов характерна для значительного количества бактерий. Разнообразие ферментативных реакций у отдельных родов и видов бактерий позволяет использовать это в дифференциально-диагностических целях для идентификации исследуемых культур.

    Свойство одних бактерий расщеплять данный углевод и его отсутствие у сравниваемых бактерий иногда является основным признаком, пользуясь которым, возможно дифференцировать возбудитель заболевания.

    Среды, используемые для определения сахаролитической активности бактерий состоят из трех основных компонентов:

      1. основного субстрата собственно питательной среды

      2. исследуемого углевода

      3. индикатора, указывающего на наличие или отсутствие расщепления данного углевода.

    Для обнаружения сахаролитических ферментов исследуемую культуру бактерий засевают в питательные среды Гисса, называемые также “пестрым рядом”.

    “Пестрый ряд” Гисcа содержит 5 пробирок: с глюкозой, лактозой, манитом, мальтозой и сахарозой.

    Название “пестрый ряд” обусловлено тем, что под действием ферментов микроба, одни углеводы остаются неизменными, и, следовательно, цвет питательной среды не меняется, в то время как микробы другого вида расщепляют сахара, образуя кислые продукты распада, которые изменяют цвет индикатора и, соответственно, цвет питательной среды.

    Для обнаружения газов, являющихся конечными продуктами распада сахаров, в пробирки с жидкими средами Гисса опускают “поплавок ” – трубочку диаметром 0,5-0,7 см, запаянную с одного конца. При образовании в среде газообразных продуктов, поплавок всплывает на поверхность среды.

    Данные свойства микроорганизмов широко используют для диагностики инфекционных болезней.

    Так, например, кишечная палочка, являющаяся постоянным обитателем кишечника человека, морфологически идентична возбудителю брюшного тифа, но в отличие от него, ферментирует среды Гисса с образованием кислоты и газа, в то время как возбудитель брюшного тифа ферментирует их без газа.


    Таблица

    Дифференциально-диагностическая таблица кишечно-тифозной группы

    Микроорганизмы

    Подвижность

    УГЛЕВОДЫ

    Образование H2S

    глюкоза

    лактоза

    сахароза

    маннит

    мальтоза

    Escherichia coli

    +

    кг

    кг

    + –

    кг

    Кг



    Salmonella typhi

    +

    к





    к

    К

    + –

    Salmonella paratyphi A

    +

    кг





    кг

    К



    Salmonella schottmuelleri

    +

    кг





    кг

    К

    +

    Salmonella typhimurium

    +

    кг





    кг

    К

    +

    Shigella dysenteriae



    к







    к или –



    Shigella flexneri



    к



    + –

    + –

    к или –



    Shigella sonnei



    к

    к (м)

    к (м)

    к

    к или –



    Shigella boydii



    к





    к

    к или –



    Примечание: + – наличие подвижности, ферментации

    – – отсутствие подвижности

    к – образование кислоты

    кг – образование кислоты и газ
    Протеолитические ферменты микробов

    Белковые молекулы, находящиеся в среде, не проникают внутрь бактериальной клетки. Естественно, что бактерии должны обладать механизмом, обусловливающим внеклеточное расщепление белка до более мелких молекул, пригодных для ассимиляции. Некоторые виды микроорганизмов продуцируют и выделяют во внешнюю среду протеолитические ферменты – протеазы. катализирующие расщепление белков. В результате расщепления молекулы белка образуются высокомолекулярные промежуточные продукты распада – пептоны, альбумозы и полипептиды. Под действием других протеолитических ферментов пептоны в свою очередь расщепляются на полипептиды (соединение двух или нескольких аминокислот и отдельные аминокислоты). Для выявления протеолитических ферментов исследуемую культуру микроба засевают в питательную среду, содержащую 10-20% желатина. Посевы инкубируют при температуре 20-22ºС в течении нескольких дней. При наличии протеолитических ферментов бактерии разжижают столбик питательной среды с желатином, причем в зоне контакта образуется фигура, напоминающая воронку или елочку. Для патогенных микроорганизмов разжижение желатина является диагностическим признаком.
    Определение индола в культуре микроорганизмов

    Некоторые виды патогенных микробов с выраженной протеолитической активностью обладают способностью расщеплять белок и пептон до продуктов глубокого распада в виде индола и сероводорода.

