Главная страница
Навигация по странице:

  • Фенотип Lewis у больных ИБС (п=74) и здоровых доноров (п=60)

  • 6.5. Проведение пробы на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента 6.5.1. Общие положения

  • 6.5.2. Методы проб на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента 6.5.2.1 Проба на индивидуальную совместимость крови по антигенам системы АВО

  • 6.5.2.2. Проба на совместимость крови по антигенам системы резус с применением 33 % раствора полиглюкина

  • Издательский дом Питер


    Скачать 5.79 Mb.
    НазваниеИздательский дом Питер
    АнкорZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    Дата31.01.2017
    Размер5.79 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    ТипУчебник
    #1519
    страница31 из 77
    1   ...   27   28   29   30   31   32   33   34   ...   77

    6.4.2. Фенотипирование эритроцитов по антигенам системы Lewis

    Выявление Lewis-антигенов Le% Leb ферментным методом с использованием неполных стандартных антител анти-Lе(а), анти-Le(b) состоит из приготов­ления рабочего ферментного раствора, обработки (энзимирования) этим ра­створом исследуемых и стандартных (контрольных) эритроцитов и постанов­ки реакции агглютинации энзимированных эритроцитов.

    Ход определения состоит из двух процедур.

    1. Приготовление рабочего ферментного раствора:

    — для приготовления рабочего ферментного раствора обычно использу­ют протеазу С (комплекс протеаз, продуцируемый культурой Arc. chrysogenum);

    — возможно также использование любой другой серологически активной протеазы микробного (субтилизин, проназа) или растительного (папаин, бро-мелин) происхождения;

    — необходимый объем 0,1 % ферментного раствора готовят путем раство­рения в течение нескольких минут при комнатной температуре навески ис-

    268_____________Глава 6. Иммунологические основы переливания крови

    пользуемого ферментного препарата в физиологическом растворе хлорида натрия (например, 10 мг фермента растворяют в 10 мл физиологического раствора). Раствор микробных протеаз готов для использования сразу же после растворения фермента. Для развития ферментативной активности ра­створа папаина его выдерживают 1 ч при комнатной температуре после ра­створения препарата. Годность приготовленного раствора микробной проте-азы (протеазы С), сохраняемой при 4-8 °С, — 1 нед, раствора папаина — 48 ч. Порошкообразные ферментные препараты при 4-8 °С сохраняют свою актив­ность в течение нескольких лет.

    2. Энзимирование эритроцитов:

    — исследуемые и стандартные (Lea+b-, Lea-b+) эритроциты дважды отмы­вают физраствором путем центрифугирования;

    — к 1 объему осадка отмытых эритроцитов добавляют 5 объемов фер­ментного раствора (например, к 3 каплям эритроцитов добавляют 15 капель ферментного раствора);

    — эритроциты и ферментный раствор перемешивают;

    — пробирки с ингредиентами помещают в суховоздушный термостат с температурой 37 °С на 45 мин или на 30 мин в водяную баню с той же темпе­ратурой;

    — после энзимирования эритроциты дважды отмывают от ферментного раствора;

    — готовят 5-7,5 % рабочую взвесь энзимированных эритроцитов в фи­зиологическом растворе хлорида натрия.

    .?. Постановка реакции агглютинации энзимированных эритроцитов:

    — для каждого образца исследуемых и стандартных (контрольных) эрит­роцитов на плоскость помещают по 1 капле сыворотки анти-Ье(а) и анти-Le(b);

    — к помещенным на плоскость реагентам добавляют по 1 капле энзими­рованных эритроцитов;

    — реагенты перемешивают;

    — инкубируют (в покое) 10 мин при комнатной температуре;

    — учитывают результаты реакции агглютинации энзимированных эрит­роцитов невооруженным глазом или с помощью 4-кратной лупы (при хоро­шем естественном или достаточном искусственном освещении при осторож­ном покачивании плоскости) по наличию или отсутствию агглютинации.

    Результат учитывается как истинный после проверки контрольных проб, т. е. при наличии агглютинации с положительным контролем и ее отсутствии с отрицательным контролем.

    Распространенность фенотипов системы Lewis у доноров на северо-запа­де России Lea-b- - 20 %, Lea+b- - 3-5 %, Lea-b+ - 70 %, Lea+b+ - встречается редко.

