Главная страница
Навигация по странице:

  • Воздушный метод стерилизации.

  • Химический метод стерилизации.

  • 15.2.5.4. Организация карантина плазмы

  • 15.2.5.5. Элиминация и инактивация вирусов

  • 15.2.6. Контроль за состоянием здоровья персонала учреждений службы крови, доноров и реципиентов

  • Издательский дом Питер


    Скачать 5.79 Mb.
    НазваниеИздательский дом Питер
    АнкорZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    Дата31.01.2017
    Размер5.79 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    ТипУчебник
    #1519
    страница70 из 77
    1   ...   66   67   68   69   70   71   72   73   ...   77

    Паровой метод стерилизации. Стерилизация изделий медицинского на­значения паровым методом осуществляется в паровых стерилизаторах. С уче­том свойств материала, из которого изготовлено то или иное изделие, стери­лизацию проводят по одному из двух режимов.

    Первый режим стерилизации (основной) — давление пара в стерили-зационной камере — 2 кгс/см2, температура — 132 °С, время стерилизации — 20 мин. По этому режиму стерилизуют перевязочные материалы, операцион­ное белье, хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов, изго-

    Посттрансфузионные гепатиты __ ____ _______________677

    товленные из коррозионностойких металлов и сплавов, стеклянную посуду, шприцы с надписью 200 °С, изделия из резины (трубки, катетеры и др.).

    Второй режим стерилизации (щадящий) — давление пара в стерили-зационной камере — 1,1 кгс/см2, температура — 120 °С, время стерилизации — 45 мин. По этому режиму стерилизуют изделия из тонкой резины, латекса, отдельных полимерных материалов.

    Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках в двойной мягкой упаковке из бязи, пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги ме­шочной влагостойкой. Контроль стерилизации осуществляют при каждой за­кладке стерилизуемого материала химическим методом с использованием бен­зойной кислоты, маннозы, серы при температуре 120 °С, мочевины, никотин-амида — при температуре 132 °С.

    Перевязочный материал (салфетки, шарики из мягкой марли и палочки с ватой) стерилизуется в биксах в специальных конвертах (не более 3 пакетов в одном биксе) в количестве, необходимом на один день работы, хранится в биксах с надписью на этикетке «стерильно» с указанием даты стерилизации и фамилии лица, ее проводившего.

    Предельный срок сохранения стерильности — 3 сут.

    Неиспользованные стерильные конверты подлежат обязательной повтор­ной стерилизации через 3 дня.

    Запрещается стерилизовать перевязочный материал, операционное белье в сухожаровом шкафу.

    Воздушный метод стерилизации. Стерилизация изделий медицинского назначения сухим горячим воздухом осуществляется в воздушных стерили­заторах с использованием одного из двух режимов.

    Первый режим стерилизации — рабочая температура стерилизации в камере — 180 °С, время стерилизации — 60 мин.

    Второй режим стерилизации — рабочая температура стерилизации в ка­мере — 160 °С, время стерилизации 150 мин (2,5 ч).

    Воздушная стерилизация рекомендуется для изделий из металла, стекла и силиконовой резины.

    Стерилизацию проводят в упаковке из бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной или без упаковки (в открытых емкостях). Изделия, простерилизованные без упаковки, должны быть использованы не­посредственно после стерилизации. Упакованные изделия могут, храниться 3 сут. Бактериологический контроль качества проводится не реже 1 раза в месяц.

    Химический метод стерилизации. Стерилизация изделий медицинского назначения полным погружением в раствор химического препарата осуще­ствляется в закрытых емкостях из стекла, пластмассы или покрытых эмалью (эмаль без повреждений).

    678 Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    При использовании в качестве стерилизующего агента 6 % раствора пе­рекиси водорода применяют два режима: 1) рабочая температура стерили­зации — не менее 18 °С, время стерилизации — 360 мин (6 ч); 2) рабочая температура стерилизации — 50 °С (в процессе стерилизации не поддержи­вается), время стерилизации — 180 мин (3 ч). Раствор перекиси водорода может использоваться в течение 7 сут со дня приготовления при условии хранения его в закрытой емкости в темном месте. Дальнейшее использова­ние раствора может быть только при условии контроля содержания активно действующих веществ.

    При использовании в качестве стерилизующего агента 1 % (по надуксус-ной кислоте) раствора дезоксона-1 рабочая температура стерилизации — не менее 18 °С, время стерилизации — 45 мин.

