Главная страница
Навигация по странице:

  • Реакция нейтрализации для подтверждения результатов ИФА.

  • Твердофазный иммуноферментный анализ для скрининга антител к вирусам.

  • Исследование антител к цитомегаловирусу.

  • Аннулирование результатов исследования маркеров вирусных инфекций.

  • Использование внешних контрольных образцов для исследования мар­керов вирусных инфекций.

  • 15.2.5. Профилактика посттрансфузионных гепатитов при заготовке и хранении гемотрансфузионных средств

  • 15.2.5.1. Подготовка персонала

  • Издательский дом Питер


    Скачать 5.79 Mb.
    НазваниеИздательский дом Питер
    АнкорZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    Дата31.01.2017
    Размер5.79 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    ТипУчебник
    #1519
    страница68 из 77
    1   ...   64   65   66   67   68   69   70   71   ...   77

    Исследование поверхностного антигена вируса гепатита В (HBsAg).

    Твердофазный иммуноферментный анализ (ИФА) — метод выбора для скри-нинга донорской крови на HBsAg. В ИФА используется твердая подложка (например, микропланшет, шарик или пластинка), покрытая немеченной ан­тисывороткой против соответствующего антигена. В качестве индикаторного материала используется такое же антитело, маркированное ферментом, при­сутствие которого может быть зарегистрировано по изменению окраски суб­страта. Если образец содержит антиген, то последний будет связываться с антителом, фиксированным на твердой фазе, а с другой стороны, будет свя­зываться с меченным ферментом индикаторным антителом.

    Посттрансфузионные гепатиты__________________________661

    Высокая чувствительность ИФА обусловливает полезность этого метода для массового скрининга, однако одновременно создает возможность ложно-положительных реакций. До признания донора антиген-положительным, что имеет значительные клинические и социальные последствия и вызывает бес­срочное отстранение от донорства, важно определить, действительно ли резуль­тат скрининга воспроизводим. Если начальный тест повторен в дубле и один из двух повторных тестов реактивен, образец квалифицируется как повтор­но реактивный и доза крови (ее компоненты) должна быть забракована.

    Совершенствование ИФА-диагностики ВГВ связано с разработкой систем, позволяющих выявить мутантные варианты HBs-антигена.

    Реакция нейтрализации для подтверждения результатов ИФА. Прове­дение подтверждающих исследований не обязательно, однако общепринято повторно выполнять дополнительное исследование реактивных образцов в ИФА. В подтверждающих тестах с нейтрализацией реактивный образец ин­кубируется с человеческой сывороткой, заведомо содержащей антитела, спе­цифичные к искомому антигену. Если при этом положительная реакция ис­чезнет или выраженность ее сократится не менее чем на 50 %, а контрольные образцы реагируют, как и ожидалось, присутствие антигена подтверждается и исходный результат расценивают как истинно положительный. Если ин­кубация с известным антителом даже частично не влияет на реактивность, то первичный результат расценивается как ложноположительный.

    Параллельно с образцами крови донора или пациента должны тестиро­ваться известные положительный и отрицательный контрольные образцы. Необходимо параллельно выполнять исследование с препаратом, заведомо содержащим антитела, специфичные к искомому антигену, и с препаратом, заведомо свободным как от антигена, так и от антител. Значения положитель­ного и отрицательного контрольных образцов должны вписываться в регла­ментированные границы. Если процент нейтрализации не соответствует ука­занному в инструкции к набору, исследование следует повторить.

    Твердофазный иммуноферментный анализ для скрининга антител к вирусам. Твердофазный иммуноферментный анализ (ИФА) — метод, ши­роко применяемый для скрининга на наличие антител к ВИЧ и ВГС. Для скрининга антител используется твердая подложка (микропланшет, шарик или пластинка), покрытая антигеном, приготовленным из рекомбинантных бел­ков соответствующего вируса или синтетических пептидов. В большинстве ди-агностикумов используется принцип захвата. Сыворотка или плазма инку­бируется с фиксированным антигеном; при наличии антител они прочно свя^ зываются с твердой фазой и остаются в этом состоянии после отмывания всей жидкой фазы. Затем добавляется конъюгированный с ферментом препарат антигена; если фиксированные антитела присутствуют — они связываются с меченным антигеном с образованием комплексов «антиген-антитело», кото-

    662__________Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    рые могут быть определены путем измерения ферментативной активности. В ряде диагностикумов используется принцип конкуренции. Специфические антитела, присутствующие в образце, будут конкурировать с антителами, конъ-югированными с ферментом, тем самым уменьшая уровень активности фик­сированного фермента по сравнению с результатами, полученными в присут­ствии нереактивного материала.