    Индол образуется при расщеплении сложной гетероциклической кислоты – триптофана. Для выявления индолообразования петлю исследуемой культуры засевают в среду Строгова. Тотчас после посева в пробирку вносят полоску индикаторной бумаги, пропитанную раствором щавелевой кислоты так, чтобы индикаторная бумага не касалась питательной среды. Для этого верхнюю треть бумажной полоски прижимают пробкой к стенке пробирки. Посевы инкубируют 24-28 ч. при температуре 37ºС. Образование индола определяют по окрашиванию нижнего конца индикаторной бумаги в бледно-розовый цвет, хорошо заметный в проходящем свете.
    Определение сероводорода

    Сероводород является конечным продуктом расщепления серусодержащих аминокислот: цистина, цистеина и метионина. Петлю исследуемой культуры микробов засевают в пробирку с мясопептонным бульоном. Тотчас после посева в пробирку вносят пропитанную ацетатом свинца полоску индикаторной бумаги. В положительных случаях образующийся в культуре сероводород вступает в соединение с бесцветным ацетатом свинца и превращается в сульфат свинца, который придает индикаторной бумаге черно-бурое окрашивание.

    Окончательный учет результатов на образование индола и сероводорода проводят на 7-10 день после посева, так как процесс ферментативного расщепления белка и образование конечных продуктов распада происходит в течение длительного времени.
    Третий этап выделения чистой культуры.

    1. Отмечают характер роста выделенной чистой культуры. Чистая культура характеризуется однородным ростом.

    2. Микроскопия окрашенного мазка, приготовленного из такой культуры, в нем обнаруживаются морфологически и тинкториально однородные клетки.

    3. Пересев на среды Гисса, изучение других биохимических признаков.

    4. Изучение антигенных и вирулентных свойств выделенной культуры.


    Задания к лабораторному занятию

    1. Изучите выросшую культуру на скошенном агаре, приготовьте мазок, окрасьте по Граму.

    Визуально чистая культура характеризуется однородным ростом. При микроскопическом исследовании окрашенного мазка, приготовленного из такой культуры, в нем обнаруживаются морфологически и тинкториально однородные клетки. В случае выраженного полиморфизма, присущего некоторым видам бактерий, в мазках из чистой культуры наряду с типичными встречаются и другие формы клеток.

    1. Посейте чистую культуру микроорганизмов на среды Гисса.

    Пробирки с набором сред Гисса поставьте в штатив в один ряд. На каждой пробирке подпишите название сахара, содержащегося в среде. На первой пробирке каждого ряда кроме названия сахара укажите исследуемую культуру. Произведите посев.

    1. Определите наличие протеолитической активности микробов на мясо-пептонном желатине.

    Посев произведите уколом, погружая петлю с исследуемой культурой вглубь питательной среды до дна пробирки.

    Там, где под действием протеолитических ферментов микробов произошло расщепление белков желатина, отмечается разжижение питательной среды.

    1. Определите индолообразование выделенной культуры микроорганизмов.

    Для выявления индолообразования петлю исследуемой культуры засейте в пробирку с мясо-пептонным бульоном. После посева в пробирку внесите полоску индикаторной бумаги, пропитанную раствором щавелевой кислоты, так, чтобы индикаторная бумага не касалась питательной среды. Посевы инкубируют в термостате 24-48 ч. при температуре 37ºС. Образование индола определяют по окрашиванию бумаги в бледно-розовый цвет.

    1. Определите способность изучаемой культуры микроорганизмов выделять сероводород.

    Петлю исследуемой культуры засейте в пробирку с мясо-пептонным бульоном. Затем в пробирку внесите пропитанную ацетатом свинца полоску индикаторной бумаги. В положительных случаях образующийся в культуре сероводород вступает в соединение с бесцветным ацетатом свинца и превращается в сульфат свинца, который придает индикаторной бумаге черно-бурое окрашивание.

    Тема: Дыхание бактерий. Брожение. Методы выделения чистых культур анаэробов.

    Цель: Освоить методы выделения чистых культур анаэробных микроорганизмов.
    Вопросы для самоподготовки

    1. Типы дыхания микроорганизмов.

    2. Сущность процесса дыхания микробов.

    3. Особенность процесса брожения.

    4. Принципиальное различие дыхания и брожения, как энергетических процессов бактериальной клетки.

    5. Питательные среды для культивирования анаэробов.

    6. Методы культивирования анаэробов:

    а) физический;

    б) химический;

    в) биологический.

    Литература


    1. Дикий И.Л., Холупяк И.Ю., Шевелева Н.Е., Стегний М.Ю. Микробио­ло­гия. – Х.: Прапор, Издательство УкрФА, 1999. – С. 57-58.

    2. Н.П.Елинов, Н.А.Заикина, И.П.Соколова. Руково­дство к лабораторным занятиям по микробиологии. – М.: Медицина, 1988. – С. 36-42.


    Как отмечалось в разделе о питании бактерий, поступающие в микробную клетку питательные вещества трансформируются в составные части цитоплазмы, ядрные субстанции, оболочки клетки и т. д. Для этих сложных синтетических процессов необходима затрата определённого количества энергии, которую микробная клетка должна получать для поддержания своей жизнедеятельности также непрерывно, как и пита­тельные вещества.

    Затрата энергии необходима не только для синтетических процессов, но и для всех других многочисленных проявлений жизнедеятельности бактерий. Сюда отно­сятся рост и размножение микробов, их движение, образование спор и капсул, вы­работка токсинов.