    Менее иммуногенные антигены эритроцитов___________________269

    6.4.2.1. Система антигенов Lewis как маркер риска ишемической болезни сердца

    Связь эритроцитарного фенотипа с предрасположенностью (или резис-тентностью) к различным патологическим процессам общеизвестна и в пер­вую очередь относится к антигенным системам АВО и резус. В последнее время привлекает к себе внимание система Lewis, антигены которой в отличие от других систем эритроцитарных антигенов не синтезируются эритроидными клетками-предшественниками, а абсорбируются из плазмы. Антигены систе­мы Lewis Lea и Leb представляют собой гликосфинголипиды и экспрессиру-ются во многих тканях организма, в частности на эпителии дыхательных, мо-чевыводящих путей, желудочно-кишечного тракта, слюнных желез и т. д. Количество антигенов Lewis на одном эритроците — 4500-7300 молекул. Для сравнения: на одном эритроците экспрессировано 8х105-2х10б антигенов си­стемы АВО и 2x106 антигенов системы резус.

    Система Lewis названа по фамилии женщины, в крови которой впервые были обнаружены aнти-Le-антитела. Антигены системы Lewis — продукт гена FUT3, расположенного на коротком плече 19-й хромосомы (19 р 13.3) и коди­рующего сс-1, 3/4-фукозилтрансферазу. Три главных фенотипа (Lea+b-, Lea-b+ и Lea-b-) — результат взаимодействия двух генетически независимых локу-сов: FUT3 и системы секреции(5есге1х>г, Se-se). Ген Seрасположен на длин­ном плече 19-й хромосомы и кодирует сс-1,2-фукозилтрансферазу. Частич­ный ген Se (Sew) может приводить к фенотипу Lea+b+. Подробно структур­но-функциональный анализ системы Lewis проведен в работе S. Henry и со-авт. (1995), которые связывают полиморфизм систем Le и Se с различными видами преимущества при адаптации к факторам окружающей среды. Рас­пространенность фенотипов Lewis имеет существенные региональные особен­ности. В большинстве стран Западной Европы антиген Lea встречается у 20 % населения, в Латинской Америке — у 11 %, на юге Китая — у 15 %. У 20-25 % жителей островов Тихого океана встречается фенотип Lea+b+, редкий в Ев­ропе и Америке.

    В первые десятилетия изучения антигенов Lewis четкой связи с заболева­ниями не было установлено. Однако в последние годы установлено, что ан­тигены Lewis участвуют в воспалительном процессе, связывая с эндотелием нейтрофилы и моноциты, которые затем мигрируют через эндотелий во вне-сосудистые очаги воспаления. Lea является контррецептором к Р-селектину и, возможно, L-селектину. Лица с фенотипом Lea-b- могут иметь дефект внут­риклеточного синтеза фукозилтрансфераз, а соответственно — дефект про-тивоинфекционной резистентности, так как GDP-фукоза — важный компо­нент липополисахаридов клеточной стенки бактерий.

    Известно, что антиген Leb способствует связыванию Helicobacterpyloriс эпителием желудка, а отсутствие этого антигена сочетается с рецидивами

    270_____________Глава 6. Иммунологические основы переливания крови

    мочеполовых инфекций у женщин. При раке легких смертность наиболее низ­ка у пациентов с фенотипом Lea-b+. Антиген Lea — рецептор Candidasp., В. pertussis(токсин), 5. aureus(адгезин) [Carton J. P., Colin Y., 2001].

    Особый интерес для внутренней медицины представляет выявление свя­зи фенотипа Lea-b- с повышенным риском ишемической болезни сердца (ИБС). У мужчин с фенотипом Ьеа-b- зарегистрировано повышение индек­са массы тела, увеличение частоты диабета и гипертензии, высокий уровень сы­вороточных триглицеридов и снижение содержания липопротеидов высокой плотности.

    Фенотип Lea-b- у белых мужчин с группами крови А, В и АВ сочетается с повышенным содержанием фактора VIII и фактора Виллебранда и рассмат­ривается в качестве маркера риска будущей атеротромботической болезни.

    Обсуждается вопрос возможных генетических связей системы Lewis с ре-зистетностью к инсулину. Есть данные о том, что умеренные дозы алкоголя имеют значение в профилактике ишемической болезни сердца у мужчин с фенотипом Lea-b-.