    Исследование антител к вирусу гепатита С. Антитела к ВГС остаются единственным специфическим критерием этой инфекции, используемым в службе крови*.

    Сама по себе природа антигена (рекомбинантный или синтетический) чувствительность тест-системы не определяет. Выбор наиболее чувствитель­ных тест-систем для скрининга доноров гемокомпонентов является актуаль­ной научно-практической задачей.

    Антитела к ВГС, как правило, определяются спустя 2 мес после инфици-рования, но могут и не появляться в течение 3-6 мес. Закономерности гумо­рального иммунного ответа при ВГС-инфекции во многом не изучены.

    Наряду с достижениями в профилактике гепатита С сохраняются неко­торые проблемы. Сроки появления антител к белкам ВГС весьма вариабель-ны. Как методы скрининга, так и подтверждающие методы могут давать лож-ноположительные и ложноотрицательные результаты. В силу этого положи­тельный результат скрининга на анти-ВГС-антитела служит основанием для выбраковывания донорской крови и углубленного обследования донора.

    Для обследования донорской крови целесообразно использовать тест-си­стемы, в которых имеется возможность выявления антител классов IgG и IgM к структурным и неструктурным антигенам ВГС**.

    Образцы, дающие отрицательные результаты при скрининговом исследо­вании (в соответствии с инструкцией к диагностикуму), квалифицируются как отрицательные и не нуждаются в дальнейшем изучении.

    Образцы, дающие положительные результаты в первичном скрининговом определении, целесообразно повторно исследовать с использованием двух диагностику мов. Позитивная реакция в обоих повторных исследованиях или одном из них означает положительный результат. Если в обоих повторных тестах позитивная реакция не выявлена, результат расценивается как отри­цательный.

    * Появились сообщения об использовании для обследования доноров тест-системы для выявления core-антигена вируса гепатита С (Ortho Diagnostics, США), что в некото­рых случаях позволяет выявить инфицированных лиц до сероконверсии. A. Brojer и соавт. (2001) среди 144 тыс. обследованных доноров обнаружили только двух лиц с отсутстви­ем антител к ВГС и наличием РНК ВГС. В обоих случаях параллельно выявлялся core-антиген.

    ** Совершенствование ИФА-диагностики ВГС связано с разработкой тест-систем чет­вертого поколения, в которые включены два новых антигена: NS3/4a и MEFA 7.1.

    Посттрансфузионные гепатиты вез

    При выявлении позитивной реакции образцов в первичном скрининговом исследовании доза донорской крови помещается на карантинное хранение до тех пор, пока не станут известны результаты двойного повторного исследова­ния. Все образцы крови и ее компонентов от «положительной» донации дол­жны быть уничтожены. Факт уничтожения регистрируется документально.

    Целесообразно, хотя и не обязательно, проведение дополнительного или подтверждающего изучения образцов с положительным результатом.

    Выбор диагностикума оптимально определять в зависимости от количе­ства образцов, подлежащих исследованию (цельные микропланшеты — на 90-92 определения; стриповые тест-системы — на 4-24 определения). При необ­ходимости срочного исследования 1-3 образцов целесообразно использовать тест-систему, позволяющую провести индивидуальное исследование («Имму-ноКомб»; «Биоград», Санкт-Петербург) (подробнее см. раздел 15.3.2.). Со­временные лаборатории ИФА оснащаются комплектом аппаратуры, позволя­ющей выполнять широкий спектр исследований, создавать базы данных и уп­равлять ими. В практике обследования доноров крови хорошо зарекомендо­вал себя информационно-измерительный комплекс «ИЛИП» (Санкт-Петер­бург).

    До венепункции донору разъясняют порядок действий учреждения с по­ложительным результатом исследований. О любом отклонении, выявленном при лабораторном обследовании, целесообразно информировать доноров.

    Определение других маркеров вирусных гепатитов при первичном обсле­довании доноров нецелесообразно. При неблагоприятной эпидемической об­становке в регионе (области, городе) соответствующие местные органы здра­воохранения могут принять решение о расширении перечня параметров ла­бораторного обследования донорской крови, что связано с дополнительными расходами, трудозатратами и сокращением донорского контингента.

    Исследование антител к цитомегаловирусу. Цитомегаловирус (ЦМВ) обладает способностью персистировать в тканях и лейкоцитах в течение ряда лет после первичного инфицирования. Не содержащая антител к вирусу кровь не несет в себе риска передачи инфекции. Некоторые категории пациентов с иммунодефицитом должны быть защищены от возможного инфицирования или реинфицирования ЦМВ. Для этого целесообразно отобрать анти-ЦМВ-отрицательных доноров для приготовления клеточных компонентов крови. Исследование анти-ЦМВ не является обязательным, однако при его выпол­нении применяются обычные правила контроля.