    Химический метод стерилизации рекомендуется для изделий из полимер­ных материалов, резин, стекла и коррозионностойких металлов. После стери­лизации изделие должно быть промыто стерильной водой. Срок хранения простерилизованного изделия в стерильной емкости (стерилизационная ко­робка), выложенной стерильной простыней, — 3 сут.

    Запрещается применять загрязненный (появление розовой окраски) кро­вью моющий раствор.

    Обеззараживание забракованных по маркерам гемотрансмиссивных ин­фекций консервированной крови и ее компонентов. Обеззараживание до­норской крови, и ее компонентов (эритроциты, плазма), забракованных в связи с обнаружением в них маркеров гемотрансмиссивных инфекций (гепатиты В, С, ВИЧ, сифилис) — обязательное предварительное условие обеспечения бе­зопасности перед их уничтожением.

    Выделение и отбор забракованных образцов гемотрансфузионных средств с составлением соответствующего акта организуют заведующие отделениями, выпускающие указанные средства.

    Обеззараживание забракованных крови и ее компонентов реализуется методом автоклавирования в специально выделенном автоклаве.

    Все подготовительные мероприятия по обеззараживанию забракованных крови и компонентов, их учет, уничтожение осуществляет специально выде­ленный для этих целей сотрудник.

    Для подготовки забракованной крови и ее компонентов к обеззаражива­нию необходимо иметь помещение, емкость для сбора, резиновые перчатки, специально выделенные промаркированные биксы (ведра с крышками), упа­ковочную бумагу, выделенный для этих целей автоклав. Работа по подготов­ке образцов к обеззараживанию осуществляется в специальных халате, мас­ке и перчатках.

    Поступившие забракованные кровь и компоненты регистрируются в спе­циальном журнале с указанием номера образца крови (компонента) и ха­рактера брака.

    Постгрансфузионные гепатиты _________________679

    Зарегистрированные кровь и ее компоненты после снятия этикеток укла­дываются в упаковочную бумагу, помещаются в специально выделенные про­маркированные емкости и передаются на автоклавирование.

    Обеззараживание забракованных образцов осуществляется при режиме 2атм (132 °С) 60 мин.

    Ответственный за уничтожение забракованной крови и ее компонентов расписывается в журнале под протоколом о проведении обеззараживания зарегистрированных образцов.

    Обезвреженные компоненты извлекаются из биксов и выносятся в мусо­росборник.

    15.2.5.4. Организация карантина плазмы

    Хранение заготовленной плазмы с запретом ее использования на протя­жении определенного времени называется карантином плазмы (карантинное хранение, карантинизация). Карантин плазмы рассматривается как дополни­тельная мера исключения передачи вирусной инфекции. Предпосылкой к организации карантинного хранения плазмы служит возможность донации крови лицами без клинических и лабораторных признаков гемотрансмиссив-ных инфекций (период «окна» в начальной стадии заболевания).

    По данным L. J. McCarty и соавт. (2001), срок возможно раннего (с мо­мента инфицирования) определения специфических маркеров гемотранс-миссивных инфекций с использованием современных диагностических сис­тем в США составляет:

    — анти-ВИЧ — 22 дня;

    — белок ВИЧ р24 — 16 дней;

    — анти-HTLV-I/II - 51 день;

    — HBsAg - 56 дней;

    — анти-ВГС — 82 дня.

    С учетом максимальной продолжительности латентного периода вирус­ного гепатита ряд специалистов полагают возможным в течение 6 мес хра­нить в замороженном виде плазму, полученную от доноров, обследованных обычным образом. Если в течение этого времени не поступает сообщений о развитии заболевания (вирусные гепатиты, ВИЧ-инфекция) у донора, плаз­ма выдается для лечебного применения или фракционирования.

    Непременным условием организации карантинного хранения плазмы яв­ляется достаточное количество холодильного оборудования, его надежность и правильная эксплуатация.

    Без повторного обследования донора карантинное хранение недостаточ­но эффективно, поскольку в значительном количестве случаев гемотрансмис-сивные инфекции протекают в субклинической форме. В такой ситуации пациенты редко обращаются за медицинской помощью, следовательно, инфор­мация о заболевших не поступает в базу данных службы крови.

    680 Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    Проблемы, которые необходимо предвидеть при принятии решения о вне­дрении карантинного хранения, состоят в следующем:

    Орекрутирование донора для повторного обследования;

    2) затраты на повторное обследование;

    3) организация хранения и управление запасами гемокомпонентов.

    Очевидно, что даже при должном решении правовой и материальной сто­рон, вопрос о рекрутировании доноров для повторного обследования нельзя решить в полном объеме.