    Представляет интерес оценить распространенность антигенов и феноти­пов системы Lewis среди здоровых доноров в Санкт-Петербурге, а также у пациентов с ишемической болезнью сердца.

    Обследовано 60 доноров крови (42 мужчины и 18 женщин, средний воз­раст 22,3±1,4 лет) и 74 пациентов с ишемической болезнью сердца (48 муж­чин и 26 женщин, средний возраст 59,5±1,6 лет). Фенотип Lewis определяли с использованием специфических сывороток (Гемостандарт, Москва). 86 об­разцов параллельно тестировали с использованием реагентов DiaMed (Швей­цария). Расхождений результатов не выявлено.

    При обработке результатов частоту встречаемости фенотипов Lewis вы­ражали в процентах. Достоверность различий в распределении фенотипов оп­ределяли по критерию с2. Величину относительного риска, определяющую во сколько раз вероятность заболевания выше для носителя данного антигена, чем для других членов популяции, определяли по формуле: RR=ad/bc, где величины а, b, с, d соответствуют таковым при построении сетки 2г2. Также определяли этиологическую фракцию (EF), биологический смысл которой зак­лючается в определении части носителей фенотипа, у которых разовьется заболевание, и протективную фракцию (PF) — части носителей фенотипа без риска развития ИБС.

    Результаты исследования представлены в табл. 56. Обращает на себя вни­мание достаточно редкая распространенность фенотипа Lea+b- в обеих иссле­дуемых группах. Фенотип Lea-b- встречается у больных ИБС втрое чаще, чем у здоровых доноров. Напротив, распространенность фенотипа Lea-b+ среди пациентов значительно снижена.

    Полученные результаты позволяют констатировать наиболее выраженную связь антигенов Lewis с предрасположенностью /резистентностью развития


    271

    Проведение пробы на индивидуальную совместимость крови


    Таблица 56 Фенотип Lewis у больных ИБС (п=74) и здоровых доноров (п=60)

    Фенотип


    Контроль


    Пациенты


    X2


    Р


    RR


    EF


    PF




    %


    абс.


    %


    абс.












    Lea-b-


    20,3


    14


    67,5


    50


    25,9


    <0,0001


    6,8


    0,584


    _


    Lea+b-


    3,3


    2


    2,7


    2


    -


    -


    -


    -


    -


    Lea-b+


    73,3


    44


    24,3


    18


    32,0


    <0,0001


    0,11


    -


    0,663


    Lea+b+


    0


    0


    5,4


    4


    0,367


    >0,5


    -


    -


    -


    ИБС по сравнению с другими иммуногенетическими маркерами эритроци-тарных систем.

    Таким образом, при определении риска ИБС целесообразно исследовать фенотип Lewis. Фенотип Lea-b- — маркер повышенного риска развития ИБС. Фенотип Lea-b+ — маркер относительной устойчивости к развитию ИБС. Перспективны исследования связи системы Lewis с патогенетическими меха­низмами заболеваний внутренних органов.

    6.5. Проведение пробы на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента

    6.5.1. Общие положения

    Целью пробы на индивидуальную совместимость является предотвраще­ние трансфузий несовместимых эритроцитов. Тестирование сыворотки реци­пиента с эритроцитами предполагаемого донора — наиболее надежный спо­соб выявления антител, способных вызвать повреждение перелитых эритро­цитов, посттрансфузионные реакции, в том числе и гемолитические. Проведе­ние такой пробы позволяет:

    1) подтвердить АВО-совместимость донора и реципиента;

    2) выявить все антитела в сыворотке реципиента, направленные против антигенов эритроцитов донора.

    Для получения сыворотки у больного берут 4-5 мл крови в сухую про­бирку, на которой надписывают фамилию и инициалы реципиента, группу его крови и дату. При этом врач должен лично убедиться в том, что надписи

    272_____________Глава 6. Иммунологические основы переливания крови

    на пробирке сделаны правильно и относятся к тому больному, у которого взята эта кровь.

    Через 1-2 мин пробирку с кровью сильно встряхивают для отделения свертка от стенок пробирки или обводят его сухой стеклянной палочкой. После ретракции свертка от него отделяется сыворотка, которая и служит для про­бы на совместимость.