    Для определения антител может быть использован твердофазный имму-ноферментный анализ, аналогично описанному для анти-ВГС. В инструкции к набору указано, можно ли с его использованием раздельно определить IgM-и IgG-антитела к вирусу.

    Другим путем профилактики посттрансфузионной ЦМВ-инфекции (и других вирусных инфекций, возбудители которых персистируют в лейкоци-

    664 ____Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    тах) является удаление лейкоцитов из клеточных компонентов крови. С этой целью можно использовать центрифугирование с удалением лейкоцитарно­го слоя, отмывание свежих и криоконсервированных эритроцитов, специаль­ные лейкоцитарные фильтры. Подробнее см. раздел 15.3.3.

    Суррогатные маркеры вирусных гепатитов. Суррогатные маркеры — неспецифические маркеры, дополняющие специфические тесты выявления возбудителя инфекционного заболевания.

    Тестирование донорской крови на наличие суррогатных маркеров вирус­ных гепатитов было предложено до разработки и внедрения в производство специфических диагностикумов. По мере совершенствования специфических диагностикумов значимость исследования суррогатных маркеров вирусных гепатитов у доноров снижается.

    Аланинаминотрансфераза (АЛТ, или АлАТ, — фермент, катализирующий процесс переаминирования, т. е. обратимого переноса аминогруппы с L-ала-нина на а-кетоглутаровую кислоту; ранее назывался сывороточной глутамат-пируваттрансаминазой, или SGPT). Данный фермент присутствует во мно­гих тканях организма, в частности в печени. В гепатоцитах он локализуется в цитоплазме клеток. Высвобождение АЛТ в кровь происходит при повыше­нии проницаемости клеточных мембран, что свойственно как острому вирус­ному гепатиту, так и рецидивам хронического гепатита. В связи с этим АЛТ считается «индикаторным ферментом» и к его определению прибегают по­стоянно при постановке диагноза гепатитов любой природы. Повышение ак­тивности АЛТ в циркулирующей крови встречается при различного рода по­ражениях печени, включая вирусную инфекцию, заболевания желчевыводя-щих путей, токсичность лекарств и алкоголя.темохроматоз и ожирение.

    Методы исследования АЛТ основаны на определении скорости образова­ния пировиноградной кислоты. Наиболее распространенными являются спек-трофотометрический и колориметрический методы.

    Колориметрический метод (динитрофенилгидразиновый) основан на оп­ределении окрашенного комплекса пировиноградной кислоты. Нормальные величины активности фермента — 0,1-0,68 ммоль/ч/л, коэффициент вари­ации метода — 2-6 %. Пробы сыворотки крови можно хранить до 5 сут при температуре 2-8 °С.

    Спектрофотометрические методы основаны на принципе разницы погло­щения при определенной длине волны восстановленной и окисленной форм никотинамидадениндинуклеотида. Преимущество метода состоит в возмож­ности прямого измерения скорости ферментативной реакции. Нормальные ве­личины АЛТ составляют от 2 до 50 МЕ/л (в зависимости от модификации метода), коэффициент вариации метода — 2-6 %.

    В настоящее время определение уровня активности АЛТ при обследова­нии доноров крови и ее компонентов обязательно. Установлено более частое (в 10-12 раз) выявление среди сывороток крови с повышенным уровнем

    Постгрансфузионные гепатиты 665

    активности АЛТ анти-ВГС. Кроме того, повышение уровня активности АЛТ может свидетельствовать о наличии других гепатотропных вирусов, переда­ющихся с кровью, сниженном («подпороговом», неулавливаемом) содержа­нии специфического маркера либо его отсутствие в серонегативном периоде (периоде «окна»). В перспективе с внедрением в практику работы службы крови специфических диагностикумов повышенной чувствительности иссле­дование уровня активности АЛТ у доноров может быть признано необяза­тельным (в США - с 1996 г.).

    С внедрением в практику службы крови исследования активности АЛТ утратило свою значимость определение содержания билирубина в качестве суррогатного маркера безжелтушной формы вирусных гепатитов. Исследо­вание донорской крови на содержание билирубина проводить не следует.

    В ряде стран в качестве суррогатного маркера гепатита «ни А, ни В» было внедрено определение анти-НВс, которое с внедрением обследования доно­ров на анти-ВГС утратило свою значимость и проводить его не следует. Ни в одном из образцов крови с изолированным наличием анти-НВс IgG не удалось обнаружить ДНК ВГВ. Более того, М. С. Мооге и соавт. (1997) по­казывают, что анти-НВс-положительные доноры обладают особой ценностью, поскольку их значительная доля содержит и анти-HBs — источник сырья для производства специфического иммуноглобулина.