    Затраты на повторное обследование и длительное хранение увеличивают стоимость гемокомпонента. Таким образом, встает вопрос о соотношении рас­ходов и эффективности.

    Хранение компонентов крови в течение нескольких месяцев возможно только в замороженном виде.

    Поскольку доля замороженных эритроцитов в России в последние годы не превышает 3 % от всех эритроцитсодержащих сред, то широкое внедрение карантина эритроцитов остается признать лишь перспективным (хотя в от­дельных учреждениях это возможно уже сейчас).

    Более реальным представляется внедрение карантина плазмы.

    Обращаясь к зарубежному опыту, следует отметить, что в «Руководстве по производству, использованию и обеспечению качества компонентов кро­ви» (Совет Европы, 2000) обязательного требования карантинизации нет, а есть лишь упоминание, что карантинное хранении плазмы внедрено в отдель­ных странах.

    В то же время в США официально одобрен гемокомпонент «свежезамо­роженная плазма повторно обследованного донора» («Свежезамороженная плазма, карантинная, обследованная повторно» — СЗПК). В английской транскрипции — Fresh frozen plasma donor retested (Fresh frozen plasma quarantined retested). Этот компонент во всех отношениях идентичен свеже­замороженной плазме (СЗП), за исключением того, что сдавший его донор повторно обследован не ранее чем через 112 дней после донации. Соответственно СЗПК безопаснее в инфекционном отношении, поскольку получена от лиц, не заболевших гемотрансмиссивными инфекциями за срок, равный периоду «окна» сероконверсии.

    Отдельно следует отметить, что в стандартах Американской ассоциации банков крови под карантинным хранением также понимают резервирование крови доноров, у которых при первичном скрининговом исследовании выяв­лена положительная реакция. Эти дозы хранят до тех пор, пока не станут известны результаты двойного повторного исследования.

    По-видимому, в наших условиях повторное обследование нужно прово­дить не ранее чем через 4 мес. Очевидно, что основным источником СЗПК станут кадровые доноры плазмафереза.

    Посттрансфузионные гепатиты__________________________681

    Согласно отечественным требованиям (приказ МЗ СССР №155 от 1990 г.) СЗП может храниться в холодильнике при температуре -30 °С и ниже в течение 12 мес с момента пункции вены при условии сохранения герметично­сти упаковки.

    По правилам Совета Европы режимы хранения СЗП:

    — 24 мес при температуре менее -30 "С;

    — 12 мес при температуре от -25 до -30 °С;

    — 3 мес при температуре от -18 до -25 °С.

    Таким образом, рациональный шаг на пути к внедрению карантинизации компонентов крови — введение в номенклатуру гемотрансфузионных средств нового, более дорогого, но и более безопасного компонента — «свежезаморо­женной плазмы повторно обследованного донора» («свежезамороженной плаз­мы, карантинной» — СЗПК).

    15.2.5.5. Элиминация и инактивация вирусов

    Безопасность гемокомпонентной терапии повышают: заготовка концент­ратов тромбоцитов и лейкоцитов методом аппаратного цитафереза, отмыва­ние эритроцитов, замораживание плазмы, криоконсервирование клеток кро­ви.

    Удаление лейкоцитов из трансфузионной среды наряду с профилактикой аллоиммунизации, иммуносупрессии и болезни «трансплантат против хозяи­на» обеспечивает элиминацию микроорганизмов, содержащихся в этих клет­ках: бактерий, цитомегаловируса и других вирусов герпеса, ретровирусов и, возможно, прионов — этиологического фактора болезни Крейтцфельдта-Якоба. Достаточно эффективны лейкоцитарные фильтры третьего поколения (см. раздел 12.6).

    За рубежом внедрены в практику и интенсивно развиваются технологии инактивации вирусов в плазме и продуктах ее переработки: метод «раство­ритель/детергент», фотодинамическая и фотохимическая инактивации в плазме, концентратах тромбоцитов и эритроцитов.