    Микробные клетки всю необходимую энергию получают за счет экзотермиче­ских химических реакций, осуществляемых путём окисления различных химиче­ских соединений, обладающих большими запасами потенциальной энергии.

    Совокупность биохимических процессов, в результате которых освобождается энергия, необходимая для жизнедеятельности клеток, называется дыханием или биологическим окислением. Бактериальные клетки, имея относительно простую структуру и чрезвычайно малые размеры, отличаются большим разнообразием ти­пов дыхания.

    В дыхании микроорганизмов определяющую роль играют окислительные фермен­ты, причем различные типы дыхания микробов связаны с определённым на­бором их ферментов.

    В химизме дыхательных процессов всех типов дыхания микроорганизмов имеется много общего, однако, по специфичности определенных стадий реакции выде­ляет aэрoбный, анаэробный и смешанный тип дыхания.

    Во всех случаях первым этапом дыхания является отнятие водорода от суб­страта с помощью специфических ферментов - дегидрогеназ. А так как в структуре атома водорода на орбите имеется один электрон, то процесс отнятия электрона водорода от субстрата расценивается как окислительный субстрат – H2 + дeгидpoгинaзa  oкиcленый субстрат + дегидрогеназа – Н2.

    Эта реакция является примером реакции окисления - восстановления. Сущность окисления состоит в потере электронов окисляющимся веществом, тогда как сущность восстановления состоит в присоединении электронов восстанавли­вающимся веществом.

    В приведенной выше реакции фермент дегидрогеназа восстанавливается вследствие присоединения электронов водорода субстрата.

    Последовательность биохимических реакций в протекании обменных процессов в бактериальной клетке возможна благодаря изменениям окислительно-восстановительного потенциала (гН2), под которым понимают способность вещества отдавать или получать электроны.

    Окислительно-восстановительный потенциал зависит от температуры, pH сре­ды и других причин. Он может изменяться в зависимости от аэробиоза или анаэро­биоза. Строгие анаэробы растут при гН2 - 0-12, факультативные анаэробы при 0-20, аэробы при гН2 - 14-20.

    Бактерии в большинстве случаев получают необходимую энергию для своей жизнедеятельности путём окисления углеводов и некоторых органических кислот.

    У аэробов процесс расщепления углеводов происходит путём окислительных реакций. При этом вещество разлагается до самых простых соединений – Н2О, CO2 и др. с выделением большого количества тепловой энергии.

    Процесс аэробного расщепления одной грамм-молекулы глюкозы можно представить следующим образом:

    С6H12О6 + 6O2 = 6CO2 + 6Н2О + 674 калории.

    В анаэробных условиях расщепление вещества происходит за счёт сложных внутримолекулярных химических превращений в бактериальной клетке, которое обеспечивается особой системой ферментов. Расщепление углеводов в анаэробных условиях называется процессом брожения. Пастер показал, что брожение, в зависимости от видов микробов, которые его обусловливают, может быть спиртовым, маслянокислым, уксуснокислым. Это значит, что в процессе брожения образуется не только углекислый газ и вода, но и ряд более сложных продук­тов: винный спирт, масляная или уксусная кислоты. Количество освобождающейся энергии в процессе брожения намного меньше, чем при аэробном дыхании.

    Та же грамм-молекула глюкозы под действием дрожжевых клеток в анаэробных условиях расщепляется с освобождением всего лишь 27 калорий

    С6Н12О6  2С2Н5ОН + 2СО2 + 27 калорий.

    Маслянокислые бактерии расщепляют грамм-молекулу глюкозы с образованием 15 калорий.

    С6Н12О6  CH3CH2CH2COOH + 2CO2 + 2H2 + 15 калорий.

    Общность процессов аэробного дыхания и брожения выражается в том, что в обоих случаях расщепление углеводов до определённого момента идет по одному пути и сопровождается появлением одних и тех же промежуточных продуктов и лишь на конечных этапах в случаях анаэробных процессов распад углевода идёт до спирта, молочной кислоты или других продуктов неполного окисления, а при аэробном - до полного окисления т. е. до углекислоты и воды.

    В энергетическом отношении аэробное дыхание целесообразнее анаэробного. Так, если при аэробном процессе окисление глюкозы до С02 и Н2О освобождается 674 калорий, то при спиртовом брожении - 27 калорий, а при маслянокислом всего лишь 15 калорий. Это объясняется тем, что конечные продукты, получаемые в результате анаэробного окисления, представ­ляют собой сложные органические соединения, имеющие большой запас энергии. Это приводит к тому, что значительная часть освобождающейся при анаэробном дыхании улетучивается в виде тепла и только 30 % выделившейся энергии используется в процессах жизнедеятельности бактерий.

    1   ...   11   12   13   14   15   16   17   18   ...   40


    написать администратору сайта