    Аннулирование результатов исследования маркеров вирусных инфекций.

    Результаты исследования _маркеров вирусных инфекций могут быть призна­ны несостоятельными в случае несоответствия инструкции производителя (на­пример, повреждение упаковки, истечение срока годности, нарушение поряд­ка выполнения исследования, испорченные реагенты) или если результаты контрольных образцов не соответствуют критериям, указанным в инструкции к диагностикуму. При аннулировании результатов исследования со всеми образцами и контрольными образцами аннулированного теста выполняется новое исследование, данные которого трактуются как результаты первичного регистрируемого теста. До аннулирования результатов исследования выявлен­ные проблемы должны быть рассмотрены руководителем учреждения (отдела контроля качества), причины ошибок проанализированы и при необходимос­ти предприняты меры по их исправлению. При аннулировании результатов исследования составляется протокол о нарушении стандартного производствен­ного процесса с полным описанием причин нарушения и принятых мер.

    Использование внешних контрольных образцов для исследования мар­керов вирусных инфекций. Внутренние (включенные в состав тест-системы) контрольные образцы, подтверждающие достоверность исследования, постав­ляются вместе с диагностическим набором; их использование предназначено для демонстрации предписанного хода выполнения анализа. Внешние (ар­битражные) контрольные образцы — реагенты, приобретаемые коммерчес-

    666__________Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    ким путем или специально полученные, используются в качестве дополне­ния к указаниям инструкции производителя для усиления мероприятий по обеспечению безопасности крови и повышения бдительности в отношении возможной ошибки. На основании результатов исследования внешних конт­рольных образцов можно аннулировать отрицательные результаты исследо­вания, однако если последнее выполнено в соответствии с инструкциями про­изводителей, а внутренние контрольные образцы сработали, то внешние кон­трольные образцы не могут быть использованы для аннулирования положи­тельных результатов. О программах контроля качества см. также разделы 15.3.2. и 15.4.

    15.2.5. Профилактика посттрансфузионных гепатитов при заготовке и хранении гемотрансфузионных средств

    За соблюдение принципов инфекционной безопасности обследования до­норов, заготовки и консервирования донорской крови, фракционирования крови на компоненты и препараты, а также проведение гемотрансфузий не­сут ответственность как руководители, так и персонал учреждений службы крови (статья 16 Закона РФ «О донорстве крови и ее компонентов» № 5142-1 от 9 июня 1993г.).

    15.2.5.1. Подготовка персонала

    Условиями обеспечения безопасности являются четкое исполнение пись­менного регламента функциональных обязанностей каждого сотрудника, плановая специальная подготовка, периодический (не реже одного раза в год) инструктаж и контроль правильности выполнения операций. Программы специальной подготовки должны быть адаптированы к различным категори­ям персонала учреждения службы крови, включать требования действующих официальных документов.

    Программа подготовки по производственной безопасности для всех сотруд­ников должна предусматривать изучение следующих разделов:

    — требования руководящих документов;

    — требования функциональных обязанностей;

    — механизмы передачи вирусов гепатитов и ВИЧ с кровью, начальные симптомы, клинические проявления и последствия этих инфекций;

    — особенности выполнения производственных операций с потенциальным риском инфицирования;

    — организация и оснащение рабочих мест, использование защитной одеж­ды и оснащения для выполняемых процедур. Следует обращать внимание на ограниченность возможностей защитной одежды и оснащения, а также на недопустимость ложного чувства безопасности.

    Постгрансфузионные гепатиты __ __ 667

    Кроме того, подготовка сотрудников по производственной безопасности имеет целью выработку навыков:

    — правильного использования защитной одежды и оснащения, обеззара­живания и уничтожения инфицированного материала;

    — действий в случае попадания крови или других потенциально инфек­ционных материалов на незащищенные участки тела;

    — действий в случаях проливания крови или ее компонентов на любом этапе работы с ними, а также воздействия на людей жидкостей, тканей, за­грязненных инструментов.

    Вновь принятые сотрудники должны быть до начала работы ознакомле­ны с правилами техники безопасности и пройти подготовку по их соблюде­нию. До направления на самостоятельную работу подготовленность сотруд­ника и его способность применять все необходимые меры предосторожности документируется руководителем. Дополнительная подготовка по технике безопасности проводится при перемещении или временном назначении сотруд­ников на другой участок работы.

    Соблюдение сотрудником правил техники безопасности — важнейший критерий оценки качества работы. Руководители обязаны пресекать наруше­ния правил техники безопасности. О каждом нарушении и принятых мерах целесообразно сообщать персоналу учреждения службы крови.
    1   ...   64   65   66   67   68   69   70   71   ...   77


    написать администратору сайта