    Если необходимо ускорить отделение сыворотки, пробирку с кровью цен­трифугируют около 5 мин при 2000-3000 об/мин.

    Могут возникнуть трудности в получении сыворотки у пациентов с пони­женной свертываемостью крови или получающих гепарин. Свертывание образца может быть достигнуто путем добавления раствора тромбина (50 ед./мл): 1 кап­лю на 1 мл образца крови. Можно использовать сухой тромбин — вносить на кончике предметной палочки. Для нейтрализации гепарина к 4 мл цельной крови добавляют 1 (при необходимости больше) каплю 1 % раствора про-тамин-сул ьфата.

    Кровь донора получают из контейнера, который подготовлен для пере­ливания. Для этого кровь выпускают через иглу в небольшом количестве (5-10 капель) в пробирку или на пластинку, на которой будет производиться проба. На пробирке (пластинке) надписывают фамилию, инициалы донора, группу его крови и номер контейнера. При этом врач должен лично убе­диться в том, что на пробирке (пластинке) правильно написаны все сведения о доноре, имеющиеся на контейнере, из которого получена эта кровь.

    6.5.2. Методы проб на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента

    6.5.2.1 Проба на индивидуальную совместимость крови по антигенам системы АВО

    Ход определения:

    — на чистую сухую поверхность планшета или пластинки при комнат­ной температуре наносят и смешивают в соотношении 10:1 сыворотку реци­пиента и кровь донора;

    — периодически покачивая планшет, наблюдают за ходом реакции;

    — при отсутствии агглютинации в течение 5 мин кровь совместима. На­личие агглютинации указывает на несовместимость крови реципиента и до­нора. Такую кровь переливать нельзя. В сомнительных случаях результат пробы контролируют под микроскопом: при наличии монетных столбиков, исчезающих после добавления теплого (37 °С) 0,9 % раствора хлорида на­трия, кровь совместима; если в капле смеси видны агглютинаты, не расходя­щиеся при добавлении теплого 0,9 % раствора хлорида натрия, кровь не со­вместима.

    Проведение пробы на индивидуальную совместимость крови__________273

    6.5.2.2. Проба на совместимость крови по антигенам системы резус с применением 33 % раствора полиглюкина

    Поскольку чувствительность этой пробы низкая, применять ее в стацио­нарных лечебных учреждениях не рекомендуется. Допускается выполнение пробы на совместимость с применением 33 % раствора полиглюкина при не­обходимости проведения переливания крови в экстремальных условиях.

    Приготовление 33 % раствора полиглюкина:

    1) путем упаривания 6 % раствора полиглюкина до 18% (1/5,5) исход­ного объема;

    2) растворяя сухой порошок полиглюкина.

    Для получения 1000 мл 33 % раствора в мерную колбу помещают 330 г сухого порошка полиглюкина и растворяют в 700 мл дистиллированной воды в условиях водяной бани при температуре 50-60 °С. Добавляют 49,5 г сухо­го хлорида натрия. Охлаждают раствор до комнатной температуры и дис­тиллированной водой доводят до 1000 мл. Для консервирования 33 % раствора полиглюкина применяют борную кислоту из расчета 3 г на 100 мл.

    Проба на совместимость по антигенам системы резус не заменяет, а допол­няет пробу на совместимость по антигенам системы АВО.

    Ход определения:

    — на дно маркированной пробирки вносят 2 капли сыворотки больного, 1 каплю донорской крови и 1 каплю 33 % раствора полиглюкина;

    — перемешивают содержимое пробирки встряхиванием;

    — медленно поворачивают пробирку так, чтобы содержимое растекалось по стенкам пробирки. При этом увеличивается выраженность реакции агг­лютинации;

    — через 5 мин добавляют 2-3 мл физиологического раствора;

    — перемешивают содержимое, 2-3 раза аккуратно перевертывая пробир­ку, не взбалтывая;

    — наличие агглютинации в пробирке указывает, что кровь донора несов­местима с кровью пациента и поэтому не может быть ему перелита. Если содержимое пробирки остается равномерно окрашенным и не наблюдается признаков агглютинации эритроцитов — кровь совместима.
    1   ...   27   28   29   30   31   32   33   34   ...   77


    написать администратору сайта