    Метод «растворитель/детергент» (Solvent/Detergent, SD) лицензирован для обработки концентратов факторов свертывания в США в 1985 г. Суть метода заключается в инкубации пулов плазмы с органическим растворите­лем три(n-бутил)фосфат (TNBP) и детергентом Тритон Х-100. При SD-об-работке разрывается оболочка вирусов, содержащая липиды, и инфекцион-ность вирусов (ВИЧ, ВГВ, ВГС и др.) утрачивается. Безопасность таких продуктов обеспечивается, с одной стороны, за счет элиминации покрытых оболочкой вирусов, а с другой — за счет сохранения в пуле нейтрализую­щих антител к вирусу гепатита А и парвовирусу В19 — двум безоболочеч-ным гемотрансмиссивным вирусам. Однако в отношении открытого в 1997 г. безоболочечного вируса ТТ это положение еще предстоит уточнить (см. подроб-

    682__________Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    нее раздел 15.3.5.3.). В течение 13 лет использовано более 35 млн доз кон­центратов факторов свертывания и иммуноглобулинов, приготовленных с использованием SD-технологии. Случаев передачи покрытых оболочкой ви­русов и токсических реакций не зарегистрировано. Дополнительные гаран­тии чистоты продукта обеспечиваются четкой связью в производственном процессе этапов экстракции, хроматографии и фильтрации.

    Метод фотохимической модификации с метиленовым синим (methylene blue, MB) нацелен на другую мишень: ядро вируса. За счет положительно­го заряда молекула красителя связывается с нуклеиновыми кислотами, осо­бенно в местах гуаниновых оснований, а также с белками вирусного ядра. Синглетный кислород, образующийся при облучении, и является действую­щим фактором процесса фотоокислительной (натриевые лампы с максиму­мом эмиссии 590 нм) инактивации вирусов. Поэтому метод МВ-облучения эффективен в отношении всех вирусов, независимо от наличия оболочки. С его использованием обрабатываются единичные дозы плазмы. В качестве конт­роля отслеживают эффективность инактивации вируса везикулярного стома­тита.

    В целом для одной дозы гемокомпонента разработаны следующие методы инактивации вирусов:

    1) с метиленовым синим (и последующим облучением видимым светом) — для плазмы (Grifols, Испания; Масо Pharma, Германия).

    Этот метод внедрен в Греции, Испании и Шотландии, однако из-за слу­чаев остаточной токсичности MB его широкое использование в Германии и Швейцарии приостановлено;

    2) с рибофлавином (и последующим облучением видимым светом) — для плазмы, эритроцитов и тромбоцитов (Gambro BCT Inc., США);

    3) с псораленами (и последующим облучением ультрафиолетом-А): Intercept Plasma System (псорален S-59) — для плазмы; Intercept Platelet System (псорален S-59) — для тромбоцитов; Intercept RBC (псорален S-ЗОЗ) — для эритроцитов (Cerus Corp., США) [Corash L., 2001].

    Следует отметить, что и SD-, и МВ-технологии действуют не только на вирусы, но и на некоторые белки плазмы. SD-метод приводит к уменьшению активности ингибитора протеина С и ос-2-антиплазмина на 50 %. При МВ-обработке активность фибриногена и других факторов свертывания снижа­ется на 30 %. Наряду с большим количеством материалов, свидетельству­ющих об эффективности инактивации, есть сообщения о недостаточном за­местительном действии МВ-вирус-инактивированной СЗП у пациентов с тромботической тромбоцитопенической пурпурой [De La Rubia J. et al., 2001].

    Развиваются и другие методы инактивации вирусов: иммунная нейтра­лизация специфическими антителами, нанофильтрация, пастеризация.

    Постгрансфузионные гепатиты__________________________683

    15.2.6. Контроль за состоянием здоровья персонала учреждений службы крови, доноров и реципиентов

    Персонал учреждений службы крови, а также лица, вновь поступившие на работу, не реже 1 раза в год (в некоторых учреждениях — каждые 6 мес) обследуются на наличие HBsAg и анти-ВГС с последующей консультацией у врача-инфекциониста в случае получения положительных результатов. Данные обследования регистрируют в журнале. Лиц, у которых обнаруже­ны HBsAg или анти-ВГС, занятых по роду своей деятельности заготовкой и переработкой крови, переводят на работу, не связанную с непосредственным контактом с донорами и производством гемотрансфузионных средств. Возоб­новление работы сотрудника с выявленными ранее HBsAg или анти-ВГС возможно только при отсутствии клинических признаков заболевания и пос­ле пятикратного отрицательного результата исследования крови на протяжении года с интервалом 2-3 мес.

    Работники здравоохранения и сотрудники учреждений службы крови, в частности, составляют одну из групп высокого риска инфицирования виру­сом гепатита В (ВГВ). В США ежегодно 12 000 медиков инфицируются ВГВ. Высокий уровень выявляемости маркеров ВГВ-инфекции позволяет считать данное заболевание профессиональным для медицинского персонала лечеб­но-профилактических учреждений.

    Известно, что HBsAg впервые появляется в крови примерно через 6 нед после контакта человека с вирусом гепатита В и присутствует в крови в те­чение 4-14 нед. Считается, что пороговая концентрация анти-НВз-антител (анти-HBs), достаточная для обеспечения защиты против инфекции, состав­ляет 10 ME/л. Неспособность организма избавиться от HBsAg и вырабаты­вать анти-HBs служит признаком хронизации инфекции. Вопрос о продол­жительности естественного «напряженного» иммунитета к ВГВ остается от­крытым.

    Основным методом является профилактика гепатита В — вакцинация на­селения высокоэффективными рекомбинантными вакцинами, декретирован­ная в нашей стране приказом Минздравмедпрома России и Госкомсанэпид-надзора России от 03.06.1996 г. № 226/79 «О введении профилактических прививок против гепатита В». В первую очередь вакцинации подлежат кон­тингента, относящиеся к группам высокого риска заражения ВГВ: медицин­ские работники, имеющие непосредственный контакт с кровью больных; сту­денты и учащиеся медицинских учебных заведений; больные, получающие по­вторные гемотрансфузии; семейное окружение больных хроническим гепа­титом В; наркоманы. На II научно-практической конференции «Гепатит В, С, D и G — проблемы изучения, диагностики, лечения и профилактики» (Москва, 14-16 октября 1997 г.) были представлены данные ряда центров крови о более высокой распространенности вирусов гепатитов среди кадро-

    684 Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    вых доноров (HBsAg — до 10,4 %). Очевидно, что в таких учреждениях це­лесообразна приоритетная вакцинация кадровых доноров.

    Схема иммунизации взрослых состоит из трех прививок: две первые с интервалом в 1 мес, третья — через б мес. После введения вакцины против гепатита В формируется гуморальный иммунитет: защитный уровень анти-HBs-антител (10 МЕ/л и выше) достигается после полного курса иммуни­зации у 85-95 % вакцинированных. Ревакцинация проводится через 7 лет.

    Важно отметить, что существуют две категории, не нуждающиеся в вак­цинации: носители HBsAg и лица, имеющие достаточный уровень анти-HBs-антител в результате перенесенной инфекции (контакта организма с виру­сом). Вакцинация не наносит вреда этим лицам, однако целесообразно оце­нить экономическую эффективность тотальной вакцинации или предшеству­ющего скрининга, тем более, что в условиях ограниченного финансирования именно финансовые соображения являются основным препятствием для при­обретения вакцины медицинскими учреждениями.

    Наиболее широко в Российской Федерации используются вакцина про­изводства НПК «Комбиотех Лтд» и вакцина Энджерикс-В фирмы «Смит-Кляйн Бичем» (табл. 152).

    Скрининг HBsAg (как и антител к вирусу гепатита С) у персонала ле­чебных учреждений целесообразно проводить при приеме на работу и еже­годном медицинском обследовании. Серопозитивных медицинских работни­ков необходимо направлять на углубленное клинико-лабораторное обследо­вание с участием терапевта и инфекциониста. Учитывая экспертную значи­мость результатов обследования, целесообразно проводить расширенный по­иск маркеров вирусных гепатитов с использованием высокоспецифичных тест-систем с повышенной чувствительностью. В случае формирования «но-сительства» вируса гепатита В у медицинских работников можно рекомен­довать: 1) перевод на должность, позволяющую избежать прямого контакта с пациентом; 2) соблюдение повышенных мер предосторожности; 3) времен­ное отстранение от операций, инвазивных процедур при активации инфек­ции (например, в США и Великобритании не допускают к операциям хи­рургов с НВе-антигенемией).

    Распространенность анти-НВз-антител в различных коллективах медицин­ских работников, например у персонала гематологических, кардиохирурги-ческих и реанимационных отделений, превышает 50-60 %. С учетом инфи-цированности HBsAg количество лиц, нуждающихся в вакцинации, может со­ставить 12-45 %. Соответственно с целью рационального расходования средств при проведении вакцинации против гепатита В надлежит проводить обсле­дование на наличие анти-НВs-антител. Лица с содержанием анти-НВs-ан-тител более 10 МЕ/л в вакцинации не нуждаются.

    Нерентабельным предварительное определение анти-HBs становится при их распространенности в коллективе менее 7,5%. Следует особо отметить, что

    Таблица 152
    1   ...   66   67   68   69   70   71   72   73   ...   77


    написать администратору сайта